Een abonnement op JoVE is vereist om deze inhoud te bekijken. Log in of start vandaag met uw gratis proefperiode.

Methodenartikel

Een varkensmodel van acuut respiratoir falen met een continue infusie van oliezuur

2.3K weergaven

⸱

DOI:

10.3791/65963

⸱

8 maart 2024

 ,  ,  ,  , 
1Department of Anesthesiology, Vanderbilt University Medical Center, 2Department of Biomedical Engineering, Vanderbilt University, 3Department of Surgery, Vanderbilt University Medical Center

In dit artikel

Samenvatting

Het continu toedienen van oliezuur in de longslagader van een verdoofd volwassen varken induceert acuut ademhalingsfalen, waardoor gecontroleerde experimenten tijdens acute respiratoire decompensatie mogelijk zijn.

Samenvatting

Dit protocol schetst een model voor acute ademnood met behulp van centraal toegediende oliezuurinfusie bij Yorkshire-varkens. Voorafgaand aan het experiment onderging elk varken algemene anesthesie, endotracheale intubatie en mechanische beademing, en was het uitgerust met bilaterale halsader centrale vasculaire toegangskatheters. Oliezuur werd toegediend via een speciale longslagaderkatheter met een snelheid van 0,2 ml/kg/uur. De infusie duurde 60-120 minuten en veroorzaakte ademnood. Tijdens het experiment werden verschillende parameters, waaronder hartslag, ademhalingsfrequentie, arteriële bloeddruk, centrale veneuze druk, pulmonale arteriële druk, pulmonale capillaire wigdruk, end-tidal kooldioxide, piekluchtwegdruk en plateaudruk gecontroleerd. Rond de 60 minuten werden dalingen van de partiële arteriële zuurstofdruk (PaO2) en de fractie van zuurstofverzadigd hemoglobine (SpO2) waargenomen. Periodieke hemodynamische instabiliteit, vergezeld van acute verhogingen van de druk in de longslagader, trad op tijdens de infusie. Na de infusie onthulde histologische analyse van het longparenchym veranderingen die wijzen op parenchymale schade en acute ziekteprocessen, wat de effectiviteit van het model bij het simuleren van acute respiratoire decompensatie bevestigde.

Inleiding

Het gebruik van varkensmodellen in translationeel onderzoek is van groot belang voor het bevorderen van ons begrip van de menselijke geneeskunde1. Varkensmodellen bieden, vanwege hun fysiologische en anatomische overeenkomsten met mensen, een waardevol platform voor het bestuderen van complexe ziekten en therapeutische interventies1. In de context van acuut respiratoir falen bieden varkensmodellen een unieke kans om de pathofysiologische mechanismen te onderzoeken, behandelingsstrategieën te evalueren en mogelijke interventies te beoordelen 1,2,3. Het vermogen om belangrijke aspecten van de menselijke ademhalingsfysiologie en reacties op verschillende stimuli in varkensmodellen te repliceren, maakt een uitgebreide evaluatie van therapeutische modaliteiten mogelijk voordat wordt overgegaan tot proeven bij mensen 1,2,3. Dit onderzoeksparadigma stelt onderzoekers in staat om de kloof tussen preklinisch onderzoek en klinische toepassing te overbruggen, de ontwikkeling van nieuwe therapieën te vergemakkelijken en de patiëntresultaten te verbeteren1. Daarom dient de vaststelling van een efficiënt, effectief en reproduceerbaar varkensmodel voor acuut respiratoir falen als een cruciaal hulpmiddel bij het bevorderen van de kennis van luchtwegaandoeningen en het begeleiden van de ontwikkeling van effectieve interventies in de menselijke geneeskunde1.

Ademnood, een kritieke medische aandoening, is de afgelopen drie decennia getuige geweest van beperkte vooruitgang in de diagnose en behandelingervan 4. De momenteel gebruikte evaluatie- en triagestatistieken, waaronder subjectieve symptomen, bevindingen van lichamelijk onderzoek, SpO2 en ademhalingsfrequentie, vertonen vaak beperkingen bij het detecteren van acute longaandoeningen in een vroeg stadium 5,6,7. Deze ontoereikendheid belemmert niet alleen een efficiënte triage en toewijzing van middelen, maar biedt ook geen effectieve, kwantitatieve monitoring van de ziekteprogressie en de behandelingsrespons bij patiënten met chronische longziekten. Het opkomende landschap van chronische aandoeningen van de luchtwegen, zoals langdurige COVID, samen met de last van acute ademhalingsinsufficiëntie op de ziekenhuismiddelen, onderstreept de dringende noodzaak om translationeel onderzoek uit te breiden en innovatie in het beheer van luchtwegaandoeningen te bevorderen.

De directe infusie van oliezuur in de bloedbaan van een varken is erkend als een robuuste methode om acute ademnood te induceren8. Oliezuur, een enkelvoudig onverzadigd vetzuur, heeft aangetoond dat het in staat is om aanzienlijk longletsel te veroorzaken en de ademhalingsfunctie in gevaar te brengen wanneer het in de longcirculatie wordt geïntroduceerd8. Bij infusie veroorzaakt oliezuur vasoconstrictie, wat resulteert in een verhoogde pulmonale arteriële druk en weerstand, wat leidt tot verminderde gasuitwisseling en oxygenatie9. Bovendien bevordert oliezuur de activering van ontstekingsroutes, waaronder de afgifte van pro-inflammatoire mediatoren en rekrutering van immuuncellen, die bijdragen aan de ontwikkeling van longbeschadiging en ademnood10. Dit alles resulteert in ernstige hypoxemie, verhogingen van de pulmonale arteriële druk en de ophoping van extravasculair longwater11. Histologische evaluatie van het longparenchym heeft letsel aangetoond dat niet te onderscheiden is van acute ademnood bij de mens9.

Dit artikel beschrijft een methode waarbij oliezuur rechtstreeks in de longslagader wordt toegediend om acute ademnood te veroorzaken, waarbij onbehandelbare, ernstige hemodynamische compromissen worden vermeden. De beschreven methode zal naar verwachting een waardevol hulpmiddel zijn voor toekomstige onderzoekers die de onderliggende pathofysiologische mechanismen van acuut respiratoir falen onderzoeken en mogelijke therapeutische interventies en innovaties beoordelen.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

Het protocol kreeg goedkeuring van het Vanderbilt University Institutional Animal Care and Use Committee (protocol M1800176-00) en hield zich strikt aan de richtlijnen van het National Institute of Health voor de verzorging en het gebruik van proefdieren. Mannelijke en vrouwelijke Yorkshire-varkens, met een gewicht van ongeveer 40-45 kg, werden in dit experiment gebruikt. De dieren zijn afkomstig van een commerciële bron (zie Materiaaltabel). De huidige praktijk omvat geen screening op reeds bestaande medische aandoeningen bij de verworven varkens. Hoewel wordt erkend dat deze praktijk de beoogde resultaten mogelijk zou kunnen verstoren of maskeren, wordt dit volgens de verkoper onwaarschijnlijk geacht en wordt deze beperking aanvaard.

1. Voorbereiding van dieren

  1. Anesthesie en beademing
    1. Verdoof het varken met intramusculaire injectie van ketamine (2,2 mg/kg) / xylazine (2,2 mg/kg) / telazol (4,4 mg/kg) en plaats het dier in rugligging (liggende) houding op de operatietafel.
    2. Handhaaf algemene anesthesie door inhalatie-anesthesie te starten, 1% isofluraan.
    3. Leg de stembanden bloot via de mond met behulp van een laryngoscoop en intubeer12 met een endotracheale tube van 6,5 mm (zie Materiaaltabel). Blaas de slangmanchet op met 3-5 ml lucht met behulp van een spuit zonder naald.
      OPMERKING: Voer onmiddellijk kooldioxide (CO2) capnografie uit na de tracheale canulatie om de juiste plaatsing van de slang te garanderen en meet CO2 met ventilatie die de juiste ventilatie aangeeft.
    4. Gebruik een intraveneuze (IV) katheter van 18 G tot 24 G die in de centrale of marginale oorader aan de achterkant van de oorschelp wordt geplaatst om intraoperatieve (indien nodig) en euthanasiemedicijnen aan het varken toe te dienen.  Zet de infuuskatheter vast met plakband van 1 inch.
    5. Stel mechanische ventilatie in op volumegeregelde ventilatie-instellingen met een ademvolume van 8 ml/kg.
      OPMERKING: Tijdens het experiment wordt anesthesiemonitoring uitgevoerd. Vitale functies, reactie op stimulus, aan-/afwezigheid van beweging, verslapping van de kaaktonus, veranderingen in hartslag, end-tidal CO2 en variatie in de ademhalingsfrequentie worden gecontroleerd door een onafhankelijke dierlaboratoriumtechnicus. Op basis van deze beoordelingen worden aanpassingen gedaan aan de dosis inhalatie-anesthesie. Pijnstillende toediening van buprenorfine via bolus wordt uitgevoerd. Pas de ademhalingsfrequentie op de mechanische ventilator aan om gedurende het hele experiment een CO2 2 aan het einde van het getij van 35-40 mmHg te behouden.
  2. Cannulatie en monitoring
    1. Desinfecteer de gehele voorste nek met een 2% chloorhexidine-scruboplossing, gevolgd door een spray van 5% providon-jodiumoplossing.
    2. Stel zowel de rechter als de linker interne en externe halsaders (IJ en EJ) en halsslagaders (CA) chirurgisch bloot met een verticale incisie, ongeveer 7-8 cm, direct lateraal van de luchtpijp aan weerszijden met behulp van een mes nr. 23 naar het borstbeen13.
      OPMERKING: Er wordt gekozen voor een chirurgische cut-down-benadering voor vasculaire toegang vanwege de uitdagingen van een percutane, echogeleide Seldinger-techniek14 bij varkens. De taaie huid en vasculaire grootte maken een verkleiningsaanpak haalbaarder. Cervicale vaten hebben de voorkeur voor bilaterale pulmonale arteriële katheters (PAC), hoewel femorale toegang een optie is. De keuze welke halsader (IJ of EJ) is ter beoordeling van de procedurelist. Degene die de grotere diameter heeft, kan worden gecanuleerd en worden gebruikt voor hartkatheterisatie.
    3. Ontleed de spieren en het kanaal van de band indien nodig met behulp van een Kelly-tissueschaar en Lahey-retractors13 (zie Materiaaltabel).
    4. Plaats na de belichting twee canules van 8,5 Fr en twee PAC's met behulp van de Seldinger-techniek14.
      OPMERKING: De rechter halsaderkatheter en PAC zijn bedoeld voor volumetoediening en hemodynamische bewaking. De katheter van de linker halsader en de bijbehorende PAC worden gebruikt voor de toediening van oliezuur. Plaatsing van dubbele PAC wordt bevestigd met behulp van fluoroscopie.
    5. Plaats met behulp van de Seldinger-techniek een arteriële lijn in de juiste CA voor invasieve bloeddrukmeting tijdens het experiment.
    6. Sluit alle gewenste bewakingsapparatuur aan. Bewaak de hartslag (HR) met telemetriekabels. Bewaak de systolische bloeddruk (SBP), diastolische bloeddruk (DBP) en gemiddelde arteriële druk (MAP) door een druktransducer aan te sluiten op de CA-katheter. Bewaak de gemiddelde pulmonale arteriële druk (MPAP) en centrale veneuze druk (CVP) met behulp van een onafhankelijke druktransducer/versterkersysteemopstelling.
      OPMERKING: Bereken de polsdruk als het verschil tussen SBP en DBP, en de pulsdrukvariabiliteit (PPV) door het verschil te berekenen tussen de piekpulsdruk bij inademing en expiratie tijdens de ademhalingscyclus. Voer thermodilutie cardiale output (CO) uit met behulp van apparaatspecifieke volumetemperatuur/volumekalibratie. Om een pulmonale capillaire wigdruk (PCWP) te verkrijgen, blaast u de PAC-ballon op met 1.5 ml lucht, beweegt u de katheter naar voren totdat visualisatie van zowel "v"- als "a"-golven is, wat een beperkte bloedstroom van rechts naar links vertegenwoordigt, en registreert u de PCWP als de drukwaarde van de "a"-golf aan het einde van vervaldatum16.
    7. Om de urineproductie te controleren, plaatst u een Foley-katheter (zie Materiaaltabel) in de urethra van het varken. Voor mannelijke varkens is chirurgische suprapubische katheterisatie vereist17.
    8. Dien kristalloïden (PlasmaLyte, zie Materiaaltabel) toe met een snelheid van 100 ml gedurende 10 minuten om een PCWP van 8-12 mmHg (euvolemie) te bereiken voordat oliezuur wordt gestart. Controleer PCWP elke 100 ml totdat 10 mmHg is bereikt.

2. Oliezuur infusie

  1. Oliezuur preparaat
    1. Bereid de oliezuuroplossing (16%) door 16 ml oliezuur te combineren met 84 ml normale zoutoplossing.
      NOTITIE: Ga voorzichtig om met oliezuur en zorg ervoor dat het personeel beschermende handschoenen, veiligheidsbrillen en maskers draagt om direct huidcontact, inademing of blootstelling aan de ogen te voorkomen. Regelmatig roeren is nodig om scheiding te voorkomen, en dimethylsulfoxide kan worden toegevoegd als scheiding optreedt.
    2. Vul de oliezuuroplossing in een IV-vloeistofleiding en sluit deze aan op de distale poort van de linker halsslagaderkatheter (zie Materiaaltabel).
  2. Oliezuur initiatie
    1. Start de oliezuurinfusie met een snelheid van 0,2 ml/kg/uur, waarbij de officiële starttijd 18,19,20 wordt gemarkeerd (Figuur 1).
      OPMERKING: Bevestig de hemodynamische monitoring en de plaatsing van de katheter voordat u met de oliezuurinfusie begint. Technieken zoals fluoroscopie of transthoracale echocardiografie kunnen zorgen voor een juiste plaatsing21,22.
    2. Stel onmiddellijk na het starten van oliezuur de ventilatorinstellingen in om de luchtcondities in de kamer na te bootsen (FiO2 = 21%, PEEP = 0 cm H2O).
  3. Hemodynamische en respiratoire monitoring tijdens oliezuurinfusie
    1. Bewaak continu de hartslag (HR), de fractie van zuurstofverzadigd hemoglobine (SpO2), de ademhalingsfrequentie (RR), end-tidal kooldioxide (ETCO2), centrale veneuze druk (CVP), systolische bloeddruk (SBP), diastolische bloeddruk (DBP), gemiddelde arteriële druk (MAP), polsdrukvariabiliteit (PPV) en gemiddelde pulmonale arteriële druk (MPAP).
      1. Meet de gedeeltelijke arteriële zuurstofdruk (PaO2), pH, lactaat, base-overmaat, cardiale output (CO) en pulmonale capillaire wigdruk (PCWP) elke 30 minuten gedurende de eerste 60-90 minuten en daarna elke 15 minuten tot het offer (Figuur 1). Registreer de piekdruk in de luchtwegen en de plateaudruk op hetzelfde moment dat PaO2 wordt gemeten.
        OPMERKING: Typische startwaarden voor continu bewaakte variabelen zijn respectievelijk 95%-100%, 15-20 ademhalingen per minuut, 25-35 mmHg, 70-80 mmHg, 40-50 mmHg, 55-65 mmHg, 1%-4% en 10-20 mmHg. Startwaarden voor intermitterende variabelen zijn respectievelijk 10 mmHg, 7,4, 0-2 mg/dL, -2 +2 mEq/L, >5 L/min en 8-10 mmHg.
    2. Beschouw het experiment als voltooid zodra arteriële PaO2/fractie van geïnspireerd O2 (P/F) minder is dan <10023.
      OPMERKING: Op dit punt kan het dier worden geëuthanaseerd (zie hieronder) en kunnen indien nodig longpathologiemonsters worden verkregen (Figuur 2).

3. Analyse van veneuze golfvormen en procedure voor ventilatorbeheer

  1. Respiratoire niet-invasieve veneuze golfvormanalyse
    - Respiratoire index (RIVA-RI)
    OPMERKING: Ons onderzoeksteam gebruikt dit model om veranderingen in veneuze golfvormen tijdens ademnood te onderzoeken. Perifere veneuze golfvormen worden niet-invasief vastgelegd aan de bovenarm van een varken met behulp van een piëzo-elektrische sensor (zie Tabel met materialen). Signaalverwerking en versterking zijn nodig voor de analyse van deze golfvormen met lage amplitude. Fouriertransformatie wordt vervolgens toegepast om de gegevens in het frequentiedomein te presenteren, waarbij een golfvorm met lage amplitude wordt onthuld bij ongeveer 0,2 Hz (genaamd "fR0") die overeenkomt met ademhaling. Deze hypothese suggereert dat deze golf het gevolg is van retrograde voortplanting van negatieve intrathoracale druk tijdens inspiratie van het rechter atrium/vena cava door het hele veneuze systeem. De gewogen bijdragen van de amplitudes van het ademhalingssignaal (fR0) kunnen ratiometrisch worden genormaliseerd om gegevens op een gemeenschappelijke schaal te vergelijken en de prestaties te verbeteren, en om de amplitude van de frequentie van de polsslag (f0) om een RIVA-RI7 te produceren.
    1. Plaats de piëzo-elektrode op de veneuze plexus van de bovenste extremiteit van de voorste extremiteit, direct proximaal van de elleboog.
      NOTITIE: Zorg voor opname- en uploadmogelijkheden met het piëzo-elektrodeapparaat. Voorbeelden van eerdere opnameprototypes zijn te vinden inde literatuur 7,24,25,26,27.
    2. Begin met het opnemen van veneuze golfvormen met LabChart-software (zie Tabel met materialen) wanneer veneuze golfvormen gewenst zijn tijdens het experimenteren.
  2. Euthanasie
    1. Bevestig het behoud van isofluraan op 1%.
    2. Hartstilstand induceren door IV-injectie van natriumpentobarbital (125 mg/kg) (volgens institutioneel goedgekeurde protocollen).
    3. Bevestig het ontbreken van vitale functies na de injectie om het overlijden te verifiëren.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

Vroege enkelvoudige varkens, pilootgegevens tonen een toename van RIVA-RI voorafgaand aan veranderingen in andere respiratoire monitoringmaatregelen (RR en SpO2), in lijn met veranderingen in PaO2 (Figuur 3). De daling van PaO2 is het "positieve" resultaat dat dit model beoogt te bereiken. Voorlopige gegevens tonen ook aan dat RIVA-RI toeneemt en de PaO2 afneemt bij ziekteprogressie vanaf 30 minuten (

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

Het belangrijkste element in dit protocol is het nauwlettend volgen van de hemodynamische toestand van het varken tijdens de toediening van oliezuur om ademnood te veroorzaken15. Het is van het grootste belang voor onderzoekers om de nodige tijd te nemen om de hemodynamische bewakingsapparatuur op de juiste manier te positioneren. Een specifiek nadeel van dit model is de mogelijke hemodynamische instabiliteit die kan ontstaan als gevolg van ontsteking en letsel aa...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

Een voorlopig patent op intellectueel eigendom in verband met respiratoire niet-invasieve veneuze golfvormanalyse is ingediend door de auteurs (BA, CB en KH).

Dankbetuigingen

De auteurs willen Dr. José A. Diaz, Jamie Adcock, Mary Susan Fultz en het S.R. Light Laboratory van het Vanderbilt University Medical Center bedanken voor hun hulp en steun. Dit werk werd ondersteund door een subsidie van het National Heart, Lung and Blood Institute van de National Institutes of Health (BA; R01HL148244). De inhoud valt uitsluitend onder de verantwoordelijkheid van de auteurs en vertegenwoordigt niet noodzakelijkerwijs de officiële standpunten van de National Institutes of Health.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
1% IsofluranePrimal, Boston, MA, USA26675-46-7https://www.sigmaaldrich.com/US/en/product/aldrich/792632?gclid=Cj0KCQjw9fqnBhDSARIsAHl
cQYS_W-q6tS2s6LQw2Qn7Roa3T
GIpTLPf52351vrhgp44foEcRozPqt
YaAtvfEALw_wcB
Arterial CatheterMerit Medical, South Jordan, UT, USAMAK401MAK Mini Access Kit 4F
Blood Pressure AmpAD Instruments, Colorado Springs, CO, USAFE117https://www.adinstruments.com/products/bp-blood-pressure-amp
Central Venous CatheterArrow International, Cleveland, OH, USAAK-098008.5 Fr. x 4" (10 cm) Arrow-Flex
Disposable Pressure TransducersAD Instruments, Colorado Springs, CO, USAMLT0670https://www.adinstruments.com/products/disposable-bp-transducers
Edwards Lifesciences Triple Stage Venous CannulasEdwards Life Sciences, Irvine, CATF293702https://www.graylinemedical.com/products/edwards-lifesciences-triple-stage-venous-cannulas-venous-dual-stage-cannula-tf293702?variant=31851942576185&gad=1&
gclid=Cj0KCQiAr8eqBhD3ARIsAIe
-buNdmkzavUBaIx-1be7boWn2kW
hbUR6QCjaobB08uuK9qJW66JvY
TM4aAufGEALw_wcB
Kelly ScissorsMPM Medical Supply, Freehold, NJ 07728104-5516https://www.mpmmedicalsupply.com/products/kelly-scissors
Kendall 930 FoamElectrodesCovidien, Mansfield, MA, USA22935https://www.cardinalhealth.com/en/product-solutions/medical/patient-monitoring/electrocardiography/monitoring-ecg-electrodes/radiolucent-electrodes/kendall-930-series-radiolucent-foam-electrodes.html
Ketamine Hydrochloride 100 mg/mL, Injectable Solution, 10 mLPatterson Veterinary, Loveland, CO 8053807-894-8462https://www.pattersonvet.com/ProductItem/078948462?omni=ketamine
LabChart 8 softwareAD Instruments, Colorado Springs, CO, USAN/Ahttps://www.adinstruments.com/products/labchart
Lahey RetractorBOSS Instruments LTD, Gordonsville, VA 2294218-1210https://bossinstruments.com/product/7-3-4-lahey-thyroid-retractor-6mmx28mm/
Oleic AcidSigma-Aldrich, Merck, Darmstadt, GermanyO1008https://www.sigmaaldrich.com/US/en/product/sial/o1008?gclid=CjwKCAjwzJmlBhBBEiwAEJy
Lu2047wRpXqF_Z2BegUyhgZJ
_WygsWfErhgrGCIyMp8PxwNH
sTZ8qARoCl1QQAvD_BwE&gcl
src=aw.ds
Peripheral IV Catheter Angiocath 18-24 G 1.16 inchMcKesson, Irving, TX, USA329830https://mms.mckesson.com/product/329830/Becton-Dickinson-381144
PiezoelectrodeMuRata Manuractoring Co, Ltd., Nagaokakyo, Kyoto, Japan7BB-12-9https://www.murata.com/en-us/products/productdetail?partno=7BB-12-9
PlasmaLyteBaxter International, Deerfield, IL, USA2B2544Xhttps://www.ciamedical.com/baxter-2b2544x-each-solution-plasma-lyte-a-inj-ph-7-4-1000ml
Pulmonary Artery CatheterEdwards Life Sciences, Irvine, CA131F7Swan Ganz 7F x 110cm 
Standard Endotracheal TubesTeleflex, Morrisville, NC 275605-10313https://www.teleflex.com/usa/en/product-areas/anesthesia/airway-management/endotracheal-tubes/standard-tubes/index.html
SurgiVet Clearview Foley Catheter, 8 Fr, 55 cm SiliconePenn Veterinary Supply, Inc, West Rendering, PN 13971SVCFC1030https://www.pennvet.com/customer/portal/catalog/home?urile=wcm:path%3APennVet+Catalog/Super+Sku+Catalog/SS0672/Surgivet+Clearview+Silicone+Foley+Catheters
Telazol (Tiletamine HCl and Zolazepam HCl), Injectable Solution, 5 mLPatterson Veterinary, Loveland, CO 8053807-801-4969https://www.pattersonvet.com/ProductItem/078014969?omni=telazol
Welch Allyn E-MacIntosh Standard Laryngoscope BladeMFIMedical, San Diego, CA 92131WLA-69242https://mfimedical.com/products/welch-allyn-e-macintosh-standard-laryngoscope-blade?variant=12965771870285¤cy
=USD&utm_medium=product_sync
&utm_source=google&utm_content
=sag_organic&utm_campaign=sag
_organic&gclid=Cj0KCQiAr8eqBhD
3ARIsAIe-buMhpgM96qRXkCUKA
6Mhmdat0p93JbecCGTaLStexhV
pkUVa9VkWUzgaAr-iEALw_wcB
Xylazine HCl 100 mg/mL, Injectable Solution, 50 mLPatterson Veterinary, Loveland, CO 8053807-894-5244https://www.pattersonvet.com/ProductItem/078945244
Yorkshire PigsOak Hill Genetics, Ewing, IL, USA138274Female/Male Swine- Yorkshire/Landrace 81-100lbs

Referenties

  1. Judge, E. P., et al. Anatomy and bronchoscopy of the porcine lung. A model for translational respiratory medicine. Am J Respir Cell Mol Biol. 51 (3), 334-343 (2014).
  2. Anna Bassols, C. P., et al. The pig as an animal model for human pathologies: A proteomics perspective. Proteomics Clin. Appl. 8, 715-731 (2014).
  3. Hughes, G. C., Post, M. J., Simons, M., Annex, B. H. Translational physiology: porcine models of human coronary artery disease: implications for preclinical trials of therapeutic angiogenesis. J Appl Physiol. 94 (5), 1689-1701 (2003).
  4. Tobin, M. J. Respiratory monitoring. JAMA. 264 (2), 244-251 (1990).
  5. Magnusdottir, S. O., et al. Hyperoxia affects the lung tissue: A porcine histopathological and metabolite study using five hours of apneic oxygenation. Metabol Open. 4, 100018(2019).
  6. Matute-Bello, G., Frevert, C. W., Martin, T. R. Animal models of acute lung injury. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 295 (3), 379-399 (2008).
  7. Alvis, B., et al. Respiratory non-invasive venous waveform analysis for assessment of respiratory distress in coronavirus disease 2019 patients: an observational study. Crit Care Explor. 3 (10), 0539(2021).
  8. Hultkvist-Bengtsson, U., Martensson, L. Oleic acid-induced injuries in the guinea-pig. Effects of allopurinol on cell dynamics, erythrocyte-catalase and uric acid plasma levels. Clin Exp Pharmacol Physiol. 18 (3), 127-130 (1991).
  9. Jacobs, B. R., Brilli, R. J., Ballard, E. T., Passerini, D. J., Smith, D. J. Aerosolized soluble nitric oxide donor improves oxygenation and pulmonary hypertension in acute lung injury. Am J Respir Crit Care Med. 158 (5 Pt 1), 1536-1542 (1998).
  10. Lee, S. M., et al. microRNAs mediate oleic acid-induced acute lung injury in rats using an alternative injury mechanism. Mol Med Rep. 10 (1), 292-300 (2014).
  11. Rissel, R., et al. Bronchoalveolar lavage and oleic acid-injection in pigs as a double-hit model for acute respiratory distress syndrome (ARDS). J Vis Exp. 159, 61358(2020).
  12. Helen Chum, C. P. Endotracheal intubation in swine. Lab Animal. 41, 309(2012).
  13. Alessa, M. A., et al. Porcine as a training module for head and neck microvascular reconstruction. J Vis Exp. 139, 58104(2018).
  14. Higgs, Z. C., Macafee, D. A., Braithwaite, B. D., Maxwell-Armstrong, C. A. The Seldinger technique: 50 years on. Lancet. 366 (9494), 1407-1409 (2005).
  15. Wise, E. S., et al. Hemodynamic parameters in the assessment of fluid status in a porcine hemorrhage and resuscitation model. Anesthesiology. 134 (4), 607-616 (2021).
  16. Riedinger, M. S., Shellock, F. G., Swan, H. J. Reading pulmonary artery and pulmonary capillary wedge pressure waveforms with respiratory variations. Heart Lung. 10 (4), 675-678 (1981).
  17. Holliman, C. J., Kenfield, K., Nutter, E., Saffle, J. R., Warden, G. D. Technique for acute suprapubic catheterization of urinary bladder in the pig. Am J Vet Res. 43 (6), 1056-1057 (1982).
  18. Borges, A. M., et al. Challenges and perspectives in porcine model of acute lung injury using oleic acid. Pulm Pharmacol Ther. 59, 101837(2019).
  19. Mutch, W. A., et al. Biologically variable ventilation increases arterial oxygenation over that seen with positive end-expiratory pressure alone in a porcine model of acute respiratory distress syndrome. Crit Care Med. 28 (7), 2457-2464 (2000).
  20. Boker, A., et al. Improved arterial oxygenation with biologically variable or fractal ventilation using low tidal volumes in a porcine model of acute respiratory distress syndrome. Am J Respir Crit Care Med. 165 (4), 456-462 (2002).
  21. Josan, E., Pastis, N., Shaman, Z. Ultrasound guided pulmonary artery catheter insertion: An alternative to fluoroscopic guidance. Respir Med Case Rep. 38, 101678(2022).
  22. Weinberg, L., et al. Video fluoroscopy for positioning of pulmonary artery catheters in patients undergoing cardiac surgery. J Cardiothorac Vasc Anesth. 29 (6), 1511-1516 (2015).
  23. NHLBI N. Clinical network mechanical ventilation protocol summary. , ardsnet.org (2023).
  24. Alvis, B., et al. Noninvasive Venous waveform analysis correlates with pulmonary capillary wedge pressure and predicts 30-day admission in patients with heart failure undergoing right heart catheterization. J Card Fail. 28 (12), 1692-1702 (2022).
  25. Alvis, B. D., et al. Non-invasive venous waveform analysis (NIVA) for monitoring blood loss in human blood donors and validation in a porcine hemorrhage model. J Clin Anesth. 61, 109664(2020).
  26. Hocking, K. M., et al. Evaluation of common clinical and hemodynamic parameters to pulmonary capillary wedge pressures in patients undergoing right heart catheterization. Medical Research Archives: European Society of Medicine. 10, (2022).
  27. Sobey, J. H., et al. Non-invasive venous waveform analysis (NIVA) for volume assessment during complex cranial vault reconstruction: A proof-of-concept study in children. PLOS One. 15 (7), 0235933(2020).
  28. Carreau, A., El Hafny-Rahbi, B., Matejuk, A., Grillon, C., Kieda, C. Why is the partial oxygen pressure of human tissues a crucial parameter? Small molecules and hypoxia. J Cell Mol Med. 15 (6), 1239-1253 (2011).
  29. Rogers, K. M., McCutcheon, K. Four steps to interpreting arterial blood gases. J Perioper Pract. 25 (3), 46-52 (2015).
  30. Brown, S. M., et al. Nonlinear Imputation of PaO2/FiO2 from SpO2/FiO2 among patients with acute respiratory distress syndrome. Chest. 150 (2), 307-313 (2016).
  31. Sileshi, B., et al. Peripheral venous waveform analysis for detecting early hemorrhage: a pilot study. Intensive Care Med. 41 (6), 1147-1148 (2015).
  32. Eecen, C. M. W., Kooter, A. J. J. Pulse oximetry: principles, limitations and practical applications. Ned Tijdschr Geneeskd. 165, 5891(2021).
  33. Sinex, J. E. Pulse oximetry: principles and limitations. Am J Emerg Med. 17 (1), 59-67 (1999).
  34. Chan, E. D., Chan, M. M., Chan, M. M. Pulse oximetry: understanding its basic principles facilitates appreciation of its limitations. Respir Med. 107 (6), 789-799 (2013).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Tags

Varkensmodel voor respiratoire aandoeningeninfusie van oliezuurlongslagaderkathetermechanische ventilatiejugulaire venecanulatiehemodynamische monitoringpulmonale capillaire wigdrukveneuze golfvormanalyselonghistologie
Een varkensmodel van acuut respiratoir falen met een continue infusie van oliezuur
Neem contact met ons op
Aanbevelen aan de bibliotheek

Privacy

Gebruiksvoorwaarden

Beleidsoverzicht

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. Alle rechten voorbehouden.