Een abonnement op JoVE is vereist om deze inhoud te bekijken. Log in of start vandaag met uw gratis proefperiode.

Methodenartikel

Single-Anastomosis Duodeno-Ileal Bypass met Sleeve Gastrectomy Model bij muizen

2.6K weergaven

⸱

DOI:

10.3791/64610

⸱

10 februari 2023

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1CHU Nantes, CNRS, INSERM, l'institut du thorax, Nantes Université, 2Chirurgie Cancérologique, Digestive et Endocrinienne, Institut des Maladies de l'Appareil Digestif, Hôtel Dieu, CHU Nantes

* These authors contributed equally

In dit artikel

Samenvatting

Single-anastomosis duodeno-ileale bypass (SADI-S) is een opkomende bariatrische procedure met belangrijke metabole effecten. In dit artikel presenteren we een betrouwbaar en reproduceerbaar model van SADI-S bij muizen.

Samenvatting

Obesitas is wereldwijd een groot gezondheidsprobleem. Als reactie hierop zijn bariatrische operaties ontstaan om obesitas en de bijbehorende comorbiditeiten (bijv. Diabetes mellitus, dyslipidemie, niet-alcoholische steatohepatitis, cardiovasculaire gebeurtenissen en kankers) te behandelen via beperkende en malabsorptieve mechanismen. Het begrijpen van de mechanismen waarmee deze procedures dergelijke verbeteringen mogelijk maken, vereist vaak de omzetting ervan in dieren, vooral bij muizen, vanwege het gemak van het genereren van genetisch gemodificeerde dieren. Onlangs is de single-anastomosis duodeno-ileale bypass met sleeve gastrectomie (SADI-S) naar voren gekomen als een procedure die zowel beperkende als malabsorptieve effecten gebruikt, die wordt gebruikt als een alternatief voor gastric bypass in geval van ernstige obesitas. Tot nu toe is deze procedure in verband gebracht met sterke metabole verbeteringen, wat heeft geleid tot een duidelijke toename van het gebruik ervan in de dagelijkse klinische praktijk. De mechanismen die ten grondslag liggen aan deze metabole effecten zijn echter slecht bestudeerd als gevolg van een gebrek aan diermodellen. In dit artikel presenteren we een betrouwbaar en reproduceerbaar model van SADI-S bij muizen, met een speciale focus op perioperatieve behandeling. De beschrijving en het gebruik van dit nieuwe knaagdiermodel zal nuttig zijn voor de wetenschappelijke gemeenschap om de moleculaire, metabole en structurele veranderingen veroorzaakt door de SADI-S beter te begrijpen en om de chirurgische indicaties voor de klinische praktijk beter te definiëren.

Inleiding

Obesitas is een opkomende en endemische situatie met een toenemende prevalentie, die wereldwijd ongeveer 1 op de 20 volwassenen treft1. Bariatrische chirurgie is de afgelopen jaren de meest effectieve behandelingsoptie geworden voor de getroffen volwassenen, waardoor zowel gewichtsverlies als metabole stoornissen2,3 zijn verbeterd, met variabele resultaten afhankelijk van het type chirurgische ingreep dat wordt gebruikt.

Er zijn twee belangrijke mechanismen die betrokken zijn bij de effecten van de bariatrische procedures: beperking die gericht is op het verhogen van de verzadiging (zoals in de sleeve gastrectomie (SG) waarbij 80% van de maag wordt verwijderd) en malabsorptie. Onder de procedures die zowel restrictie als malabsorptie impliceren, is de single anastomosis duodeno-ileal bypass met sleeve gastrectomie (SADI-S) voorgesteld als alternatief voor de Roux-en-Y gastric bypass (RYGB), waarbij een gewichtstoename wordt waargenomen bij ongeveer 20% van de patiënten 4,5. Bij deze techniek wordt een sleeve gastrectomie geassocieerd met een herschikking van de dunne darm, waarbij deze wordt verdeeld in een gal en een korte gemeenschappelijke ledemaat (een derde van de totale dunne darmlengte) (figuur 1A). Technisch gezien heeft de SADI-S het voordeel ten opzichte van de RYGB dat slechts één anastomose nodig is, waardoor de bedrijfstijd met ongeveer 30% wordt verkort. Bovendien behoudt deze methode de pylorus, wat helpt om het risico op maagzweren te verminderen en anastomotische lekkage te beperken. De SADI-S wordt ook geassocieerd met een hoge mate van metabole verbetering, sterk gunstig voor het gebruik ervan tijdens de laatste paar jaar 6,7.

Aangezien metabole effecten steeds fundamenteler zijn geworden voor bariatrische procedures, lijkt het ophelderen van hun mechanismen cruciaal. Daarom is het gebruik van diermodellen voor bariatrische procedures van het grootste belang om hun metabole effecten en de betrokken cellulaire en moleculaire routes beter te begrijpen8. Deze modellen droegen bijvoorbeeld bij tot een beter begrip van de verandering in voedselinname na SG of RYGB in een gecontroleerde omgeving9 en tot de studie van glucose- of cholesterolfluxen door de darmbarrière10,11; Deze informatie is zelden beschikbaar in klinische studies. Deze kennis kan helpen om hun optimale chirurgische indicaties te definiëren. We hebben eerder muismodellen van SG en RYGB12 beschreven. Ondanks de veelbelovende resultaten in de klinische praktijk, is de SADI-S echter alleen ontwikkeld en beschreven bij ratten13,14,15. Gezien de genetische kneedbaarheid is het muismodel in het verleden echter nuttig geweest om de verschillende metabole effecten van dergelijke procedures te bestuderen16,17,18, en een SADI-S-muismodel zou nuttig kunnen zijn om de effecten van SADI-S te evalueren, ondanks de technische moeilijkheid.

In dit artikel beschrijven we de aanpassing van de SADI-S-procedure bij muizen (figuur 1B) op een reproduceerbare manier. Speciale aandacht wordt besteed aan de beschrijving van perioperatieve zorg.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

Dit protocol is goedgekeurd door het lokale Franse ethische comité voor dierproeven (Comité d'éthique en expérimentation animale; referentie CEEA-PdL n 06).

1. Preoperatieve voorbereiding

  1. Voeg gel dieetvoeding toe aan het normale dieet 3 dagen voor de operatie. Vast de muizen 6 uur voor de operatie.
  2. Induceer anesthesie met 5% isofluraan (1 l/min) in een speciale kamer met zuurstof (1 l/min). Injecteer de muizen subcutaan met buprenorfine (0,1 mg/kg), amoxicilline (15 mg/kg), metoclopramide (1 mg/kg), meloxicam (1 mg/kg) en ijzer (0,5 mg/kg).
  3. Scheer de eerste 2/3 delen van de buik van de muis vanaf het xiphoid-proces met behulp van een elektrisch scheermes. Desinfecteer de buik van de muis in twee stappen met behulp van een jodiumpolyvidonoplossing .
  4. Plaats de muis rugleuning op een speciaal warmtekussen bedekt met een schoon onderpad. Handhaaf de anesthesie met behulp van een neuskegel met 2% -2,5% isofluraan (0,4 l / min) met zuurstof (0,4 l / min). Gebruik een teen-knijptest om de diepte van de verdoving te bevestigen.
  5. Bedek de muis in een gesteriliseerde plasticfolie. Om hyperextensie op de buik van de muis aan te brengen, fixeert u de onderpoot en gebruikt u een spuit van 1 ml of een equivalent achter de rug van de muis. Snijd een opening in een steriel kompres met de grootte van de toekomstige incisie en gebruik deze als een operatiegebied om de muis te bedekken. De algemene installatie is weergegeven in figuur 2A.
  6. Gebruik voor de operatie een gezichtsmasker, een scrubkapje en gesteriliseerde handschoenen. Gebruik gesteriliseerde instrumenten voor de operatie.

2. Het SADI-S-protocol

  1. Mediane laparotomie
    1. Voer onder een binoculaire microscoop (8x vergroting) een mediane laparotomie uit met een schaar of een scalpel door de buikhuid te openen van het xiphoid-proces naar het midden van de buik. Zorg ervoor dat het xiphoid-proces en de musculoaponeurotische laag zichtbaar zijn (figuur 2B).
      OPMERKING: Dien bupivacaïne (3 mg/kg) subcutaan toe op de operatieplaats 5 minuten voordat u de huidincisie maakt.
    2. Open de buikwand langs de linea alba met een schaar tussen de buikspieren. Pas op dat u de thoracale holte niet binnengaat (figuur 2C).
  2. Uitsluiting van duodenale dranken
    1. Mobiliseer de twaalfvingerige darm voorzichtig uit de buikholte met behulp van een bevochtigd wattenstaafje om de voorste en achterste zijden te zien. Lokaliseer het hoofdgalkanaal, dat onmiddellijk zichtbaar is onder de binoculaire microscoop aan de achterkant van het kleinere omentum en de twaalfvingerige darm (figuur 3A, zwarte pijlen).
    2. Visualiseer proximaal vanuit het hoofdgalkanaal een gebied tussen de halfvingerige darmslagaders onder de binoculaire microscoop (figuur 3A, B, blauwe gestippelde cirkels). Penetreer dit gebied met behulp van een gebogen microtang van de ene kant van de twaalfvingerige darm naar de andere en voer een duodenale ligatie tussen de slagaders uit met behulp van een 6-0 niet-absorbeerbare hechting (figuur 3C-E). Pas op dat u de takken van de slagaders van de twaalfvingerige darm niet afsnijdt.
  3. Sleeve gastrectomie
    1. Mobiliseer de maag uit de buikholte met behulp van een bevochtigd wattenstaafje en een niet-traumatische klem. Scheid de maag van de omliggende organen met behulp van een microschaar: scheid het grotere omentum, knip de korte maagslagaders (tak van de miltslagader) tussen de maag en de milt en de lipoom die de maag verbindt met het onderste deel van de slokdarm (figuur 4A, B).
    2. Voer met een microschaar een gastrotomie van 5 mm uit door de fundus te openen en het resterende voedsel te verwijderen met een wattenstaafje (figuur 4C, pijl). Spoel de gastrotomieplaats met een steriele zoutoplossing (37 °C) om besmetting door de verwijderde maaginhoud te voorkomen.
    3. Breng chirurgische clips (middelgroot, 5,6 mm) aan langs de grotere kromming van de maag om ongeveer 80% van de maag uit te sluiten. Twee clips zijn voldoende. Verwijder de uitgesloten maag door deze te knippen met een microschaar (figuur 4D-G).
    4. Veranker de chirurgische clips om de ondoordringbaarheid vast te stellen door een lopende hechting (8-0) uit te voeren van het begin tot het einde van de maagresectie (figuur 4H).
  4. Duodeno-ileale anastomose
    1. Visualiseer onder de binoculaire microscoop de laatste ileale lus, die zich net voor het caecum bevindt (figuur 5A). Mobiliseer voorzichtig de dunne darm buiten de buikholte van de laatste ileale lus. Leg de dunne darm, zoals weergegeven in figuur 5B, zo neer dat de laatste ileale lus zich aan de linkerkant bevindt. Meet met behulp van een eerder groot hechtkoord 10 cm (ongeveer 1/3 van de totale lengte van de dunne darm) vanaf de laatste ileale lus; Dit zal de plaats zijn van de toekomstige anastomose.
    2. Om ervoor te zorgen dat de toekomstige galweg vanaf de linkerkant naar de anastomoseplaats komt, maakt u een grote lus van de dunne darm rond de plaats van de toekomstige anastomose. Voer met een microschaar een enterotomie van 4 mm uit door de dunne darm op dit punt te openen (figuur 5C-E). Spoel de enterotomieplaats af met een steriele zoutoplossing (37 °C) om besmetting te voorkomen.
    3. Voer een enterotomie van 4 mm uit op het uitgesloten deel van de twaalfvingerige darm, onmiddellijk na de pylorus, tussen de maag en de ligatie uitgevoerd in stap 2.2.2 (figuur 5F). Plaats een absorbeerbaar hemostatisch collageenkompres van 5 mm x 5 mm om homeostase te bevorderen.
    4. Met behulp van een niet-absorbeerbare 8-0 hechting, voer een zij-aan-zij duodeno-ileale anastomose uit. Begin met de anastomose aan de achterzijde, gevolgd door de anastomose aan de voorste zijde (figuur 5G-I).
  5. Abdominale sluiting
    1. Toon de dunne darm in de buikholte, zodat de gal van de linkerzijde van de buik naar de anastomose komt en de gemeenschappelijke ledemaat naar het onderste deel van de buik valt.
      OPMERKING: Spoel de buik driemaal met ongeveer 5 ml steriele 0,9% zoutoplossing (37 °C). Zuig vervolgens de vloeistof uit de buik om resterende gastro-intestinale vloeistof en verteerd voedsel te verwijderen om bacteriële infectie en daaropvolgende buikontsteking te voorkomen.
    2. Rehydrateer de muis met 500 μL zoutoplossing van 37 °C door deze rechtstreeks in de buikholte aan te brengen met een spuit van 1 ml.
    3. Sluit de musculoaponeurotische laag met behulp van een enkele 6-0 niet-absorbeerbare lopende hechting. Sluit de buikhuid met 6-0 niet-absorbeerbare gescheiden hechtingen (figuur 5J,K).

3. Algemene postoperatieve zorg

  1. Na het stoppen van de isofluraan, laat de muis wakker worden op het warmtekussen onder 0,4 L / min O2 geïnsuffflateerd met het neusmasker. Wanneer de muis volledig ontwaakt is, wat kan worden gegarandeerd door volledige motorrecuperatie, plaatst u de muis alleen in een kooi in een incubator van 30 °C. Laat de muis 5 dagen in de 30 °C incubator staan (geen specifieke voorwaarde voor gas of vochtigheid).
    OPMERKING: De kooi moet van tevoren worden opgewarmd.
  2. Geef direct na de operatie vrije toegang tot water. Voeg vitaminesupplementen, waaronder vitamine B1, B9, B12 en liposolubele vitamines (A, D, E, K), toe aan water (800 mg / 180 ml water) tot het einde van het protocol.
  3. Handhaaf analgesie door subcutane buprenorfine-injecties (0,1 mg / kg) tweemaal daags van dag 1 tot dag 3, eenmaal per dag daarna tot dag 5. Ga door met amoxicilline (15 mg/kg), meloxicam (1 mg/kg) en metoclopramide (1 mg/kg) subcutane injecties eenmaal daags tot dag 3. Geef subcutane injecties van ijzer (0,5 mg / kg) eenmaal per dag tot het einde van het protocol.

4. Algemene metingen en euthanasie

  1. Weeg de muizen elke dag tot postoperatieve dag 5. Weeg dan op dag 7, en dan wekelijks.
  2. Om de dagelijkse voedselinname te meten, plaatst u één muis per kooi. Plaats een bekend gewicht van een vast dieet en meet het gewicht van het vaste dieet dat na 24 uur overblijft. Meet de voedselinname op dag 3, 4, 5, 7 en vervolgens wekelijks.
  3. Euthanaseer de muizen door cervicale dislocatie onder algemene anesthesie (5% isofluraan (1 l/min) met zuurstof (1 l/min)) met subcutane injectie van buprenorfine (0,1 mg/kg) na cardiale linker atriumincisie voor bloedafname (500 tot 600 μl bloed).
  4. Meet de hemoglobineconcentratie in het bloed met behulp van een automatische hematologieanalysator die 20 μL bloed vereist.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

Leercurve
De leercurve voor dit model wordt weergegeven in figuur 6. Een progressieve afname van de operatietijd wordt waargenomen, tot ongeveer 60 minuten operatie na 4 weken intensieve training (figuur 6A). De 5-daagse postoperatieve overleving verbeterde ook met de tijd en bereikte 77% tijdens reguliere oefening (figuur 6B). De meest voorkomende doodsoorzaken waren anastomotische lekken en een afferent lussynd...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

Bariatrische operaties, waarvan de technieken voortdurend evolueren, lijken momenteel de meest effectieve behandeling te zijn voor obesitas en bijbehorende metabole comorbiditeiten 3,19,20. De SADI-S-procedure, voor het eerst beschreven in 20074, is een veelbelovende procedure die gepaard gaat met grotere metabole effecten dan andere malabsorptieve operaties. Diermodellen, met name muizen die de snelle ge...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

Claire Blanchard is betaald door Medtronic om cursussen van klinische onderdompelingen te geven.

Dankbetuigingen

We danken Ethicon (Johnson and Johnson surgical technologies) voor het vriendelijk verstrekken van het hechtkoord en chirurgische clips. Dit werk werd ondersteund door subsidies van het NExT Talent Project, Université de Nantes, CHU de Nantes.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
Agagani needle 26 GTerumo050101B26 G naald
Betadine dermique Pharma-gdd3300931499787Povidon-oplossing
Betadine scrubPharma-gdd 3400931499787Povidon-oplossing
Binocular microscopeOptika Microscopes ItalySZN-9Binoculair stereomicroscoop
BuprecareAnimalcare3760087151244Buprenorfine
Castroviejo, straight 9 cmF.S.T12060-02Micro schaar
Castroviejo, straight 9 cmF.S.T12060-02Naaldhouder
Chlorure de sodium Fresenius 0.9%Fresenius Kabi BE182743NaCl 0.9%
ClamoxylMed'vet5414736007496Amoxicilline
Cotton budsComed2510805Wattenstaafjes
Element HT5ScilvetElement HT5Automatische hematologie-analyzer
EmepridCEVA3411111914365Metoclopramid
Extra Fine Graefe Forceps, curved (tip width: 0.5 mm)F.S.T11152-10Chirurgische pincetten
Extra Fine Graefe Forceps, straight (tip width: 0.5 mm)F.S.T11150-10Chirurgische pincetten
FercobsangVetopriceQB03AE04IJzer, multivitaminen en mineralen 
ForaneBaxter1001936060Isoflurane
Graefe forceps, straight (tip width: 0.8 mm)F.S.T11050-10Forceps
Graphpad Prism version 8.0GraphPad Software, Inc.Version 8.0Software voor statistische analyse
Heat padIntellibio innovationA-2101-00300Verwarmingskussen
IncubatorBioconcept TechnologiesManufactured on demandIncubator 
LightingOptika Microscopes ItalyCL-30Verlichting voor microscopie
OcrygelMed'vet3700454505621Carboptol 980 NF
Pangen 2.5 cm x 3.5 cmUrgovetA02978Hemostatisch collageenkompres
Prolene 6/0B.Braun3097915Optilene 6/0 (0.7 metric) 75 cm 2XDR13 CV2 RCP, hechtdraad
Prolene 8/0Ethicon87322 x BV175-6 MP, 3/8 Circle, 8 mm,  hechtdraad
ScissorsF.S.T146168-09Chirurgische schaar
Sterile compresses Laboartoire Sylamed211S05-50Niet-geweven steriele compressie
Terumo SyringeTerumo508281 mL spuit
Titanium hemostatic clipPéters SurgicalB2180-1Chirurgische clip
Vannas WolffF.S.T15009-08Micro schaar
Vita RongeurVirbac3597133087611Vitamine suppletie
Vitaltec stainlessPéters SurgicalPB 220-EB MediumChirurgische clipapplicateur

Referenties

  1. Flegal, K. M., Carroll, M. D., Kit, B. K., Ogden, C. L. Prevalence of obesity and trends in the distribution of body mass index among US adults, 1999-2010. JAMA. 307 (5), 491-497 (2012).
  2. Sjöström, L., et al. Association of bariatric surgery with long-term remission of type 2 diabetes and with microvascular and macrovascular complications. JAMA. 311 (22), 2297-2304 (2014).
  3. Dyson, J., et al. Hepatocellular cancer: the impact of obesity, type 2 diabetes and a multidisciplinary team. Journal of Hepatology. 60 (1), 110-117 (2014).
  4. Sánchez-Pernaute, A., et al. Proximal duodenal-ileal end-to-side bypass with sleeve gastrectomy: proposed technique. Obesity Surgery. 17 (12), 1614-1618 (2007).
  5. Himpens, J., Verbrugghe, A., Cadière, G. B., Everaerts, W., Greve, J. W. Long-term results of laparoscopic Roux-en-Y Gastric bypass: evaluation after 9 years. Obesity Surgery. 22 (10), 1586-1593 (2012).
  6. Sánchez-Pernaute, A., et al. Long-term results of single-anastomosis duodeno-ileal bypass with sleeve gastrectomy (SADI-S). Obesity Surgery. 32 (3), 682-689 (2022).
  7. Shoar, S., Poliakin, L., Rubenstein, R., Saber, A. A. Single anastomosis duodeno-ileal switch (SADIS): A systematic review of efficacy and safety. Obesity Surgery. 28 (1), 104-113 (2018).
  8. Rao, R. S., Rao, V., Kini, S. Animal models in bariatric surgery--a review of the surgical techniques and postsurgical physiology. Obesity Surgery. 20 (9), 1293-1305 (2010).
  9. Lutz, T. A., Bueter, M. The use of rat and mouse models in bariatric surgery experiments. Frontiers in Nutrition. 3, 25(2016).
  10. Baud, G., et al. Bile diversion in Roux-en-Y Gastric Bypass modulates sodium-dependent glucose intestinal uptake. Cell Metabolism. 23 (3), 547-553 (2016).
  11. Blanchard, C., et al. Sleeve gastrectomy alters intestinal permeability in diet-induced obese mice. Obesity Surgery. 27 (10), 2590-2598 (2017).
  12. Ayer, A., et al. Techniques of sleeve gastrectomy and modified Roux-en-Y Gastric Bypass in mice. Journal of Visualized Experiments. (121), e54905(2017).
  13. Wang, T., et al. Comparison of diabetes remission and micronutrient deficiency in a mildly obese diabetic rat model undergoing SADI-S versus RYGB. Obesity Surgery. 29 (4), 1174-1184 (2019).
  14. Wu, W., et al. Comparison of the outcomes of single anastomosis duodeno-ileostomy with sleeve gastrectomy (SADI-S), single anastomosis sleeve ileal (SASI) bypass with sleeve gastrectomy, and sleeve gastrectomy using a rodent model with diabetes. Obesity Surgery. 32 (4), 1209-1215 (2022).
  15. Laura, M., et al. Establishing a reproducible murine animal model of single anastomosis duodenoileal bypass with sleeve gastrectomy (SADl-S). Obesity Surgery. 28 (7), 2122-2125 (2018).
  16. Meoli, L., et al. Intestine-specific overexpression of LDLR enhances cholesterol excretion and induces metabolic changes in male mice. Endocrinology. 160 (4), 744-758 (2019).
  17. Abu El Haija, M., et al. Toll-like receptor 4 and myeloid differentiation factor 88 are required for gastric bypass-induced metabolic effects. Surgery for Obesity and Related Diseases. 17 (12), 1996-2006 (2021).
  18. Kumar, S., et al. Lipocalin-type prostaglandin D2 synthase (L-PGDS) modulates beneficial metabolic effects of vertical sleeve gastrectomy. Surgery for Obesity and Related Diseases. 12 (8), 1523-1531 (2016).
  19. Heffron, S. P., et al. Changes in lipid profile of obese patients following contemporary bariatric surgery: A meta-analysis. The American Journal of Medicine. 129 (9), 952-959 (2016).
  20. Carswell, K. A., Belgaumkar, A. P., Amiel, S. A., Patel, A. G. A systematic review and meta-analysis of the effect of gastric bypass surgery on plasma lipid levels. Obesity Surgery. 26 (4), 843-855 (2016).
  21. Surve, A., Zaveri, H., Cottam, D. Retrograde filling of the afferent limb as a cause of chronic nausea after single anastomosis loop duodenal switch. Surgery for Obesity and Related Diseases. 12 (4), 39-42 (2016).
  22. Uysal, M., et al. Caecum location in laboratory rats and mice: an anatomical and radiological study. Laboratory Animals. 51 (3), 245-255 (2017).
  23. Sánchez-Pernaute, A., et al. Single-anastomosis duodeno-ileal bypass with sleeve gastrectomy: metabolic improvement and weight loss in first 100 patients. Surgery for Obesity and Related Diseases. 9 (5), 731-735 (2013).
  24. Wei, J. H., Yeh, C. H., Lee, W. J., Lin, S. J., Huang, P. H. Sleeve gastrectomy in mice using surgical clips. Journal of Visualized Experiments. (165), e60719(2020).
  25. Ying, L. D., et al. Technical feasibility of a murine model of sleeve gastrectomy with ileal transposition. Obesity Surgery. 29 (2), 593-600 (2019).
  26. Bruinsma, B. G., Uygun, K., Yarmush, M. L., Saeidi, N. Surgical models of Roux-en-Y gastric bypass surgery and sleeve gastrectomy in rats and mice. Nature Protocols. 10 (3), 495-507 (2015).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Meer artikelen verkennen

SADI-S muismodelbariatrische chirurgieobesitasmodelmetabole chirurgiemuisoperatietechniekperioperatieve zorggewichtsverminderingsoperatiedunnedarm-anastomose
Single-Anastomosis Duodeno-Ileal Bypass met Sleeve Gastrectomy Model bij muizen
Neem contact met ons op
Aanbevelen aan de bibliotheek

Privacy

Gebruiksvoorwaarden

Beleidsoverzicht

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. Alle rechten voorbehouden.