Een abonnement op JoVE is vereist om deze inhoud te bekijken. Log in of start vandaag met uw gratis proefperiode.

Methodenartikel

Het bestuderen van effecten van sigarettenrook op pseudomonas infectie in longepitheelcellen

5.6K weergaven

⸱

DOI:

10.3791/61163

⸱

11 mei 2020

 ,  ,  , 
1Acute Lung Injury Center of Excellence, Pulmonary, Allergy, Critical Care Medicine, Department of Medicine, University of Pittsburgh School of Medicine

In dit artikel

Samenvatting

Hier beschreven is een protocol om te bestuderen hoe sigarettenrook extract bacteriële kolonisatie in longepelliële cellen beïnvloedt.

Samenvatting

Het roken van sigaretten is de belangrijkste etiologische oorzaak voor longemfyseem en chronische obstructieve longziekte (COPD). Het roken van sigaretten bevordert ook de gevoeligheid voor bacteriële infecties in de luchtwegen. Echter, de effecten van het roken van sigaretten op bacteriële infecties in menselijke long epitheelcellen moeten nog grondig worden bestudeerd. Hier beschreven is een gedetailleerd protocol voor de voorbereiding van sigaretten roken extracten (CSE), behandeling van menselijke long epitheelcellen met CSE, en bacteriële infectie en infectie bepaling. CSE werd bereid met een conventionele methode. Longepeppitheelcellen werden behandeld met 4% CSE voor 3 h. CSE-behandelde cellen werden toen besmet met Pseudomonas bij een veelheid van infectie (MOI) van 10. Bacteriële belastingen van de cellen werden bepaald door drie verschillende methoden. De resultaten toonden aan dat CSE de pseudomonasbelasting in longepelleelcellen verhoogde. Dit protocol biedt daarom een eenvoudige en reproduceerbare aanpak om het effect van sigarettenrook op bacteriële infecties in longepeleliële cellen te bestuderen.

Inleiding

Het roken van sigaretten beïnvloedt de volksgezondheid van miljoenen mensen wereldwijd. Veel schadelijke ziekten, waaronder longkanker en chronische obstructieve longziekte (COPD), worden gemeld te worden gerelateerd aan het roken van sigaretten1,2. Het roken van sigaretten verhoogt de gevoeligheid voor acute microbiële infecties in het ademhalingssysteem3,4,5. Bovendien blijkt uit toenemend bewijs dat het roken van sigaretten de pathogenese van veel chronische aandoeningen6,7,8versterkt . Bijvoorbeeld, het roken van sigaretten kan verhogen virale of bacteriële infecties die COPD verergering veroorzaken9. Onder de bacteriële pathogenen die etiologisch bijdragen aan acute verergering van COPD, een opportunistische gram-negatieve bacillus pathogene, Pseudomonas aeruginosa, veroorzaakt infecties die correleren met slechte prognoses en hogere sterftecijfers10,11. COPD-exacerbatie verergert de ziekte door de pathologische progressie te versnellen. Er zijn geen effectieve therapieën tegen COPD-exacerbatie, behalve voor het antisymptomatische beheer12. COPD-verergering bevordert de sterfte van patiënten, vermindert de kwaliteit van leven en verhoogt de economische lasten voor de samenleving13.

De luchtwegen luchtweg is een open systeem, voortdurend onderworpen aan verschillende microbiële pathogenen die extern aanwezig zijn. Opportunistische bacteriële pathogenen worden meestal gedetecteerd in de bovenste luchtwegen, maar soms worden waargenomen in de onderste luchtwegen14,15. In diermodellen kan P. aeruginosa worden gedetecteerd in alveololatorzakjes zodra 1 uur na infectie16. Als een belangrijk afweermechanisme, immuuncellen zoals macrofagen of neutrofielen elimineren de bacteriën in de luchtwegen. Longepeppitheelcellen, als de eerste fysiologische barrière, vervullen een unieke rol in de gastheerverdediging tegen microbiële infecties. Longepeppitheelcellen kunnen microbiële invasie, kolonisatie of replicatie reguleren onafhankelijk van immuuncellen17. Sommige moleculen gevonden in epitheliale cellen, waaronder PPARg, oefenen antibacteriële functies uit, waardoor bacteriële kolonisatie en replicatie in longepitheelcellen18reguleren. Het roken van sigaretten kan de moleculen veranderen en de normale afweerfunctie in longepitheelcellen19,20aantasten. Recente studies rapporteerden directe blootstelling van sigarettenrook aan longepepelleiële cellen met behulp van robotrookapparatuur21,22. Blootstelling aan rook kan echter op andere manieren worden uitgevoerd, waaronder de toepassing van CSE. Bereiding van CSE is een reproduceerbare benadering met mogelijke toepassingen in andere celtypen, waaronder vasculaire endotheelcellen die indirect worden blootgesteld aan sigarettenrook.

Dit rapport beschrijft een protocol om sigarettenrook extract te genereren om bacteriële belasting in longepelliële cellen te veranderen. CSE verhoogt de bacteriële belasting van P. aeruginosa, en het kan bijdragen aan de herhaling van bacteriële infecties meestal gezien in COPD verergering. Voor de bereiding van CSE wordt een conventionele methode gebruikt. Longepeppitheelcellen, in hun exponentiële groeistadium, worden behandeld met 4% CSE voor 3 uur. Als alternatief kunnen monolaag-gekweekte longepelleliale cellen direct worden blootgesteld aan sigarettenrook in een lucht-vloeibare interface. CSE-behandelde cellen worden vervolgens uitgedaagd met Pseudomonas bij een veelheid van infectie (MOI) van 10. De bacteriën worden gepropageerd met een bepaalde schudsnelheid om ervoor te zorgen dat de morfologie van hun flagella intact blijft om hun volledige invasieve capaciteit te behouden. Gentamycine wordt gebruikt om de bacteriën te doden die in het kweekmedium achterblijven, waardoor de potentiële besmetting tijdens de daaropvolgende bepaling van de bacteriële belasting wordt verminderd. Het protocol maakt ook gebruik van GFP-gelabelde Pseudomonas, die is gebruikt als een krachtig instrument bij het bestuderen van Pseudomonas infectie in verschillende modellen. Een representatieve stam is P. fluorescens Migula23. De mate van infectie of bacteriële belasting na de CSE-behandeling wordt op drie manieren bepaald: de druppelplaatmethode met kolonietelling, kwantitatieve PCR met Pseudomonas 16S rRNA-specifieke primers, of flow cytometrie in cellen die besmet zijn met fluorescerende Pseudomonas. Dit protocol is een eenvoudige en reproduceerbare benadering om het effect van sigarettenrook op bacteriële infecties in longepeleliële cellen te bestuderen.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

1. 100% CSE-preparaat

  1. Teken 10 mL serumvrije celkweekmedia (DMEM/F12 voor BEAS-2B-cellen; luchtwegepeelcelbasismedium voor HSAEC-cellen) in een spuit van 60 mL.
  2. Bevestig omgekeerd een op de juiste wijze bijgesneden pipetpunt van 1 mL aan het mondstuk van de spuit als adapter om de sigaret (3R4F) vast te houden.
  3. Verwijder het filter van de sigaret. Bevestig een sigaret aan de tipadapter en verbrand de sigaret.
  4. Trek 40 mL rookhoudende lucht in 10 mL serumvrije media. Meng de rook met het medium door krachtig te schudden (30 s per trekpleister).
  5. Herhaal stap 1.4 ongeveer 11x in ~ 7 min totdat de sigaret volledig is uitgebrand.
  6. Filter de 10 mL gerookte media met een 0,22 μm filter om micro-organismen en onoplosbare deeltjes uit te sluiten. Breng over op een gesloten steriele buis. Bereid de 100% CSE niet meer dan 30 min voor de volgende test.

2. Pseudomonas cultuur

  1. Inocula bevroren P. aeruginosa (stam PAO1) of P. fluorescens Migula (stam PAO143) in een Tryptic Sojabrouwsel (TSB) agarplaat voor nachtelijke cultuur bij 37 °C.
    OPMERKING: Om voldoende bacteriën te verkrijgen voor het kweken, verspreid zoveel mogelijk bacteriën op de TSB agar plaat mogelijk.
  2. Verzamel een bacterie-uitstrijkje en incubeer in 20 mL TSB met 5% van glycerol als koolstofbron.
  3. Schud de bacteriële suspensie in een couveuse van 37 °C bij 200 tpm gedurende 1 uur tot de OD600-waarde = 0,6.
    LET OP: Laat de schudsnelheid niet hoger zijn dan 200 rpm. Hogere schudsnelheden kunnen de morfologie van de bacteriële flagella beschadigen en de bacteriële invasie in longepidia beïnvloeden. Evenzo, beperk de schudden tijd tot 1 uur om zeer invasieve bacteriën te verkrijgen. Meet de OD600-waarde om het aantal bacteriën te schatten. Een OD600 = 1 komt overeen met ~109 kolonievormende eenheden (CFU)/mL.

3. Menselijke longepeppitheelcelcultuur en CSE-behandeling

  1. Kweek menselijke BEAS-2B cellen in HITES medium (500 mL DMEM/F12, 2,5 mg insuline, 2,5 mg transferrine, 2,5 mg natriumseleniet, 2,5 mg transferrine, 10 μM hydrocortison, 10 μM β-estradiol, 10 mM HEPES en 2 mM L-glutamine) aangevuld met 10% foetaal runderserum (FBS) zoals eerder beschreven24.
  2. Cultuur menselijke primaire kleine luchtweg epitheelcellen (HSAEC) in de luchtwegen epitheelcel cultuur medium (500 mL van Airway Cell Basal Medium, 500 μg/mL HSA, 0,6 μM linolzuur, 0,6 μg/mL lecithine, 6 mM L-glutamine, 0,4% extract P, 1,0 μM epinephrinum, 5 μg/mL transferrine, 10 nM T3, 1 μg/mL hydrocortison, rh EGF 5 ng/mL en 5 μg/mL rh insuline). Incubeer de cellen bij 37 °C in 5% CO2.
  3. Dissociate de cellen met 1 mL van 0,25% trypsine gedurende 5 minuten totdat de cellen volledig loskomen van de onderkant van de plaat.
  4. Voeg 10 mL van het complete HITES-medium toe om trypsine te neutraliseren en de cellen te verzamelen in een buis van 15 mL. Centrifuge bij 4 °C bij 300 x g gedurende 5 minuten.
    LET OP: Controleer zorgvuldig de tijd voor trypsinevertering door microscopie, omdat overdigestie celdood kan veroorzaken.
  5. Gooi de supernatant weg en verhoog de cellen in 2 mL hites-medium met 10% FBS.
  6. Pipette 10 μL van de bovenstaande celopsuspensie op de plaat en plaats deze in een geautomatiseerde celteller om de concentratie in cellen/mL te verkrijgen.
  7. Plaat BEAS-2B cellen bij een concentratie van 3 ×10 5 cellen/mL in 6 putplaten in een totaal volume van 2 mL in HITES medium aangevuld met 10% van FBS voor nachtcultuur.
  8. Behandel de cellen op ongeveer 80% samenvloeiing, of 5 x 105 cellen/mL, met 4% CSE voor 3 h. Vóór de behandeling met CSE wijzigt u het medium met HITES-medium met 1% van FBS.

4. Bacteriële infectie

  1. Voeg P. aeruginosa of P. fluorescen Migula (~1 × 107 CFU/mL) toe aan elke put van de CSE-behandelde cellen en broed gedurende 1 uur bij 37 °C in 5% CO2.
  2. Aspirate de supernatants en vervang door 2 mL van verse HITES medium te behandelen met 4% CSE en 100 μg/mL gentamicine.
    OPMERKING: Gentamicine wordt gebruikt omdat het niet in staat is om menselijke longepelleliale cellulaire membranen te penetreren. Zo kan het doden alle bacteriën in het medium, maar niet degenen die de long epitheelcellen binnengedrongen.
  3. Na 1 uur CSE/gentamicine behandeling bij 37 °C in 5% CO2,de supernatants aanzuigen en de cellen 3x wassen met PBS voor de daaropvolgende bacteriële concentratie.
    OPMERKING: Om de geïnternaliseerde bacteriën te bevestigen, werden cellen die besmet zijn met GFP-gelabelde P. fluorescens Migula waargenomen onder fluorescerende microscopie.

5. Bepaling van de bacteriële concentratie volgens de druppelplaatmethode

  1. Om bacteriële belasting in geïnfecteerde cellen te bepalen met de druppelplaatmethode, wast u de met gentamycine behandelde cellen 2x met 2 mL koude PBS.
  2. Voeg 1 mL cellysebuffer (0,5% triton X-100 in PBS) toe aan elke put.
  3. Verdun de celllysaten die de geïnternaliseerde bacteriën bevatten in een gradiënt (1:10, 1:100, 1:1.000 en 1:10.000) voor de volgende inenting op de TSB agarplaat.
  4. Na 16 uur incubatie, verkrijg de resultaten van CFU door het tellen van de bacteriële kolonies.

6. RT-qPCR detectie van bacteriële 16S rRNA

  1. Behandel de pseudomonasgeïnfecteerde longepelleliale cellen (~ 1 x 106 cellen /mL) met gentamycine zoals hierboven beschreven. Spoel het medium aan en was de cellen 2x met 2 mL koude PBS.
  2. Voeg 0,35 mL van de guanidium thiocyanaat buffer per put van een 6 goed plaat. Verzamel de cellen met een celschraper. Pipette het lysaat in een microcentrifuge buis en meng zachtjes met de pipet.
  3. Voeg hetzelfde volume (0,35 mL) vers bereide 70% ethanol toe aan het lysaat en meng goed. Breng alle monsters over naar een spinkolom die in een 2 mL-opvangbuis is geplaatst. Centrifuge bij 10.000 x g voor 30 s bij 20-25 °C. Gooi vervolgens de buffer in de opvangbuis weg.
  4. Was de kolom met 0,7 mL wasbuffer 1. Centrifuge de kolom op 10.000 x g voor 30 s. Was de kolom 2x met 0,5 mL buffer om het membraangebonden RNA te wassen. Herhaal de centrifugatie op 10.000 x g gedurende 2 minuten.
  5. Plaats de kolom in een nieuwe 1,5 mL-opvangbuis. Voeg 30–50 μL RNase-vrij water toe. Centrifuge op 10.000 x g gedurende 1 min. Verzamel de doorstroom en meet de RNA-concentratie.
  6. Voer een omgekeerde transcriptiereactie uit volgens het protocol van de fabrikant. Meng 1 μg totaal RNA met 10 mL reactiebuffer, 1 μL omgekeerde transcriptase en RNase-vrij water voor een reactie van 20 μL. Voer de omgekeerde transcriptiereactie uit bij 37 °C gedurende 1 uur en vervolgens 95 °C gedurende 5 minuten.
  7. Meng de cDNA-sjablonen (1 μL van elke omgekeerde transcriptiereactie hierboven), 5 μL van de Master Mix met SYBR-kleurstof, 1 μL van elke 200 nM-specifieke primers en water in een mengsel van 20 μL voor de volgende PCR-analyse, volgens de aanbevelingen van de fabrikant.
    OPMERKING: De volgende zijn de primers gericht op de 16S rRNA van P. aeruginosa: forward 5′-CAAAACTGAGCAGAGTACG-3′; reverse 5′-TAAGATCTCAAG GATCCCAACGGC-3′. GAPDH werd gebruikt als een lading controle met de volgende primers: vooruit: 5′-GGCATGGACTGGTCATGA-3′; achteruit: 5'-TTCACCATGGAGAAGGC-3′.
  8. Gebruik de vergelijkende CT-methode om de expressie te bepalen.

7. Detectie van fluorescerende Pseudomonas met stroomcytometrie

  1. Behandel de bovenstaande fluorescerende Pseudomonas-geïnfecteerdelongepelleëlcellen (~ 1 x 106 cellen/mL) met gentamycine zoals eerder beschreven. Spoel het medium aan en was de cellen 2x met 2 mL koude PBS.
  2. Analyseer de monsters met een stroomcytometer op een golflengte van 509 nm voor de detectie van GFP. Beëindig elke lezing op 100.000 tellingen. Analyseer de verkregen gegevens met gerelateerde software.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

Een diagram wordt gebruikt om het protocol in figuur 1te illustreren. Longepitheel BEAS-2B cellen werden behandeld met CSE en uitgedaagd met Pseudomonas. Pseudomonas in het kweekmedium werden gedood door de toegevoegde gentamycine en de cellen werden onderworpen aan de drop plate assay, RT-qPCR detectie van Pseudomonas ribos ribos RNA, en flow cytometrie. In vergelijking met de controle heeft de behandeling met CSE de bacteriële infectie in de druppelplaatmethoden ...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

Bacteriële invasie in longepelleiële cellen is een cruciale stap in de pathogenese van bacteriële infecties. Het proces van bacteriële invasie in de cellen kan worden opgesplitst in de volgende drie stappen: Ten eerste, de bacteriën contact en hechten zich aan het oppervlak van de epitheelcel met behulp van hun flagella. Ten tweede ondergaan de bacteriën ofwel internalisatie of dringen het cellulaire membraan binnen. Ten slotte repliceren en koloniseren de bacteriën de cellen als ze met succes ontsnappen aan cellulaire a...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

De auteurs hebben niets te onthullen.

Dankbetuigingen

Dit werk werd gedeeltelijk ondersteund door een National Institutes of Health R01 subsidies HL125435 en HL142997 (aan CZ).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
50mL spuitBD Biosciences
luchtweg epitheelcel basaal mediumATCCPCS-300-030
Bacterie shakerThermoFisher Scientific
bronchiale epitheelcel groeikitATCCPCS-300-040
CeltellerBio-Rad
CFX96 Real-Time PCR SysteemBio-Rad
High-Capacity RNA-to-DNA KITThermoFisher Scientific4387406
HITES mediumATCCATCC 30-2004
menselijke BEAS-2B cellenATCCATCC CRL-9609
menselijke primaire kleine luchtweg epitheelcellenATCCATCC PCS-300-030
LSRII flow cytometerBD Biosciences
Nikkon confocale microscoopNikkon
OD lezerUSA Scientific
PCR primersITD
Pseudomonas aeruginosaATCCATCC 47085PAO1-LAC
Pseudomonas fluorescens MigulaATCCATCC 27853P.aeruginosa GFP
Onderzoekskwaliteit sigaretten (3R4F)University of KentuckyTP-7-VA
RNeasy Mini KitQiagen74106
Transparant PET Transwell InsertCorning Costar
Tryptic Soy BrothBD Biosciences

Referenties

  1. Vogelmeier, C. F., et al. Global Strategy for the Diagnosis, Management, and Prevention of Chronic Obstructive Lung Disease 2017 Report. GOLD Executive Summary. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 195 (5), 557-582 (2017).
  2. Malhotra, J., Malvezzi, M., Negri, E., La Vecchia, C., Boffetta, P. Risk factors for lung cancer worldwide. European Respiratory Care Journal. 48 (3), 889-902 (2016).
  3. Lugade, A. A., et al. Cigarette smoke exposure exacerbates lung inflammation and compromises immunity to bacterial infection. Journal of Immunology. 192 (11), 5226-5235 (2014).
  4. Strzelak, A., Ratajczak, A., Adamiec, A., Feleszko, W. Tobacco Smoke Induces and Alters Immune Responses in the Lung Triggering Inflammation, Allergy, Asthma and Other Lung Diseases: A Mechanistic Review. International Journal of Environmental Research Public Health. 15 (5), (2018).
  5. Zuo, L., et al. Interrelated role of cigarette smoking, oxidative stress, and immune response in COPD and corresponding treatments. American Journal of Physiology - Lung Cellular and Molecular Physiology. 307 (3), 205-218 (2014).
  6. Morse, D., Rosas, I. O. Tobacco smoke-induced lung fibrosis and emphysema. Annual Review of Physiology. 76, 493-513 (2014).
  7. Rigotti, N. A., Clair, C. Managing tobacco use: the neglected cardiovascular disease risk factor. European Heart Journal. 34 (42), 3259-3267 (2013).
  8. Jethwa, A. R., Khariwala, S. S. Tobacco-related carcinogenesis in head and neck cancer. Cancer Metastasis Review. 36 (3), 411-423 (2017).
  9. Papi, A., et al. Infections and airway inflammation in chronic obstructive pulmonary disease severe exacerbations. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 173 (10), 1114-1121 (2006).
  10. Garcia-Vidal, C., et al. Pseudomonas aeruginosa in patients hospitalised for COPD exacerbation: a prospective study. European Respiratory Journal. 34 (5), 1072-1078 (2009).
  11. Murphy, T. F., et al. Pseudomonas aeruginosa in chronic obstructive pulmonary disease. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 177 (8), 853-860 (2008).
  12. Wedzicha, J. A., Seemungal, T. A. COPD exacerbations: defining their cause and prevention. Lancet. 370 (9589), 786-796 (2007).
  13. Pavord, I. D., Jones, P. W., Burgel, P. R., Rabe, K. F. Exacerbations of COPD. International Journal of Chronic Obstructive Pulmonary Disease. 11, Spec Iss 21-30 (2016).
  14. Sethi, S. Bacterial infection and the pathogenesis of COPD. Chest. 117 (5), Suppl 1 286-291 (2000).
  15. Weinreich, U. M., Korsgaard, J. Bacterial colonisation of lower airways in health and chronic lung disease. Clinical Respiratory Journal. 2 (2), 116-122 (2008).
  16. Hook, J. L., et al. Disruption of staphylococcal aggregation protects against lethal lung injury. Journal of Clinical Investigation. 128 (3), 1074-1086 (2018).
  17. Ross, K. F., Herzberg, M. C. Autonomous immunity in mucosal epithelial cells: fortifying the barrier against infection. Microbes Infection. 18 (6), 387-398 (2016).
  18. Bedi, B., et al. Peroxisome proliferator-activated receptor-gamma agonists attenuate biofilm formation by Pseudomonas aeruginosa. FASEB Journal. 31 (8), 3608-3621 (2017).
  19. Tomita, K., et al. Increased p21(CIP1/WAF1) and B cell lymphoma leukemia-x(L) expression and reduced apoptosis in alveolar macrophages from smokers. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 166 (5), 724-731 (2002).
  20. Gally, F., Chu, H. W., Bowler, R. P. Cigarette smoke decreases airway epithelial FABP5 expression and promotes Pseudomonas aeruginosa infection. PLoS One. 8 (1), 51784(2013).
  21. Thorne, D., Adamson, J. A review of in vitro cigarette smoke exposure systems. Experimental and Toxicologic Pathology. 65 (7-8), 1183-1193 (2013).
  22. Keyser, B. M., et al. Development of a quantitative method for assessment of dose in in vitro evaluations using a VITROCELL(R) VC10(R) smoke exposure system. Toxicology In Vitro. 56, 19-29 (2019).
  23. Del Arroyo, A. G., et al. NMDA receptor modulation of glutamate release in activated neutrophils. EBioMedicine. 47, 457-469 (2019).
  24. Lai, Y., Li, J., Li, X., Zou, C. Lipopolysaccharide modulates p300 and Sirt1 to promote PRMT1 stability via an SCF(Fbxl17)-recognized acetyldegron. Journal of Cell Sciences. 130 (20), 3578-3587 (2017).
  25. Bauman, S. J., Kuehn, M. J. Pseudomonas aeruginosa vesicles associate with and are internalized by human lung epithelial cells. BMC Microbiology. 9, 26(2009).
  26. Ichikawa, J. K., et al. Interaction of pseudomonas aeruginosa with epithelial cells: identification of differentially regulated genes by expression microarray analysis of human cDNAs. Proceedings of the National Academy of Sciences USA. 97 (17), 9659-9664 (2000).
  27. Rodriguez, D. C., Ocampo, M., Salazar, L. M., Patarroyo, M. A. Quantifying intracellular Mycobacterium tuberculosis: An essential issue for in vitro assays. Microbiologyopen. 7 (2), 00588(2018).
  28. Long, C., Lai, Y., Li, T., Nyunoya, T., Zou, C. Cigarette smoke extract modulates Pseudomonas aeruginosa bacterial load via USP25/HDAC11 axis in lung epithelial cells. American Journal of Physiology - Lung Cellular Molecular Physiology. 318 (2), 252-263 (2020).
  29. Feldman, M., et al. Role of flagella in pathogenesis of Pseudomonas aeruginosa pulmonary infection. Infections and Immunity. 66 (1), 43-51 (1998).
  30. Zhou, Y., et al. Effects of Agitation, Aeration and Temperature on Production of a Novel Glycoprotein GP-1 by Streptomyces kanasenisi ZX01 and Scale-Up Based on Volumetric Oxygen Transfer Coefficient. Molecules. 23 (1), 125(2018).
  31. Mingeot-Leclercq, M. P., Glupczynski, Y., Tulkens, P. M. Aminoglycosides: activity and resistance. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 43 (4), 727-737 (1999).
  32. Chen, Y., et al. Endothelin-1 receptor antagonists prevent the development of pulmonary emphysema in rats. European Respiratory Journal. 35 (4), 904-912 (2010).
  33. Gardi, C., Stringa, B., Martorana, P. A. Animal models for anti-emphysema drug discovery. Expert Opinion in Drug Discovery. 10 (4), 399-410 (2015).
  34. Wang, Q., et al. A novel in vitro model of primary human pediatric lung epithelial cells. Pediatric Research. 87 (3), 511-517 (2019).
  35. Amatngalim, G. D., et al. Aberrant epithelial differentiation by cigarette smoke dysregulates respiratory host defence. European Respiratory Journal. 51 (4), 1701009(2018).
  36. Tan, Q., Choi, K. M., Sicard, D., Tschumperlin, D. J. Human airway organoid engineering as a step toward lung regeneration and disease modeling. Biomaterials. 113, 118-132 (2017).
  37. Miller, A. J., et al. Generation of lung organoids from human pluripotent stem cells in vitro. Nature Protocols. 14 (2), 518-540 (2019).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Trefwoorden

SigarettenrookextractBepaling van de bacteri le belastingFlowcytometrieqRT PCR analyseDruppelplaatmethodeVoorbereiding van celculturenGentamycinebehandelingRNA extractie
Het bestuderen van effecten van sigarettenrook op pseudomonas infectie in longepitheelcellen
Neem contact met ons op
Aanbevelen aan bibliotheek

Privacy

Gebruiksvoorwaarden

Beleid

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. Alle rechten voorbehouden.