Een abonnement op JoVE is vereist om deze inhoud te bekijken. Log in of start vandaag met uw gratis proefperiode.

Methodenartikel

Nabij-infraroodspectroscopie tijdens reactieve hyperemie voor de beoordeling van de vasculaire functie van de onderste ledematen

2.1K weergaven

⸱

DOI:

10.3791/66511

⸱

22 maart 2024

 ,  ,  ,  ,  ,  , 

In dit artikel

Samenvatting

Hier beschrijven we een niet-invasieve benadering met behulp van nabij-infraroodspectroscopie om reactieve hyperemie in de onderste ledematen te beoordelen. Dit protocol biedt een gestandaardiseerde beoordeling van vasculaire en microvasculaire responsiviteit die kan worden gebruikt om de aanwezigheid van vasculaire disfunctie en de werkzaamheid van therapeutische interventies te bepalen.

Samenvatting

Vaatziekten van de onderste ledematen dragen aanzienlijk bij aan de wereldwijde last van hart- en vaatziekten en comorbiditeiten zoals diabetes. Belangrijk is dat microvasculaire disfunctie kan optreden voorafgaand aan of naast macrovasculaire pathologie, en beide mogelijk bijdragen aan de symptomen van de patiënt en de ziektelast. Hier beschrijven we een niet-invasieve benadering met behulp van nabij-infraroodspectroscopie (NIRS) tijdens reactieve hyperemie, die een gestandaardiseerde beoordeling biedt van de vasculaire (dys)functie van de onderste ledematen en een mogelijke methode om de werkzaamheid van therapeutische interventies te evalueren. In tegenstelling tot alternatieve methoden, zoals contrastversterkte echografie, vereist deze benadering geen veneuze toegang of geavanceerde beeldanalyse, en is het goedkoop en minder afhankelijk van de operator. Deze beschrijving van de NIRS-methode omvat representatieve resultaten en standaardterminologie, naast de bespreking van meetoverwegingen, beperkingen en alternatieve methoden. Toekomstige toepassing van dit werk zal de standaardisatie van vasculair onderzoeksontwerp, gegevensverzamelingsprocedures en geharmoniseerde rapportage verbeteren, waardoor translationele onderzoeksresultaten op het gebied van vasculaire (dys)functie, ziekte en behandeling van de onderste ledematen worden verbeterd.

Inleiding

Hart- en vaatziekten (HVZ) zijn de belangrijkste oorzaak van wereldwijde sterfte1. Hoewel een hartinfarct en beroerte de meest voorkomende manifestaties van hart- en vaatziekten zijn, dragen vaatziekten van de onderste ledematen, zoals perifere arteriële ziekte (PAD) en diabetische voetziekte, aanzienlijk bij aan de persoonlijke, sociale en gezondheidslast van hart- en vaatziekten 2,3,4. Belangrijk is dat deze ziektetoestanden worden gekenmerkt door microvasculaire en macrovasculaire disfunctie5 die bijdragen aan symptomen (bijv. claudicatio intermitsus), functionele beperkingen, slechte mobiliteit, evenals sociaal isolement en verminderde kwaliteit van leven6. Historisch gezien zijn vasculaire beoordelingstechnieken van de bovenste ledematen gebruikt als een maat voor de systemische vasculaire functie en het bijbehorende cardiovasculaire risico; Deze methoden zijn echter mogelijk niet gevoelig voor lokale stoornissen in de vasculaire functie van de onderste ledematen 7,8. Hoewel er momenteel een reeks technieken wordt gebruikt om de vasculaire functie in de onderste ledematen te beoordelen, zoals flow-gemedieerde dilatatie (FMD) en contrastversterkte echografie, heeft elke methode nadelen en beperkingen, zoals de kosten van apparatuur, de vaardigheid van de operator of de noodzaak van invasieve veneuze toegang. Om deze redenen is er behoefte aan gestandaardiseerde en effectieve technieken om de vasculaire (dys)functie van de onderste ledematen te evalueren die gemakkelijker kunnen worden geïmplementeerd in onderzoek en klinische omgevingen.

Continuous wave nabij-infraroodspectroscopie (CW-NIRS) is een niet-invasieve, goedkope en draagbare methode die de relatieve veranderingen in hemoglobine-oxygenatie in vivo kwantificeert. Aangezien de NIRS-zuurstofrijke en zuurstofarme hemoglobinesignalen worden afgeleid van de kleine (<1 mm in diameter) bloedvaten, kunnen het lokale skeletspiermetabolisme en de microvasculaire functie worden geëvalueerd9. In het bijzonder biedt de weefselverzadigingsindex (TSI) [TSI = zuurstofrijk hemoglobine/ (zuurstofrijk hemoglobine + zuurstofarm hemoglobine) x 100] een kwantitatieve maat voor weefseloxygenatie9. Wanneer gemeten voor, tijdens en na occlusie en reactieve hyperemie, duiden de veranderingen in TSI op vasculaire responsiviteit van het 'eindorgaan', ten opzichte van de pre-occlusie-baseline. Belangrijk is dat deze methode gevoelig is voor veranderingen in de microvasculaire responsiviteit en perfusie van spieren die verband houden met veroudering10, ziekteprogressie11 en klinische interventies (bijv. revascularisatiechirurgie12,13 of inspanningsrevalidatie 14,15,16,17) bij personen met of met een risico op microvasculaire disfunctie.

De beschikbaarheid van NIRS-systemen heeft geleid tot een snelle toename van het aantal onderzoeken dat microvasculaire functie rapporteert18. Verschillen in testprotocollen voor reactieve hyperemie, het weglaten van gedetailleerde, herhaalbare NIRS-methoden en een gebrek aan uniformiteit in de beschrijving, presentatie en analyse van NIRS-responsparameters maken vergelijkingen tussen individuele onderzoeken echter een uitdaging. Dit beperkt het verzamelen van gegevens voor meta-analyse en het formuleren van aanbevelingen voor klinische beoordeling 9,15.

Daarom beschrijven we in dit artikel de gestandaardiseerde NIRS- en vasculaire occlusietestprotocollen van ons laboratorium voor de beoordeling van reactieve hyperemie van de onderste ledematen. Door deze methoden te verspreiden, willen we bijdragen aan een betere standaardisatie en herhaalbaarheid van gegevensverzamelingsprocedures en geharmoniseerde rapportage.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

Alle hier beschreven methoden zijn goedgekeurd door de ethische commissie voor menselijk onderzoek van de University of the Sunshine Coast. Bovendien gaven alle deelnemers hun schriftelijke geïnformeerde toestemming om deel te nemen aan de metingen die in dit protocol worden beschreven. Houd er rekening mee dat vasculaire occlusietesten in de onderste ledematen gecontra-indiceerd zijn bij personen die eerder een revascularisatieprocedure hebben ondergaan met een vasculair transplantaat of stenting van de dijbeen- of knieslagaders. Na het voorbereiden van de uitrusting krijgt de deelnemer de instructie om 10 minuten in rugligging te rusten. Op dit punt begint het verzamelen van NIRS-gegevens, met een initiële periode van 2 minuten, waardoor stabiliteit van NIRS-signalen kan worden bereikt. Basislijngegevens worden vervolgens gedurende 1 minuut verzameld, waarna een manchet aan de dij onmiddellijk wordt opgeblazen om arteriële occlusie te bereiken. De occlusie wordt gedurende 5 minuten gehandhaafd voordat de manchet snel leegloopt. Het verzamelen van gegevens gaat door gedurende de periode van reactieve hyperemie totdat de signalen zijn hersteld tot de uitgangswaarde. Figuur 1 geeft een overzicht van het protocol voor reactieve hyperemie en de gedetailleerde stappen worden hieronder weergegeven. De apparatuur die voor het onderzoek is gebruikt, staat vermeld in de materiaaltabel.

figure-protocol-1
Figuur 1: Schematisch overzicht van het meetprotocol en de timing van NIRS-reactieve hyperemie. NIRS: nabij-infrarood spectroscopie. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

1. Voorbereiding van de apparatuur

OPMERKING: Verschillende NIRS-, manchetopblaas-/occlusie- en gegevensverzamelingssystemen kunnen worden gebruikt om de representatieve resultaten te verkrijgen die hieronder worden beschreven. Het is belangrijk dat onderzoekers hun eigen specifieke gebruikershandleidingen raadplegen en op de hoogte zijn van unieke software, kalibratie, omgevingslicht en deelnemer-/cohortspecifieke overwegingen.

  1. Zorg ervoor dat alle metingen worden uitgevoerd in een stille, temperatuurgecontroleerde ruimte (21-23 °C).
  2. Controleer of alle apparatuur en materialen (zie Tabel met materialen) beschikbaar zijn.
  3. Zorg ervoor dat het CW-NIRS-apparaat en de computer waarnaar het apparaat verzendt, volledig zijn opgeladen en ingeschakeld.
  4. Controleer of het NIRS-apparaat is gekoppeld aan de computer die de NIRS-gegevens via Bluetooth weergeeft en of de meetparameters van de NIRS-eenheid zijn gedefinieerd op basis van de experimentele locatie en het onderzoeksontwerp (een voorbeeld: definieer de differentiële weglengtefactor (DPF) van het nabij-infrarood licht).
    OPMERKING: De meeste stappen en systeeminstellingen van het NIRS-protocol zijn gebaseerd op een combinatie van aanbevelingen van de fabrikant, de ervaring van onderzoekers en de mening van experts/consensus. Houd er rekening mee dat de waarden die tijdens de meting worden gegenereerd, afhankelijk zijn van het specifieke apparaat en de gebruikte sondes, evenals de instellingen die in de apparaatsoftware zijn gekozen. Er is ook potentieel voor een hoge mate van interindividuele variabiliteit in de verzamelde signalen. Om een betere vergelijking tussen onderzoeken mogelijk te maken, is het bovendien belangrijk om NIRS-instrumentatiegegevens te rapporteren (bijv. inclusief sondeontwerp, bron-detectorscheidingsafstanden en gebruikte golflengten), systeeminstellingen, sondepositie/oriëntatie in relatie tot spiergeometrie en de analyseparameters/gegevensbehandeling bij het publiceren van de resultaten van deze metingen.
  5. Voer de gegevens van de deelnemer in volgens de gegevens van de NIRS-apparaatsoftware.
  6. Sluit de snelle manchetopblaasmachine aan op de lucht- en stroombronnen.

2. Voorbereiding van de deelnemer

  1. Zorg ervoor dat de deelnemer de deelnemersverklaring en het toestemmingsformulier heeft gelezen en voor aanvang toestemming heeft gegeven om deel te nemen aan de meting.
  2. Leg de deelnemer uit wat hij kan verwachten tijdens de meting terwijl hij zijn schoenen en sokken uittrekt en stilstaat voor relevante antropometrische metingen.
  3. Voer een huidplooimeting (in drievoud) uit over de geplande NIRS-meetplaats (bijv. op het mediale aspect op het punt van de maximale kuitomtrek).
    OPMERKING: Hiermee kan de diepte van huid en vetweefsel (routinematig aangeduid als vetweefseldikte - ATT) worden bevestigd in relatie tot de penetratiediepte van het NIRS-signaal. Als alternatief kan echografie worden gebruikt om de dikte van het vetweefsel te bepalen. Houd er altijd rekening mee dat de diepte van het NIRS-signaal/meting ongeveer de helft is van de afstand tussen de ontvanger en de zender9.
  4. Om de signaalkwaliteit te maximaliseren, controleert u de geplande locatie van de NIRS-sonde van de zender/ontvanger op haar dat licht kan absorberen en verwijdert u haar door te scheren indien nodig.
    OPMERKING: Als de huid is aangetast, bijvoorbeeld door cellulitis, of als er oedeem aanwezig is, overweeg dan de geschiktheid van de meting, aangezien deze problemen betrekking hebben op mogelijk verminderde signaalkwaliteit, signaalpenetratiediepte/weefsel waarvan de meting wordt uitgevoerd, evenals de steriliteit van de wond van de deelnemer.
  5. Meet en/of markeer de positie van de geplande plaatsing van de NIRS-sonde ten opzichte van relevante anatomische oriëntatiepunten (bijv. superieur oppervlak van de mediale condylus) om een nauwkeurige plaatsing van de NIRS-sonde tussen en binnen de deelnemers mogelijk te maken (afhankelijk van het onderzoeksontwerp en het ontwerp/de vorm van de sonde), aangezien oxygenatiereacties een grote heterogeniteit kunnen vertonen tussen verschillende spieren of zelfs binnen regio's van dezelfde spier.
  6. Vraag de deelnemer om in rugligging op een onderzoekssokkel of bed te liggen. De deelnemer rust dan 10 minuten.
  7. Plaats een manchet rond de dij, proximaal van de knie, en zorg ervoor dat de buizen niet in contact komen met de kuit of het NIRS-apparaat (Figuur 2).
  8. Til het been (~10 cm) op met de voet en enkel op een schuimrubberen steun, zodat het onderbeen stabiel en toegankelijk blijft voor metingen (Figuur 3).
    OPMERKING: Als de test meerdere keren in beide benen moet worden uitgevoerd, wordt de testvolgorde gerandomiseerd (vóór de eerste test) en wordt de testvolgorde gehandhaafd voor latere beoordelingen voor elke deelnemer.
  9. Schakel de snelle manchetinflatormodule in.
    NOTITIE: Zorg ervoor dat de modus- en drukinstellingen van de snelle manchetinflator in overeenstemming zijn met de instructies van de fabrikant en de specificaties van het vasculaire occlusieprotocol.
  10. Zet de luchtbron van de manchet aan, controleer of er lucht door de slang kan stromen en sluit de slang aan op de dijbeenmanchet.
  11. Zorg ervoor dat de slang van de manchetpomp nog steeds niet in contact is met de kuit.
  12. Bevestig de NIRS-sonde van de zender/ontvanger stevig op de huid die over de meetplaats(en) ligt (routinematig het mediale aspect van de gastrocnemius; andere plaatsen zoals het dorsum van de voet en tibialis anterior worden echter ook gebruikt, afhankelijk van het onderzoek en de specifieke kenmerken van de deelnemer).
    OPMERKING: Sommige NIRS-systemen bieden de mogelijkheid om meerdere locatiemetingen tegelijk uit te voeren.
  13. Bedek de sonde met zwarte kinesiologietape of iets dergelijks en zorg ervoor dat de randen worden afgedicht om te voorkomen dat omgevingslicht de kwaliteit/waarden van het NIRS-signaal beïnvloedt (Figuur 3).
    OPMERKING: Zorg er bij het bevestigen van de sonde en de zelfklevende bekleding voor dat de beweging van de sonde wordt geëlimineerd, maar vermijd het samendrukken van huid/vetweefsel/spier.

figure-protocol-2
Figuur 2: Voorbeeld van de occlusieve plaatsing van de manchet op de dij. (A) Van bovenaf. (B) Vanaf de zijkant. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

figure-protocol-3
Figuur 3: Voorbeeld van de positie van de nabij-infraroodspectroscopiesonde. (A) Sonde bevestigd aan de geschoren huid bij de mediale gastrocnemius. (B) Plaatsing van de sonde terwijl de enkel in schuimrubberen ondersteuning zit om toegang te verlenen en stabiliteit te garanderen. (C) Afscherming van omgevingslicht op zijn plaats. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

3. Verzameling van basisgegevens

  1. Vraag de deelnemer om ontspannen te blijven, niet te praten en zijn been(en) stil te houden voor de duur van de gegevensverzameling.
  2. Start de opname van het NIRS-apparaat via de computerinterface.
    OPMERKING: Als offline gegevensverzameling is ingeschakeld en de voorkeur heeft, start u het NIRS-apparaat rechtstreeks.
  3. Houd er rekening mee dat er ten minste 2 minuten aan gegevens worden verzameld voordat u met de meting begint. Dit zorgt ervoor dat steady-state-signalen worden bereikt voordat de gegevens worden verzameld.
  4. Bewaak het computerscherm om de integriteit van het gegevenssignaal en fysiologisch plausibele waarden te garanderen. Data Acquisition (DAQ)-waarden geven bijvoorbeeld informatie over de signaalkwaliteit en de hoeveelheid omgevingslicht die door het NIRS-apparaat wordt gedetecteerd. Ze moeten gedurende de hele meting binnen een acceptabel bereik worden gehouden.
  5. Als er na 2 minuten geen fluctuaties in het NIRS-signaal worden waargenomen (bijv. als gevolg van bewegingsartefacten), stelt u de NIRS-gegevensbasislijn in door op de overeenkomstige knop op de computer/het apparaat/de synchronisatie-eenheid te drukken. Deze basislijn weerspiegelt het vergelijkende startpunt van de meting. De veranderingen in zuurstofrijk en zuurstofarm hemoglobine zullen worden geïnterpreteerd ten opzichte van deze basislijn.
    OPMERKING: Voeg tijdens het verzamelen van gegevens softwarematige gebeurtenismarkeringen in van specifieke mijlpalen, namelijk het begin en einde van de basislijn, het begin en einde van de manchetocclusie enz., om te helpen bij de gegevensanalyse.
  6. Verzamel ten minste 1 minuut basislijngegevens en zorg er opnieuw voor dat er gedurende deze tijd geen fluctuaties of bewegingsartefacten optreden.
    OPMERKING: Fluctuaties in basislijngegevens zullen van invloed zijn op de interpretatie van sommige mogelijke variabelen, zoals hyperemische reserve (zie de sectie representatieve resultaten).

4. Vasculaire occlusie

  1. Stel de manchetdruk in op 200 mmHg op de snelle manchetpomp voordat u overschakelt naar de manchetmodus (of de relevante instelling op alternatieve systemen).
    OPMERKING: Hoewel sommige auteurs het opblazen tot 250 mmHg op de dij 9,19 aanbevelen, is onze ervaring dat dit door sommige deelnemers niet goed wordt verdragen, wat leidt tot stopzetting van de meting. Opblazen tot 200 mmHg is in de meeste deelnemersgroepen voldoende om de arteriële instroom in rust af te sluiten, terwijl het draaglijk is en niet leidt tot blauwe plekken op de huid. Om ervoor te zorgen dat effectieve occlusie wordt bereikt bij 200 mmHg, gebruikt onze groep routinematig rekstrookplethysmografie gelijktijdig met NIRS om de afwezigheid van stroomafwaartse bloedstroom te bevestigen tijdens de periode van het opblazen van de manchet.
  2. Adviseer de deelnemer over wat hij kan verwachten (ongemak, tintelingen, enz.) tijdens het opblazen van de manchet tot 200 mmHg gedurende een periode van 5 minuten, gevolgd door een totale leegloop van de manchet. Herinner de deelnemer er nogmaals aan om ontspannen te blijven, niet te praten en zijn been(en) onbeweeglijk te houden voor de duur van de gegevensverzameling.
    OPMERKING: Het is onze ervaring dat de eerste 30-60 s van de occlusieperiode het minst comfortabel zijn voor de deelnemers. Wanneer deelnemers hun benen laten ontspannen, hebben ze de neiging om de occlusie draaglijker te vinden.
  3. Wanneer u klaar bent om het opblazen van de manchet te starten, markeert u het einde van de basislijnperiode in de NIRS-software.
  4. Blaas de dijbeenmanchet op tot een suprasystolische druk van 200 mmHg, of als alternatief tot 220 mmHg in zeldzame gevallen waarin 200 mmHg niet effectief is gebleken.
  5. Bewaak de computer of het scherm om de gegevensintegriteit tijdens de occlusieperiode te waarborgen.
  6. Naarmate het einde van de 5 minuten manchetocclusie nadert, bereidt u de deelnemer voor door hem eraan te herinneren zijn been zo stil mogelijk te houden en ongeveer 3 minuten na het leeglopen van de manchet niet te praten (terwijl de gegevens van de vasculaire reacties op reactieve hyperemie worden verzameld).
    OPMERKING: Deze herinnering aan de deelnemer om stil te blijven staan is belangrijk, omdat deelnemers in de verleiding kunnen komen om het ledemaat te bewegen om ongemak te verlichten/verlichten naarmate de bloedsomloop wordt hersteld.

5. Reactieve hyperemie

  1. Nadat 5 minuten occlusie is verstreken, laat u de dijbeenmanchet snel volledig leeglopen (tot 0 mmHg). Markeer tegelijkertijd het einde van de occlusieve periode in de NIRS-software. De reactieve hyperemierespons, als gevolg van de hervatting van de bloedstroom en gerelateerde factoren, zal zichtbaar zijn op het scherm van de NIRS-software (Figuur 4).
  2. Na minimaal 3 minuten na de occlusie, of als alternatief, nadat de NIRS-gegevens zijn teruggekeerd naar de basislijn, markeert u het einde van de herstelperiode in de NIRS-software en stopt u de meting.
    OPMERKING: De duur van het herstel hangt gedeeltelijk af van het onderzoek of de klinische vraag die wordt onderzocht en dus van de specifieke NIRS-parameters die voor analyse zijn gekozen, evenals de mogelijkheid van gelijktijdige maatregelen (zoals MKZ) die een langere herstelduur kunnen vereisen.
  3. Initieer het opslaan en exporteren van NIRS-resultaten voor gegevensverwerking en -analyse.

6. Follow-up procedures

  1. Verwijder het NIRS-apparaat (de NIRS-apparaten) en de manchet van de deelnemer.
  2. Reinig indien nodig het NIRS-apparaat (en de occlusiemanchet) volgens de instructies van de fabrikant en de relevante hygiënenormen.
  3. Inspecteer het NIRS-apparaat om de integriteit van de zender/ontvanger en de prestaties van de batterij voor toekomstige metingen te garanderen.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

Nabij-infrarood spectroscopie
Apparaten voor continue golf nabij-infraroodspectroscopie meten relatieve veranderingen in zuurstofrijk (O2Hb) en zuurstofarm (HHb) hemoglobine, die de lokaleO2-afgifte en het gebruik via lichtgevende bronnen en fotodetectoren weerspiegelen, en specifieke afstanden uit elkaar zetten. Golflengten van licht tussen ~700 nm en 850 nm worden uitgezonden, wat overeenkomt met het piekabsorptievermogen van O2Hb en HHb. Zodra nabij-infraro...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

Dit artikel schetst gestandaardiseerde procedures voor de beoordeling van reactieve hyperemie van de onderste ledematen met behulp van de CW-NIRS TSI om de microvasculaire functie te evalueren. Dit protocol is verfijnd door onderzoek van de duur van de manchetocclusie op basis van de responsomvang, de betrouwbaarheid van de NIRS-test-hertest tijdens reactieve hyperemie, evenals de mate van overeenstemming tussen NIRS en andere methoden van microvasculaire evaluatie, zoals contrastversterkte echografie23...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

De auteurs hebben geen openbaarmakingen of tegenstrijdige belangen.

Dankbetuigingen

De auteurs willen graag Dr. A. Meneses erkennen, wiens eerdere werk heeft bijgedragen aan de verfijning van het hier beschreven protocol. Daarnaast willen de auteurs alle onderzoeksdeelnemers bedanken die hun tijd hebben gedoneerd om protocollen zoals deze te ontwikkelen om het klinische en wetenschappelijke begrip te bevorderen.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
Cuff Inflator Air SourceHokanson AG101 AIR SOURCE
Elastic Cohesive BandageMaxoWrap18228-BLVoor het blokkeren van omgevingslicht
OxySoftArtinis3.3.341 x64
PortaLite (NIRS)Artinis0302-00019-00
PortaSync MKII (Remote)Artinis0702-00860-00Voor het markeren van mijlpalen tijdens meting
Rapid Cuff InflatorHokanson E20 RAPID CUFF INFLATOR
Thigh CuffHokanson CC17
Transpore Surgical Tape3M1527-1Voor het bevestigen van de sonde op de huid

Referenties

  1. Hasani, W. S. R., et al. The global estimate of premature cardiovascular mortality: A systematic review and meta-analysis of age-standardized mortality rate. BMC Public Health. 23 (1), 1561(2023).
  2. Horvath, L., et al. Epidemiology of peripheral artery disease: Narrative review. Life (Basel). 12 (7), 1041(2022).
  3. Jodheea-Jutton, A., Hindocha, S., Bhaw-Luximon, A. Health economics of diabetic foot ulcer and recent trends to accelerate treatment). Foot (Edinb). 52, 101909(2022).
  4. Rodrigues, B. T., Vangaveti, V. N., Urkude, R., Biros, E., Malabu, U. H. Prevalence and risk factors of lower limb amputations in patients with diabetic foot ulcers: A systematic review and meta-analysis. Diabetes Metab Syndr-Clinin Res Rev. 16 (2), 102397(2022).
  5. Jung, F., et al. Microcirculation in hypertensive patients. Biorheology. 50 (5-6), 241-255 (2013).
  6. Bethel, M., Annex, B. H. Peripheral arterial disease: A small and large vessel problem. AmHeart J Plus: Cardio Res Prac. 28, 133291(2023).
  7. Thijssen, D. H. J., et al. Expert consensus and evidence-based recommendations for the assessment of flow-mediated dilation in humans. Eur Heart J. 40 (30), 2534-2547 (2019).
  8. Sanada, H., et al. Vascular function in patients with lower extremity peripheral arterial disease: A comparison of functions in upper and lower extremities. Atherosclerosis. 178 (1), 179-185 (2005).
  9. Barstow, T. J. Understanding near-infrared spectroscopy and its application to skeletal muscle research. J App Phys. 126 (5), 1360-1376 (2019).
  10. Rogers, E. M., Banks, N. F., Jenkins, N. D. M. Metabolic and microvascular function assessed using near-infrared spectroscopy with vascular occlusion in women: Age differences and reliability. Exp Physiol. 108 (1), 123-134 (2023).
  11. Manfredini, F., et al. A toe flexion nirs assisted test for rapid assessment of foot perfusion in peripheral arterial disease: Feasibility, validity, and diagnostic accuracy. Eur J Vasc Endovasc Surg. 54 (2), 187-194 (2017).
  12. Boezeman, R. P., Moll, F. L., Unlu, C., De Vries, J. P. Systematic review of clinical applications of monitoring muscle tissue oxygenation with near-infrared spectroscopy in vascular disease. Microvasc Res. 104, 11-22 (2016).
  13. Baltrunas, T., et al. Measurement of revascularization effect using near-infrared spectroscopy in below the knee arteries. Rev Cardiovasc Med. 23 (9), 299(2022).
  14. Tuesta, M., Yanez-Sepulveda, R., Verdugo-Marchese, H., Mateluna, C., Alvear-Ordenes, I. Near-infrared spectroscopy used to assess physiological muscle adaptations in exercise clinical trials: A systematic review. Biology (Basel). 11 (7), 1073(2022).
  15. Cornelis, N., et al. The use of near-infrared spectroscopy to evaluate the effect of exercise on peripheral muscle oxygenation in patients with lower extremity artery disease: A systematic review. Eur J Vasc Endovasc Surg. 61 (5), 837-847 (2021).
  16. Whyte, E., Thomas, S., Marzolini, S. Muscle oxygenation of the paretic and nonparetic legs during and after exercise in chronic stroke: Implications for mobility. PM R. 15 (10), 1239-1248 (2023).
  17. Soares, R. N., George, M. A., Proctor, D. N., Murias, J. M. Differences in vascular function between trained and untrained limbs assessed by near-infrared spectroscopy. Eur J Appl Physiol. 118 (10), 2241-2248 (2018).
  18. Joseph, S., et al. Near infrared spectroscopy in peripheral artery disease and the diabetic foot: A systematic review. Diabetes Metab Res Rev. 38 (7), 3571(2022).
  19. Willingham, T. B., Southern, W. M., Mccully, K. K. Measuring reactive hyperemia in the lower limb using near-infrared spectroscopy. J Biomed Opt. 21 (9), 091302(2016).
  20. Jones, S., Chiesa, S. T., Chaturvedi, N., Hughes, A. D. Recent developments in near-infrared spectroscopy (nirs) for the assessment of local skeletal muscle microvascular function and capacity to utilise oxygen. Artery Res. 16, 25-33 (2016).
  21. Soares, R. N., et al. Effects of a rehabilitation program on microvascular function of CHD patients assessed by near-infrared spectroscopy. Physiol Rep. 7 (11), e14145(2019).
  22. Baltrunas, T., et al. The use of near-infrared spectroscopy in the diagnosis of peripheral artery disease: A systematic review. Vascular. 30 (4), 715-727 (2022).
  23. Young, G. M., et al. Influence of cuff-occlusion duration on contrast-enhanced ultrasound assessments of calf muscle microvascular blood flow responsiveness in older adults. Exp Physiol. 105 (12), 2238-2245 (2020).
  24. Young, G. M., et al. The association between contrast-enhanced ultrasound and near-infrared spectroscopy-derived measures of calf muscle microvascular responsiveness in older adults. Heart Lung Circ. 30 (11), 1726-1733 (2021).
  25. Rosenberry, R., Nelson, M. D. Reactive hyperemia: A review of methods, mechanisms, and considerations. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 318 (3), R605-R618 (2020).
  26. Iannetta, D., et al. Reliability of microvascular responsiveness measures derived from near-infrared spectroscopy across a variety of ischemic periods in young and older individuals. Microvasc Res. 122, 117-124 (2019).
  27. Celermajer, D. S., et al. Non-invasive detection of endothelial dysfunction in children and adults at risk of atherosclerosis. Lancet. 340 (8828), 1111-1115 (1992).
  28. Thijssen, D. H. J., et al. Assessment of flow-mediated dilation in humans: A methodological and physiological guideline. Am J Physiol-Heart Circ Physiol. 300 (1), H2-H12 (2011).
  29. Inaba, Y., Chen, J. A., Bergmann, S. R. Prediction of future cardiovascular outcomes by flow-mediated vasodilatation of brachial artery: A meta-analysis. Int J Cardiovasc Imaging. 26 (6), 631-640 (2010).
  30. Soares, R. N., De Oliveira, G. V., Alvares, T. S., Murias, J. M. The effects of the analysis strategy on the correlation between the NIRS reperfusion measures and the FMD response. Microvasc Res. 127, 103922(2020).
  31. Tucker, W. J., et al. Studies into the determinants of skeletal muscle oxygen consumption: Novel insight from near-infrared diffuse correlation spectroscopy. J Physiol-London. 597 (11), 2887-2901 (2019).
  32. Tucker, W. J., et al. Near-infrared diffuse correlation spectroscopy tracks changes in oxygen delivery and utilization during exercise with and without isolated arterial compression. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 318 (1), R81-R88 (2020).
  33. Wassenaar, E. B., Van Den Brand, J. G. Reliability of near-infrared spectroscopy in people with dark skin pigmentation. J Clinic Monit Comput. 19 (3), 195-199 (2005).
  34. Soares, R. N., Murias, J. M. Near-infrared spectroscopy assessment of microvasculature detects difference in lower limb vascular responsiveness in obese compared to lean individuals. Microvasc Res. 118, 31-35 (2018).
  35. Boezeman, R. P., et al. Monitoring of foot oxygenation with near-infrared spectroscopy in patients with critical limb ischemia undergoing percutaneous transluminal angioplasty: A pilot study. Eur J Vasc Endovasc Surg. 52 (5), 650-656 (2016).
  36. Lin, B. S., et al. Using wireless near-infrared spectroscopy to predict wound prognosis in diabetic foot ulcers. Adv Skin Wound Care. 33 (1), 1-12 (2020).
  37. Weingarten, M. S., et al. Diffuse near-infrared spectroscopy prediction of healing in diabetic foot ulcers: A human study and cost analysis. Wound Repair. 20 (2), A44-A44 (2012).
  38. Murrow, J. R., et al. Near-infrared spectroscopy-guided exercise training for claudication in peripheral arterial disease. Eur J Prev Cardiol. 26 (5), 471-480 (2018).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Meer artikelen verkennen

microvasculaire dysfunctieperifeer arterieel levyziebloedstroomrestrictieischemische preconditioneringmicrovasculatuur van de skeletspierencuff-occlusie