Dit protocol presenteert een uitgebreide en efficiënte methode voor het analyseren van mandibulaire botreparatie. We beschrijven een reproduceerbare techniek voor niet-gestabiliseerde mandibulaire fractuur in een muismodel, waarmee het proces van endochondraal botherstel kan worden geanalyseerd met minimale weefselschade en botverlies.
Methodenartikel
Minder invasieve techniek voor niet-gestabiliseerde mandibulaire fractuur in muismodellen
In dit artikel
Samenvatting
Samenvatting
Niet-gestabiliseerde fracturen kunnen worden gemaakt op mandibulaire plaatsen bij muizen, waardoor het mogelijk wordt om botherstel te analyseren met behulp van een endochondrale ossificatiemodus. Om dit proces in vivo zo nauwkeurig mogelijk weer te geven, is het noodzakelijk om een gestandaardiseerd protocol te hebben om overmatig botverlies en schade aan zacht weefsel te voorkomen, met name op de mandibulaire plaats, een anatomische plaats die wordt gekenmerkt door minimale toegang. Voor zover wij weten, beschrijven we voor het eerst een minder invasief protocol van niet-gestabiliseerde mandibulaire fracturen bij muizen. Volwassen muizen worden verdoofd met isofluraan en krijgen een preoperatieve dosis buprenorfine via subcutane injectie. Er wordt een submandibulaire benadering uitgevoerd, waarbij een incisie in de huid wordt gemaakt langs de onderrand van de onderkaak. De kauwspier wordt verhoogd in een subperiostaal vlak langs de mandibulaire ramus met een periostale lift. Een verticale en volledige fractuur van de ramus wordt uitgevoerd van de basilaire grens tot de coronoïde inkeping (tussen condylaire en coronoïde processen), met behulp van een piëzo-elektrisch botchirurgieapparaat onder zoutoplossing serumirrigatie aan de basilaire rand en een schaar om de fractuur van de mandibulaire ramus te voltooien. De huidbenadering wordt afgesloten door zijden hechtingen. Deze gedetailleerde procedure voor niet-gestabiliseerde mandibulaire fracturen biedt een efficiënte procedure die minimaal botverlies en schade aan zacht weefsel mogelijk maakt. Deze techniek zorgt voor succesvolle en consistente resultaten om het proces van endochondraal botherstel in muismodellen nauwkeurig weer te geven.
Inleiding
Botherstel impliceert zowel membraneuze als endochondrale verbenvormingsprocessen, afhankelijk van de fractuur of osteotomiestabilisatie. Botherstel na gestabiliseerde botosteotomieën of fracturen is gebaseerd op membraneuze verbenvorming, terwijl niet-gestabiliseerde fracturen of slecht gestabiliseerde osteotomieën consolideren volgens een modus van endochondrale verbening1. Vliezig botherstel wordt gekenmerkt door botvorming door directe differentiatie van mesenchymale cellen in osteoblasten, terwijl endochondraal botherstel de vorming van een voorbijgaand kraakbeenachtig sjabloon inhoudt, dat differentieert in osteoblasten om de botcallus2 te vormen.
Botherstel is afhankelijk van meerdere weefsel- en cellulaire interacties; Het wordt ook beïnvloed door plaatsspecifieke factoren en door de kracht die wordt uitgeoefend op de eelt3. Mandibulaire bot is een mobiel bot dat kauwkrachten ondersteunt, meestal gevormd door corticaal bot. Het proces van mandibulaire botreparatie wordt beïnvloed door de plaats en de richting van de fractuur. Het is algemeen bekend dat spier- en periostletsels van invloed kunnen zijn op de botconsolidatie en op belangrijk botverlies op de plaats van de fractuur 4,5,6.
Het analyseren van endochondraal mandibulaire botherstel impliceert gestandaardiseerde en reproduceerbare protocollen voor waardevolle, niet-bevooroordeelde vergelijkingen. Wat de literatuur betreft, rapporteren slechts enkele auteurs protocollen voor niet-gestabiliseerde mandibulaire fracturen in muizenmodellen 3,7, en meestal met een anterieure richting op molair niveau8. Door deze techniek te ontwikkelen, streven we ernaar spier- en periostblessures te voorkomen en botverlies op de plaats van de fractuur te beperken om het proces van endochondraal botherstel zo goed mogelijk te analyseren zonder verstorende factoren. Bovendien was het doel van het ontwikkelen van een nieuwe techniek voor mandibulaire fracturen bij muizen om postoperatieve pijn en dierensterfte die vaak voorkomen bij dergelijke operaties bij kleine dieren te minimaliseren. Voor het eerst beschrijven we een minder invasief protocol voor niet-gestabiliseerde mandibulaire fracturen ter hoogte van de ramus bij muizen. Dit in vivo protocol vermijdt overmatige spier- en periostschade of botverlies op de plaats van de fractuur en helpt het niveau van postoperatieve pijn en het risico op overlijden van het dier te verminderen.
Protocol
Dit protocol volgt de richtlijnen voor dierenverzorging van Imagine Institute en is gevalideerd door ethische commissies en het Franse ministerie (APAFIS 26995).
1. Dieren
- Bepaal het aantal dieren per groep. Wij adviseren 12 dieren per groep. Bepaal het geslacht en de leeftijd van muizen. Dit protocol is aangepast voor C57BL/6J-muizen van 6 weken oud (mannelijk of vrouwelijk).
- Geef dieren, ten minste 1 week voor de ingreep, voedingssupplementengel ter acclimatisatie.
2. Chirurgische ingreep
- Bereid het benodigde materiaal voor. Autoclaaf de instrumenten: schaar, naaldschroevendraaier, tang, inzetstuk en handstuk van het piëzo-elektrische botchirurgieapparaat en lift. Bereid steriele handschoenen, zijden hechtingen (4/0), scheerapparaat, katoenen gaas, 10% povidonjodiumoplossing, verwarmingstafel, isofluraan en het snuitmasker voor op inhalatie van isofluraan.
- Bereid buprenorfine in een dosis van 0,1 mg/kg, verdund in steriel injecteerbaar fysiologisch serum. Dien buprenorfine toe via subcutane injectie met een naald van 25 G 30 minuten voor de operatie.
- Bereid de verwarmingsplaat voor (37 °C), plaats er een schuimrubberen steun op en bevestig het snuitmasker met kleine naalden of plakband.
- Plaats de muis in de isofluraantank voor inductie, met isofluraandiffusie (4%). Test de anesthesiediepte door een teenknijp uit te voeren. Bij voldoende inductie zal een gebrek aan pedaalreflex worden waargenomen.
- Plaats de verdoofde muis op zijn rug op de verwarmingsplaat die is afgedekt door een steriel veld dat gedurende de hele procedure op 37 °C wordt gehouden. Plaats het masker op de snuit voor continue inhalatie van isofluraan (onderhoud op 2,5%). Bevestig de uiteinden van de muis met plakband.
- Breng oogsmeermiddel bilateraal aan om droge ogen veroorzaakt door algemene anesthesie te voorkomen. Scheer het submandibulaire haar, draag steriele handschoenen en desinfecteer de huid met enkele vegen 10% povidonjodiumoplossing en alcohol.
- Voer de submandibulaire cutane benadering uit zoals hieronder beschreven.
- Voer met een microschaar een huidincisie uit vanaf de mandibulaire hoek naar de 1/3 achterste - 2/3 anterieure overgang van de horizontale tak van de onderkaak.
- Ontleed de onderhuidse weefsels om de kauwspier bloot te leggen.
- Steek de kauwspier die vastzit met behulp van een periostale lift uit de onderrand van de onderkaak.
- Til de kauwspier op in een subperiostaal vlak langs de mandibulaire ramus met de lift.
- Maak een kleine osteotomie (3 mm lengte) aan de ondergrens van de onderkaak met behulp van het piëzo-elektrische botchirurgieapparaat onder serumirrigatie met zoutoplossing (maximaal 10 ml/min) aan de ondergrens van de onderkaak, anterieur ten opzichte van de onderkaakhoek, in het achterste deel van de holte (Figuur 1, Figuur 2).
- Lokaliseer de achterrand van de onderkaak en de coronoïde inkeping (met de microschaar of de pincet) en voltooi de fractuur met behulp van een kleine rechte schaar die langs de mandibulaire ramus wordt ingebracht om extra kauwspieropening en letsel te voorkomen. Om de juiste oriëntatie van de breuk mogelijk te maken, plaatst u de schaar loodrecht op de onderrand van de onderkaak.
- Controleer of de fractuur volledig is: totale mobiliteit tussen de twee botsegmenten moet worden waargenomen tijdens zachte mobilisatie van de 2 segmenten met een pincet.
- Sluit de huidbenadering met zijden hechtingen (4/0) met gescheiden hechtingen. Er is geen hechting nodig in het periosteum.
OPMERKING: Als alternatief kan de huidbenadering worden gehecht met andere niet-adsorbeerbare hechtingen (bijv. Polypropyleen hechtingen). - Voer cefale laterale röntgenfoto's uit om de richting van de breuk te bevestigen (Figuur 3).
- Plaats de muis opnieuw in de isofluraantank voor een korte herinductie voordat u de röntgenfoto's maakt. Plaats vervolgens de muis in extensie, aan de laterale zijde, met het hoofd iets in hyperextensie voor röntgenanalyse.
- In het geval van een fractuur die te naar voren is geplaatst ter hoogte van een onderkaakkies of wanneer de fractuur de onderkaakhoek heeft losgemaakt (figuur 4), observeer dan een abnormale toename van het volume van de botcallus. Sluit in deze gevallen de dieren uit van het onderzoek om vertekening in de analyse te voorkomen.
- Controleer de muizen totdat ze weer bij bewustzijn zijn voordat u ze terug in de kooi plaatst.
3. Postoperatieve zorg
- Bereid een muizenkooi voor zonder brokjes en harde verrijking om kauwkrachten te voorkomen.
- Isoleer de geopereerde muis gedurende de 1eweek in een enkele kooi totdat de huid volledig is genezen. 1 week na de operatie opereerde de groep vrouwelijke muizen samen in dezelfde kooi.
- Dien buprenorfine (0,1 mg/kg) toe via subcutane injecties 4 uur, 24 uur, 48 uur en 72 uur na de procedure.
- Voer muizen met zachte dieetgel tijdens alle postoperatieve perioden van dag 0 tot het einde van de consolidatieperiode (d.w.z. 28 dagen) om pijn en secundaire verplaatsing van de fractuur te voorkomen.
- Weeg de muizen dagelijks van dag 0 tot dag 4 na de fractuur, 's ochtends, vóór de injectie met buprenorfine en vervolgens 3x per week tot het offeren van het dier (14 dagen na de fractuur).
- Evalueer het postoperatieve dierenwelzijn om de postoperatieve dierenverzorging te optimaliseren. Gebruik de scoreschaal in tabel 1 om de postoperatieve toestand van het dier te evalueren en de follow-up aan te passen. Wanneer de score > 1 is, wordt een injectie met buprenorfine gegeven en wanneer de score > 3 is en/of bij gewichtsverlies > 20% van het preoperatieve gewicht ondanks voedselverrijking, moet euthanasie worden besproken (tabel 1).
Resultaten
Wat betreft in vivo chirurgische ingrepen, om deze procedure van niet-gestabiliseerde mandibulaire fractuur in een muismodel optimaal uit te voeren, zijn specifiek leren en training vereist.
Deze techniek voor niet-gestabiliseerde mandibulaire fractuur maakt de studie van het endochondrale botherstelproces mogelijk. Na euthanasie werden mandibulaire monsters verzameld in 4% paraformaldehyde (24 uur). Na volledige ontkalking met EDTA pH 8 werden coupes ingebed in paraffine. Sagittale seriële secties werden uitgevoerd, gedeparaffineerd in deparaffinisatieoplossing en vervolgens opnieuw gehydrateerd voorafgaand aan de kleuring van Sirus Red/Alcian Blue, met behulp van standaardprotocollen. De histologische beelden bevestigden de vorming van een zachte callus met een kraakbeenachtige sjabloon (Figuur 5). De botgenezing is 4 weken na de breuk voltooid, zoals blijkt uit micro-CT-analyses. We raden aan om het botherstelproces op verschillende belangrijke punten te bestuderen vanaf het begin van callusvorming (bijv. elke 7 dagen (dag 7, 14, 21) of meer, afhankelijk van het doel van het onderzoek) tot het einde van de botgenezing (d.w.z. dag 28), met histomorfologische en micro-CT morfometrische analyses.
Op basis van een retrospectieve analyse van deze procedure, uitgevoerd op 58 wildtype muizen (C57BL/6J achtergrond), is het slagingspercentage van het protocol 86,3% en een uitsluitingspercentage van 13,7%. De uitsluiting was het gevolg van vroegtijdige spontane dood in de vroege postoperatieve periode (3%), van de beslissing tot euthanasie voor muizen met een kritische score (1%; score > 3 en/of in geval van gewichtsverlies > 20%), of in geval van abnormale positie van de osteotomie, met abnormale splitsing van de mandibulaire hoek (5%), of wanneer de fractuur zich op molair niveau bevond (n=1/58). In het laatste geval werd infectie waargenomen, met de abnormale splitsing van de fractuur ter hoogte van de kies (n= 1/58; Tabel 2).
Figuur 1: Afbeelding van desubmandibulaire cutane benadering van de mandibulaire opgaande tak. De onderrand van de onderkaak wordt gebroken met een piëzotoominzetstuk, waardoor minimaal botverlies mogelijk is (pijl). Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.
Figuur 2: Kleuring van de onderkaak van de muis. Zijaanzicht van een 6 weken oude wildtype muisonderkaak (gekleurd met alizarinerood / alcianusblauwe kleuring): 1. Condylus, 2. Coronoïde processus, 3. Coronoïde inkeping, 4. Hoekproces, 5. Posterieure rand van de ramus, 6. Basilaire (of inferieure) rand van de onderkaak. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.
Figuur 3: Röntgenfoto van de schedel van de muis. Laterale röntgenfoto's van de schedel van een 6 weken oude muis van het wilde type (sagittaal aanzicht) die het aspect van de onderkaak van een niet-gebroken muis tonen (links) en het aspect van de onderkaak van een gebroken muis en de richting van de niet-gestabiliseerde mandibulaire fractuur (pijlen), van de ondergrens tot de coronoïde inkeping, anterieur geplaatst ten opzichte van de condylus (rechts). Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.
Figuur 4. Röntgenfoto van de muizenschedel onder suboptimale omstandigheden. Laterale röntgenfoto's van de schedel van een wildtype muis van 6 weken oud (sagittaal aanzicht) met een abnormale fractuur van de mandibulaire hoek (pijlen). Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.
Figuur 5: Representatieve resultaten. Resultaten op dag 14 na de fractuur bij een wildtype muis (C57BL/6J). Representatieve 3D-coronale weergaven van een gereconstrueerde μCT-scan van de plaats van de mandibulaire fractuur, waarop de botcallus (witte pijlen) te zien is. Representatieve beelden van het calluskraakbeen (Sirus Red/Alcian Blue-kleuring) die de aanwezigheid van een endochondraal botherstelproces bevestigen. Afkortingen: B = Bot, C = Kraakbeen. Schaalbalk: 200 μm. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.
| 0 | 1 | 2 | |
| Dierlijk aspect | Normaal | Toilet reductie | Gegolfde haren, gebogen rug |
| Gedrag | Normaal | Hypomobiliteit | Hypomobiliteit, vermindering van de voedselinname, gewichtsverlies > 10 % |
| Klinische symptomen | Normaal | Litteken ontsteking | Geopend litteken, infectie |
Tabel 1. Postoperatieve welzijnsscoreschaal.
| n = 58 muizen | |
| Slagingspercentage | 86.3 % |
| Uitsluitingspercentage : | 13.7 % |
| Voortijdige spontane dood | 3% |
| Kritische score < 3 en/of gewichtsverlies > 20 % | 1% |
| Abnormale fractuursplitsing ten opzichte van de mandibulaire hoek | 5% |
| Abnormale fractuursplitsing, ter hoogte van de molaire | 1.7 % |
Tabel 2. Slagings- en uitsluitingspercentages van het protocol.
Discussie
De techniek maakt het mogelijk om niet-gestabiliseerde mandibulaire fracturen in een muismodel te realiseren binnen een minimale open benadering in een korte proceduretijd (ongeveer 10 minuten of minder). Deze kortetermijnprocedure beperkt het risico op morbiditeit en overlijden van dieren, vooral bij kleine dieren zoals muizen. Om vergelijkbare resultaten te verkrijgen bij de analyse van het endochondrale botherstelproces, moet bijzondere zorg worden besteed aan het uitvoeren van de mandibulaire fracturen in dezelfde richting zonder abnormale splitsing van de mandibulaire hoek, aangezien dit ongewenste effect het volume van de botcallus abnormaal kan vergroten en de consolidatieperiode kan vertragen. Dit protocol voor mandibulaire fracturen heeft geen invloed op de groei van de mandibulaire snijtanden na de operatie. Om de effectiviteit van dit protocol te verbeteren, adviseren we de onderzoeker om eerst te oefenen op geëuthanaseerde dieren van vergelijkbare leeftijd en onmiddellijk na het breken van de onderkaak te ontleden om de fractuurrichting indien nodig direct te visualiseren.
Mesenchymale voorlopercellen die van aangrenzende spieren naar de callus migreren, dragen bij aan botherstel6. Het is aangetoond dat periosteum en spierletsel invloed hebben op de botconsolidatie 5,6. Bovendien leiden uitgebreide spiersecties tot een verhoogd risico op bloedingen en kunnen ze leiden tot een postoperatieve infectie. Piëzochirurgie is grotendeels ontwikkeld op het gebied van craniofaciale botchirurgie; Er is gemeld dat het lagere percentages van letsel aan de weke delen en postoperatieve pijn heeft in vergelijking met conventionele osteotomieën 7,9. Om letsel aan de kauwspier en het periosteum tot een minimum te beperken, gebruikten we piëzochirurgie om de fractuur aan de ondergrens van de onderkaak te initiëren en voltooiden we de fractuur met een schaar op het bovenste niveau van de ramus om een uitgebreide kauwspiersectie te voorkomen. Dit houdt in dat de positie van de achterrand van de onderkaak en de coronoïde inkeping wordt gecontroleerd voordat het bovenste deel van de ramus met de schaar wordt gebroken. We ondervonden geen problemen om de fractuur te voltooien met behulp van een kleine rechte schaar nadat we deze hadden geïnitieerd met piëzochirurgie aan de onderkant van de onderkaak. We hebben deze procedure ervaren bij volwassen muizen met verschillende genetische achtergronden (C57BL/6J, CD1 (resultaten niet getoond)), met verschillende botdichtheden en mandibulaire groottes (prognathie, micrognathie). We raden echter aan om te controleren of de lengte van de schaar geschikt is om de bovenste ramus slechts één keer te breken om abnormale breuksplitsingen te voorkomen.
Het risico op bloedingen wordt bij deze procedure geminimaliseerd door deze minimale open benadering. In het geval van overmatig bloeden dat kan optreden tijdens spierverhoging, stopt een korte compressie van de operatieplaats met gaas het bloeden. Een potentieel risico op infectie op de operatieplaats kan optreden in het geval van een kiestandfractuur wanneer de mandibulaire fractuur te naar voren is geplaatst; dit nadelige effect kan worden gedetecteerd op postoperatieve laterale röntgenfoto's. In dit geval moet het dier worden uitgesloten van het onderzoek. Postoperatieve infectie van de operatieplaats kan ook het gevolg zijn van een hematoom; Dit kan worden voorkomen door gescheiden huidhechtingen uit te voeren, waardoor spontane evacuatie mogelijk is wanneer preoperatief abnormale bloedingen optreden. Algemene anesthesie met isofluraan versus intraperitoneale injectie vermijdt buitensporige sterftecijfers die verband houden met de nadelige traumatische effecten van intraperitoneale injecties. In onze ervaring hebben we geen enkele dood van dieren waargenomen die rechtstreeks verband houdt met algemene anesthesie met isofluraan.
Muizen kunnen een postoperatieve vermindering van de voedselinname vertonen. Bij onvoldoende voedselinname of onvoldoende gewichtstoename kan gezeefd brokjespoeder aan de gel worden toegevoegd. Om de postoperatieve voedselinname te verbeteren, raden we aan om ten minste 1 week voor de procedure voor accommodatie voedingssupplementgel met brokjes te geven. We raden aan om extra röntgenfoto's uit te voeren tijdens de follow-up (elke week, tijdens de follow-up) en op het moment van de opoffering om mogelijke fractuurverplaatsing te evalueren. Bij niet-pathologische aandoeningen is de botconsolidatie 4 weken na de fractuur voltooid.
Verschillende auteurs hebben verschillende protocollen beschreven voor niet-gestabiliseerde fracturen van de onderkaak bij muizen 3,10,11. De instrumenten die worden gebruikt om de osteotomie uit te voeren, kunnen verschillen, namelijk boren, chirurgische pincetten, enz. Het gebruik van boren kan echter leiden tot groter botverlies en verwondingen aan zacht weefsel. Voor zover wij weten, is deze procedure van niet-gestabiliseerde mandibulaire fracturen de eerste die piëzochirurgie en een schaar associeert om de osteotomie te voltooien. Deze techniek heeft het voordeel dat zachte weefsels behouden blijven en tegelijkertijd een nauwkeurige osteotomie mogelijk is met minimaal botverlies.
Zoals voor alle technieken geldt dat deze methode enkele beperkingen heeft. We gaven er de voorkeur aan om de fractuur uit te voeren met behulp van een schaar nadat we deze hadden geïnitieerd met een piëzo-elektrisch chirurgisch inzetstuk om langdurig letsel aan de kauwspiersectie en het periost te voorkomen dat een mogelijke consolidatievertraging en/of vorming van pseudartrose zou kunnen verergeren. Deze techniek houdt echter in dat de positie van de coronoïde inkeping wordt gecontroleerd zonder volledige visualisatie van de mandibulaire ramus om de fractuur in dezelfde richting uit te voeren. Er wordt dus een leercurve verwacht, afhankelijk van de chirurgische ervaring. Bovendien kan de richting van de mandibulaire fractuur op röntgenfoto's moeilijk te visualiseren zijn, afhankelijk van het röntgenapparaat. We gebruikten geen in vivo micro-CT om de fractuurrichting te bevestigen, omdat dit het herstel van de muis in gevaar zou kunnen brengen vanwege de langere duur van algemene anesthesie.
Het bestuderen van het endochondrale botherstelproces impliceert de realisatie van niet-gestabiliseerde fracturen, waardoor een beter begrip van het botherstelproces mogelijk wordt. Deze stap is nodig als we preklinische proeven in muismodellen met bothersteldefecten willen overwegen met als doel nieuwe klinische toepassingen te ontwikkelen voor de behandeling van defecte botreparatie en pseudartrose bij patiënten in de context van genetische ziekten of in het geval van posttraumatische of posttumorale gevolgen.
Openbaarmakingen
De auteurs verklaren geen belangenconflicten.
Dankbetuigingen
De studie wordt mede mogelijk gemaakt door de afdeling Filantropie van Mutuelles AXA via de Head and Heart Chair en de ANR BonyBrain. We zijn alle leden van het platform SFR Necker INSERM US24, LEAT Imagine, Parijs, Frankrijk, erkentelijk voor hun bijdrage aan de realisatie van de procedure.
Materialen
| Naam | Bedrijf | Catalogusnummer | Opmerkingen |
|---|---|---|---|
| Buprenorfine : Buprecare 0.3 mg/kg | Animalcare | ||
| Lift OBWEGESER breedte 6mm Lengte 17,5cm | Collin Medical | HA 5905 | |
| Pincet : Pad Plate MORIA 11 cm N°5 | MORIA | 9906 | |
| Verwarmingstafel Bioseblab 55 cm x 33 cm | Bioseblab | 707 | |
| NAALDHOUDER : Micro Halsey Naaldhouder - Metaal | LABODERM | 21.100 | |
| Neo Clear | Merck Millipore, Darmstadt, Duitsland | 109843 | |
| Ocry Gel Tube 10 g (oogsmeermiddel) | tvm lab | 3.70045E+12 | |
| Piezotome 2 ASS FINAL | ACTEON | X57402 | |
| Piezotome insert Piezocision PZ3 | ACTEON | F87574 | |
| Micro schaar | MORIA | MC52 | |
| Zijdedraden PERMA HAND SEIDE / MERSILK | ETHICON | REF 18501G | |
| Rechte schaar | MORIA | 4877A | |
| Vetflurane (isofluraan) 250 ml | VIRBAC | VET066 (Centravet) |
Referenties
- Thompson, Z., Miclau, T., Hu, D., Helms, J. A. A model for intramembranous ossification during fracture healing. J Ortho Res. 20 (5), 1091-1098 (2002).
- Bahney, C. S., et al. Cellular biology of fracture healing. J Ortho Res. 37 (1), 35-50 (2019).
- Yu, Y. Y., Lieu, S., Hu, D., Miclau, T., Colnot, C. Site specific effects of zoledronic acid during tibial and mandibular fracture repair. PLoS One. 7 (2), e31771(2012).
- Landry, P. S., Marino, A. A., Sadasivan, K. K., Albright, J. A. Effect of soft-tissue trauma on the early periosteal response of bone to injury. J Trauma. 48 (3), 479-483 (2000).
- Colnot, C. Skeletal cell fate decisions within periosteum and bone marrow during bone regeneration. J Bone Miner Res. 24 (2), 274-282 (2009).
- Julien, A., et al. Direct contribution of skeletal muscle mesenchymal progenitors to bone repair. Nat Commun. 12 (1), 2860(2021).
- McGuire, C., Boudreau, C., Prabhu, N., Hong, P., Bezuhly, M. Piezosurgery versus conventional cutting techniques in craniofacial surgery: A systematic review and meta-analysis. Plast Reconstr Surg. 149 (1), 183-195 (2022).
- Wong, S. A., et al. Chondrocyte-to-osteoblast transformation in mandibular fracture repair. J Orthop Res. 39 (8), 1622-1632 (2021).
- Vercellotti, T. Technological characteristics and clinical indications of piezoelectric bone surgery. Minerva Stomatol. 53, 207-214 (2004).
- Wong, S. A., et al. Chondrocyte-to-osteoblast transformation in mandibular fracture repair. J Orthop Res. 39 (8), 1622-1632 (2021).
- Tian, Y., et al. HIF-1α regulates osteoclast activation and mediates osteogenesis during mandibular bone repair via CT-1. Oral Dis. 28 (2), 428-441 (2022).
Herprints en machtigingen
Toestemming aanvragen om de tekst of afbeeldingen van dit JoVE-artikel te hergebruiken
Toestemming aanvragen