Dit protocol beschrijft een op flowcytometrie gebaseerde, high-throughput screeningsmethode om geneesmiddelen met kleine moleculen te identificeren die de activering van β2-integrine op menselijke neutrofielen remmen.
Method Article
Dit protocol beschrijft een op flowcytometrie gebaseerde, high-throughput screeningsmethode om geneesmiddelen met kleine moleculen te identificeren die de activering van β2-integrine op menselijke neutrofielen remmen.
Dit protocol heeft tot doel een methode vast te stellen voor het identificeren van kleine moleculaire antagonisten van β2-integrine-activering, met behulp van conformationele-verandering-rapporterende antilichamen en high-throughput flowcytometrie. De methode kan ook dienen als leidraad voor andere op antilichamen gebaseerde high-throughput screeningsmethoden. β2-integrinen zijn leukocytenspecifieke adhesiemoleculen die cruciaal zijn in immuunresponsen. Neutrofielen vertrouwen op integrine-activering om de bloedbaan te verlaten, niet alleen om infecties te bestrijden, maar ook om betrokken te zijn bij meerdere ontstekingsziekten. Het beheersen van β2-integrine-activering biedt een haalbare benadering voor de behandeling van neutrofielen-geassocieerde ontstekingsziekten. In dit protocol wordt een monoklonaal antilichaam, mAb24, dat specifiek bindt aan het hoofddeksel met hoge affiniteit van β2-integrinen, gebruikt om de activering van β2-integrine op geïsoleerde primaire menselijke neutrofielen te kwantificeren. N-formylmethionyl-leucyl-fenylalanine (fMLP) wordt gebruikt als stimulus om neutrofiele β2-integrinen te activeren. In deze studie werd een flowcytometer met hoge doorvoer gebruikt die in staat is om automatisch plaatmonsters met 384 putjes uit te voeren. De effecten van 320 chemicaliën op de remming van β2-integrine worden binnen 3 uur beoordeeld. Moleculen die zich rechtstreeks richten op β2-integrinen of doelmoleculen in de G-proteïne-gekoppelde receptor-geïnitieerde integrine inside-out activeringssignaleringsroute kunnen via deze benadering worden geïdentificeerd.
Veel ontstekingsziekten worden gekenmerkt door de infiltratie van neutrofielen op de plaats van zwelling of verwonding1. Om deze weefsels te infiltreren, moeten neutrofielen de rekruteringscascade van neutrofielen voltooien, waarbij het endotheel wordt gestopt, extravasatie over de vaatwand en rekrutering in het weefsel2. Circulerende neutrofielen hebben β2-integrineactivering nodig om deze cascade te voltooien, vooral voor de stopfase. Integrine-remmende geneesmiddelen die de adhesie, extravasatie en rekrutering van neutrofielen verminderen, kunnen dus ontstekingsziekten effectiefbehandelen3,4.
β2-integrinen zijn eerder het doelwit geweest van ontstekingsziekten. Efalizumab, een monoklonaal antilichaam dat zich rechtstreeks richt op integrine αLβ2, werd ontwikkeld voor de behandeling van psoriasis5. Efalizumab werd echter gestaakt vanwege de dodelijke bijwerking - progressieve multifocale leuko-encefalopathie als gevolg van reactivering van het JC-virus 6,7. Nieuwe ontstekingsremmende therapieën op basis van integrine moeten overwegen om de anti-infectiefuncties van leukocyten te handhaven om bijwerkingen te minimaliseren. De bijwerkingen van efalizumab kunnen te wijten zijn aan de langdurige circulatie van monoklonale antilichamen in de bloedbaan, die op de lange termijn immuunfuncties kunnen remmen8. Een recente studie toont aan dat efalizumab αLβ2-crosslinking en de ongewenste internalisatie van α4-integrinen bemiddelt, wat een alternatieve verklaring biedt voor de bijwerkingen9. Kortstondige antagonisten met kleine moleculen kunnen dit probleem dus vermijden.
Een high-throughput methode om kleine moleculen β2 integrine antagonisten te screenen met behulp van menselijke neutrofielen wordt hier gepresenteerd. Β2-integrineactivering vereist conformatieveranderingen van het integrine-ectodomein om toegang te krijgen tot de bindingsaffiniteit met zijn ligand en deze te vergroten. In het canonieke switchblade-model strekt het bent-gesloten integrine-ectodomein zich eerst uit tot een verlengd-gesloten conformatie en opent vervolgens zijn kopstuk tot een volledig geactiveerde extended-open conformatie10,11,12,13. Er is ook een alternatief pad dat begint van de gebogen-gesloten naar gebogen-open en uitgebreid-open, uiteindelijk 14,15,16,17,18,19. Het conformatiespecifieke antilichaam mAb24 bindt zich aan een epitoop in het menselijke β2-I-achtige domein wanneer het zendspoel van het ectodomein open is 20,21,22,23.
Hier wordt mAb24-APC gebruikt om te bepalen of de β2-integrinen geactiveerd zijn. Om neutrofielen en integrine te activeren, wordt N-formylmethionyl-leucyl-fenylalanine (fMLP), een bacterieel afgeleid kort chemotactisch peptide dat neutrofiele β2-integrinen24 kan activeren, gebruikt als stimulus in dit protocol. Wanneer fMLP bindt aan het Fpr1 op neutrofielen, worden stroomafwaartse signaalcascades met G-eiwitten, fosfolipase Cβ en fosfoinositide-3-kinase γ geactiveerd. Deze signaleringsgebeurtenissen resulteren uiteindelijk in integrine-activering via de inside-out signaleringsroute18,25. Naast kleine molecuulantagonisten die direct binden aan β2-integrinen en conformatieveranderingen van integrine-activatievoorkomen 26, zouden met deze methode ook verbindingen worden gedetecteerd die componenten in de β2-integrine inside-out activeringssignaleringsroute kunnen remmen. Geautomatiseerde flowcytometers maken screening met hoge doorvoer mogelijk. Het identificeren van nieuwe antagonisten kan niet alleen ons begrip van integrinefysiologie verdiepen, maar ook translationeel inzicht verschaffen in op integrine gebaseerde anti-inflammatoire therapie.
Gehepariniseerde volbloedmonsters werden verkregen van geanonimiseerde gezonde menselijke donoren na het verkrijgen van geïnformeerde toestemming, zoals goedgekeurd door de Institutional Review Board van UConn Health, volgens de principes van de Verklaring van Helsinki. Geïnformeerde toestemming werd verkregen van alle donoren. De inclusie-/exclusiecriteria voor dit onderzoek zijn zorgvuldig ontwikkeld om de geschiktheid van deelnemers te waarborgen en mogelijke risico's te minimaliseren. In aanmerking komende deelnemers waren tussen de 18 en 65 jaar oud, van elke etniciteit, vloeiend Engels sprekend en in staat om geïnformeerde toestemming te geven. Uitgesloten deelnemers waren onder meer degenen die geen geïnformeerde toestemming voor zichzelf konden geven, zoals degenen die een wettelijk gemachtigde vertegenwoordiger nodig hadden, personen jonger dan 18 jaar of ouder dan 65 jaar, gedetineerde personen en zwangere vrouwen. Bovendien moesten de deelnemers vrij zijn van het gebruik van ontstekingsremmende medicatie en ontstekingsaandoeningen. Huidige infecties of aanhoudende chronische of acute ontstekingsaandoeningen waren ook uitsluitingscriteria. Ten slotte kwamen personen met een huidige of recente voorgeschiedenis van COVID-19-infectie niet in aanmerking voor het onderzoek. Deze criteria zijn ontworpen om de veiligheid en geschiktheid van de deelnemers te waarborgen en tegelijkertijd mogelijke verstorende factoren die van invloed kunnen zijn op de onderzoeksresultaten tot een minimum te beperken.
1. Bereiding van reagentia
2. Isolatie van neutrofielen uit menselijk bloed
3. Voorbereiding van de plaat met 384 putjes
4. Behandeling van cellen
5. Flowcytometrie
6. Data-analyse
Gegevens van een representatieve plaatscreening met 384 putjes (figuur 4) toonden aan dat negatieve controles een MFI van mAb24-APC van 3236 ± 110 hadden, terwijl positieve controles een MFI van mAb24-APC van 7588 ± 858 hadden. De Z'-factor voor deze plaat is ongeveer 0,33, wat binnen een acceptabel bereik31 ligt. Z' vereist echter verdere validatie in secundaire assays.
Om de gegevens te normaliseren, werden alle waarden geschaald om een maximale waarde van 1 toe te kennen aan het positieve gemiddelde en een minimale waarde van 0 aan het negatieve gemiddelde. De Z'-factor zal een rigoureuzere validatie ondergaan in secundaire tests. De grenswaarde voor deze plaat is vastgesteld op 0,41, wat betekent dat monsters met een relatieve MFI lager dan 0,41 worden beschouwd als treffers die de door fMLP geïnduceerde β2-integrine-activering in menselijke neutrofielen remmen. Er werden geen treffers geïdentificeerd van deze plaat.
Om de effectiviteit van het protocol te bevestigen, werden Nexinhib20 gebruikt, dat de activering van β2-integrine remt door de Rac-1-functie te antagoniseren, en lifitegrast, dat integrine αLβ2 rechtstreeks32,33 antagoniseert. De incubatietijd werd echter aangepast naar één uur voor Nexinhib20 en een half uur voor lifitegrast. De resulterende gegevens van deze experimenten werden genormaliseerd met behulp van dezelfde schaalmethode die hierboven is beschreven. Deze datapunten werden vervolgens gecombineerd met de plaatresultaten en gezamenlijk geanalyseerd (Figuur 4).

Figuur 1: Plaatlay-out voor samengestelde screening. Een schematisch diagram dat de rangschikking van screeningsverbindingen en controles in een plaat met 384 putjes illustreert. Negatieve controleputjes zijn blauw afgebeeld (kolommen 1 en 23) en positieve controleputjes zijn rood weergegeven (kolommen 2 en 24). Testputten worden weergegeven in beige (kolommen 3 tot en met 22). Pijlen geven de volgorde aan voor het aflezen van de plaat. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 2: Scheiding van neutrofielen met behulp van dichtheidsgradiëntmedium. Representatieve foto's die de succesvolle en niet-succesvolle scheiding van neutrofielen aantonen met behulp van dichtheidsgradiëntmedium. (A) In eerste instantie wordt 4 ml bloed gelaagd op 8 ml dichtheidsgradiëntmedium. (B) Na centrifugatie moeten twee troebele banden zichtbaar zijn: de bovenste band met voornamelijk perifere mononucleaire bloedcellen (PBMC's) en de onderste band met voornamelijk neutrofielen met enkele rode bloedcellen (RBC's). De meeste rode bloedcellen zijn aan de onderkant gepelleteerd. (C) Een mislukte scheiding waarbij RBC's niet worden gepelleteerd en de neutrofielenband niet in acht wordt genomen. Extra centrifugeren (10-30 min) zou nodig zijn om de neutrofielenband te scheiden. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 3: Gating van neutrofielen met behulp van FSC/SSC-plots. Representatieve forward scatter (FSC) en side scatter (SSC) plots die de poortstrategie voor het identificeren van neutrofielen illustreren. (A) Neutrofielen zijn gated op basis van het gebied van voorwaartse verstrooiing (FSC-A) en zijverstrooiing (SSC-A) geregistreerd door de flowcytometer. (B) Afzonderlijke cellen zijn verder omheind op basis van de breedte (FSC-W) en hoogte (FSC-H) van voorwaartse verstrooiing, en (C) de breedte (SSC-W) en hoogte (SSC-H) van zijverstrooiing. De kleurenschaal geeft de celdichtheid weer, waarbij de overgang van rood naar geel, groen en blauw overgaat naarmate de dichtheid afneemt. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 4: Screening resulteert in een representatieve plaat met 384 putjes. De screening is het resultaat van een representatieve plaat met 384 putjes, die een Z'-factor van 0,3 aantoont. Negatieve en positieve controles worden aangegeven met respectievelijk blauwe en rode stippen. Testmonsters die met verschillende verbindingen zijn behandeld, worden weergegeven als beige stippen. De stippellijn geeft de gemiddelde fluorescentie-intensiteit (MFI) -grens weer voor het identificeren van treffers. Geen van de geteste verbindingen werd geïdentificeerd als β2-integrineantagonisten, aangezien alle geteste verbindingen MFI-waarden boven de afkapgrens vertoonden. Resultaten van onafhankelijke experimenten met het testen van bekende β2-integratagonisten met verschillende incubatietijden (Nexinhib20 gedurende 1 uur, lifitegrast gedurende een half uur) worden gebundeld voor presentatie in deze figuur. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.
De initiatie en beëindiging van neutrofielenstimulatie en kleuring worden bepaald door de toevoeging van neutrofielen en het fixatief PFA. Daarom is het van cruciaal belang om te zorgen voor hetzelfde tijdsinterval tussen het pipetteren van neutrofielen of PFA in elke kolom. Dit zorgt ervoor dat de stimulatie- en kleuringstijd van neutrofielen uit elk putje consistent blijft. Vanwege de korte levensduur van neutrofielen moet het hele experiment, van het afnemen van bloed bij donoren tot het voltooien van flowcytometrie, op dezelfde dag worden uitgevoerd. Neutrofielen zijn zeer gevoelig voor temperatuurveranderingen en kunnen geactiveerd worden bij blootstelling aan snelle temperatuurstijgingen, zoals de overgang van 4 °C naar kamertemperatuur of van kamertemperatuur naar 37 °C. Bovendien, op basis van onze eerdere ervaring, vindt fMLP-geïnduceerde neutrofiele β2-integrineactivering niet plaats wanneer cellen op ijs of bij 4 °C worden opgeslagen (gegevens niet getoond). Daarom moeten volbloed en neutrofielen vóór fixatie bij kamertemperatuur of 20 °C worden bewaard (tijdens de isolatiecentrifugatiestap). Plaats geen volbloed en neutrofielen op ijs.
De kleuring van mAb24 in negatieve controles zou zeer lage resultaten moeten opleveren. Als in een experiment een hoog mAb24-kleuringsniveau wordt waargenomen, controleer dan het volgende: (1) of er een significante temperatuurverandering was tijdens het experiment vóór fixatie; (2) of er sprake was van fMLP- of endotoxinebesmetting in het neutrofielenmedium; (3) of de behandeling van monsters te agressief was, zoals het genereren van bellen tijdens het pipetteren en mengen.
Het huidige protocol maakt gebruik van mAb24 om de opening van het β2-integrinezendspoel te melden. Theoretisch kan KIM127, een monoklonaal antilichaam dat de uitbreiding van β2-integrinen 34,35 rapporteert, worden gebruikt in combinatie met mAb24 om de conformatie van β2-integrine uitgebreid te beoordelen. De signaal-ruisverhouding van KIM127-kleuring (1,5 tot 2-voudig) is echter niet zo gunstig als die van mAb24 (5 tot 10-voudig), wat doorgaans geen bevredigende Z'-factor oplevert in de 384-well plaattest. In de plaattest met 96 putjes kunnen monsters worden gewassen voordat flowcytometrie wordt uitgevoerd, waardoor oplosbare achtergrondsignalen van antilichamen worden verminderd. Daarom kan de op KIM127 gebaseerde test worden uitgevoerd in de plaattest met 96 putjes, die een lagere doorvoer heeft in vergelijking met de plaattest met 384 putjes.
Aangezien deze methode fluorescentie-intensiteit gebruikt als uitlezing om het integrineremmende effect van geneesmiddelen te beoordelen, kunnen sommige fluorescerende geneesmiddelen de resultaten verstoren. Bovendien zullen toxische geneesmiddelen die neutrofielendood veroorzaken binnen de stimulatieperiode van 10 minuten ook integrineremming lijken te melden. Geneesmiddelen die de degranulatie van neutrofielen remmen, onderdrukken de algehele expressie van β2-integrine. Deze degranulatieremmers zullen ook worden geïdentificeerd in onze screening. Daarom is secundaire screening met andere controles nodig om de remmende effecten van de treffers te bevestigen. Secundaire schermen worden genoemd als een middel om het werkingsmechanisme van treffers zowel te valideren als te bepalen. Naast het herhalen van de mAb24-tests, zal de totale CD18-expressie op het celoppervlak worden beoordeeld met behulp van een pan-antihumaan CD18-antilichaam. Het niveau van geactiveerde β2-integrine, zoals gemeten door mAb24, wordt genormaliseerd door de totale CD18-expressie. Dit zal ons in staat stellen om te bepalen of het werkingsmechanisme van het middel bestaat uit het antagoniseren van integrine-activering en/of het remmen van de expressie van CD18 op het celoppervlak. Er moet ook een levensvatbaarheidstest worden uitgevoerd in het secundaire scherm om eventuele toxische effecten van de treffers uit te sluiten.
Dit protocol heeft beperkingen. Ten eerste is mAb24 alleen in staat om het β2 I-achtige domein te detecteren in gevallen waarin de integrine zich in een toestand met hoge affiniteit bevindt. Daarom kan het geen α/β I-achtige allosterische antagonisten zoals lifitegrast identificeren door de mAb24-binding te verminderen. Lifitegrast induceert meer mAb24-binding32 en vertoont een abnormaal verhoogde MFI-waarde met mAb24 (Figuur 4). Voor dergelijke abnormale waarden kunnen andere tests nodig zijn om te verifiëren of deze treffers α/β I-achtige allosterische antagonisten zoals lifitegrast zijn. Ten tweede is de Z'-factor voor deze test suboptimaal en kan deze mogelijk worden verbeterd door het gebruik van automatisch pipetteren en roeren. Helaas beschikt ons laboratorium niet over de nodige apparatuur om deze hypothese te testen. Het dupliceren of verdrievoudigen van assays zal nuttig zijn bij het identificeren van vals-positieven en -negatieven in het geval dat de Z'-factor niet verder kan worden verbeterd met de bovenstaande methoden. Bovendien kan het nuttig zijn om de incubatietijd te verlengen om meer treffers te identificeren, zoals waargenomen met de bekende β2-integrine-activeringsremmer Nexinhib20, die een uur incubatie vereist om remmende effecten te produceren. Deze studie richtte zich op het identificeren van snelwerkende middelen. Onderzoekers moeten er rekening mee houden dat ze de incubatietijd kunnen aanpassen aan hun specifieke behoeften.
Voor zover wij weten, is dit de eerste high-throughput screeningsmethode voor β2-integrine-antagonisten. Deze benadering kan worden gebruikt om verbindingen met kleine moleculen te identificeren die rechtstreeks binden aan β2-integrinen en conformatieveranderingen te voorkomen die leiden tot integrinetoestanden met een gemiddelde/hoge affiniteit, vergelijkbaar met antagonisten zonder "agonistische" eigenschappen die onlangs zijn beschreven voor integrinen αIIbβ3 en α4β126. Neutrofielen zijn van cruciaal belang bij veel ontstekingsziekten, zoals myocardischemie-reperfusieletsel 36, sepsis37 en auto-immuunziekten38,39. Geneesmiddelen met kleine moleculen kunnen meer flexibiliteit bieden bij de behandeling van deze ziekten in vergelijking met geneesmiddelen op basis van antilichamen. Hits van ons scherm kunnen mogelijke behandelingen voor ontstekingsziekten bieden.
De huidige methode is een fluorescerend antilichaam-gebaseerde, high-throughput scherm. Aangezien er ook antilichamen van activeringsrapporteerders beschikbaar zijn voor β1 40,41,42,43,44, αIIbβ3 45,46 en αL-integrinen47,48,49,50, kan deze methode worden uitgebreid tot het identificeren van antagonisten voor andere integrinen. Een conformationeel gevoelig antilichaam zoals HUTS-21, dat bindt aan het β1 hybride domein 51,52,53, is gebruikt in een high-throughput screening om zeer late allosterische antagonisten van antigeen-4 (VLA-4, integrine α4β1) te identificeren54. De huidige screeningsmethode kan ook worden gewijzigd en uitgebreid om geneesmiddelen te vinden die de expressie van andere oppervlaktereceptoren remmen of bevorderen, zoals verbindingen die de oppervlakte-expressie van cystic fibrosis transmembrane conductance regulator (CFTR) op cystic fibrosis (CF)-cellen verhogen. Bij CF leiden meerdere mutaties tot misvouwing van CFTR, wat resulteert in afwezige expressie van CFTR op het celmembraan55. Van geneesmiddelen met kleine moleculen is aangetoond dat ze de CFTR-expressie herstellen56. Voor protocolwijzigingen is het noodzakelijk om de incubatietijd van geneesmiddelen te verlengen tot enkele uren om veranderingen in de eiwitexpressie mogelijk te maken.
De auteurs verklaren geen concurrerend financieel belang te hebben.
We danken Dr. Evan Jellison en mevrouw Li Zhu in de flowcytometriekern bij UConn Health voor hun hulp bij flowcytometrie, Dr. Lynn Puddington van de afdeling Immunologie van UConn Health voor haar steun aan de instrumenten, mevrouw Slawa Gajewska en Dr. Paul Appleton in de klinische onderzoekskern bij UConn Health voor hun hulp bij het verkrijgen van bloedmonsters. We danken Dr. Christopher "Kit" Bonin en Dr. Geneva Hargis van de UConn School of Medicine voor hun hulp bij het wetenschappelijk schrijven en redigeren van dit manuscript. Dit onderzoek werd ondersteund door subsidies van de National Institutes of Health, National Heart, Lung and Blood Institute (R01HL145454), National Institute of General Medical Sciences (P20GM121176), VS, een Career Development Award van de American Heart Association (18CDA34110426) en een startfonds van UConn Health. Figuur 1 is gemaakt met BioRender.com.
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
|---|---|---|---|
| 16-channel pipettes | Thermo | 4661090N | Instrument |
| 384-well plate | Greiner | 784201 | Materials |
| APC anti-human CD11a/CD18 (LFA-1) Antibody Clone: m24 | BioLegend | 363410 | Reagents |
| Bravo Automated Liquid Handling Platform | Agilent | 16050-102 | 384 multi-channel liquid handler |
| Centrifuge | Eppendorf | Model 5810R | Instrument |
| FlowJo | Becton, Dickinson & Company | NA | Software |
| Human Serum Albumin Solution (25%) | GeminiBio | 800-120 | Reagents |
| Lifitegrast | Thermofisher | 50-208-2121 | Reagents |
| Nexinhib20 | Tocris | 6089 | Reagents |
| N-Formyl-Met-Leu-Phe (fMLP) | Sigma | F3506 | Reagents |
| Paraformaldehyde 16% solution | Electron Microscopy Sciences | 15710 | Reagents |
| Plate buckets | Eppendorf | UL155 | Accessory |
| Plate shaker | Fisher | 88-861-023 | Instrument |
| PolymorphPrep | PROGEN | 1895 (previous 1114683) | Reagents |
| Prestwick Chemical Library Compound Plates (10 mM) | Prestwick Chemical Libraries | Ver19_384 | 1520 small molecules, 98% marketed approved drugs (FDA, EMA, JAN, and other agencies approved) |
| RPMI 1640 Medium, no phenol red | Gibco | 11-835-030 | Reagents |
| Swing-bucket rotor | Eppendorf | A-4-62 | Rotor |
| ZE5 Cell Analyzer | Bio-Rad Laboratories | Model ZE5 | Instrument |
Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article
Request Permission