Een abonnement op JoVE is vereist om deze inhoud te bekijken. Log in of start vandaag met uw gratis proefperiode.

Methodenartikel

Onderzoek naar de effecten van infraroodtherapie op het bot na intensieve training op de loopband

701 weergaven

⸱

DOI:

10.3791/68502

⸱

22 augustus 2025

 ,  ,  , 
1School of Exercise and Health, Shanghai University of Sport, 2College of Athletic Performance, Shanghai University of Sport, 3Institute of Orthopedic Surgery, Xijing Hospital, Air force Medical University

* These authors contributed equally

In dit artikel

Samenvatting

Langdurige training op de loopband met hoge intensiteit remt de botvorming en bevordert de botresorptie bij muizen, wat resulteert in een verminderde botmassa. Hier presenteren we een protocol om de effecten van infraroodtherapie op door inspanning veroorzaakte veranderingen in het botmetabolisme met hoge intensiteit te onderzoeken. Verdere mechanistische studies zijn nodig om de onderliggende moleculaire routes op te helderen.

Samenvatting

Botweefsel is een belangrijk dragend orgaan van het menselijk lichaam. Matige lichaamsbeweging vergroot de botmassa door mechanische belasting, terwijl intensieve training deze kan onderdrukken. Infraroodtherapie verbetert de bloedsomloop, vermindert pijn/ontsteking en helpt bij weefselherstel. Dit artikel presenteert een protocol om de modulerende effecten van infraroodtherapie op door inspanning geïnduceerde skeletmetabole aandoeningen met hoge intensiteit en hun moleculaire mechanismen op te helderen. In deze studie werden 24 muizen van 6 weken oud willekeurig verdeeld in controlegroepen (CTR, N = 8), training op de loopband met hoge intensiteit (HIT, N = 8) en infraroodtherapie na intensieve loopbandtraining (IRT, N = 8). De laatste twee groepen werden 8 weken lang getraind. In de eerste week ondergingen de muizen een acclimatisatietraining op de loopband. In de tweede week trainden de muizen met een snelheid van 24 m/min gedurende 50 minuten, die toenam met een snelheid van 1 m/min en 10 minuten elke week tot 28 m/min gedurende 80 minuten, met een gradiënt van 5° gedurende 6 dagen. In de vijfde week werden muizen uit de HIT-groep onderworpen aan een infraroodtherapie-interventie voor het hele lichaam, waarbij de temperatuur werd geregeld tussen 42 °C en 45 °C. Het hele behandelingsproces duurde ~40 min, 3x per week. De resultaten toonden aan dat in de HIT-groep in vergelijking met die in de CTR-groep het botvolume/totaal volume en het trabeculair aantal significant waren afgenomen, de trabeculaire scheiding significant was verhoogd, de osteogene-gerelateerde genen van Atf4, Runx2 en Ocn waren gedownreguleerd en de osteoclast-gerelateerde genen van Ctsk en Mmp9 werden opgereguleerd. De micro-CT-resultaten van de muizen van de IRT-groep toonden geen significant verschil, maar de osteogenese-gerelateerde genen Alp, Atf4, Runx2, Ocn en Osx waren opgereguleerd in het dijbeen. Bovendien werd het osteoclast-gerelateerde gen Ctsk gedownreguleerd. Langdurige oefeningen op de loopband met hoge intensiteit kunnen de botmassa verminderen. Hoewel infraroodtherapie geen invloed heeft op de botmineraaldichtheid, kan het de botstofwisseling verbeteren.

Inleiding

Osteoporose (OP) is een van de meest voorkomende systemische metabole botziekten, die vooral voorkomt bij ouderen, en vormt een groot wereldwijd gezondheidsprobleem1. OP wordt voornamelijk gekenmerkt door verminderde botmineraaldichtheid (BMD), botkwaliteit en botsterkte, wat het risico op botbreuken verhoogt2. De preventie en behandeling van OP zijn cruciaal voor het verbeteren van de kwaliteit van leven van de mens en omvatten benaderingen zoals farmacologische therapie, voldoende inname van calcium en vitamine D, vermindering van roken en alcoholgebruik, en vroege lichaamsbeweging om de piekbotmassa te verhogen en te behouden 3,4.

Bot, als het structurele raamwerk van het lichaam, zorgt voor een fundamentele vorm en beschermt inwendige organen. Onder de regulering van het zenuwstelsel vergemakkelijkt het bot verschillende bewegingen tijdens spiercontracties. Gedurende het hele leven ondergaat bot continue vorming, resorptie en hermodellering. Osteoclasten resorberen voortdurend oud bot, terwijl osteoblasten nieuw bot vormen en mineraliseren. Deze processen zijn nauw aan elkaar gekoppeld en onderling gereguleerd, waardoor een dynamisch evenwicht in botomzetting behouden blijft5. Talrijke onderzoeken hebben aangetoond dat passende lichaamsbeweging (zoals aërobe training en weerstandstraining) OP6 effectief kan voorkomen en behandelen. Lichaamsbeweging beïnvloedt het botmetabolisme door mechanische belasting van het skelet te moduleren (zoals impact op de grond, schokken en spanning op de spieraanhechtingsplaats) en biochemische factoren in de bloedcirculatie (zoals hormonen en cytokines), waardoor de gezondheid van de botten wordt bevorderd7. Langdurige intensieve training kan echter een negatieve invloed hebben op de gezondheid van de botten, wat leidt tot botverlies. Bijvoorbeeld, na 8 weken loopband draaien met hoge, matige en lage intensiteit (met een snelheid van 15 m/min) in een muismodel met rotator cuff-letsel, waren het botvolume/totaal volume (BV/TV), trabeculair aantal (Tb.N) en trabeculaire dikte (Tb.Th) het laagst in de groep met hoge intensiteit in vergelijking met die in de controlegroep en de groep met matige/lage intensiteit, terwijl de trabeculaire scheiding (Tb.Sp) het hoogst was. Deze bevinding suggereert dat training met hoge intensiteit nadelige effecten heeft op het herstel van de rotator cuff en de botmassa8.

Infraroodtherapie (IRT) is een van de meest gebruikte principes in apparaten voor revalidatiefysiotherapie in China. Het bevordert de lokale bloedcirculatie, versnelt de opname van ontstekingsstoffen en verbetert de toevoer van voedingsstoffen 9,10. Als niet-invasieve fysiotherapie heeft IRT de afgelopen jaren veel aandacht gekregen op het gebied van sportgeneeskunde, revalidatiewetenschap en onderzoek naar botmetabolisme. IRT wordt vaker gebruikt in klinische omgevingen dan andere interventies. Studies hebben aangetoond dat genezing van botweefsel een complex proces is, inclusief het oplossen van ontstekingen en cellulaire regeneratie, die kunnen worden onderverdeeld in drie fasen: ontsteking, proliferatie en hermodellering. De ontstekingsfase wordt voornamelijk gekenmerkt door angiogenese; de proliferatieve fase omvat de proliferatie van osteoblasten en de vorming van nieuw bot; En de remodelleringsfase wordt gekenmerkt door de geleidelijke toename van nieuw gevormde trabeculae in de callus, waarbij de brugcallus over de fractuuropening volledig verbening ondergaat11. Na een fractuur moet het bloed dat uit de bloedvaten naar de weefsels stroomt, snel worden opgenomen, wat de proliferatie van osteoblasten en de botvorming stimuleert. Deze vitale processen vereisen een gunstige interne omgeving en voldoende voedingsstoffen voor ondersteuning. Een zekere mate van thermotherapie kan deze functies effectief vergemakkelijken12. In de klinische praktijk kan infraroodtherapie worden gebruikt als hulpmiddel om osteoporose te behandelen en gerelateerde symptomen te verlichten, maar het onderzoek naar botmassa is relatief beperkt. Dit artikel presenteert een protocol om de modulerende effecten van infraroodtherapie op door inspanning geïnduceerde skeletmetabole aandoeningen met hoge intensiteit en hun moleculaire mechanismen op te helderen. Daarom construeert dit werk, voortbouwend op eerder onderzoek13, een model voor loopbandoefeningen met hoge intensiteit bij muizen om veranderingen in botmassa te observeren en verder te onderzoeken of thermotherapie botverlies kan verminderen dat wordt veroorzaakt door oefeningen op de loopband met hoge intensiteit. Het doel is om een referentie te bieden voor op inspanning gebaseerde preventie en behandeling van OP.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

Deze studie kreeg ethische goedkeuring van de Laboratory Animal Ethics Committee van de Shanghai University of Sport (nr. 102772023DW016) en voldeed aan de nationale/institutionele voorschriften voor dieronderzoek. Vierentwintig 5 weken oude mannelijke C57BL/6-muizen werden gehuisvest in een SPF-kwaliteit dierenfaciliteit aan de Shanghai University of Sport. Muizen werden gehuisvest bij 22 ± 2 °C, 40-70% luchtvochtigheid met 12 uur licht/donker cycli en kregen ad libitum voedsel/water. Alle biologische materialen, inclusief botten, bloed en met RNA-extractie reagens behandelde monsters, moeten worden verzameld in autoclaafzakken van Biohazard Level II, gesteriliseerd bij 121 °C gedurende 60 minuten voordat ze worden weggegooid, met de juiste documentatie in laboratoriumafvallogboeken.

1. Dieren

  1. Na 1 week acclimatisatie stratificeert u de muizen op basis van lichaamsgewicht en wijst u ze willekeurig toe aan drie groepen: de controlegroep (CTR-groep, N = 8), training op de loopband met hoge intensiteit (HIT, N = 8) en infraroodtherapie na intensieve loopbandtraining (IRT, N = 8) groepen.

2. Oefeningstraining op de loopband met hoge intensiteit en interventieprotocol voor thermotherapie

  1. Voer de CTR-groep onder statische omstandigheden zonder tussenkomst.
  2. Onderwerp de muizen in de HIT- en IRT-groepen na 1 week acclimatisatie aan 8 weken intensieve loopbandtraining. De eerste week wordt beschouwd als de aanpassingsfase: laat de muizen in de loopbandgroep rennen met snelheden van 12, 15 en 18 m/min gedurende respectievelijk 20, 30 en 40 minuten met een helling van 0°. Laat de muizen in de tweede week 50 minuten trainen met een snelheid van 24 m/min en verhoog vervolgens hun lichaamsbeweging met een snelheid van 1 m/min en 10 minuten elke week tot 28 m/min gedurende 80 minuten, met een helling van 5°. Voer dit trainingsregime 6 dagen per week uit, met rust op zondag (Tabel 1).
  3. Voor de IRT-groep moet na 4 weken op de loopband worden infraroodtherapie (IRT) geïntroduceerd in de vijfde week.
    OPMERKING: Houd tijdens infraroodbestraling de lichaamstemperatuur van de muis strikt tussen 42 °C en 45 °C.
    1. Verdoof de muizen door middel van intraperitoneale injectie om bewusteloosheid te veroorzaken.
    2. Bestraal het hele lichaam van de muizen met behulp van het therapeutische infraroodapparaat en zorg ervoor dat de temperatuur van de muizen tussen 42 °C en 45 °C wordt gehouden (gedetecteerd door een temperatuurdetector). Voer het hele behandelingsproces uit gedurende ~40 minuten, 3x per week (maandag, woensdag en zaterdag), gedurende 4 weken totdat de monsters zijn genomen.

3. Weefselafname

OPMERKING: Ontlede botmonsters van muizen moeten onmiddellijk worden bewaard in vloeibare stikstof of bij -80 °C om de RNA-integriteit te behouden.

  1. Verzameling en conservering van serummonsters
    1. Weeg alle muizen met behulp van een elektronische weegschaal.
    2. Verdoof de muizen via een intraperitoneale injectie van tribroomethanol.
      OPMERKING: Bereid bij het hanteren van tribroomethanol altijd verse oplossingen onder een chemische zuurkast terwijl u nitrilhandschoenen en oogbescherming draagt, bewaar bij 4 °C in lichtbeschermde amberkleurige injectieflacons en gooi ongebruikte porties weg via goedgekeurde chemische afvalkanalen.
    3. Verzamel aseptisch bloedmonsters met behulp van een hartpunctie om 0,5-0,6 ml bloed te verkrijgen. Scheer eerst het borsthaar van de muis en desinfecteer met jodofoor. Palpeer vervolgens het punt van maximale hartpulsatie en steek een naald van 4-5 G die aan een spuit is bevestigd in de linker borstholte tussen de derde en vierde intercostale ruimte. Ten slotte, wanneer wordt waargenomen dat het bloed spontaan in de spuit stroomt, past u zachte aspiratie toe om de bloedafnameprocedure te voltooien.
    4. Laat de bloedmonsters 10 minuten stollen bij kamertemperatuur en centrifugeer vervolgens gedurende 15 minuten bij 1.000 × g . Aliquot en bewaar het bovenstaande (serum) bij -80 °C.
  2. Verzameling en conservering van botmonsters
    1. Gebruik een steriele microschaar en pincet om zowel de dijbenen als het scheenbeen te ontleden. Trek de spieren en pezen voorzichtig langs de lengteas van het botoppervlak af, zonder het botbot te schrapen, en besteed speciale aandacht aan de bescherming van de groeischijf.
    2. Spoel alle monsters af met 1x PBS (pH 7,4). Fixeer het linkerdijbeen gedurende 24 uur in 4% paraformaldehyde (PFA). Gebruik het linkerdijbeen voor het meten van de botmineraaldichtheid voordat u verder analyseert.
    3. Plaats het rechterdijbeen in voorgelabelde microcentrifugebuisjes van 1,5 ml en bewaar bij -80 °C.
    4. Gebruik het juiste dijbeen en beide scheenbenen voor botmetabolismetests.

4. Meting van parameters

  1. Meting van de bloedglucosespiegel
    1. Voorafgaand aan de weefselafname moeten bloedmonsters uit de staartader van de muizen worden genomen. Meet de bloedglucosespiegel met behulp van een draagbare glucoseanalysator.
  2. Meting van het lactaatgehalte in het bloed
    1. Verzamel onmiddellijk na de laatste oefensessie op de loopband bloedmonsters uit de staartader. Bepaal de lactaatspiegels in het bloed met behulp van een draagbare lactaatanalysator.
  3. Rotarod test
    OPMERKING: Nadat alle interventies waren voltooid, voerden we rotarod-tests uit op muizen uit elke groep. Bij het uitvoeren van rotarodtesten kiezen we verschillende groepen muizen die tegelijkertijd moeten worden getest om een consistente rusttijd te garanderen, in plaats van eerst één groep muizen te testen, zodat we verschillen veroorzaakt door rusttijd kunnen uitsluiten.
    1. Plaats de muizen op een rotarod-apparaat met de kop in de tegenovergestelde draairichting, zodat u één aanpassingsproef kunt doen.
    2. Stel het toerental van de draaischijf in op 30 tpm; Na het starten accelereert het apparaat gelijkmatig tot het ingestelde toerental.
    3. Noteer de tijd totdat de muis voor het eerst valt. Gebruik deze maatregel om het motorische coördinatievermogen van de muizen te beoordelen.
  4. Meting van de botmassa van femorale trabeculaire
    1. Verwijder spier- en bindweefsel dat aan de botten vastzit met behulp van een steriele microschaar en pincet en was met PBS.
    2. Voer micro-CT-scanning uit om de parameters van het trabeculaire bot in het linkerdijbeen te beoordelen met behulp van de volgende scanparameters: micro-CT-scanning werd uitgevoerd bij 55 kVp/145 μA (8 W) in continue rotatiemodus met 9 μm isotrope voxels, 31,0 mm FOV, 250 ms blootstelling, native resolutie (388 lagen/segment) en 1.200 mgHA/cc BH-kalibratie.
    3. Meet de volgende resultaten van de trabeculaire en corticale microarchitectuur.
      1. Importeer de gereconstrueerde afbeeldingen in CT-vox voor driedimensionale (3D) rendering en visualisatie.
      2. Met behulp van multiplanaire weergaven (coronale, sagittale en transversale vlakken) worden corticaal en trabeculair bot gescheiden en geëxtraheerd in verschillende weefselgebieden om onafhankelijke analyse van hun morfometrische kenmerken mogelijk te maken.
      3. Kwantificeer belangrijke microstructurele parameters, waaronder botvolume/totaal volume (BV/TV), trabeculair aantal (Tb.N) en trabeculaire dikte (Tb.Th) Trabeculaire scheiding (Tb.Sp), om de botontwikkeling en mineralisatiestatus te evalueren.
  5. Paraffine doorsnede en histologische kleuring
    1. Was drie linker dijbenen van elke groep met PBS en ontkalk ze in 10% EDTA (pH 7,15) tot volledige ontkalking optreedt.
    2. Dehydrateer de monsters door middel van graduele ethanolconcentraties (70%, 90%, 95% en 100%), verwijder ze met xyleen, infiltreer met paraffine en sluit ze in (zie tabel 2).
    3. Snijd seriële secties met een dikte van 5,0 μm.
    4. Hematoxyline en eosine (HE) kleuring
      1. Onderwerp de plakjes eerst aan xyleenontwaxing, gradiënt ethanol rehydratatie en laat ze vervolgens 5 minuten weken in hematoxyline.
      2. Wassen om overtollige vlekken te verwijderen, differentiëren in 1% zoutzuuralcohol gedurende 3 s, 3 minuten kleuren met eosine, dehydrateren door gesorteerde ethanol, klaren met xyleen en monteren met neutrale gom (zie tabel 3).
      3. Maak microscopische beelden om de structuur van botweefsel en de celmorfologie en -verdeling in de beenmergholte te observeren.
    5. Tartraatbestendige zure fosfatase (TRAP) kleuring
      1. Onthandel de plakjes met xyleen en rehydrateer ze met gradiënt ethanol.
      2. Incubeer de plakjes met het TRAP-reagens gedurende 1 uur in een oven van 37 °C, dehydrateer ze en maak ze doorzichtig (zie tabel 4).
      3. Breng een druppel neutrale hars aan op de glasplaat en laat het dekglaasje vervolgens voorzichtig in een hoek van 45° vanaf één rand zakken om de vorming van luchtbellen te minimaliseren. Laat het gemonteerde objectglaasje volledig drogen in een zuurkast voordat u verder gaat met microscopische observatie en beeldvorming.
  6. Genexpressieanalyse in tibiaal botweefsel
    1. Beenmerg isolatie
      1. Ontleed het scheenbeen van de muis en verwijder overtollige spieren/fascia met behulp van steriel gereedschap.
      2. Plaats de gereinigde tibiae in een microcentrifugebuis van 1,5 ml.
      3. Knip beide uiteinden van het bot open met een steriele schaar.
      4. Spoel het beenmerg in een maalbuis met steriele maalparels met behulp van 1x PBS.
        OPMERKING: Spoel de beenmergholte met PBS totdat de holte bleek lijkt en al het zichtbare mergweefsel is verwijderd.
    2. RNA-extractie
      OPMERKING: Chloorvorm/isopropanol-afval moet worden gescheiden in daarvoor bestemde gehalogeneerde oplosmiddelcontainers en mag nooit worden gemengd met bleekmiddel vanwege de vorming van giftige gassen.
      1. Voeg 1 ml RNA-extractiereagens per buis toe. Homogeniseer de monsters met behulp van een tafelhomogenisator (30 s pulsen, 4 °C). Incubeer de lysaten gedurende 5 minuten bij kamertemperatuur.
      2. Voeg 200 μL chloroform toe, vortex gedurende 15 s en incubeer bij 4 °C gedurende 30 min.
      3. Centrifugeer bij 12.000 × g gedurende 30 minuten bij 4 °C.
      4. Breng de bovenste waterige fase over naar een nieuwe microcentrifugebuis. Voeg 500 μL isopropanol toe, keer 10x om om te mengen en incubeer 20 minuten bij 4 °C.
      5. Centrifugeer bij 12.000 × g gedurende 30 minuten bij 4 °C. Gooi het bovenstaande voorzichtig weg zonder de RNA-pellet te verstoren.
      6. Was de pellet met 1 ml 75% ethanol (bereid met DEPC-behandeld water). Kort vortex en centrifugeren bij 7.500 × g gedurende 5 minuten bij 4 °C.
      7. Laat de pellet 5-10 minuten aan de lucht drogen in een zuurkast (vermijd overdrogen).
      8. Los RNA op in 20-50 μL DEPC-behandeld water.
      9. Meet de concentratie en zuiverheid (A260/A280-verhouding ≥ 1,8) met behulp van een spectrofotometer.
    3. cDNA-synthese
      1. Synthese van cDNA met behulp van 1 μg totaal RNA en een reverse transcriptiekit.
      2. Bewaar cDNA bij -20 °C voor qPCR-analyse.
    4. qPCR-analyse
      1. Analyseer genexpressie voor osteogene markers: Alp, Atf4, Runx2, Ocn, Osx; osteoclast markers: Nfatc1, Mmp9, Ctsk; cytokinen: Tnf-α, Il-1β, Il-10 (zie Tabel 5).
      2. Gebruik de primersequenties die worden vermeld in tabel 6 (inclusief gloeitemperaturen).

5. Statistische analyse

  1. Presenteer alle gegevens als gemiddelde ± standaardfout van het gemiddelde (gemiddelde ± SEM).
  2. Gebruik Bonferroni en Tamhani voor post-hoc tests.
  3. Voer eenrichtingsanalyse van variantie uit om verschillen tussen groepen te beoordelen.
  4. Beschouw P < 0,05 als statistisch significant.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

Vermoeidheid als gevolg van langdurige training op de loopband met hoge intensiteit
We hebben een langetermijnmodel voor het uitvoeren van hardloopoefeningen met hoge intensiteit op het platform opgesteld om de skeletveranderingen tijdens inspanning en de effecten van infraroodtherapie op botten te bestuderen (Figuur 1A). Aan het einde van de interventie werden muizen geobserveerd op veranderingen in lichaamsgewicht. Vergeleken met het li...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

Van alle metabole botziekten is OP de meest voorkomende en een groot wereldwijd probleem voor de volksgezondheid11. OP ontstaat wanneer osteoblastische en osteoclastische functies disfunctioneel zijn en de prevalentie hoog is18. Lichaamsbeweging wordt door artsen en onderzoekers steeds meer benadrukt als een mogelijke strategie voor de preventie en behandeling van OP, gezien de lage kosten en weinig nadelige effecten en het grote potentieel...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

De auteurs hebben geen belangenconflicten te melden.

Dankbetuigingen

Het werk werd ondersteund door de National Natural Science Foundation of China (nrs. 82172475, 82222046, 82272608); Shanghai Key Laboratory of Human Sport Competence Development and Maintenance (Shanghai University of Sport) (nr. 11DZ2261100).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
Far infrared therapie-instrument Cofoe Medical TechnologyInfraroodstraling werd vervolgens toegepast als warmtebron om het bloed in het subcutane capillaire netwerk te verwarmen. De therapietemperatuur werd gecontroleerd tussen 42 °C en 45 °C, en de gehele behandeling duurde ongeveer 40 min, 3 keer per week
Micro-CTSCANCO Medical AGVIVACT80Micro-CT-scans werden uitgevoerd om parameters van het trabeculaire bot in de linkerdijbeen, inclusief BV/TV, Tb.N, Tb.Th, Tb.Sp en corticale dikte (Ct.Th) te beoordelen. 
MuisloopbandAnhui Zhenghua Biological Apparatus Facilities Co., LtdLoopbandlopen met hoge intensiteit bij muizen
Paraffine-inbeddingsmachineLeicaDe paraffine-inbeddingsmachine kan weefsels inbedden
paraffine snijderLeicaDe paraffine microtoom kan weefsels snijden
PrimeScript RT Reagent kit 
SPSS 
Tribromoethanol Avertin
TRIzol Accurate BiologyAG21101/AG21102

Referenties

  1. Khosla, S., Hofbauer, L. C. Osteoporosis treatment: recent developments and ongoing challenges. Lancet Diabetes Endocrinol. 5 (11), 898-907 (2017).
  2. Rachner, T. D., Khosla, S., Hofbauer, L. C. Osteoporosis: now and the future. Lancet. 377 (9773), 1276-1287 (2011).
  3. Portier, H., Benaitreau, D., Pallu, S. Does physical exercise always improve bone quality in rats. Life (Basel). 10 (10), 217(2020).
  4. Reid, I. R., Billington, E. O. Drug therapy for osteoporosis in older adults. Lancet. 399 (10329), 1080-1092 (2022).
  5. Srivastava, R. K., Sapra, L., Mishra, P. K. Osteometabolism: Metabolic alterations in bone pathologies. Cells. 11 (23), 3943(2022).
  6. Cauley, J. A., Giangregorio, L. Physical activity and skeletal health in adults. Lancet Diabetes Endocrinol. 8 (2), 150-162 (2020).
  7. Rubin, C. T., Lanyon, L. E. Regulation of bone formation by applied dynamic loads. J Bone Joint Surg Am. 66 (3), 397-402 (1984).
  8. Chen, H., et al. Effect of exercise intensity on the healing of the bone-tendon interface: A mouse rotator cuff injury model study. Am J Sports Med. 49 (8), 2064-2073 (2021).
  9. Shemilt, R., et al. Potential mechanisms for the effects of far-infrared on the cardiovascular system - a review. Vasa. 48 (4), 303-312 (2019).
  10. Yu, S. Y., et al. Biological effect of far-infrared therapy on increasing skin microcirculation in rats. Photodermatol Photoimmunol Photomed. 22 (2), 78-86 (2006).
  11. Jurić, F., et al. Thermal changes during clavicle fracture healing in children. J Clin Med. 13 (23), 7213(2024).
  12. Einhorn, T. A., Gerstenfeld, L. C. Fracture healing: mechanisms and interventions. Nat Rev Rheumatol. 11 (1), 45-54 (2015).
  13. Yan, K., et al. Establishment and identification of an animal model of long-term exercise-induced fatigue. Front Endocrinol (Lausanne). 13, 915937(2022).
  14. Proia, P., et al. Lactate as a metabolite and a regulator in the central nervous system. Int J Mol Sci. 17 (9), 1450(2016).
  15. Westerblad, H., Bruton, J. D., Katz, A. Skeletal muscle: energy metabolism, fiber types, fatigue and adaptability. Exp Cell Res. 316 (18), 3093-3099 (2010).
  16. Zarrouk, N., et al. Assessment of acute neuromuscular fatigue manifestations and functional performances after heavy resistance exercise. J Sports Med Phys Fitness. 61 (12), 1596-1604 (2021).
  17. Warden, S. J., Davis, I. S., Fredericson, M. Management and prevention of bone stress injuries in long-distance runners. J Orthop Sports Phys Ther. 44 (10), 749-765 (2014).
  18. Aibar-Almazán, A., et al. Current status of the diagnosis and management of osteoporosis. Int J Mol Sci. 23 (16), 9465(2022).
  19. Chang, X., Xu, S., Zhang, H. Regulation of bone health through physical exercise: Mechanisms and types. Front Endocrinol (Lausanne). 13, 1029475(2022).
  20. Klein-Nulend, J., Bacabac, R. G., Bakker, A. D. Mechanical loading and how it affects bone cells: the role of the osteocyte cytoskeleton in maintaining our skeleton. Eur Cell Mater. 24, 278-291 (2012).
  21. Pacifici, R. Estrogen, cytokines, and pathogenesis of postmenopausal osteoporosis. J Bone Miner Res. 11 (8), 1043-1051 (1996).
  22. Xie, M., et al. Advancements in photothermal therapy using near-infrared light for bone tumors. Int J Mol Sci. 25 (8), 4139(2024).
  23. Peris, P. Stress fractures. Best Pract Res Clin Rheumatol. 17 (6), 1043-1061 (2003).
  24. Bourrin, S., et al. Adverse effects of strenuous exercise: a densitometric and histomorphometric study in the rat, (1985). J Appl Physiol. 76 (5), 1999-2005 (1994).
  25. Koenen, K., et al. Sprint interval training induces a sexual dimorphism but does not improve peak bone mass in young and healthy mice. Sci Rep. 7, 44047(2017).
  26. Bertels, J. C., He, G., Long, F. Metabolic reprogramming in skeletal cell differentiation. BoneRes. 12 (1), 57(2024).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Trefwoorden

Botmetabolismeintensieve lichaamsbewegingloopbandtrainingbotmassaskeletale metabole stoornissenosteogene genenosteoclastgenenmicro CT analyseweefselherstel
Neem contact met ons op
Aanbevelen aan bibliotheek

Privacy

Gebruiksvoorwaarden

Beleid

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. Alle rechten voorbehouden.