Een abonnement op JoVE is vereist om deze inhoud te bekijken. Log in of start vandaag met uw gratis proefperiode.

Methodenartikel

Ovariële weefsel-eicel-in vitro rijping voor behoud van vruchtbaarheid

2.4K weergaven

⸱

DOI:

10.3791/65255

⸱

17 mei 2024

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Brussels IVF, University Hospital Brussels, Vrije Universiteit Brussel, 2Follicle Biology Laboratory (FOBI), Vrije Universiteit Brussel

In dit artikel

Samenvatting

Hier wordt ovariële weefsel-eicel-in-vitro-maturatie (OTO-IVM) gepresenteerd, een toegankelijke techniek binnen een laboratorium voor medische geassisteerde voortplanting (MAR) die realistische extra opties voor vruchtbaarheidsbehoud biedt aan patiënten die cryopreservatie van eierstokweefsel nodig hebben.

Samenvatting

Vitrificatie van rijpe eicellen is de standaardbehandeling om de vruchtbaarheid te behouden bij vrouwen met een risico op onvruchtbaarheid. Cryopreservatie van eierstokweefsel (OTC) is echter nog steeds de enige optie om de vruchtbaarheid te behouden bij vrouwen die dringend met een gonadotoxische behandeling moeten beginnen of bij prepuberale kinderen. Tijdens de voorbereiding van de ovariële cortex op cryopreservatie wordt medullair weefsel verwijderd. Groeiende antrale follikels bevinden zich op de grens van de cortex-medullaire interface van de eierstok en worden tijdens dit proces verbroken, waardoor hun cumulus-eicelcomplex (COC) vrijkomt. Door het medium en het gefragmenteerde medullaire weefsel grondig te inspecteren, kunnen deze onrijpe cumulus-eicelcomplexen worden geïdentificeerd zonder de OTC-procedure te verstoren. De van eierstokweefsel afgeleide onrijpe eicellen kunnen met succes in vitro worden gerijpt, waardoor een extra bron van gameten ontstaat voor het behoud van de vruchtbaarheid. Als OTC wordt uitgevoerd in of nabij een medisch geassisteerd voortplantingslaboratorium, kunnen alle noodzakelijke hulpmiddelen voor in-vitrorijping (IVM) en eicelvitrificatie bij de hand zijn. Bovendien heeft de patiënt bij remissie en kinderwens meerdere opties voor vruchtbaarheidsherstel: transplantatie van eierstokweefsel of embryotransfer na de inseminatie van verglaasde/verwarmde eicellen. Daarom kan oeicel-in-vitrorijpatie in de eierstokken (OTO-IVM) een waardevolle aanvullende techniek voor het behoud van vruchtbaarheid zijn.

Inleiding

Opties voor vruchtbaarheidsbehoud (FP) voor vrouwen die gepland zijn voor gonadotoxische behandeling, geslachtsaanpassende therapie of vrouwen met een genetische aanleg voor voortijdig ovariumfalen, zijn afhankelijk van de gezondheid en leeftijd van de patiënt, het beschikbare tijdsbestek, het type behandeling, de voorkeur van de patiënt en FP-procedures die beschikbaar zijn bij het vruchtbaarheidscentrum van keuze. Vitrificatie van rijpe eicellen verkregen na stimulatie van de eierstokken met gonadotrofinen en eicelpunctie in een laboratoriumcyclus met medische geassisteerde voortplanting (MAR) wordt beschouwd als de voorkeursoptie voor FP 1,2. Voor prepuberale meisjes, vrouwen bij wie een dringende start van een gonadotoxische behandeling of gonadectomie nodig is, of vrouwen met een hoog risico op permanente amenorroe als gevolg van een gonadotoxische behandeling, is een cyclus van ovariële stimulatie met gonadotrofinen echter niet mogelijk, en cryopreservatie van eierstokweefsel (OTC), een geaccepteerde en geldige techniek voor FP 1,2, 3, is de enige optie. Het doel van OTC is het cryopreserveren van duizenden slapende primordiale follikels in het weefsel van de ovariële cortex, die de groei kunnen hervatten na de transplantatie van ingevroren/ontdooid weefsel op de resterende eierstok of in een peritoneale zak na zorgvuldige screening van minimale restziekte in representatieve weefselfragmenten.

Om corticale fragmenten van 1-2 mm dikte te verkrijgen die geschikt zijn voor cryopreservatie, moet het zachte medullaire weefsel worden verwijderd. Dit medullaire weefsel omvat meestal groeiende follikels in verschillende stadia van ontwikkeling die ontsnappen aan de stijve eierstokcortex om hun groei en expansie mogelijk te maken4. Al vele jaren onderzoeken verschillende laboratoria het potentieel van deze eicellen die zijn teruggevonden uit follikels die zich in het resterende medullaire weefsel bevinden na bereiding van ovariële corticale fragmenten met behulp van in vitro rijping (IVM)5,6,7, ook wel eierstokweefsel eicel IVM (OTO-IVM) genoemd. Antrale follikels, zelfs die met een diameter van minder dan 6 mm, bevatten onrijpe eicellen omgeven door cumuluscellen die kunnen rijpen, bevruchten en zich ontwikkelen tot gezonde baby's met behulp van een IVM-systeem 8,9. IVM wordt beschouwd als de standaardbehandeling voor vrouwen die risico lopen op ovarieel hyperstimulatiesyndroom (OHSS), zoals patiënten met polycysteus ovariumsyndroom (PCOS). Op het gebied van FP zijn er echter beperkte gegevens beschikbaar voor IVM in gevallen met een contra-indicatie voor ovariële stimulatie; IVM van eicellen die transvaginaal zijn verzameld, wordt nog steeds als innovatief beschouwd en OTO-IVM wordt als experimenteel beschouwd 2,10. Dat gezegd hebbende, benadrukken de rapporten van de eerste levendgeborenen na OTO-IVM11,12,13 het potentieel van het gebruik van OTO-IVM als aanvullende techniek wanneer OTC nodig is voor FP bij patiënten14.

Deze studie biedt technische details om OTO-IVM in het MAR-laboratorium toe te passen en illustreert de resultaten die in één enkel centrum zijn verkregen.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

De huidige studie over OTO-IVM is goedgekeurd door het lokale Ethisch Comité van UZ-Brussel (addendum van project 2008/068 en project 2022/303). Alle patiënten ondertekenden schriftelijke geïnformeerde toestemming. Elke patiënt werd individueel beoordeeld door een arts die gespecialiseerd is in reproductieve geneeskunde, een navigator-verpleegkundige en de verwijzende oncoloog om het optimale FP-behandelplan samen te stellen, rekening houdend met de voorkeuren van de patiënt14. Kortom, patiënten die in aanmerking komen voor OTC hebben dringend FP nodig en zijn jonger dan 36 jaar of14 jaar. Om OTC te combineren met OTO-IVM mag chemo- of radiotherapie niet zijn toegediend in de 6 maanden voorafgaand aan OTC.

1. Laboratoriumomgeving en personeel

  1. Voer OTC uit in een laminaire stromingskast van klasse A.
  2. Voer OTC uit met twee operators: één die aseptisch werkt in de laminale flowkast, en een tweede die alle niet-steriele materialen reinigt met een bacterie- en sporicide-ontsmettingsspray en materialen en benodigdheden aseptisch overhandigt aan de eerste operator. Verwerk de ovariële cortex op een werkblad van een koeler (± 4 °C).
  3. Voer het zoeken naar het cumulus-eicelcomplex (COC) uit in een tweede laminaire flowkast met een stereomicroscoop in een MAR-lab op een verwarmd podium (37 °C).
  4. Voer het ophalen van het COC uit de medullaire restanten uit (sectie 3 en 4) en start het IVM-proces (sectie 5). Dit wordt gedaan door een derde operator.

2. Voorbereiding van de media

OPMERKING: Voor deze procedure worden vijf soorten media gebruikt (hieronder beschreven): OTC-verwerkingsmedium, OTC-vriesmedium, zoekmedium, LAG-medium en IVM-medium. Werk bij het voorbereiden van media aseptisch in de doorstroomkast, zoals beschreven in hoofdstuk 1. Gebruik nieuwe, ongeopende reagentia voor elke procedure en handhaaf de steriliteit van alle wegwerpartikelen die worden gebruikt om de steriliteit van de geproduceerde media vast te stellen.

  1. OTC-verwerkingsmedium
    1. Vul het L15-medium van Leibovitz aan met 4 mg/ml humaan serumalbumine (HSA), 100 E/ml penicilline en 100 μg/ml streptomycine (zie materiaaltabel).
    2. Bewaar het OTC-medium tot gebruik in de koelkast (maximaal 2 dagen).
      OPMERKING: Gebruik OTC-behandelingsmedium om het eierstokweefsel te spoelen en te verwerken en gebruik het koud (0-4 °C).
  2. OTC-vriesmiddel
    1. Vul Leibovitz's L15 medium aan met 1,5 M dimethylsulfoxide (DMSO) en 4 mg/ml HSA.
    2. Bewaar het OTC-vriesmedium tot gebruik (maximaal 2 dagen) in de koelkast.
  3. Zoekmedium
    OPMERKING: Het zoekmedium (een HEPES-gebufferd medium voor het verwerken van eicellen) is in de handel verkrijgbaar (zie materiaaltabel) en klaar voor gebruik. Gebruik het zoekmedium om het filter te spoelen en verzamel het COC tijdens het zoeken naar COC's tussen de medullafragmenten (sectie 4).
    1. Vul zes steriele tubes van 14 ml met ronde bodem met 6 ml zoekmedium.
    2. Bereid een gerecht met 4 putjes voor met 500 μl zoekmedium bedekt met 350 μl olie (zie materiaaltabel).
    3. Verwarm de buisjes en de 4-well schotel op 37 °C gedurende ten minste 1 uur voor de aankomst van het eierstokweefsel. HEPES-gebufferde media vereisen geen CO2 -incubatie.
  4. LAG gemiddeld
    OPMERKING: Het in de handel verkrijgbare IVM-systeem (zie materiaaltabel) bestaat uit twee verschillende media: LAG-medium en IVM-medium, die moeten worden aangevuld zoals hieronder beschreven. LAG-medium wordt gebruikt om de COC's te spoelen, maar kan ook worden gebruikt gedurende een incubatietijd van 2-3 uur voorafgaand aan IVM in IVM-medium, zoals gesuggereerd door de inzet van het IVM-systeem.
    1. Gebruik het in de handel verkrijgbare, gebruiksklare LAG-medium (zie materiaaltabel).
  5. IVM middel
    1. Vul het in de handel verkrijgbare IVM-medium aan met 10 mg/ml HSA, 75 mIU/ml follikelstimulerend hormoon (FSH) en 100 mIU/ml humaan choriongonadotrofine (hCG).
    2. Bereid een kweekschaal met 4 putjes voor met één putje LAG-medium en drie putjes aangevuld IVM-medium: 500 μL medium bedekt met 350 μL olielaag.
    3. Laat het gerecht een nacht in een broedmachine bij 37 °C in evenwicht brengen met 6% CO2 en 20% O2, de optimale omgeving voor IVM-cultuur.

3. Voorbereiding van de eierstokschors

OPMERKING: Laparoscopische verwijdering van de hele eierstok werd uitgevoerd zoals beschreven door Jadoul et al.15.

  1. Bij aankomst van de eierstok in het laboratorium, wast u de eierstok twee keer in het OTC-behandelingsmedium (stap 2.1) door de eierstok over te brengen in een petrischaaltje van 100 mm met het OTC-behandelingsmedium.
  2. Snijd met een scalpel de eierstok in de lengterichting doormidden (Figuur 1A).
  3. Maak meerdere incisies in het medullaire weefsel, zowel verticaal als horizontaal, met een vers scalpel. Vermijd beschadiging van de cortex. Prik voorzichtig met het scalpel in de stevige antrale follikels van verschillende groottes in het merg om de follikelvloeistof in het OTC-behandelingsmedium vrij te maken.
  4. Snijd het zachte medullaweefsel af met een chirurgische schaar (Figuur 1B). Deze procedure kan enkele minuten duren.
  5. Doe de eierstokschaal tijdens het trimmen in een nieuwe schaal met vers OTC-verwerkingsmedium.
  6. Breng de schaal met medullaire fragmenten en vrijgekomen follikelvloeistof (Figuur 1C) over naar de tweede stroomkast om de zoektocht naar COC's te starten.
  7. Herhaal stap 3.4 tot 3.6 totdat de gewenste dikte (1-2 mm) van het cortexweefsel is verkregen.
  8. Snijd de cortex in stukken van ongeveer 8 mm x 5 mm.
  9. Incubeer de stukjes 3x achter elkaar gedurende 10 minuten in ongeveer 25 ml OTC-vriesmedium (stap 2.2) in petrischaaltjes van 100 mm.
  10. Plaats een stuk in 800 μL OTC-vriesmedium in een cryovial.
  11. Cryopreservatie van het eierstokweefsel met behulp van een protocol voor langzaam invriezen in een cryokamer die wordt bestuurd door een temperatuurregelaar (zie materiaaltabel): van 4 °C tot -7 °C bij -2 °C/min, handmatig zaaien bij -7 °C, van -7 °C tot -40 °C bij -0,3 °C/min, van -40 °C tot -100 °C bij -10 °C/min, en dompel bij -100 °C de cryovials onder in vloeibare stikstof en bewaar ze.

4. Zoeken naar COC's

  1. Bereid de laminaire stromingskast voor op het COC-onderzoek.
    1. Warme 60 mm kweekschaaltjes op het verwarmde podium onder de stereomicroscoop in de laminaire stromingskast.
    2. Plaats de 14 ml buisjes met 6 ml voorverwarmd zoekmedium (stap 2.3.1) in een verwarmd blok en de voorverwarmde 4-gaats schaal met zoekmedium op de verwarmde tafel onder de microscoop in de laminaire stromingskast.
    3. Plaats een steriel filter (celzeef, maaswijdte van 70 μm; zie materiaaltabel) met de onderkant naar beneden in een kweekschaal.
    4. Neem een glazen capillair van 290-310 μm voor gebruik: gebruik geen kleinere haarvaten dan 290-310 μm, om schade aan de eicel-cumuluscelconnectiviteit te voorkomen.
    5. Zorg ervoor dat er 1 ml filtertips en een pipet van 1 ml beschikbaar zijn.
  2. Neem de eerste schaal met medullaire fragmenten uit de OTC laminaire flowkast (4 °C) en zet de schaal zo snel mogelijk op de verwarmde stand (37 °C) in de IVM laminaire flowkast.
    OPMERKING: Het eerste schaaltje met medullaire fragmenten en follikelvloeistof kan besmet zijn met bloed uit met bloed gevulde ovulaire follikels of het vaatstelsel van de eierstok zelf. Rode bloedcellen vertroebelen het zicht en bemoeilijken het zoeken naar COC's. Het besmette medium moet worden verwijderd om de rode bloedcellen weg te spoelen (zie stap 4.3).
  3. Verwijder de bloedcelbesmetting door de onderstaande stappen te volgen.
    1. Piket 2 ml zoekmedium over het filtermembraan (70 μm celzeef) om het membraan nat te maken en zet de schaal, die het medium heeft opgevangen, opzij op de verwarmde tafel.
    2. Draai het filter ondersteboven en plaats het met het handvat tegen de rand van een nieuwe kweekschaal, zodat er een helling ontstaat met de onderkant van het filter.
    3. Verzamel het met bloed besmette medium tussen de medullaire fragmenten met behulp van een tip van 1 ml en blaas het voorzichtig over het filtermembraan (Figuur 1D) om de COC's in het besmette medium op te vangen.
    4. Herhaal stap 4.3.3 totdat het grootste deel van het met bloed besmette medium is verwijderd.
    5. Giet direct vers zoekmedium over de medullaire fragmenten om het COC te allen tijde in het kweekmedium te laten zweven.
    6. Spoel het schuine filtermembraan voorzichtig af met 2 ml zoekmedium om rode bloedcellen op het filtermembraan weg te spoelen.
    7. Plaats het filter met de onderkant naar beneden in een nieuwe schaal en giet 3-4 ml zoekmedium in het filter om de COC uit het filtermembraan te verdrijven in het medium dat de schaal vult. Verwijder het filter. Om ervoor te zorgen dat het filtermembraan niet uitdroogt (en eventuele COC's die er nog niet uit zijn verdreven), dompelt u het filter met de onderkant naar beneden onder in de eerste schaal, waarmee het filter voor de eerste keer nat is gemaakt.
    8. Onderzoek het uitgestoten medium onmiddellijk op COC's door visuele inspectie onder een stereomicroscoop met een vergroting van 10x-50x. Zoek naar heldere doorschijnende eicellen met een rand van donkere, compacte omringende cumuluscellen (Figuur 1E). Roer het medium in de schaal en onderzoek het medium opnieuw.
    9. Spoel het filter een tweede keer in een nieuwe schaal en onderzoek het uitgestoten medium op COC's.
    10. Onderzoek het medium in de schaal waar het filter is ondergedompeld op de resterende COC's.
    11. Breng COC's met een glazen capillair over naar de schaal met 4 putjes met het zoekmedium (Figuur 1E). Houd de vaat altijd op het verwarmde podium.
  4. Zoek tussen de medullaire fragmenten naar COC's na het verwijderen van de besmette bloedcellen uit het schaaltje met medullaire fragmenten en het aanvullen van het schaaltje met clear Search medium. Gebruik het glazen capillair om rond de medullaire fragmenten te bewegen en draai het medium in de schaal om COC's te vinden. Trek grote medullaire fragmenten uit elkaar met tuberculinenaalden op een spuit van 1 ml als de aanwezigheid van een eicel wordt vermoed.
  5. Verzamel alle intacte COC's in de 4-wells schotel met zoekmedium.
    OPMERKING: In een typische OTC-procedure wordt cortexweefsel uit het merg verwijderd met behulp van drie opeenvolgende schaaltjes van 100 mm, waarbij de eierstokschaal wordt verplaatst naar een nieuw schaaltje met vers medium en waar de restanten worden overgebracht naar de IVM-stroom voor COC-onderzoek. Meestal vereist alleen het eerste gerecht de verwijdering van bloedcellen; in de tweede en derde schaal zijn minder medullaire fragmenten aanwezig en wordt er direct tussen de fragmenten en in het medium naar COC gezocht.

5. IVM van COC's

  1. Spoel de COC's in een schoon putje met zoekmedium.
  2. Verplaats de voorgebalanceerde IVM-kweekschaal (de schaal met 4 putjes die één putje LAG-medium en drie putjes IVM-medium bevat) van de incubator naar het verwarmde podium in de IVM-flowkast.
  3. Label de IVM-kweekschaal met COC's met patiëntinformatie.
  4. Spoel de COC's in LAG medium (2-3 s) en plaats ze in een van de drie putjes met aangevuld IVM medium. Kweek de COC's in groepen van ongeveer 10 COC's per putje. Laat naakte eicellen - eicellen zonder aangehechte cumuluscellen - weg uit de cultuur, omdat bekend is dat ze een ernstig aangetast ontwikkelingspotentieel hebben.
  5. Plaats de schaal in een broedmachine bij 37 °C, 6% CO2 en 20% Ø2 gedurende 30 uur.

6. Omgaan met rijpe eicellen

  1. Ontdoe de eicellen van hun omringende cumuluscellen door korte blootstelling aan 80 IE hyaluronidase (zie materiaaltabel) en voorzichtig mechanisch pipetteren na 30 uur IVM.
  2. Identificeer rijpe eicellen door de extrusie van het eerste poollichaam.
  3. Verglaas of insemineer de rijpe eicellen, afhankelijk van de voorkeur van de patiënt.
    OPMERKING: Als de rijpingscontrole na 30 uur IVM buiten de acceptabele werkuren valt, kan de IVM-duur worden ingekort tot 28 uur of worden verlengd tot 42 uur. Als er na 30 uur slechts een paar rijpe eicellen zijn verkregen, kunnen onrijpe eicellen extra een nacht worden gekweekt in de oorspronkelijke IVM-put, verstoken van cumuluscellen, en de volgende ochtend worden gebruikt voor vitrificatie of intracytoplasmatische sperma-injectie (ICSI) wanneer ze volwassen zijn.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

In het afgelopen decennium kregen 98 patiënten die een ovariëctomie of ovariële biopsie voor OTC ondergingen ook OTO-IVM aangeboden. De hier gepresenteerde resultaten zijn een update van het klinische programma zoals eerder gepubliceerd 7,13. Onrijpe eicellen verkregen tijdens de verwerking van eierstokweefsel werden in vitro gerijpt, voornamelijk gedurende 30 uur. Om praktische redenen of vanwege de lage rijping werd ec...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

De prioriteit van de FP-procedure is altijd het manipuleren en bevriezen van de ovariële cortex volgens het standaard operatieprotocol dat in de kliniek is gevalideerd. Een nadeel van FP is het ontbreken van een standaard protocol dat beschikbaar is in de gepubliceerde literatuur met betrekking tot OTC en OTO-IVM. Het is moeilijk om de efficiëntie en validiteit van de technieken en aanpassingen te beoordelen, aangezien er een groot tijdsverschil is tussen bevriezing/vitrificatie en ontdo...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

De auteurs hebben geen concurrerende financiële belangen.

Dankbetuigingen

Dit werk werd uitgevoerd in het IVF-laboratorium van Brussels IVF, Universitair Ziekenhuis van de VUB, Brussel. De auteurs willen alle leden van het IVF-laboratoriumteam in Brussel bedanken voor hun hoge vaardigheden, nauwkeurigheid en flexibiliteit die nodig zijn om een eenheid voor het behoud van vruchtbaarheid op te zetten binnen een MAR-laboratorium.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
1000 µL filter tipsEppendorf/VWR International613-6780COC-zoekopdracht
Benchtop CoolerFisher Scientific15-350-54Het deksel van de Benchtop Cooler wordt gebruikt om het weefsel voor te bereiden, de Benchtop Cooler-buishouder om cryovials met vriesmedium gekoeld te houden
Corning Cell culture dish, non-treated, 100 mmCorning/VWR International430591Schaal voor ovarieelweefsel voorbereiding
CryoSure-DMSOWAK Chemicals0482Cryoprotector voor ovarieelweefsel cryobewaring
CumulaseOrigio/CooperSurgical16125000Arecombinant human hyaluronidase enzym voor cumulus cel verwijdering na IVM
Decontaminatie spray: SuproxMedipure LTDMP016Desinfectieoplossing voor aseptische hantering met bactericide en sporicide werking
Disposable scalpelsSwann-Morton0511Ovarieelweefsel voorbereiding
Falcon 14 mL Round Bottom Polystyrene Test Tube, with Snap Cap, SterileFalcon/VWR InternationalBDAA352057Medium container
Falcon Cell strainer 70 µmFalcon/VWR International352350Filter voor het elimineren van besmetting door rode bloedcellen en COC-zoekopdracht
Freeze control Ampoule Cryochamber and Temperature ControllerCryologicCL-8800i     CC60ASLangzaam vriesapparaat
FSH: Menopur 75 IUFerringBE197504Follicule Stimulerend Hormoon: Supplement voor IVM medium
Handling pipette 290-310 µmVitrolife15538COC-zoekopdracht: zachte overdracht van COC zonder beschadiging van oöcyte-cumulus cel connectiviteit
hCG: Brevactid 5000 IEFerring5008001036Human Chorionic Gonadotropin: Supplement voor IVM medium
High security tubeCryoBioSystem022252cryovial, thermisch verzegeld voor veilige cryobewaring
HSA-solutionVitrolife10064Huis serum Albumine: supplement voor IVM medium
Leibovitz's L-15 mediumLife Technologies Europe31415-029Handling medium voor ovarieelweefsel voorbereiding
MediCult IVM systemOrigio/CooperSurgical82214010medium voor IVM bevattend zowel LAG als IVM medium. IVM medium dient te worden aangevuld zoals gedetailleerd in het protocol
METZENBAUM fino scissors 140 mmChirurgical MaintenanceVIZ08280314Medium grootte schaar voor initiële medullaire verwijdering
Nunc 4-well dishes for IVFNunc/VWR International144444COC-collectie tijdens COC-zoekopdracht en IVM-kweek
Nunc Invitro fertilization Petri Dish with Vented Lid, 60 mm, Non-Pyrogenic, SterileThermo Scientific/VWRNUNC150270Schaal voor COC-zoekopdracht
Oocyte handling medium : Flushing Medium with heparinOrigio/CooperSurgical10765060Zoekmedium voor COC-zoekopdracht
OvoilVitrolife10029olie voor IVM-kweek
Penicillin/Streptomicin mixLife Technologies Europe15140-148Supplement voor OTC handling medium
Scissors, curved, 150 mm long, 20 mm bladeChirurgical MaintenanceVIREBST999-SCKleine schaar voor resterende medullaire verwijdering

Referenties

  1. Practice Committee of the American Society for Reproductive Medicine. Fertility preservation in patients undergoing gonadotoxic therapy or gonadectomy: a committee opinion. Fertility and Sterility. 112 (6), 1022-1033 (2019).
  2. Anderson, R. A., et al. ESHRE guideline: female fertility preservation. Human Reproduction Open. 2020 (4), (2020).
  3. Karavani, G., et al. Chemotherapy-based gonadotoxicity risk evaluation as a predictor of reproductive outcomes in post-pubertal patients following ovarian tissue cryopreservation. BMC Women's Health. 21 (1), 201(2021).
  4. Fiorentino, G., et al. Biomechanical forces and signals operating in the ovary during folliculogenesis and their dysregulation: implications for fertility. Human Reproduction Update. 29 (1), 1-23 (2023).
  5. Revel, A., et al. Oocyte collection during cryopreservation of the ovarian cortex. Fertility and Sterility. 79 (5), 1237-1239 (2003).
  6. Fasano, G., Moffa, F., Dechène, J., Englert, Y., Demeestere, I. Vitrification of in vitro matured oocytes collected from antral follicles at the time of ovarian tissue cryopreservation. Reproductive Biology and Endocrinology. 9, 150(2011).
  7. Segers, I., et al. In vitro maturation (IVM) of oocytes recovered from ovariectomy specimens in the laboratory: a promising "ex vivo" method of oocyte cryopreservation resulting in the first report of an ongoing pregnancy in Europe. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 32 (8), 1221-1231 (2015).
  8. Guzman, L., et al. Developmental capacity of in vitro-matured human oocytes retrieved from polycystic ovary syndrome ovaries containing no follicles larger than 6 mm. Fertility and Sterility. 98 (2), e1-2 (2012).
  9. Mackens, S., et al. Outcome of in-vitro oocyte maturation in patients with PCOS: does phenotype have an impact. Human Reproduction. 35 (10), 2272-2279 (2020).
  10. Practice Committees of the American Society for Reproductive Medicine, the Society of Reproductive Biologists and Technologists, and the Society for Assisted Reproductive Technology. In vitro maturation: a committee opinion. Fertility and Sterility. 115 (2), 298-304 (2021).
  11. Prasath, E. B., et al. First pregnancy and live birth resulting from cryopreserved embryos obtained from in vitro matured oocytes after oophorectomy in an ovarian cancer patient. Human Reproduction. 29 (2), 276-278 (2014).
  12. Uzelac, P. S., Delaney, A. A., Christensen, G. L., Bohler, H. C. L., Nakajima, S. T. Live birth following in vitro maturation of oocytes retrieved from extracorporeal ovarian tissue aspiration and embryo cryopreservation for 5 years. Fertility and Sterility. 104 (5), 1258-1260 (2015).
  13. Segers, I., et al. Live births following fertility preservation using in-vitro maturation of ovarian tissue oocytes. Human Reproduction. 35 (9), 2026-2036 (2020).
  14. Delattre, S., et al. Combining fertility preservation procedures to spread the eggs across different baskets: a feasibility study. Human Reproduction. 35 (11), 2524-2536 (2020).
  15. Jadoul, P., et al. Laparoscopic ovariectomy for whole human ovary cryopreservation: technical aspects. Fertility and Sterility. 87 (4), 971-975 (2007).
  16. Vilela, J. dM. V., Dolmans, M. M., Amorim, C. A. Ovarian tissue transportation: a systematic review. Reproductive Biomedicine Online. 42 (2), 351-365 (2021).
  17. Vanhoutte, L., Cortvrindt, R., Nogueira, D., Smitz, J. Effects of chilling on structural aspects of early preantral mouse follicles. Biology of Reproduction. 70 (4), 1041-1048 (2004).
  18. Arav, A., Zvi, R. Do chilling injury and heat stress share the same mechanism of injury in oocytes. Molecular and Cellular Endocrinology. 282 (1-2), 150-152 (2008).
  19. Nikiforov, D., et al. Improving the maturation rate of human oocytes collected ex vivo during the cryopreservation of ovarian tissue. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 37 (4), 891-904 (2020).
  20. Vuong, L. N., et al. Live births after oocyte in vitro maturation with a prematuration step in women with polycystic ovary syndrome. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 37 (2), 347-357 (2020).
  21. Kirillova, A., et al. Improved maturation competence of ovarian tissue oocytes using a biphasic in vitro maturation system for patients with gynecological malignancy: a study on sibling oocytes. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 38 (6), 1331-1340 (2021).
  22. Segers, I., et al. In Vitro Maturation (IVM) culture conditions: the effect of oxygen tension and medium volume. Human Reproduction. 32, 126-127 (2017).
  23. De Munck, N., Santos-Ribeiro, S., Stoop, D., Van de Velde, H., Verheyen, G. Open versus closed oocyte vitrification in an oocyte donation programme: a prospective randomized sibling oocyte study. Human Reproduction. 31 (2), 377-384 (2016).
  24. Anderson, R. A., McLaughlin, M., Wallace, W. H. B., Albertini, D. F., Telfer, E. E. The immature human ovary shows loss of abnormal follicles and increasing follicle developmental competence through childhood and adolescence. Human Reproduction. 29 (1), 97-106 (2014).
  25. Karavani, G., et al. Age-dependent in vitro maturation efficacy of human oocytes-is there an optimal age. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 9, 667682(2021).
  26. Bourg, M., et al. Is in vitro maturation of oocytes retrieved ex vivo from ovarian tissue an effective fertility preservation technique in the presence of organic ovarian cysts. European Journal of Obstetrics and Gynecology and Reproductive Biology. 281, 87-91 (2023).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Meer artikelen verkennen

Cryopreservatie van eiersteweefselcumulus-oöcytcomplexantrale follikelsvitrificatie van oöcytenpreparatie van de eierstokschorstransplantatie van eiersteweefselembryo-transfer

Dit artikel is gepubliceerd

Video binnenkort beschikbaar

Neem contact met ons op
Aanbevelen aan de bibliotheek

Privacy

Gebruiksvoorwaarden

Beleidsoverzicht

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. Alle rechten voorbehouden.