Een chirurgische methode voor subvalvulaire structuurinterventie via een transaortische benadering bij normale Bama-varkens

Summary

Deze studie presenteert een chirurgische methode voor interventie in de structuur van de subvalvulaire aortaklep met gerichte weefselsnijding via een transaortische benadering bij normale Bama-varkens.

Abstract

Subvalvulaire structuurafwijkingen die leiden tot veranderingen in de linker ventrikel (LVOT) en myocardhypertrofie zijn kenmerkende anatomische kenmerken van structurele hartziekten zoals hypertrofische cardiomyopathie (HCM). Deze studie stelt een chirurgische methode vast voor interventie in de aortasubvalvulaire structuur via een transaortische benadering bij normale Bama-varkens. De dieren werden verkregen van een gecertificeerde leverancier van experimentele varkens in Beijing (vergunning nr. SCXK (Jing) 2018-0008). Deze methode werd gevalideerd bij drie gezonde vrouwelijke Bama-miniatuurvarkens van ongeveer 33-35 weken oud, met een gewicht van 30-35 kg op het moment van de operatie. De procedure omvat een mediane sternotomie en een incisie in de voorste aortawand, uitgevoerd onder cardiopulmonale bypass (CPB) ondersteuning, een onderkoelde hartstilstand en directe visualisatie van de LVOT- en subvalvulaire regio's. Gerichte weefseltractie, lokalisatie en snijden worden gebruikt om de subvalvulaire structuur te hermodelleren.

Het volledige chirurgische proces omvat de inleiding van de anesthesie, het plaatsen van een centrale veneuze katheter en urinekatheter, desinfectie en afdekking van de chirurgische plaats, mediane sternotomie, pericardiale incisie en cardiale mobilisatie. CPB wordt gevormd door middel van linker atriumdrainage en retrograde perfusie van de coronaire sinus. Na een incisie in de voorste aortawand wordt de linkerventrikel via de aortaklep bereikt en wordt er subvalvulair weefselinterventie uitgevoerd bij een hartstilstand. De procedure wordt afgesloten met aortasluiting, hervatting van het hartslag, het terugtrekken van de CPB en het afsluiten van de thoracale borst. Gedurende de hele procedure bleef de hemodynamische stabiliteit behouden en bleef het dier in goede conditie zonder intraoperatieve sterfte. Na de operatie waren de sneden glad, en bleven de omliggende structuren intact.

Deze methode toont een hoge reproduceerbaarheid en procedurele controleerbaarheid, en biedt een stabiel chirurgisch interventiemodel voor het bestuderen van subvalvulaire structuurinterventies. Het biedt ook een technisch platform voor het uitvoeren van histologische analyses, chirurgische validatie en evaluatie van interventiestrategieën.

Introduction

Afwijkingen in de subvalvulaire structuren van de linkerventrikel spelen een cruciale rol bij diverse hart- en vaatziekten, met name bij patiënten met hypertrofische cardiomyopathie (HCM), waarbij subvalvulaire anomalieën bijdragen aan obstructie van het linker ventrikel uitstroomkanaal (LVOT) en interventriculaire septale hypertrofie¹. Deze structurele veranderingen belemmeren niet alleen de vulling en uitwerping van de ventrikel, maar kunnen ook leiden tot ernstige complicaties zoals ventriculaire hartritmestoornissen, plotselinge hartdood en chronisch hartfalen². Klinisch wordt bij dergelijke patiënten vaak transaortische chirurgische resectie van linker ventrikelweefsels toegepast om LVOT-obstructie te verlichten en de prognose te verbeteren³. Echter, slechts enkele studies hebben systematisch de fysiologische veranderingen en ventriculaire remodelprocessen na deze chirurgische ingreep onderzocht, waardoor de toepassing in fundamenteel onderzoek en translationele therapeutische ontwikkeling beperkt is.

Verschillende diermodellen zijn veelvuldig gebruikt om subvalvulaire structurele veranderingen en interventiestrategieën te bestuderen. Deze modellen hebben aanzienlijk bijgedragen aan het begrijpen van mechanismen op moleculair en weefselniveau; Ze vertonen echter aanzienlijke beperkingen bij het simuleren van klinische hartoperaties, met name bij het bereiken van precieze blootstelling en gerichte weefselafsnijding van de linkerventrikel. Problemen zoals anatomische vervorming, onvoldoende chirurgische precisie en beperkte weefselbemonstering blijven 4,5,6,7. Deze tekortkomingen belemmeren de bredere toepassing van dergelijke modellen in onderzoek naar chirurgische interventiemechanismen, postoperatieve structurele interventie en biomateriaalevaluatie.

In de afgelopen jaren zijn diermodellen die interventie in de subvalvulaire structuur van de linkerventrikel simuleren via een transaortische benadering zeer beperkt gebleven. Bestaande studies beperken zich voornamelijk tot aanpassingen van huidige chirurgische technieken, waarbij wordt geprobeerd in gelokaliseerde ventrikelweefselstructuren te interveniëren via minimaal invasieve routes of energiegebaseerde methoden. Deze benaderingen verschillen echter aanzienlijk van klinische chirurgische praktijken wat betreft chirurgische paden, intraoperatieve hartaandoeningen en weefselinterventiestrategieën, waardoor het moeilijk is om de structurele, hemodynamische, reperfusie- en mechanische stressreacties die door chirurgische ingrepen worden opgewekt, nauwkeurig te reproduceren ^8,9. Daarom hebben we in deze studie een reproduceerbaar chirurgisch model voor grote dieren vastgesteld door een mediane sternotomie en een incisie in de voorste aortawand uit te voeren onder cardiopulmonale bypass (CPB) ondersteuning bij normale Bama-varkens. Dit model maakt directe blootstelling van de linker ventrikel en het subvalvulaire gebied mogelijk, gevolgd door gecontroleerd weefselknippen om subvalvulaire structuurinterventie te bevorderen en zo een klinisch relevant platform te bieden voor toekomstig onderzoek.

Specifiek is dit model ontworpen om het procedurele pad en de operatieve omgeving van klinische transaortische septale myectomie te repliceren die wordt gebruikt bij patiënten met hypertrofische obstructieve cardiomyopathie (HOCM). Het is niet bedoeld om de pathofysiologie van HOCM te recapituleren of als ziektemodel te dienen, maar eerder om de operatieve omstandigheden te reproduceren waaronder subvalvulaire interventie wordt uitgevoerd.

Dit model dient als een gestandaardiseerd chirurgisch kader voor het bestuderen van subvalvulaire structurele interventies, het evalueren van nieuwe cardiale chirurgische apparaten en het bieden van een reproduceerbaar trainingsplatform voor experimentele hartchirurgie, inclusief chirurgische training in transaortische LVOT-blootstelling en gecontroleerde subvalvulaire resectie, evenals acute weefselniveau- en histologische studies na gedefinieerde structurele interventies.

Protocol

Alle dierprocedures zijn goedgekeurd door het Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) van het Fuwai Hospital Chinese Academy of Medical Sciences, onder goedkeuringsnummer 0106-1-20-ZX(X)-21. Alle experimenten werden uitgevoerd in overeenstemming met de ARRIVE-richtlijnen en de National Institutes of Health Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. De dieren werden gehuisvest onder standaard omgevingsomstandigheden (temperatuur 20-26 °C, luchtvochtigheid 40-60%, 12 uur licht/donker cyclus) met vrije toegang tot voedsel en water.

1. Experimentele diervoorbereiding

1. Verkrijg normale volwassen Bama miniatuurvarkens bij een gecertificeerde leverancier van experimentele varkens in Beijing (vergunning nr. SCXK (Jing) 2018-0008).
   OPMERKING: Deze methode werd gevalideerd bij drie gezonde vrouwelijke Bama-miniatuurvarkens van ongeveer 33-35 weken oud, die 30-35 kg wogen ten tijde van de operatie.
2. Houd de dieren minstens 7 dagen voor de operatie in een standaard barrièreomgeving voor acclimatisatie, onder gecontroleerde temperatuur (20-26 °C), luchtvochtigheid (40-60%) en een licht/donkercyclus van 12 uur, met vrije toegang tot voedsel en water.
3. Voer 24 uur voor de operatie een uitgebreide gezondheidsbeoordeling uit, inclusief evaluatie van mentale toestand, eetlust, fecale kenmerken, huidintegriteit, loopgedrag en ademhalingsconditie.
4. Houd voedsel 12 uur en 4 uur water preoperatief in om het risico op aspiratie tijdens de narcose te verkleinen.
5. Voer de meting van het lichaamsgewicht en identificatieregistratie in vóór de operatie, samen met het registreren van de basisvitale functies.
6. Op de dag van de operatie breng je de dieren over naar de operatiekamer voor intraveneuze toegang en inductie van de anesthesie.

2. Preoperatieve voorbereiding

1. Opening van auriculaire veneuze toegang
   1. Voor de inleiding van de anesthesie wordt veneuze toegang gecreëerd via de marginale auriculaire vena als volgt:
      1. Oefen zachte druk uit op het proximale deel van de marginale auriculaire vene om veneuze vulling mogelijk te maken. Met een 22-G intraveneuze katheter (22 GA × 1,00 inch; 0,8 × 25 mm) steekt u de naald in langs het verloop van het vat van distale richting naar de proximale richting.
      2. Na het zien van bloedterugkomst trek je de stylet terug en breng je de katheter volledig in de ader. Verwijder de naaldkern, sluit een driewegstopkraan aan en injecteer een kleine hoeveelheid steriele zoutoplossing om de openheid te bevestigen.
      3. Controleer of er geen subcutane uitpuiling optreedt en dat de infusie soepel verloopt, en bevestig vervolgens de stopkraan met lijmtape om de katheter te stabiliseren.
2. Anesthesie
   VOORZICHTIG: Controleer de diepte van de anesthesie en verlies van reflexen voordat je invasieve ingrepen uitvoert om stress of pijn te voorkomen.
   1. Induceer anesthesie door 1% propofoloplossing via de auriculaire vena te injecteren bij een dosis van 2-4 mg/kg. Zodra het dier zijn standvermogen verliest, minder bewustzijn vertoont en instort, verplaats het onmiddellijk naar het midden van de operatietafel.
   2. Plaats het dier in rugligging en bevestig alle vier ledematen aan de zijkanten van de operatietafel met behulp van vastbindbanden. Plaats zachte pads onder de rug en nek om compressieblessures te voorkomen.
   3. Na het bevestigen van bewusteloosheid dient u fentanyl (3-5 μg/kg) intraveneus toe voor analgesie, gevolgd door atracurium (0,2 mg/kg) voor spierontspanning.
   4. Voer endotracheale intubatie uit door de glottis bloot te leggen met een laryngoscoop. Plaats een passend groot gecuffd endotracheale buis (aanbevolen interne diameter 6,5-7,5 mm) in de luchtpijp en verplaats deze naar het thoracale segment om occlusie van de rechter schedelbronchus te voorkomen.
   5. Verbind de slang met een mechanische beademingsapparaat. Stel de beademingsmachine in op een getijdenvolume van 10-12 mL/kg, een ademhalingsfrequentie van 12-16 ademhalingen/min, FiO₂ 100%, en een I:E-verhouding van 1:2. Bevestig bilaterale longventilatie voordat je de endotracheale buis vastzet.
   6. Houd de narcose tijdens de operatie met continue intraveneuze infusie van propofol (6-10 mg/kg/u). Pas de dosering van fentanyl aan op basis van de vitale functies van het dier.
   7. Monitor continu het elektrocardiogram (ECG), bloeddruk (BP), zuurstofsaturatie (SpO₂) en lichaamstemperatuur (temperatuur).
   8. Houd de lichaamstemperatuur op 37 ± 0,5 °C om de metabole vraag te verminderen en myocardbescherming te waarborgen bij een cardiopulmonale bypass. Houd_SpO-2≥ 95% en houd de bloeddruk binnen een stabiel fysiologisch bereik.
3. Chirurgische handvoorbereiding
   1. Voer standaard chirurgische handantisepsis uit volgens het institutionele protocol. Droog na het handwassen de handen met steriele chirurgische handdoeken voordat je steriele handschoenen aantrekt.
4. Centrale veneuze katheterisatie onder geleidedraadgeleiding
   VOORZICHTIG: Houd een strikte aseptische techniek aan tijdens de katheterisatie. Behandel naalden en geleidedraden voorzichtig om ongeluksverwondingen te voorkomen.
   1. Selecteer de juiste externe jugulaire vena voor veneuze toegang. Desinfecteer het lokale huidgebied grondig en injecteer vervolgens 5 ml 2% lidocaïne subcutaan om lokale verdoving te bereiken.
   2. Verbind de priknaald met een spuit en steek de naald onder een hoek van 20-30° in langs de baan van de halsslagader richting de schedel.
   3. Beweeg de naald langzaam terwijl je continu aspireert totdat veneus bloed is teruggespoeld. Steek voorzichtig een geleidedraad in het vat via de naald. Stabiliseer de geleidedraad en trek de naald voorzichtig terug. Schuif een dilatator over de geleidedraad om de punctiekanaal uit te zetten, en verwijder dan de dilator.
   4. Breng een centrale veneuze katheter over de geleidedraad in de ader in. Breng de katheter naar een diepte van ongeveer 10-15 cm, waarbij je ervoor zorgt dat de kathetertip zich in de craniale vena cava bevindt zonder het rechter atrium binnen te gaan, om interferentie met intraoperatieve cardiale occlusie te voorkomen.
   5. Verwijder de geleidedraad. Controleer de openheid van elke lumen door aspiratie. Spoel elk lumen door met hepariniseerde zoutoplossing (50 IU/mL) en sluit de katheter met dezelfde oplossing om de openheid te behouden.
   6. Zet de katheter vast met steriele hechtingen. Breng een transparant steriel verband aan op de prikplaats. Label duidelijk de lumenfunctie en de diepte van de katheterinsertie.
5. Urinekatheterisatie
   1. Na de inleiding en positionering van de anesthesie desinfecteer je het perineale gebied met steriele wattenbolletjes die zijn geweekt in povidon-jodiumoplossing en laat het natuurlijk drogen. Leg een steriel doek over het omliggende gebied, waarbij alleen de urethrale opening zichtbaar wordt. Gebruik alleen vrouwelijke varkens om de urethrale katheterisatie te faciliteren.
   2. Open onder steriele omstandigheden een katheterset van Foley. Draag steriele handschoenen, smeer de kathetertip en breng deze voorzichtig in de plasbuis. Zodra urinestroom is waargenomen, verplaats je de katheter nog eens 1-2 cm. Injecteer steriel gedestilleerd water in de katheterballon om deze op zijn plaats te zetten. Breng zachte tractie toe om fixatie te bevestigen.
   3. Sluit de katheter aan op een gesloten afwateringszak. Bevestig de slang met tape aan de achterkant of de zijkant van de operatietafel om spanning of besmetting te voorkomen. Noteer het moment van het plaatsen van de katheter en de procedurele details. Controleer tijdens de operatie continu de urine-uitstoot en de leegloop.
6. Draperen en vestiging van het steriele chirurgische veld
   1. Voer opnieuw chirurgische handantisepsis uit volgens klinische normen. Na het drogen ga je terug naar de operatietafel.
   2. Werk samen met de assistent om het chirurgische veld te bedekken. Leg eerst kleine steriele gordijnen neer en zet ze vast met handdoekklemmen. Vervolgens leg je middelgrote gordijnen die het lichaam bedekken behalve het operatiegebied.
   3. Zorg ervoor dat het blootgestelde gebied zich uitstrekt van het borstbeen tot het uitsteeksel van het xiphoïd, ongeveer 20-25 cm lang en 10-12 cm breed, inclusief het middenlijn-borstbeen en de bilaterale ribranden.
   4. Na het afdekken voer je opnieuw snelle handantisepsis uit. Draag steriele operatiejassen en handschoenen aan met hulp van de verpleegkundige. Plaats een grote steriele gordijn met een venster, zodat alleen het incisiegebied zichtbaar is terwijl alle andere gebieden volledig bedekt blijven. Lijn de fenestratie uit met het midden van de incisie en beveilig de randen om vochtlekkage te voorkomen, zodat het steriele chirurgische veld wordt gerealiseerd.

3. Hartblootstelling en mobilisatie

1. Blootstelling van de thoracale holte
   VOORZICHTIG: Bescherm de handen en ogen van de operator tijdens de sternotomie. Zorg ervoor dat de retractor langzaam wordt toegepast om weefselscheuren of botbreuken te voorkomen.
   1. Maak een middenlijnincisie langs het borstbeen, die loopt van de suprasternale inkeping tot ongeveer 2 cm onder het xiphoid uitsteeksel, waarbij je met een chirurgisch scalpel de huid en het subcutane weefsel insnijdt. Houd een incisielengte van ongeveer 20 cm.
   2. Gebruik een elektrocauterisatieapparaat om de pectoralis major-spieren en het periost van het borstbeen te scheiden, zodat het voorste oppervlak van het borstbeen volledig wordt blootgesteld.
   3. Trek voorzichtig de laterale weefsels terug met hulp van een assistent om een vrij chirurgisch veld te behouden.
   4. Na het blootleggen van het borstbeen steek je een Lebsche-mes onder het xiphoïdproces en breng je opwaartse tractie toe.
   5. Met een kleine hamer tikt u voorzichtig en gelijkmatig op het proximale uiteinde van het Lebsche-mes om het borstbeen geleidelijk langs de middenlijn te splitsen, en vervolgens hoofdbehoorlijk totdat de thoracale holte wordt geopend.
   6. Houd gedurende het hele proces een continue opwaartse tractie om afwijking of letsel aan het hartperchart te voorkomen. Na voltooiing van de sternale verdeling plaats je een Finochietto ribretractor en vergroot je langzaam de thoracale holte aan beide zijden om het operatieveld te verbreden. Vermijd overmatige terugtrekking om pleuraletsel of ribbenbreuken te voorkomen.
2. Hartmobilisatie
   1. Identificeer het verloop van de bilaterale phrenicus zenuwen die langs de laterale oppervlakken van het pericard lopen (Figuur 1A).
   2. Incatief de bovenste rand van het pericard en verleng de incisie parallel aan de lange as van het dier, waarbij deze dicht bij de middenlijn blijft om het risico op zenuwbeschadiging te minimaliseren (Figuur 1B).
   3. Voer een stomp dissectie aan beide zijden uit om het pericard te scheiden van het mediastinale pleura en aangrenzende bindweefsel.
   4. Na het voltooien van de dissectie kun je het hart direct zichtbaar maken. Bevestig duidelijke identificatie van belangrijke anatomische structuren, waaronder de aorta, longslagader, linker atrium, hartapex en coronaire sinus.
3. Invoering van cardiopulmonale bypass (CPB)
   VOORZICHTIG: Zorg ervoor dat alle CPB-circuitverbindingen stevig en correct geaard zijn. Ga voorzichtig met elektrische en perfusieapparaten om lekkage of elektrische schokken te voorkomen.
   1. Na voldoende blootstelling aan het hart plaats je een koesdraadhechting aan de basis van het linker atriumaanhangsel. Maak een kleine incisie in de hechtingslus en plaats een veneuze drainagecanule schuin naar beneden langs de as van het linker atriumaanhangsel om het veneuze teruglooppad voor de cardiopulmonale bypass te creëren.
   2. Schuif de canule ongeveer 3-4 cm naar voren om ervoor te zorgen dat de punt de linker boezemholte binnenkomt. Bevestig de canule aan het atriumaanhangsel met zijden hechtingen om slip of lekkage te voorkomen.
   3. Plaats een beurssnarenhechting bij de ingang van de coronaire sinus. Maak een kleine incisie in de hechtingslus en plaats een perfusiecanule als instroompad voor cardioplegie en myocardperfusie.
   4. Schuif de perfusiecanule ongeveer 1-2 cm naar de coronaire sinus. Bevestig het met zijden hechtingen om een stabiele positie te garanderen.
   5. Sluit alle canules aan op de cardiopulmonale bypassmachine. Het circuit primed met een mengsel van 800 mL lactatieve Ringer-oplossing, 1.000 mL succininylere gelatineoplossing en 2 mL heparine. Ontlucht het circuit grondig en voer een druktest uit om de stabiliteit te bevestigen.
   6. Monitor continu de perfusieparameters en debietsnelheid gedurende de procedure, en houd de geactiveerde stollingstijd (ACT) boven de 480 s door systemische heparinisatie.
   7. Activeer de veneuze retourpomp om gedeeltelijke veneuze drainage te starten. Open geleidelijk de arteriële pomp om de perfusiedruk op 60-80 mmHg te houden. Controleer of er geen lekkage is en dat de circuitstroom vrij is voordat je een volledige cardiopulmonale bypass start.
   8. Na het bereiken van stabiele CPB infuus je langzaam een gekoelde kaliumrijke cardioplegieoplossing via de coronaire sinus. Let op de geleidelijke verzwakking van hartcontracties totdat een volledige hartstilstand plaatsvindt en het elektrocardiogram (ECG) een vlakke lijn aangeeft. Noteer het tijdstip van hartstilstand.
   9. Zorg ervoor dat volledige elektromechanische stilstand en voldoende myocardafkoeling worden bereikt voordat subvalvulaire interventie wordt gestart. Begin pas met weefselmanipulatie nadat je hebt bevestigd dat er geen ventrikelcontracties zijn en een stabiele arresttoestand zijn.
   10. In dit protocol dient u een eenmalige dosis cardioplegie toe die voldoende is om myocardstilstand gedurende de subvalvulaire interventieperiode te behouden. Herdosering is niet routinematig nodig vanwege de relatief korte duur van de aortakruisklem (ongeveer 30-40 minuten).
   11. Breng vooraf voorbereide gebroken ijs zout slush aan over het hartoppervlak om de harttemperatuur verder te verlagen, de stofwisselingsbehoefte te verlagen en de myocardbescherming te verbeteren.

4. Blootstelling van de linkerventrikel en interventie in de subvalvulaire structuur via aorta-toegang

VOORZICHTIG: Ga voorzichtig met scherpe instrumenten en schaar om tijdens aorta-incisie en het knippen van weefsels. Vermijd overmatige grip die omliggende gebouwen kan beschadigen.

1. Na het bereiken van cardioplegische stilstand en onderkoelingsbescherming maakt u een transversale incisie van ongeveer 1,0-1,5 cm lengte op de voorwand van de opstijgende aorta, gelegen ongeveer 1,5-2,0 cm boven de annulus van de aortaklep en loodrecht op de lange as van de aorta.
2. Steek twee gebogen schothaken in de aorta-incisie vanaf respectievelijk de linker dorsale en ventrale zijde. Trek de incisie voorzichtig lateraal terug om de aortawortel te openen en het operatieveld te verbreden (Figuur 2A).
3. Breng een naaldhouder met een voorbelaste tractiehechting in het operatieve veld. Plaats de hechting op het doelwit subvalvulaire weefsel om intraoperatieve tractie en nauwkeurige lokalisatie te bevorderen.
4. Beweeg kleine gebogen schaar door de aorta-incisie langs de as van de aorta richting de linker ventrikelkamer. Gebruik de tractiehechting om het doelgebied subvalvulair bloot te leggen (Figuur 2A).
5. Richt de schaar horizontaal onder directe visualisatie en knip de aangewezen subvalvulaire structuren gecontroleerd door (Figuur 2B). Verwijder het verwijderde tissue en geef het aan de assistent.
6. Spoel de linker ventrikelkamer en het aortalumen grondig met steriele zoutoplossing om eventueel achtergebleven weefselafval te verwijderen.
7. Sluit de aorta-incisie met continue absorberbare hechtingen. Begin aan één uiteinde van de incisie en haal de naald achtereenvolgens door de intima en media, waarbij je gelijkmatig gespreide steken gebruikt om een volledige, waterdichte sluiting te garanderen. Na het voltooien van het hechten spoel je het buitenoppervlak van de sluitingsplaats opnieuw met steriele zoutoplossing om het gebied schoon te maken.

5. Cardiale heropname en cardiopulmonale bypass-spenen

VOORZICHTIG: Controleer volledige ontluchting van hartkamers en perfusielijnen voordat de circulatie wordt hersteld om luchtembolie te voorkomen.

1. Na voltooiing van aortasluiting wordt de perfusiesnelheid van de coronaire sinus geleidelijk verlaagd en de cardioplegie-infusie gestaakt. Tegelijkertijd wordt de doorstroming van de cardiopulmonale bypasspomp (CPB) geleidelijk verlaagd om geleidelijk herstel van spontane hartactiviteit mogelijk te maken.
2. Monitor continu het hartritme met behulp van elektrocardiografie (ECG) om de terugkeer van het sinusritme of de aanwezigheid van hartritmestoornissen te detecteren.
3. Na succesvol afbouwen van CPB, keert systemische heparinisatie om door protamine toe te dienen om circulerende heparine te neutraliseren en de normale stollingsfunctie te herstellen.
4. Als spontane hartrebeat niet binnen enkele minuten plaatsvindt, pas dan directe defibrillatie toe door defibrillatorpaddles direct op het hartoppervlak te plaatsen. Geef een enkele laag-energetische schok en herhaal dit indien nodig totdat de georganiseerde elektrische activiteit is hersteld.
5. Na herstel van de reguliere ECG-golfvormen wordt de apicale impuls, coronaire pulsatie en de algehele myocardcontractiliteit beoordeeld.
6. Zodra het hartritme stabiliseert en de contractiele kracht voldoende is, verwijder je achtereenvolgens de kranssinusperfusiecanule en de linker atriumveneuze drainagecanule. Sluit elke canulatieplaats met hechtingen om hemostase te bereiken.
7. Koppel het CPB-systeem los. Noteer de totale CPB-duur, de tijd van het kruisklemmen van de aorta en de tijd tot hervatting van het hart.
8. Spoel de pericardiale holte grondig met steriele zoutoplossing en aspiratief eventueel restvocht of bloedstolsels.
9. Plaats vóór het dichten van het sternaal twee gesloten drainagebuizen in de pericardiale holte, waarbij je er één aan elke kant van het hart plaatst. Voer de drainageslangen aan via een intercostale ruimte en verbind ze met externe afvoerflessen.
10. Sluit het borstbeen met vier roestvrijstalen draden in een onderbroken configuratie. Vervolgens voer je een routinematige gelaagde sluiting van de thoracale wand uit.

Results

Dit chirurgische protocol maakt stabiele blootstelling en gecontroleerde doorsnijding van de subvalvulaire structuren in de linkerventrikel mogelijk. Tijdens de procedure werd de aorta-incisie nauwkeurig gepositioneerd en maakte de toegang via de aortaopening een duidelijk beeld mogelijk van de linker ventrikel en het bijbehorende subvalvulaire gebied. De chirurg lokaliseerde het snijgebied door grip toe te passen op de vooraf geplaatste hechting en voltooide het gerichte subvalvulaire w...

Discussion

Subvalvulaire structuurafwijkingen van de linkerventrikel vertegenwoordigen kritieke anatomische veranderingen bij patiënten met hypertrofische cardiomyopathie (HCM), wat leidt tot verminderde ventrikeltherapie, verhoogde diastolische druk en obstructie van de linkerventrikulaire uitstroombaan (LVOT). Deze structurele afwijkingen vormen belangrijke pathologische basis voor klinische hartstoornissen en nadelige uitkomsten^10,11. In...

Materials

List of materials used in this article

Name	Company	Catalog Number	Comments
0,9% natriumchloride-injectie	-	-	Gebaten voor irrigatie en oplossingsverdunning
Anesthesieapparaat	-	-	Levert inhalatieanesthetica en ademhalingsondersteuning
Anesthetica (Propofol, Fentanyl, Atracurium)	-	-	Gebaten voor anesthesie-inductie en -onderhoud
Aorta-retractor	SINOVIEW	RT37008-25	Gebaten om de aorta terug te trekken en de zichtbaarheid te verbeteren
Atraumatische forceps	SINOVIEW	FC22500-24	Gebaten om weefsel vast te pakken met minimale trauma
Cardioplegia-oplossing (St. Thomas)	-	-	Gebaten voor hartstilstand en bescherming
Cardiopulmonale bypass-apparaat en slangen	-	-	Gebaten om de circulatie tijdens CPB te behouden
Centrale veneuze katheterkit	-	-	Maakt centrale veneuze toegang mogelijk
Endotracheale intubatieset en ventilator	-	-	Handhaaft de luchtweg tijdens de chirurgie
Vlakke haakretractor	SINOVIEW	RT37000-00	Gebaten voor weefselretractie in de borstholte
Algemene retractor	-	-	Gebaten om weefsel terug te trekken en het chirurgische gebied bloot te leggen
Hemostatische forceps	-	-	Gebaten om bloedvaten of weefsel vast te klemmen voor hemostase
Heparine-natrium-injectie	-	-	Gebaten voor anticoagulatie
IV-katheter · Radiopaque 22 GA × 1,00 inch	BD Angiocath	381123	Gebaten om veneuze toegang te vestigen
Microchirurgisch instrumentenmand	SINOVIEW	90X0003	Gebaten voor het opslaan en vervoeren van microchirurgische instrumenten
Minimaal invasieve gebogen schaar	SINOVIEW	SC40230-25	Gebaten in minimaal invasieve procedures voor gebogen snijden
Minimaal invasieve dubbelgewrichtsschaar	SINOVIEW	SC55001-29	Gebaten voor precies snijden in diepe operatievelden
Naaldhouder	-	-	Gebaten om naalden vast te houden tijdens het naaien
Schaarhandvat en mes	-	-	Gebaten om huid en weefsels in te snijden
Steriele doeken, hechtingen, handschoenen, maskers	-	-	Gebaten om een steriele chirurgische ruimte te handhaven
Sterilisatiedoos voor precisie-instrumenten	SINOVIEW	90X0401	Gebaten voor het schoonmaken en steriliseren van chirurgische instrumenten
Weefselforceps (getand/ongetand)	-	-	Gebaten om weefsel vast te pakken
Weefselschaar	SINOVIEW	SC35101-25SC	Gebaten voor algemeen weefselsnijden
Drievoudige microforceps	SINOVIEW	FC17010-301	Gebaten in microchirurgie voor delicate manipulatie
Ultrascherpe schaar	SINOVIEW	SC35101-23UC	Gebaten voor precies weefseldissectie
Urinaire katheter en afvoerzak	-	-	Gebaten voor urinedrainage en monitoring
Vitale tekenenmonitor	-	-	Bewaakt ECG, bloeddruk, SpO2, temperatuur