Alle experimentele procedures zijn goedgekeurd door de Animal Ethics Committee van de Beijing Sport University (Goedkeuringsnummer 2022034A). Ratten werden individueel gehuisvest in de dierenfaciliteit van de Beijing Sport University onder gecontroleerde omstandigheden (temperatuur: 22-24 °C; luchtvochtigheid: 45%-55%; 12-uur licht/donker cyclus). Specifieke pathogen-free (SPF) vrouwelijke 11 weken oude en 12 weken oude mannelijke SHR, samen met leeftijdsgematchte normotensieve WKY-ratten, werden verkregen van Beijing Vital River Laboratory Animal Technology Co., Ltd. (Licentienr. SYXK [Beijing] 2021-0053) voor fokdoeleinden. De reagentia en de gebruikte apparatuur voor deze studie zijn vermeld in de Materiaallijst.
1. Proefdieren en groepering
Zwangere ratten kregen een standaard knaagdierfokdieet en water ad libitum. Alle ratten kwamen spontaan ter wereld en hun nakomelingen werden gespeend op een standaard knaagdierdieet. Voor paring werden vrouwelijke en mannelijke ratten van dezelfde stam (WKY of SHR) in een verhouding van 1:1 gehuisvest. De aanwezigheid van een vaginale plug en sperma in een vaginale uitstrijkje werd gebruikt om zwangerschapsdag 1 (GD1) aan te duiden. Na bevestiging van de zwangerschap werden ratten willekeurig ingedeeld in vier groepen: normotensief zittend (p-WKY-SED), normotensief bewegen (p-WKY-EX), hypertensief zittend (p-SHR-SED) of hypertensieve beweging (p-SHR-EX). Experimentele analyses werden uitgevoerd op ratten op drachtdag 21 (GD21), foetussen op embryonale dag 21 (ED21), en 3M mannelijke en vrouwelijke nakomelingen uit elke groep.
2. Moederlijke aerobe oefening
Voorafgaand aan de paring werden vrouwelijke ratten een week lang geacklimatiseerd aan de huisvesting, gevolgd door een wateraanpassingsperiode van 5 dagen met 15 minuten dagelijkse blootstelling aan 10 cm diep water op 34-35 °C. Na succesvolle paring begonnen de ratten in de oefengroep met een gestructureerd zwemschema. Het protocol begon met een aanpassingsfase van 4 dagen in 40 cm diep water (34-35 °C), waarbij de dagelijkse zwemduur geleidelijk werd verlengd van aanvankelijk 20 minuten naar 10 minuten per dag. Van dag 5 tot GD20 zwommen deze ratten 60 minuten per dag, 6 dagen per week. Om mogelijke stress door wateronderdompeling te beheersen, werden ratten in de zittende groepen voor dezelfde duur in ondiep water (10 cm diepte, 34-35 °C) geplaatst zonderactief te zwemmen.
3. Meting van bloeddruk
Systolische bloeddruk (SBP), diastolische bloeddruk (DBP) en gemiddelde arteriële druk (MAP) werden gemeten bij 3M-nakomelingen (zowel mannelijk als vrouwtje) met behulp van het CODA Monitor tail-cuff systeem onder bewustzijns- en rustomstandigheden. Alle metingen werden uitgevoerd in een rustige omgeving tussen 8:00 uur en 12:00 uur bij een omgevingstemperatuur van ongeveer 25 °C.
Het verwarmingskussen werd één uur van tevoren ingeschakeld en ingesteld op 37-38 °C om ervoor te zorgen dat het apparaat de vereiste temperatuur voor de meting bereikte. Een passende grootte van de reim werd gekozen op basis van het lichaamsgewicht van elke rat, en het dier werd voorzichtig in de rem geleid. Na fixatie werd de rat 5 minuten op het verwarmingskussen gelegd om voldoende bloedtoevoer naar de staart te garanderen. Een passend formaat occlusiemanchet (O-Cuff) en volumedrukmeet-manchet (VPR-Cuff) werden geselecteerd op basis van de grootte van de staart van de rat. Tijdens de werking werd de O-Cuff zorgvuldig ongeveer 1 cm van de basis van de staart geplaatst, gevolgd door het plaatsen van de VPR-Cuff over de staart. Na de acclimatisatieperiode van 5 minuten werden bloeddrukmetingen gestart terwijl de rat bij bewustzijn en rustte bleef. Elke rat onderging vijf acclimatiecycli, gevolgd door tien opeenvolgende meetcycli om bloeddrukgegevens vast te leggen. Gedurende de hele procedure werden de dieren nauwlettend gevolgd en direct uit de rem gehaald na voltooiing van het meetprotocol.
4. MI/RI-operatie bij ratten
Ratten werden 12 uur vasten voor de operatie, met gratis toegang tot water. Het lichaamsgewicht werd gemeten vóór de narcose. De narcose werd geïnduceerd met 5% isoflurane en tijdens de procedure gehandhaafd met 2% isofluran. Elke rat werd in rugligging gelegd en vastgezet op een verwarmingskussen ingesteld op 37 °C.
Orale endotracheale intubatie werd uitgevoerd met een katheter van 16 G, die voorzichtig in de luchtpijp werd ingebracht en op zijn plaats werd bevestigd. De katheter werd vervolgens aangesloten op een geïntegreerd anesthesie- en ventilatiesysteem. De ventilatieparameters werden ingesteld op een ademhalingsfrequentie van 70 ademhalingen per minuut, een getijdenvolume van 8 mL/kg en een inademings-ademhalingsverhouding van 1:2.
Elektroden werden subcutaan in de ledematen van de rat ingebracht volgens de standaard loodplaatsing: zwart voor de rechter voorpoot, groen voor de rechter achterpoot en rood voor de linker achterpoot. De elektroden waren aangesloten op een biologisch functioneel experimenteel systeem en een bioversterker, en elektrocardiografische (ECG) monitoring werd uitgevoerd met LabChart-software.
Het borsthaar van de rat werd geschoren en de operatieplek werd met alcohol gedesinfecteerd. Er werd een incisie gemaakt in de huid aan de linkerkant van het borstbeen die overeenkomt met het hart. Er werd een stomp dissectie uitgevoerd om de ribben bloot te leggen. Een borstretractor werd tussen de derde en vierde ribben geplaatst om de thoracale holte te openen. Het pericard werd zorgvuldig gescheurd en gescheiden om het hart volledig bloot te leggen. De bijbehorende grote hartader werd als herkenningspunt gebruikt. Ongeveer 1-2 mm onder het linker atriumaanhangsel, een 8-0 De hechting werd door het epicardiale oppervlak gehaald om de linker voorste dalende (LAD) kransslagader te binden. Een klein houten buisje werd op de knoopplek geplaatst en een slipknoop werd vastgemaakt om de bloedstroom te blokkeren. De borstholte werd vervolgens snel gesloten. Succesvolle ligatie werd bevestigd door ST-segment elevatie op het elektrocardiogram en zichtbare cyanose in het ischemische myocardgebied.
Na 45 minuten occlusie werd de slipknoop losgemaakt en werd de houten buis verwijderd om reperfusie te initiëren. Lucht werd uit de thoracale holte geperst, die vervolgens werd gesloten en gehecht. De operatieplaats werd gedesinfecteerd met povidonjodium, waarmee de procedure werd voltooid.
Na 24 uur reperfusie werd er zo een MI/RI-model opgesteld. Zodra de spontane ademhaling werd hervat, werd de endotracheale buis verwijderd en werd de rat teruggebracht naar een schone kooi.
5. Echocardiografie
Echocardiografische beoordeling werd uitgevoerd met een klein dierlijk kleur-Doppler-ultrageluidssysteem uitgerust met een L22-8K3 hoogfrequente lineaire array-sonde (middenfrequentie: 15 MHz). Ratten werden verdoofd met 5% isofluraan voor inductie en bleven gedurende de procedure onder de 2% isoflurane gehouden. Elke rat werd in rugligging geplaatst en vastgezet op het chirurgische platform, waarbij de temperatuur op 37 °C werd gehouden. De ademhalingstoestand werd continu gemonitord en de isoflurane-debiet werd indien nodig aangepast om te diepe of ondiepe anesthesie te voorkomen, wat de nauwkeurigheid van hart-echometingen kon aantasten.
Na het scheren van het borstgebied werd een passende hoeveelheid echo-koppelingsgel aangebracht. De echoprobe werd boven de linker voorste borstwand geplaatst om M-mode echocardiografische beelden te verkrijgen van de parasternale lange- en kortasbeelden van de linker ventrikel. Voor elke parameter werd de gemiddelde waarde van zes opeenvolgende hartcycli berekend. De hartfunctie werd beoordeeld door de interne diameter van de linker ventrikel in systole (LVID's), de interne diameter van de linkerventrikel in diastole (LVIDd), fractionele verkorting (FS) en de ejectiefractie (EF) te meten.
6. MCAO-operatie bij ratten
Ratten werden 12 uur gevastend voor de operatie, maar hadden gratis toegang tot water. Het MCAO-model is ontwikkeld met behulp van een geoptimaliseerde Zea-Longa hechtingsmethode. Anesthesie werd geïnduceerd met 5% isofluraan en gehandhaafd met 2% isofluran. Zodra spierontspanning was waargenomen en ademhaling en hartslag gestabiliseerd, werden de ratten in rugligging geplaatst en vastgezet op een thermostatisch geregelde warmtemat.
Het baarmoederhalsgebied van de rat werd routinematig geschoren en gedesinfecteerd. Er werd een middenlijnincisie iets links van de hals gemaakt, waarbij de spierlagen bot werden gedissect om de linker halsslagader (CCA), externe halsslagader (ECA) en interne halsslagader (ICA) bloot te leggen en te isoleren. De ECA werd geligeerd met fijne hechtdraad, en de CCA en ICA werden tijdelijk vastgeklemd met slagaderklemmen. Er werd een incisie gemaakt in de ECA en de hechtingsembolus werd via de ECA-opening in de CCA ingebracht. Na het transecteren van de ECA werd deze voorzichtig naar beneden getrokken om uit te lijnen met de ICA, waardoor een rechte weg voor het inbrengen van de embolus mogelijk werd. De embolus werd voorzichtig naar het intracraniële segment van de ICA gebracht. Het inbrengen werd gestopt bij lichte weerstand, wat wijst op de juiste positionering. Op dit punt werd de embolie 18-20 mm van de splitsing van de ECA en ICA ingebracht, overeenkomend met de vooraf aangegeven diepte, waarbij de punt de oorsprong van de middelste cerebrale arterie (MCA) afsluit.
De diameter van de embolustip werd gekozen op basis van het lichaamsgewicht van de rat: 0,31-0,32 mm voor ratten <200 g, en 0,38-0,40 mm voor ratten met een gewicht van 281-330 g. Na correcte plaatsing werd de embolie vastgezet, werden slagaderklemmen verwijderd, de huidincisie gehecht en de operatieplaats gedesinfecteerd met povidonjodium.
Succesvolle plaatsing van de hechting werd bevestigd door een vermindering van meer dan 50% van de bloedperfusie aan de getroffen zijde. Na 2 uur ischemie werd de embolie teruggetrokken om reperfusie te starten. Na 24 uur reperfusie werd een cerebrale ischemie-reperfusie-letsel model vastgesteld.
Neurologische tekorten bij ratten werden 24 uur na MCAO geëvalueerd met behulp van het Zea Longa-scoresysteem. De beoordelingscriteria waren als volgt (Tabel 1).
Alleen ratten met Zea Longa-scores van 1 tot 3 werden meegenomen in de daaropvolgende analyses. Ratten met scores van 0 of 4 werden uitgesloten vanwege het ontbreken van effectieve occlusie of overmatig hersenletsel, respectievelijk.
7. Laserspeckle contrast imaging (LSCI)
Ratten werden 12 uur vastend voorafgaand aan het experiment, maar hadden vrije toegang tot water. De anesthesie werd geïnduceerd met 5% isofluraan en gehandhaafd op 2% isofluran.
De ratten werden vervolgens in een buikligging gelegd en vastgezet in een stereotaxisch apparaat. Na het scheren en desinfecteren van de hoofdhuid werd een middenlijnincisie langs de sagittale hechting gemaakt om de schedel bloot te leggen. Bindweefsel en periost op het schedeloppervlak werden zorgvuldig verwijderd. Terwijl de integriteit van de dura mater behouden bleef, werden beide zijden van de schedel verdund met een schedelboor totdat het bot transparant werd. Er werd een schedelvenster van 8 mm × 15 mm gecreëerd, waardoor corticale bloedvaten duidelijk zichtbaar konden worden onder een microscoop.
Het LSCI-systeem werd geactiveerd en de positie van het apparaat en brandpuntsafstand werden aangepast totdat het schedelvenster duidelijk zichtbaar was. Er werd een laserlichtbron met een golflengte van 780 nm gebruikt. Het verlichtingsgebied werd vastgelegd met een charge-coupled apparaat met een belichtingstijd van 15 ms en een framerate van 15 frames per seconde. Continue monitoring werd uitgevoerd gedurende 15-30 seconden om beelden te verkrijgen met een resolutie van 1280 × 960 pixels. Het systeem zette vervolgens de oorspronkelijke speckle-beelden om in bloedstroomkaarten en kwantitatieve perfusiegegevens.
De basisbloedstroom van de hersenen in de MCA-voedingsgebieden op beide hersenhelften werd voor het eerst geregistreerd vóór de ischemie. De hoofdhuid werd vervolgens gehecht en gedesinfecteerd voordat de MCAO-procedure werd gestart. De cerebrale bloedstroom in beide hemisferen werd continu gemonitord direct na de occlusie, 2 uur en 24 uur na ischemie.
Gedurende de gehele monitoringsperiode werd de anesthesie gehandhaafd met isoflurane en werd het verwarmingskussen geregeld om de lichaamstemperatuur van de rat constant te houden op 37 °C. De gegevensverzameling begon zodra het dier een stabiele ademhaling en hartslag vertoonde.
8. 2,3,5-triphenyltetrazoliumchloride (TTC) kleuring
De 2% (w/v) TTC-oplossing werd bereid door 0,2 g TTC-poeder op te lossen in 10 mL fosfaatgeborde zoutoplossing (PBS, pH 7,4). De oplossing werd overgebracht in een met folie omwikkelde centrifugebuis, volledig gevortexed om volledige oplossing te garanderen, en vervolgens in een voorverwarmd waterbad geplaatst tot 37 °C.
Na 24 uur reperfusie werden ratten verdoofd met 5% isoflurane en geëuthanaseerd via exsanguinatie via de abdominale aorta. Het hart en de hersenen werden onmiddellijk geoogst en grondig gespoeld met 10 ml PBS. Weefsels werden 30 minuten bij −40 °C ingevroren, daarna in mallen ingesloten en coronal gesneden van voorste naar achteren met een dikte van 2-3 mm per snee. De plakjes werden geïncubeerd in 2% TTC-oplossing. Hartsneetjes werden 10 minuten geïncubeerd in een 37 °C waterbad dat beschermd was tegen licht, terwijl hersensneetjes onder dezelfde omstandigheden 25 minuten werden geïncubeerd. De plakjes werden elke 5 minuten omgedraaid tijdens de incubatie om een gelijkmatige kleuring te garanderen. Na het kleuren werden de plakjes drie keer afgespoeld met 10 ml PBS en vastgezet in 10 ml 10% formaline gedurende 24 uur.
Na 24 uur fixatie werden weefselplakjes verwijderd en voorzichtig met gaas gedept om overtollig vocht te verwijderen. Elke schijf werd op een transparante glazen plaat gelegd, en zowel de voor- als achterkant werden gescand. In de gescande beelden gaven witte gebieden geïnfarceerd (ischemisch) weefsel aan, terwijl rode gebieden levensvatbaar (niet-ischemisch) weefsel vertegenwoordigden. Beeldanalyse werd uitgevoerd met behulp van de ImageJ-software om de infarctoppervlakteverhouding van zowel myocard- als cerebrale sneden te berekenen. Myocardinfarctgebied (%) = (Infarctgebied / Totale myocardarea) × 100%; Cerebrale infarctgebied (%) = (Infarctgebied aan de MCAO-zijde / Totale oppervlakte van de ipsilaterale hemisfeer) × 100%.
9. Veiligheidsnotities en hantering van gevaarlijke stoffen
Isoflurane werd in een dampkap verwerkt om inademingsblootstelling te voorkomen en werd opgeslagen in een koele, goed geventileerde ruimte. Formaline en TTC werden behandeld met nitrilhandschoenen en mondkapjes om huidcontact en het inademingsrisico te minimaliseren. TTC werd erkend als fotosensitief en daarom opgeslagen en gebruikt in folieverpakkingen.
Het operatiegebied werd gedesinfecteerd met 75% ethanol en alle instrumenten werden 20 minuten voor gebruik geautoclaveerd bij 121 °C. Operators droegen steriele handschoenen en jasen om aseptische omstandigheden tijdens de procedures te behouden.
Postoperatieve monitoring werd elke 6 uur uitgevoerd, 24 uur lang, om het dierenwelzijn te waarborgen. Dieren die ernstige stress vertoonden, zoals aanhoudend beven of gebrek aan voedsel en drinken, werden onmiddellijk geëuthanaseerd volgens de ethische richtlijnen van de instelling.
Al het TTC- en formalineafval werd verzameld in gelabelde biohazardcontainers en afgevoerd volgens het institutionele protocol voor gevaarlijk afvalbeheer. Dierlijke weefsels werden verbrand via de door de universiteit aangewezen bioafvalfaciliteit. Besmette chirurgische materialen werden geautoclaveerd voordat ze werden afgevoerd.
10. Statistische analyse
Alle gegevens werden gepresenteerd als gemiddelde ± SEM. Statistische analyses werden uitgevoerd met GraphPad Prism 8-software. Verschillen tussen de vier groepen werden beoordeeld met behulp van een tweerichtingsanalyse van de variantie (tweerichtings-ANOVA; factoren: hypertensie en lichaamsbeweging). Vergelijkingen tussen mannelijke en vrouwelijke nakomelingen werden geëvalueerd met een tweestaartige niet-gepaarde Student's t-test. P-waarde < 0,05 werd als statistisch significant beschouwd.