Methodenartikel

Nauwkeurige implementatie van minimale erytheem dosis (MED) testen om individuele variatie in menselijke ontstekingsreactie te beoordelen

DOI:

10.3791/59813

⸱

3 oktober 2019

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Psychology, Virginia Tech, 2Graduate Program in Translational Biology, Medicine and Health, Virginia Tech, 3Department of Biomedical Sciences and Pathobiology, Virginia-Maryland College of Veterinary Medicine, Virginia Tech, 4Department of Human Development and Family Science, Virginia Tech, 5Wellness Center, Virginia Tech, 6Department of Statistics, Virginia Tech, 7Department of Basic Science Education, Virginia Tech Carilion School of Medicine

In dit artikel

Samenvatting

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Minimale erytheem dosis (MED) testen wordt gebruikt om doseringsschema's voor ultraviolette straling fototherapie vast te stellen. Het kan individuele variatie in inflammatoire respons beoordelen, maar mist methodologie voor het bereiken van reproduceerbare resultaten. Hier presenteren we een nauwkeurige implementatie van MED en demonstreren het vermogen om individuele variatie in inflammatoire respons vast te leggen.

Samenvatting

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Minimale erytheem dosis (MED) testen wordt vaak gebruikt in klinische instellingen voor het bepalen van de kleinste hoeveelheid ultraviolette (UV) bestraling die nodig is om erytheem (inflammatoire roodheid) op het huidoppervlak te produceren. In deze context wordt de MED beschouwd als een belangrijke factor bij het bepalen van de aanvangsdoses voor UV-fototherapie voor veelvoorkomende huidaandoeningen zoals psoriasis en eczeem. In onderzoeksinstellingen heeft MED-testen ook potentieel om een krachtig hulpmiddel te zijn voor het beoordelen van binnen-en tussenpersonen variatie in ontstekingsreacties. MED-tests zijn echter niet op grote schaal goedgekeurd voor gebruik in onderzoeksinstellingen, waarschijnlijk als gevolg van een gebrek aan gepubliceerde richtlijnen, wat een barrière is voor het verkrijgen van reproduceerbare resultaten van deze test. Ook, protocollen en apparatuur voor het vaststellen van MED sterk variëren, waardoor het moeilijk om resultaten te vergelijken tussen laboratoria. Hier beschrijven we een nauwkeurige en reproduceerbare methode om oppervlakkige erytheem te induceren en te meten met behulp van nieuw ontworpen protocollen en methoden die gemakkelijk kunnen worden aangepast aan andere apparatuur en laboratorium omgevingen. De hier beschreven methode omvat Details over procedures waarmee extrapolatie van een gestandaardiseerd doseringsschema naar andere apparatuur mogelijk is, zodat dit protocol kan worden aangepast aan elke UV-stralingsbron.

Inleiding

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Minimale erytheem dosis (MED) testen is een door de FDA goedgekeurde procedure om de gevoeligheid van de huid voor straling meestal in het UVB-bereik te evalueren, hoewel de MED kan worden bepaald bij andere golflengten in de UV en zichtbaar spectrum1. Erytheem wordt gedefinieerd als oppervlakkige roodheid op het oppervlak van de huid, veroorzaakt door het doorgeven van capillairen (latere stadia van erytheem zijn beter bekend als zonnebrand). MED-testen zijn veelvuldig gebruikt in de dermatologie literatuur en klinische fototherapie-instellingen om de minimale hoeveelheid ultraviolette (UV) straling te identificeren die de kleinste eenheid van meetbare verandering in de roodheid van de huid zal produceren. MED-testen kunnen worden uitgevoerd met een in de handel verkrijgbare UV-lamp, gelijkwaardig aan wat wordt gebruikt in de meeste commerciële zonne-installaties.

MED-testen omvat continue verspreiding van UV-straling of licht van het zichtbare spectrum op het oppervlak van de huid voor een vooraf bepaalde tijdsduur, met doseringsschema's die voornamelijk afhankelijk zijn van pigmentatie van de huid en de intensiteit en het type straling . Deze procedure wordt vaak gebruikt in klinische instellingen om te bepalen doseringsschema's voor patiënten die UV-straling therapie voor huidaandoeningen zoals psoriasis en eczeem2,3. De basisprocedures voor het bepalen van de MED in klinische instellingen zijn elders beschreven4, en kunnen worden gebruikt om de totale dosering van UV-straling naar boven of naar beneden aan te passen, afhankelijk van de individuele variatie in de gevoeligheid van de huid.

Huidpigmentatie is misschien wel de belangrijkste onderwerpspecifieke variabele bij het uitvoeren en meten van de resultaten van de MED-procedure6. Dit komt omdat de duur van de UV-belichting die nodig is om de minimale erytheem respons op te roepen, hoofdzakelijk wordt bepaald door de lichtheid of duisternis van de huid van de deelnemer, zoals gedefinieerd door het Fitzpatrick-huidtype (FST) van de deelnemer. FST7 is een numeriek schema voor het classificeren van de huidskleur van de mens. De Fitzpatrick-schaal is een erkend hulpmiddel voor dermatologische onderzoek naar pigmentatie op de menselijke huid8,9, en classificeert de menselijke huid in een van de zes categorieën van de lichtste (FST I) tot de donkerste (FST VI).

Donkerdere FST-typologieën vereisen een langere UV-duur, daarom is nauwkeurige classificatie van FST belangrijk. Er is een uitgebreide literatuur over methoden voor een accurate beoordeling van FST, met behulp van een breed scala aan benaderingen, waaronder zelfrapportage, dermatoloog interview en op instrumentatie gebaseerde beoordeling. Er is aangetoond dat de waarnemings scores van FST zijn gecorreleerd met de huidige, maar niet natuurlijke huidskleur10, maar FST kan op subjectieve wijze worden bepaald11 met behulp van zelfrapportage via vragenlijst12 en/of objectieve beoordeling via Spectrofotometrie. Fitzpatrick typing by spectrophotometrie is in een aantal studies van10,13,14en15nauw verbonden met het zelf rapport van de deelnemer.

Ondanks het nut en wijdverbreid gebruik van MED-testen in klinische diensten, is deze procedure niet op grote schaal goedgekeurd in laboratorium instellingen voor het meten van individuele variatie in reactie op pro-inflammatoire stimulatie. Het doel van de hier uiteengezette methodologie is het bieden van technieken en stapsgewijze procedures die de nauwkeurigheid en reproduceerbaarheid van de MED-testprocedure vergroten, om toekomstig werk in laboratorium instellingen te vergemakkelijken, gericht op fijnkorrelige kwantificering van intra-individuele variabiliteit in ontstekings respons. We bieden verder representatieve resultaten die de mogelijkheden van dit gestandaardiseerde protocol illustreren om een nauwkeurige variatie van persoons-op-persoon in ontstekingen vast te leggen.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Alle methoden die hieronder worden beschreven, waaronder het gebruik van menselijke vrijwilligers, zijn beoordeeld en goedgekeurd door de lokale institutionele beoordelings Raad (IRB), en zijn in overeenstemming met de verklaring van Helsinki en het verslag-Belmont. Alle deelnemers (N = 72) hebben geïnformeerde toestemming ondertekend zoals beschreven in het IRB-protocol. Inclusie/uitsluitingscriteria en procedures voor het staken van beëindiging zijn ontworpen om de veiligheid van de deelnemers te maximaliseren, en elke afwijking van deze procedures moet worden overwogen in het licht van de gevolgen ervan voor het risico en de verdraagbaarheid voor menselijke proefpersonen. In het kader van de hier gepresenteerde werkzaamheden beperkten de uitsluitingscriteria de deelname aan personen zonder persoonlijke of familiale geschiedenis van ontstekings omstandigheden of legale of illegale stoffen. De rechtvaardiging hiervoor is dat deze factoren van invloed kunnen zijn op de reacties op de MED-testprocedure.

1. selectie van deelnemers

  1. Gebruik de volgende Inclusiecriteria: 18-55 jaar oud; in goede algemene gezondheid zoals bepaald door medische symptoom Checklist (MSCL)5; kan begrijpen en communiceren over het lab veiligheidsprotocol gepresenteerd in het Engels; schriftelijke toestemming kunnen geven.
  2. Gebruik de volgende Uitsluitingscriteria: Fitzpatrick skin type I, zoals bepaald door zelf rapport; maakt regelmatig gebruik van commerciële Looi apparatuur; huid wonden of laesies op de geplande plaats van blootstelling; huidige huidkanker, of persoonlijke voorgeschiedenis van huidkanker; familiegeschiedenis van huidkanker; diabetes psoriasis of andere inflammatoire huidaandoening; perifere vaatziekten, perifere arteriële ziekte, ziekte van Raynaud, of elke andere gediagnosticeerde bloedsomloop aandoeningen; eventuele onvrijwillige motorische stoornissen; allergisch voor plakband; neemt geïnhaleerde steroïden voor astma (bijv., fluticason); neemt eventuele corticosteroïden; 2 of meer van de volgende (gediagnosticeerde hypertensie, hyperlipidemie, hoog cholesterol, rook sigaretten, familiegeschiedenis van coronaire of atherosclerotische ziekte (ouders/broers en zussen vóór de leeftijd van 55)); afhankelijkheid van werkzame stoffen-legaal of illegaal; mensen met substantie afhankelijkheid nieuw voor herstel (minder dan een jaar); gebruik van medicijnen die invloed hebben op de CNS functie, met inbegrip van psychotropen, opiaat medicatie of corticosteroïden, tijdens de laatste 3 maanden; alle voorgeschreven psychotrope medicijnen, momenteel of tijdens de laatste 3 maanden (deze omvatten medicijnen voor angst, depressie, of andere psychische problemen).

2. planning en voorbereiding van de MED

  1. Plan deelnemers voor twee afspraken: de eerste, de MED belichtings gebeurtenis (ongeveer 45 min), en de tweede, een follow-up om spectrofotometrie lezingen te verzamelen (ongeveer 10 min). Plan de follow-up afspraak voor 24 uur na de eerste afspraak.
  2. Voordat de deelnemers aankomen, lay-out en opzetten van essentiële apparatuur, waaronder twee dosis testen manchetten en veiligheidsuitrusting. Heb een verscheidenheid aan UV-beschermende kleding (zoals UV-beschermende sport mouwen, UV-beschermende handschoenen, lange mouw medische scrubs, UV-beschermende lakens en tape om de vellen te brengen) voor zowel de deelnemer als de onderzoeker om alle huid blootgesteld aan UV te dekken Straling.
  3. Kalibreer de spectrofotometer volgens de specificaties van de fabrikant. Doe dit voor elk onderwerp en elke sessie.

3. bepalen van het huid type Fitzpatrick (FST)

  1. Wanneer de deelnemer aankomt voor het MED-blootstellings evenement (Visit 1), identificeert u FST via zelf rapport of spectrofotometrie. Om de veiligheid van de deelnemers te maximaliseren, voert u geen MED-tests uit op deelnemers die als FST 1 zijn gecategoriseerd. Gebruik voor alle andere Fitzpatrick-huidtypen (2-6) de FST-Score om te bepalen welk blootstellings schema moet worden gebruikt.

4. manchet 1 toepassing

  1. Leg aan de deelnemer uit hoe MED testing werkt en vraag vragen alvorens verder te gaan.
  2. Voer in het algemeen de MED-procedure aan de binnenzijde van de niet-dominante onderarm uit.
  3. Plaats Cuff 1 (met alle diafragma bekledingen verwijderd) het vermijden van sproeten, mollen, littekens, haren (in de mate van het mogelijke), en eventuele bezuinigingen, kneuzingen of laesies op de huid. Verwijder alleen het beschermende wax-papier van de laterale (niet-centrale) delen van Cuff 1. Het is belangrijk dat het wax-papier van het centrale gedeelte van de manchet 1 niet wordt verwijderd, omdat de lijm een sterk potentieel heeft om de huid te irriteren wanneer deze na de uitgangswaarden wordt afgepeld, waardoor roodheid van de huid proximale aan de diafragma's wordt veroorzaakt.
  4. Na het situeren van de Cuff 1 op de beoogde blootstellings plaats, plaatst u de monumenten met behulp van een permanente marker om ervoor te zorgen dat Cuff 2 op exact dezelfde locatie zal worden gelegen. Markeer de huid op vier punten buiten de vouwen van elk van de zijkleppen van manchet 1, de rechterbovenhoek, linksboven, rechtsonder en linksonder.
    1. Maak deze markeringen donker genoeg om ongeveer 24 uur te overleven, omdat ze ook zullen worden gebruikt om Cuff 3 op exact dezelfde locatie te plaatsen bij de follow-up afspraak 24 uur later.

5. Baseline reading: Cuff 1 toepassing

  1. Met behulp van een spectrofotometer die is gekalibreerd volgens de specificaties van de fabrikant, verkrijgt en registreert u metingen permanent bij elk van de zes geopende openingen in volgorde.
  2. Zorg ervoor dat de spectrofotometer het midden van de manchet openingen wordt geplaatst en Vermijd mollen, littekens of andere onvolkomenheden in de mate van het mogelijke.
  3. Alle "SCI"-waarden permanent vastleggen (L, A, B). Om consistente metingen met hetzelfde kalibratiepunt te garanderen, houdt u de spectrofotometer in de aan gedurende de duur van de med-procedure en schakelt u deze niet uit totdat de metingen na de blootstelling zijn voltooid.
  4. Na Baseline spectrophotometrie metingen zijn opgenomen, verwijder Cuff 1. Om deelnemer ongemak te minimaliseren, breng Medische lijm oplosmiddel aan de omtrek van de manchet 1 als het wordt afgepeld, die zal voorkomen dat pijnlijke verwijdering van haar op de arm.

6. pre-exposure lezing: Cuff 2 toepassing

  1. Na verwijdering van manchet 1, situeren Cuff 2 op dezelfde locatie met behulp van de bezienswaardigheden getrokken op de huid voor manchet 1. De volledige Kleef steun kan worden blootgesteld en aangebracht om ervoor te zorgen dat Cuff 2 voldoende is verzegeld om Kruis blootstelling tussen diafragma's te voorkomen als gevolg van onvoldoende hechting op de huid.
  2. Hebben zowel de deelnemer en de onderzoeker Don UV-beschermende kleding en veiligheidsaccessoires. De deelnemer, de technicus die de procedure bestuurt en alle andere partijen in de kamer moeten minimaal een UV-beschermende bril hebben. Technici moeten lange mouwen dragen of een UV-beschermende Sleeve gebruiken.
  3. Laat de technicus vóór het activeren van de lamp de deelnemer bijstaan in het bedekken van alle blootgestelde huid, inclusief de arm boven de pleister, de arm en pols onder de pleister, de hand en delen van de voor-of achterkant van de arm die aan de zijkanten van de pleister kunnen worden blootgesteld (UV- beschermende vellen en tape voor het aanbrengen van de vellen kunnen nuttig zijn voor deze). Bovendien willen sommige deelnemers die overhemden met open Halslijnen dragen, de UV-beschermende doek over hun nek en borst kunnen draperen als deze gebieden dicht bij de UV-bron zullen zijn.
  4. Verdeel een UV-beschermende doek onder de arm van de deelnemer (om de reflectie van het tafeloppervlak te verminderen).

7. MED-procedure: pre-exposure

Opmerking: De stralen van de lamp moeten loodrecht op de plaats van blootstelling staan. In het algemeen is de fysieke beweging van de lamp minder mogelijk dan verplaatsing of opstelling van de hoek van de deelnemers.

  1. Voordat u de lamp activeert, regelt u de arm van de deelnemer zodanig dat de UV-stralen van de lamp loodrecht staan op de hoek van de Cuff 2 op de arm van de deelnemer.
  2. Identificeer de juiste afstand tussen de lamp en Cuff 2 op de arm van de deelnemer. Plaats de sensor van de radiometer tegenover de UV-lamp parallel aan het oppervlak van de huid en zo dicht mogelijk bij de locatie van Cuff 2.
  3. Bedek de deelnemers arm met een UV-Proof doek om blootstelling te voorkomen, en activeer kort de lamp om de afstand tot Cuff 2 aan te passen totdat de sensor van de radiometer 270 μW/cm2leest.
    1. Om deze meting te bereiken, past u de afstand tussen de lamp en het oppervlak van de huid aan tot de radiometer 270 μW/cm2 (± 10 μW) leest. Nadat de juiste afstand is bepaald, deactiveer de lamp.
      Opmerking: Het is belangrijk om hier op te merken dat kleine verschillen in de hoek van de radiometer sterk van invloed zijn op de meting. Zo moet de hoek van de radiometer zo dicht mogelijk parallel aan het huidoppervlak zijn.
  4. Maak tijdens de blootstellings sessie verdere aanpassingen in de afstand om drift in de locatie van de arm te voorkomen. Bevestig bij elke meting de afstand en pas zo nodig aan om de meetwaarden van de radiometer te handhaven bij ongeveer 270 μW/cm2 (± 10 μW).

8. MED-procedure: blootstelling

  1. Gebruik een stopwatch om het MED-schema te implementeren. Verwijder het eerste diafragma voordat u de UV-bron activeert. Activeer de bron en de stopwatch tegelijkertijd en verwijder elke diafragma afdekking op Cuff 2 volgens het schema dat hieronder is aangegeven, gebaseerd op FST.
  2. Noteer op het punt van verwijdering voor elk diafragma de meting van de radiometer wanneer de radiometer parallel aan het oppervlak van de huid wordt gehouden en naar de lamp is gericht. Als de afstand is veranderd, past u de afstand tot de lamp aan om ervoor te zorgen dat de radiometer opnieuw 270 (± 10) μW/cm2leest.
  3. Laat de technicus de arm van de deelnemer bewaken om een consistente positionering te garanderen. In het bijzonder, pas de arm als de arm roteert, zo veel deelnemers zullen de arm draaien als ze ontspannen. Na eventuele aanpassingen bevestigt u nogmaals dat de radiometer 270 μW/cm2 (± 10 μW) leest.
  4. Schakel de lamp op precieze tijd die is gespecificeerd door het doseringsschema in tabel 1. Schakel de stopwatch niet uit, omdat een extra reeks spectrofotometer aflezingen exact 7 minuten na het deactiveren van de lamp moet worden verzameld, zoals hieronder beschreven.

9.7 min. lezing na blootstelling

  1. Precies 7 minuten na de deactivering van de lamp, noteer de laatste spectrofotometer lezingen van elk diafragma in Cuff 2. Het doel bij het verzamelen van gegevens onmiddellijk na de blootstellings procedure is om eerst geen nadelige reactie op de UV-straling te bevestigen en ten tweede de initiële reacties te evalueren, die in sommige gevallen gering kunnen zijn, maar meetbaar afwijken van de uitgangswaarde ( vóór de belichting). Elke toename van roodheid na 7 minuten is waarschijnlijk een thermisch effect en geen erytheem.
    Opmerking: Een bijwerking van blootstelling aan UV-straling na 7 minuten is waarschijnlijk gerelateerd aan de minimale urticariële dosis van zonne-urticaria, een verworven foto sensitiviteits stoornis. Foto sensitiviteits stoornissen worden beoordeeld voorafgaand aan de MED-procedure en proefpersonen met deze aandoeningen moeten worden uitgesloten. Als dit echter op enig moment tijdens het testen wordt waargenomen, moet het blootstellings protocol onmiddellijk worden gestaakt.
  2. Na blootstelling aan UV-straling kan Cuff 2 bijzonder moeilijk te verwijderen zijn. Gebruik, indien nodig, een oplosmiddel van medische kwaliteit om het ongemak voordeel nemers tijdens het verwijderen van Cuff 2 te minimaliseren. Deelnemers met een bijzonder hirsute of anderszins gevoelige huid kunnen het nuttig vinden om olijfolie of op alcohol gebaseerde lijm remover toe te passen onder de rand van Cuff 2, omdat ze de pleister langzaam verwijderen. Na manchet 2 wordt verwijderd deelnemers kunnen resterende lijm op hun huid, die ook kan worden verwijderd met olijfolie of medische lijm oplosmiddel.
  3. Herinner de deelnemers vóór het vertrek van de blootstellings sessie de bezienswaardigheden niet te wassen en geen lotions toe te passen op de blootstellings plaats.

10. follow-up afspraak: Cuff 3 applicatie

  1. Kalibreer voordat de deelnemer arriveert de spectrofotometer volgens de specificaties van de fabrikant.
  2. Bereid Cuff 3 voor door alle diafragma bekledingen te verwijderen (het witte wax-papier op het centrale gedeelte van de pleister laten staan). Wanneer u Cuff 3 op de arm van de deelnemer plaatst, verwijdert u het witte wax-papier van de twee zijkleppen van de pleister. Gebruik de bezienswaardigheden op de onderarm van de deelnemer en plaats Cuff 3 op dezelfde locatie als de vorige twee patches.
  3. Neem een lezing op elk van de zes open diafragma's in volgorde. Inspecteer bovendien elk diafragma visueel en noteer of er in elk van de zes diafragma's een visueel bewijs van een erytheem reactie verschijnt (rode of roze huid geeft erytheem aan). Verwijder, na permanente meting van de spectrofotometer, de Cuff 3, indien nodig met oplosmiddel.
  4. Om het comfort en de veiligheid van de deelnemer verder te verbeteren, moet u 4-6 single-use Burn gel of Aloë Vera verstrekken en aan de deelnemer aangeven dat als de belichtings locatie jeukend of ongemakkelijk wordt, deze als een zonnebrand kan worden behandeld met deze of vergelijkbaar over de tegen producten.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De timing schema weergegeven in tabel 1 is een schema van de nieuwe dosering die is berekend voor het vastleggen van de med, gemiddeld, op het middelpunt van de gebeurtenis van de blootstelling (dat wil zeggen, diafragma 3 of 4) voor elke FST. De basis voor het berekende schema is als volgt.

Uit voorafgaand werk is gebleken dat voor personen met FST 2 de mediane MED voor straling in het UVB-bereik 66,9 milliwatt (mW) per cm2, 77,429 MW/cm2 voor FST 3 en 8...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Nauwkeurige implementatie van MED-tests zoals hier beschreven, kan verschillende voordelen bieden ten opzichte van andere op Lab gebaseerde ontstekings uitdagingen die populair gebruik hebben bereikt. Bijvoorbeeld, zuig blister protocollen17,18,19 verhogen een vloeistof gevulde blister op de huid die vervolgens wordt aangezogen met een spuit om directe toegang tot de cytokine micro-omgeving te krijgen. Hoewel huid blaarvorming e...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De auteurs van deze studie verklaren geen belangenconflicten, financieel of anderszins.

Dankbetuigingen

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Dit werk werd gesteund door een subsidie van het Virginia Tech College of Science Discovery Fund.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
6-aperture dose testing patch (“Cuff”)Daavlin  
Medisch kwaliteitslijmoplosmiddel
Niet-reflecterende UV-bestendige stof
RadiometerSolarLightModel 6.2 UVB Meter
Aloe of brandwondgel voor eenmalig gebruik
SpectrofotometerKonika-MinoltaCM-2600D
Stopwatch
UV-lamp – Fiji SunSpertiEmissiespacectrum 280 nm-400 nm, ongeveer 25% UVB
UV-bestendige veiligheidsbril (2 paar)
UV-bestendige hoes
Witte katoenen handschoenen (2 paar)

Referenties

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Magnus, I. A. Dermatological Photobiology: Clinical and Experimental Aspects. Blackwell Scientific Publications. , J. B. Lippincott. (1976).
  2. Grundmann-Kollmann, M., et al. Phototherapy for atopic eczema with narrow-band UVB. Journal of the American Academy of Dermatology. 40 (6), Pt 1 995-997 (1999).
  3. Honigsmann, H. Phototherapy for psoriasis. Clinical and Experimental Dermatology. 26 (4), 343-350 (2001).
  4. Heckman, C. J., et al. Minimal Erythema Dose (MED) testing. Journal of Visualized Experiments. (75), e50175(2013).
  5. Kroenke, K., et al. Physical symptoms in primary care. Predictors of psychiatric disorders and functional impairment. Archives of Family Medicine. 3 (9), 774-779 (1994).
  6. Coelho, S. G., et al. Non-invasive diffuse reflectance measurements of cutaneous melanin content can predict human sensitivity to ultraviolet radiation. Experimental Dermatology. 22 (4), 266-271 (2013).
  7. Fitzpatrick, T. B. The validity and practicality of sun-reactive skin types I through VI. Archives of Dermatology. 124 (6), 869-871 (1988).
  8. Matts, P. J., Dykes, P. J., Marks, R. The distribution of melanin in skin determined in vivo. British Journal of Dermatology. 156 (4), 620-628 (2007).
  9. Eilers, S., et al. Accuracy of self-report in assessing Fitzpatrick skin phototypes I through VI. JAMA Dermatology. 149 (11), 1289-1294 (2013).
  10. Daniel, L. C., Heckman, C. J., Kloss, J. D., Manne, S. L. Comparing alternative methods of measuring skin color and damage. Cancer Causes, Control. 20 (3), 313-321 (2009).
  11. Ravnbak, M. H., Philipsen, P. A., Wulf, H. C. The minimal melanogenesis dose/minimal erythema dose ratio declines with increasing skin pigmentation using solar simulator and narrowband ultraviolet B exposure. Photodermatology Photoimmunology & Photomedicine. 26 (3), 133-137 (2010).
  12. Miller, S. A., et al. Evidence for a new paradigm for ultraviolet exposure: a universal schedule that is skin phototype independent. Photodermatology Photoimmunology & Photomedicine. 28 (4), 187-195 (2012).
  13. Pershing, L. K., et al. Reflectance spectrophotometer: The dermatologists' sphygmomanometer for skin phototyping. Journal of Investigative Dermatology. 128 (7), 1633-1640 (2008).
  14. Kollias, N., Baqer, A., Sadiq, I. Minimum Erythema Dose Determination in Individuals of Skin Type-V and Type-Vi with Diffuse-Reflectance Spectroscopy. Photodermatology Photoimmunology & Photomedicine. 10 (6), 249-254 (1994).
  15. Treesirichod, A., Chansakulporn, S., Wattanapan, P. Correlation Between Skin Color Evaluation by Skin Color Scale Chart and Narrowband Reflectance Spectrophotometer. Indian Journal of Dermatology. 59 (4), 339-342 (2014).
  16. Gambichler, T., et al. Reference limits for erythema-effective UV doses. Photochemistry and Photobiology. 82 (4), 1097-1102 (2006).
  17. Kool, J., et al. Suction blister fluid as potential body fluid for biomarker proteins. Proteomics. 7 (20), 3638-3650 (2007).
  18. Clark, K. E., Lopez, H., Abdi, B. A., et al. Multiplex cytokine analysis of dermal interstitial blister fluid defines local disease mechanisms in systemic sclerosis. Arthritis Research & Therapy. 17, 73(2015).
  19. Rosenkranz, M. A., et al. A comparison of mindfulness-based stress reduction and an active control in modulation of neurogenic inflammation. Brain Behavior and Immunity. 27 (1), 174-184 (2013).
  20. Smith, T. J., Wilson, M. A., Young, A. J., Montain, S. J. A suction blister model reliably assesses skin barrier restoration and immune response. Journal of Immunological Methods. 417, 124-130 (2015).
  21. Holm, L. L., et al. A Suction Blister Protocol to Study Human T-cell Recall Responses In Vivo. Journal of Visualized Experiments. (138), 57554(2018).
  22. Seitz, J. C., Whitmore, C. G. Measurement of erythema and tanning responses in human skin using a tri-stimulus colorimeter. Dermatologica. 177 (2), 70-75 (1988).
  23. Henriksen, M., Na, R., Agren, M. S., Wulf, H. C. Minimal erythema dose after multiple UV exposures depends on pre-exposure skin pigmentation. Photodermatology Photoimmunology & Photomedicine. 20 (4), 163-169 (2004).
  24. Stamatas, G. N., Zmudzka, B. Z., Kollias, N., Beer, J. Z. In vivo measurement of skin erythema and pigmentation: new means of implementation of diffuse reflectance spectroscopy with a commercial instrument. British Journal of Dermatology. 159 (3), 683-690 (2008).
  25. Latreille, J., et al. Influence of skin colour on the detection of cutaneous erythema and tanning phenomena using reflectance spectrophotometry. Skin Research and Technology. 13 (3), 236-241 (2007).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Toestemming aanvragen om de tekst of afbeeldingen van dit JoVE-artikel te hergebruiken

Toestemming aanvragen

Trefwoorden

Ultraviolette bestralingFitzpatrick huidtypespectrophotometer metingenUV fototherapiedoseringsschemameting van huiderytheemfototherapieapparatuur

Gerelateerde artikelen