Dit artikel presenteert een protocol om het linker ventrikel assist-apparaat (LVAD) in een biggetje te implanteren. Dit model biedt een krachtige manier om de LVAD-implantatie bij kinderen te bestuderen en het mechanisme van ventrikelomgekeerde remodellering in LVAD-behandeling te onthullen.
Een abonnement op JoVE is vereist om deze inhoud te bekijken. Log in of start vandaag met uw gratis proefperiode.
Methodenartikel
Implantatie van het Left Ventricul Assist Device (LVAD) bij jonge landracevarkens: een LVAD-implantatiemodel van pediatrisch hartfalen
* These authors contributed equally
In dit artikel
Samenvatting
Samenvatting
Er werd een pediatrisch implantatiemodel voor het links-ventrikel assisterenapparaat (LVAD) ontwikkeld om pediatrische LVAD-ondersteuning te simuleren en het mechanisme van hartomgekeerde remodellering te onderzoeken. Hartfalen (HF) is een veelvoorkomende wereldwijde hart- en vaatziekte. LVAD-implantatie is een essentiële methode om HF te behandelen. Bestaande pediatrische LVAD-implantatiemodellen zijn echter nog onderontwikkeld, en het mechanisme van de LVAD-behandeling dat resulteert in ventriculaire omgekeerde remodellering was onduidelijk, vooral bij kinderen, hoewel er veel onderzoek was dat het mogelijke doelwit aan het licht bracht. Daarom is het noodzakelijk om het mechanisme te achterhalen, vooral bij kinderen. Een goed model vormt de basis voor het testen van de functie van een nieuwe pediatrische LVAD en het onthullen van het belangrijkste mechanisme. We hebben een LVAD-implantatiemodel van jonge landrasvarkens opgezet, dat gebruikt kan worden om de veiligheid en effectiviteit van pediatrische LVAD aan te nemen. Nadat de LVAD was geïmplanteerd, hield de LVAD-pomp de bloedstroom meer dan een maand stabiel en ononderbroken. Bovendien waren de vitale functies, inclusief de hemodynamica, stabiel en binnen de ideale en normale bereik. Dit model repliceert nauwkeurig hemodynamische aandoeningen bij klinische patiënten na LVAD-implantatie. Het zou gebruikt kunnen worden om de continue veranderingen na de LVAD-implantatie te traceren. Tegelijkertijd kan het worden gebruikt om de reactiviteit en veiligheid van kind-LVAD-implantatie te onthullen. Dit protocol is een eenvoudig en standaard algemeen proces om een uniformisatiemodel te bouwen voor onderzoek naar LVAD-implantatie bij kinderen.
Inleiding
LVAD-therapie verbetert de overleving bij hartfalenpatiënten en dient als brug naar harttransplantatie. LVAD wordt al tientallen jaren bij volwassenen gebruikt, waarvan wordt gedacht dat het de hartfunctie herstelt door omgekeerde myocardiale remodelleringte bevorderen. Het eerdere onderzoek richtte zich op volwassen LVAD-implantatiepatiënten2. Het gedetailleerde omgekeerde remodeleringsmechanisme voor LVAD-behandeling was echter nog onduidelijk bijkinderen 3. Daarom is een goed model voor onderzoek naar LVAD-behandelingsmechanismen noodzakelijk dat resulteert in omgekeerde remodellering. Hoewel muismodellen veel worden gebruikt bij geneesmiddelenevaluatie en de ontwikkeling van apparaten voor hart- en vaatziekten, verschillen het immuunsysteem, de myocardcontractiliteit, de hemodynamica en het metabolisme van muizen behoorlijk van die van mensen. Daarnaast kan de rusthartslag van muizen oplopen tot wel 500-600 slagen per minuut, wat 6-10 keer zo hoog is als die van mensen. Het is te snel om ventriculaire ondersteuningsapparaten te implanteren. Bovendien is de grootte van de linker ventrikel en bloedvaten bij muizen zeer klein. Het is uiterst moeilijk om leidingen te ontwerpen en te implanteren die voldoende dun, flexibel, biocompatibel zijn en voldoende doorstroming en lage weerstand garanderen. Daarom is het nodig om diermodellen te ontwikkelen die representatiever zijn voor mensen. Wat betreft het circulatiesysteem lijken varkens sterk op mensen, wat een goed modeldier kan zijn voor onderzoek naar ziekten of instrumentimplantatie in het menselijke circulatiesysteem, en varkensmodellen worden veel gebruikt in preklinische translationele studies van ventriculaire ondersteuningsapparaten 4,5. Ons protocol stelde een nieuw pediatrisch LVAD-implantatiemodel vast bij jonge jonge landrasvarkens.
Daarnaast treft pediatrisch hartfalen (PHF) 0,87-7,4 per 100.000 kinderen6. Hoewel harttransplantatie (HT) de gouden standaard is om HF te behandelen, kunnen sommige kinderen niet direct een donorhart krijgen. Daarom is pediatrische LVAD-implantatie nodig voor de levensondersteuning van Harthartige kinderen. Het gebruik van LVAD neemt toe in de kindergeneeskunde, maar deze patiënten zijn vaak complex en kunnen behandeling van atrioventriculair blok7 nodig hebben. Daarnaast is er geen geschikte pediatrische LVAD voor HF-kinderen, en uit eerdere klinische resultaten bleek dat de percentages van grote bloedingen, beroertecijfers, infecties en nierfunctiestoornissen hoger waren dan bij volwassenen8. In eerdere kortlopende klinische onderzoeken heeft het gebruik van pediatrische LVAD's geleid tot problemen zoals ischemische beroerte en ernstige hartritmestoornissen, wat erop wijst dat pediatrische LVAD'sverder geoptimaliseerd moeten worden. Daarom is het noodzakelijk om een kind-LVAD-implantatiemodel te bouwen. Het zou een belangrijk model kunnen zijn voor nieuwe LVAD-tests of onderzoek naar omgekeerde remodelmechanismen. Jonge landrasvarkens zijn relatief klein van formaat, met een hartgewicht van ongeveer 100 g, vergelijkbaar met dat van kinderen. Ze kunnen worden gebruikt om de veiligheid en effectiviteit van implanteerbare ventriculaire hulpmiddelen die speciaal voor kinderen zijn ontworpen te evalueren. Daarom is jonge landras een geschikte stam voor onderzoek naar LVAD-implantatie bij kinderen.
In dit artikel hebben we een LVAD-implantatiemodel voor jonge landras gegeven. Het zou een geschikt model kunnen zijn om het mechanisme van het LVAD-omgekeerde remodeleringsmechanisme te onthullen en de veiligheid en effectiviteit van pediatrische LVAD-implantatie te evalueren.
Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.
Protocol
Alle procedures met varkens zijn goedgekeurd door het Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) van het Fuwai Ziekenhuis, Chinese Academie van Medische Wetenschappen (ethische goedkeuringsnummer: 0109-1-35-ZX(X)-5). Al onze experimenten volgden de ARRIVE-richtlijnen. De proefdieren, drie maanden oude mannelijke jonge landrasvarkens (30-35 kg), werden vooraf gehuisvest en geïsoleerd in de experimentele faciliteiten van het Dierencentrum van het Fuwai Ziekenhuis om zich aan te passen aan de omgeving en stress te verminderen. Dieren werden preoperatief onderzocht om hun preoperatieve gezondheid te waarborgen, en werden uitgesloten van het experiment als ze abnormale gedragskenmerken, abnormale symptomen of tekenen vertoonden. De proefdieren werden vastend en mochten niet drinken vóór harttransplantatie en onderzoek volgens de routineprocedures van het dierenexperimentcentrum.
1. Preoperatief beheer en voorbereiding van het proefdier
- Laat de dieren 12 uur vasten en ze 4 uur water ontnemen voor de operatie.
- Induceer algehele anesthesie met ketamine 10-20 mg/kg, IM.
- Zorg voor veneuze toegang tot de auriculaire vene.
- Breng een tourniquet strak aan aan de basis van het oor om de ader te verdichten.
- Gebruik de niet-dominante hand om het oor te rekken en te stabiliseren. Houd de katheternaald als een potlood vast met je dominante hand, afschuivende omhoog, onder een hoek van 15-30° ten opzichte van de huid.
- Prik de huid en de aderwand in één vloeiende beweging.
- Bij het waarnemen van flashback-bloed in de kamer, laat je de hele samenstelling nog eens 1-2 mm vorderen. Stabiliseer vervolgens de stylet (metalen naald) en schuif de plastic katheter volledig in het vat.
- Druk op de huid boven de kathetertip om bloeding te voorkomen, haal de stylet snel terug en gooi hem weg in een scherpe bak. Sluit onmiddellijk een heparinekap of stopkraan aan.
- Verwijder de tourniquet van de oorbasis. Aspireer met een spuit om bloed te zien terugkomen en bevestig de intravasculaire plaatsing. Spoel langzaam met 1-2 ml zoutoplossing. Let op zwelling rond de site, wat wijst op extravasatie.
- Wikkel het hele oor losjes om met een samenhangend verband, zodat het oortopje blootligt om te monitoren op ischemie.
- Dien propofol toe (2-4 mg/kg IV) en voer endotracheale intubatie uit.
- Controleer en bereid een correct gedimensioneerde endotracheale buis, laryngoscoop (recht mes), stylet, spuit, glijmiddel, bijtblok/gerolde gaas, bevestigingstape en stethoscoop voor.
- Plaats het varken in een stabiele dorsale ligplaats. Strek de nek en kantel het hoofd naar achteren.
- Zorg voor 100% zuurstof via een mondkapje voor 3-5 minuten als dat mogelijk is.
- Steek het laryngoscoopblad in de rechter commissuur van de mond, waarbij je het naar voren brengt terwijl je de tong naar links verplaatst.
- Schuif het lemmet langs de middenlijn van de tong. Identificeer de epiglottis en gebruik vervolgens de punt van het blad om de epiglottis voorzichtig op te tillen en in te drukken om de glottis (een verticale spleet) bloot te leggen.
- Wanneer de glottis opengaat (tijdens inademing), brengt u de endotracheale buis (met stylet indien gebruikt) via de rechtercommissure naar de luchtpijp.
- Zodra de buis is verplaatst, stabiliseer je deze en verwijder je voorzichtig de stylet.
- Zoek naar condensatie binnenin de buis en voel of er bij de opening van de buis wordt uitgeademd.
- Blaas de manchet van de buis op met lucht met een spuit totdat het lek rond de buis is dicht.
- Verbind een capnograaf; de aanwezigheid van een reguliere EtCO2-golfvorm bevestigt de plaatsing van de tracheale beweging.
- Bind de buis vast aan een bijtblok en bevestig de constructie stevig aan de onderkaak of maxilla met tape.
- Verbind de endotracheale buis met het circuit van de anesthesiemachine. Na de endotracheale intubatie wordt het dier overgebracht naar de operatiekamer.
- Spierverslapper: Na een IV-bolus van 0,5 mg/kg atracurium, houd de infusie vast op 5-10 μg/kg/min.
- Onderhoudsanesthesie: Dien ingeademde isoflurane toe bij 2-3%, en onderhoud met dexmedetomidine 1 u/kg en propofol 1-2 mg/kg/u. Gebruik succinylcholine 2 mg/kg als spierverslapper (varken is niet gevoelig voor cis-benzeen).
- Voer een punctie uit voor de voorste vena cava om de centrale veneuze druk (CVP) te monitoren.
- Palpeer de jugulargroeve tussen de voorrand van de sternocleidomastoïdeus en de luchtpijp.
- Maak een lengtesnede van 3-4 cm bij de overgang van het bovenste en middelste derde deel van de lijn die de mandibulaire hoek verbindt met het manubrium sterni.
- Snijd de huid en de subcutane fascia scherp in in lagen.
- Voer stomp dissectie uit door de platysma-spier om de halsslagader bloot te leggen.
- Mobiliseer een segment van 1-2 cm van de halsslagader met behulp van een pinda-dissector.
- Steek twee ligaturen onder het geïsoleerde vensegment (proximale ligatuur voor tractie; distal voor permanente ligatuur).
- Voer een venotomie uit door een V-vormige incisie te maken in de voorste veneuze wand tussen ligaturen met behulp van een irisschaar.
- Plaats de katheter met de afschuining naar beneden onder directe visualisatie om intraluminale plaatsing te garanderen.
- Schuif de katheter 15-20 cm naar voren tot aan de superieure vena cava (SVC).
- Bevestig de plaatsing door donker veneus bloed te aspireren.
- Hecht de fixatievleugel aan subcutane weefsels met 3-0 zijde.
- Sluit de wond in lagen (fascia: absorbeerbare hechtingen; huid: onderbroken niet-absorberend).
- CVP-monitoringopstelling: Aansluit in de volgende volgorde achter elkaar: katheter, 3-weg stopkraan, druktransducer, monitor.
- Nul de transducer op het niveau van de sternale hoek en start continue monitoring van de CVP-golfvorm.
- Verbind het 3-geleide elektrocardiogram en detecteer het elektrocardiogram gedurende het hele proces.
- Zorg voor toegang tot de femorale arterie voor bloeddrukmetingen indien nodig.
- Lokaliseer de puls van de arteriële femoralis ongeveer 2-3 cm onder het midden van de lijn die de voorste bovenste iliacale spine en pubicus tubercle verbindt.
- Maak een longitudinale incisie van 4-5 cm langs de as van de femorale arteriële puls.
- Incliceer de huid en het onderhuidse vet, en voer stomp dissectie uit via de fascia.
- Incère de femorale schede om de femorale arteria bloot te leggen en een segment van 2-3 cm van de femorale arteria te mobiliseren.
- Breng microvasculaire klemmen proximaal en distaal aan.
- Voer een transversale arteriotomie uit (50% van de arteriële omtrek).
- Plaats de katheter met de afschuining omhoog op 30°.
- Breng de katheter 8-10 cm naar de aorta toe.
- Bevestig pulserende stroom van felrood bloed.
- Naai de katheterfixatievleugel aan de diepe fascia met 5-0 Prolene hechtingen.
- Sluit de wond in lagen.
- Verbind elkaar in de volgende volgorde achter elkaar: de katheter, 3-weg stopkraan, druktransducer, monitor.
- Plaats de transducer op het niveau van het rechter atrium (4e intercostale ruimte/middenaxillaire lijn).
- Voer geen kalibratie uit en start continue drukmeting.
2. LVAD-implantatie
- Voer een mediane thoracotomie uit in de rugliggende positie; Suspendeer het pericard en herstel het zodat het hart blootligt.
- Heparinisatie: Geef natriumheparine-injectie (100 U/kg) via een centrale veneuze katheter. 3-5 minuten na injectie neem je een arteriële bloedmonster om de geactiveerde stollingstijd (ACT) te meten. De ACT-waarde moet > 480 s bereiken en behouden worden voordat een cardiopulmonale bypass (CPB) wordt gestart.
- Instelling van cardiopulmonale bypass
- Na het aansluiten van de cardiopulmonale bypass (CPB) circuitbuis, wordt het systeem geprimed met de voorbereide primingoplossing (natriumlactaat Ringer-injectie: Tetraspan 6% = 2:1, met toegevoegde heparine: 2 - 4 IU heparine per 1 mL van het totale primingvolume, natriumbicarbonaat: 5 - 10 mmol per 1000 mL primingvolume, enz.).
- Plaats twee koord-hechtingen met dubbelarmige verbindingen op de geselecteerde canulatieplaats aan de voorwand van de aorta.
- Inceer het midden van de koordnaden. Plaats een aortacanule van 22 F in. Bind de draaddraad stevig vast en zet de canule vast, zodat hemostase wordt gegarandeerd.
- Verbind het distale uiteinde van de canule met de arteriële lijn van de cardiopulmonale bypassmachine.
- Identificeer de cannulatieplaats bij het rechter atriumaanhangsel en plaats een enkele dubbelarmige hechting met een gepledged op de geselecteerde plek.
- Inceer het midden van de beurssnarenhechting met een scalpelblad. Plaats een 26 F veneuze canule en trek de koesdraadhechting strak om de canule.
- Verbind de canule met de veneuze lijn van de cardiopulmonale bypassmachine.
- Voer de LVAD-signaallijn van achteren door de subcutane tunnel en sluit deze aan op de controller om te voorkomen dat de pig tegen de signaallijn schuurt en deze na het ontwaken eraf laat vallen.
- Markeer het punt waar de signaallijn uitkomt aan de zijkant van de rug van het varken op een positie 3-5 cm van de middenlijn.
- Maak een incisie in de huid om een punt te maken. Gebruik een vasculaire tang om een stomp dissectie van het subcutane weefsel richting de linker vierde intercostale ruimte uit te voeren.
- Gebruik metalen tips om de signaaldraden door de onderhuidse tunnel te leiden. Het buitenste uiteinde is verbonden met de controller, en het binnenste uiteinde wordt gebruikt als back-up om de LVAD aan te sluiten.
- Bepaal de positie en richting van de mitralisklep met een echo.
- Plaats voorzichtig een steriele hoogfrequente lineaire array-probe (7-10 MHz) boven de niet-vasculaire zone van de apex van de linker ventrikel om belangrijke beeldvlakken te verkrijgen.
- In het linker ventrikel langas-aanzicht lokaliseert u de coaptatiezone tussen het voorste mitralisblad (segmenten A2/A3) en het achterste mitralisblad (segmenten P2/P3).
- In het aangepaste apicale vierkamerbeeld pas je de probe-hoek langs de rechter ventrikelvrije wand aan om de gehele mitralisklepcoaptatielijn te visualiseren.
- Bevries het beeld halverwege de diastole en meet vervolgens de loodrechte afstand van het midden van de vrije rand van de voorste mitralisblad tot het midden van de voorgestelde LVAD-instroomcanule (> 15 mm).
- Zorg ervoor dat de LVAD van tevoren succesvol is aangesloten op het kunstmatige bloedvat. Testen in normale zoutoplossing zorgt ervoor dat de LVAD goed functioneert en dat er geen lekkage is in het kunstmatige bloedvat.
- Gebruik een steriele chirurgische marker om de vaste positie van de apicale ring op de top van het hart te tekenen.
- Bevestig de bovenste ring op de apexpositie met een 5-0 hechtdraad met een pakking.
- Verwijder het myocarde in de pariëtale ring met een apicale punch en knip met pincet en schaar om te voorkomen dat fragmenten in de hartholte vallen.
- Laat alle lucht uit de LVAD-pomp komen door de LVAD in normale zoutoplossing te plaatsen, deze langzaam te laten lopen en te vullen met normale zoutoplossing.
- Blokkeer het kunstmatige bloed om te voorkomen dat er lucht binnenkomt.
- Plaats de LVAD-pompkop in de bovenste ring en zorg ervoor dat de pompkop de hartholte binnenkomt. Sluit het slot stevig vast en verwijder de bovenste ringklem.
- Bepaal de juiste lengte van het kunstmatige bloedvat (diameter: 8 mm) van de LVAD-pompkop tot de opstijgende aorta (15-20 cm).
- Plaats een gedeeltelijke occlusieklem anterolateraal op de opstijgende aorta.
- Maak een eerste steekincisie met een scalpelblad 1 cm distaal van de coronaire ostia.
- Verleng de incisie tot een ovale vorm met een schaar.
- Snijd een schuine opening (ongeveer 30°) uit en anastomose het uiteinde van de stijgende aorta om vervorming van het kunstmatige bloedvat te voorkomen.
- Achterwand (6 uur positie): Plaats een gepledgede hechting.
- Voorste wand (12-uur positie): Plaats een eenvoudige onderbroken hechting.
- Maak de resterende omtrek af met continue hechtingen en sluit de anastomose vast met chirurgische knopen.
OPMERKING: Laat 10% extra lengte in het vasculaire transplantat toe om overmatige spanning te voorkomen en ervoor te zorgen dat het graft gedurende het hele traject niet gedraaid en niet geknikt blijft.
- Controleer op bloedingen en verdere reparatie en hechting.
- Plaats de echoprobe op het oppervlak van het rechter atrium en voer een echoonderzoek uit om de positie van de LVAD-pompkop te observeren en te bevestigen dat de pomppositie correct was (de inlaatpoort van de LVAD is direct gericht op de tricuspidalklep).
- Programmeer de LVAD-controller om de gewenste rotatiesnelheid (rpm) en debiet te bereiken: Pas de juiste rotatiesnelheid en debiet aan op basis van het lichaamsgewicht en de hartminuut van het varken. Verhoog geleidelijk de flowsnelheid vanaf 1,0 L/min en houd de bloeddruk stabiel.
- Plaats de echosonde op de opstijgende aorta om de bloedstroom te onderzoeken. Zorg ervoor dat de bloedstroom door het kunstvat soepel is en dat er geen significante turbulentie in de aorta is.
- Plaats een drainagebuis in elk van de linker- en rechterruimtes van het hart en sluit een externe zuigfles onder negatieve druk aan.
- Lijn het borstbeen uit en sluit de borst laag voor laag.
- Steek vijf 5-0 roestvrijstalen sternaldraad door het borstbeen met een 18 G naaldgeleider, met één draad per intercostale ruimte. Draai de draden sequentieel en strak van de xiphoïde richting naar de cephalad.
- Benader de spier pectoralis major en fascia met een continue 3-0 Vicryl-naad.
- Sluit het subcutane weefsel met een begraven continue 2-0 monocryl hechting.
- Benader de huid opnieuw met onderbroken verticale matrashechtingen van 4-0 Nylon.
- Desinfecteer de incisieplaats met povidon-jodiumoplossing volgens de aseptische techniek.
3. Postoperatieve zorg
- Na de LVAD-implantatieoperatie wordt het varken overgebracht naar de intensive care voor monitoring. Registreer dagelijks de inname en output, inclusief bloeddruk- en LVAD-parameters. Verdoof het varken met intraveneuze infusie van propofol en reguleer de toediening van vasoactieve middelen (dopamine, isoproterenol, noradrenaline) om de hemodynamica stabiel te houden voor de eerste postoperatieve dagen.
- Postoperatieve pijnstillende behandeling: Van 0 tot 72 uur na de operatie, toegediend meloxicam: 0,4 mg/kg via subcutane injectie, elke 24 uur. Van 72 uur tot 7 dagen dient u meloxicam 0,2 mg/kg oraal toe, elke 24 uur.
- Gebruik vasoactieve middelen en regel de geschikte LVAD-stroom (1/3-1/2 van de normale hartminuut) om de normale bloedstroom bij varkens te behouden.
OPMERKING: Let goed op het observeren van de LVAD-signaallijnen en voorkom dat je door varkens wordt vertrapt of verstrikt raakt. - Geef een hartecho op de postoperatieve eerste, derde dag, zevende dag, tweede week en één keer per week. Als er bijna geen vloeistof rond het hart is, verwijder dan de drainageslangen.
- Postoperatief antistollingsregime: Haal arterieel bloed af met een 5 mL spuit uit de venekatheter voor ACT en monitoring van internationale genormaliseerde ratio (INR). Geef de eerste drie dagen een intraveneuze infuus heparine om de ACT rond de 150-200 seconden te behouden. Vanaf de derde dag zorg je ervoor dat het varken oraal warfarine (0,15-0,2 mg/kg/d) inneemt, waarbij de INR tussen 1,5 en 2 blijft. Stop met heparine wanneer de INR 1,5 bereikt.
- Postoperatief anti-infectie behandelplan: Dien cefazoline toe (25 mg/kg, elke 8 uur) gedurende 5-7 dagen.
- Postoperatieve LVAD-besturing en gegevensverzameling: Omdat een bekabeld LVAD-besturingssysteem wordt gebruikt, komen de signaallijnen uit de achterkant van de pig en verbinden ze met de monitorcomputer. Zorg er daarom na de operatie voor dat de signaallijnen van boven de kooi naar buiten komen en slap blijven voor langdurige controle en gegevensverzameling. Dit is om te voorkomen dat de signaallijnen loskomen door de beweging van het varken.
Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.
Resultaten
Om het model van LVAD-implantatie bij kinderen vast te stellen, gebruikten we dit protocol op een 3 maanden oude jonge landras, 33,8 kg zwaar, mannetje, die na 4 weken operatie 2,6 kg aankwam. Landrasvarkens bereiken doorgaans geslachtsrijping rond de leeftijd van één jaar. Dus het is absoluut jong zwijn. Zoals Figuur 1A laat zien, hebben we de LVAD-implantatieoperatie uitgevoerd volgens het protocol. Zoals het preoperatieve ...
Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.
Discussie
Het jonge landrace LVAD-implantatiemodel bood een methode om het gedetailleerde mechanisme van LVAD te onderzoeken, wat resulteerde in omgekeerde remodelering. Het kan worden gebruikt om de continue dynamische veranderingen van het myocard na de implantatie van een LVAD op verschillende tijdstippen te onthullen. Daarnaast is een myocardbiopsie beschikbaar om de myocardveranderingen van hetzelfde dier te volgen, wat het gebruik van dieren kan verminderen. Bovendien is het 3 maanden oude j...
Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.
Openbaarmakingen
Auteurs hoeven geen belangenconflicten te verklaren.
Dankbetuigingen
Dit werk werd gesponsord door het National Natural Science Fund for Distinguished Young Scholars of China (82125004; naar Jiangping Song), evaluatie van proefdieren met grote dieren voor zelfontwikkelde pediatrisch-specifieke implanteerbare ventrikelassisten, preklinische bevestiging van klinische doorbraken en het vaststellen van diagnostische en behandelnormen voor eindstadium hartfalen bij kinderen (2023YFC2706204); Frontier Biotechnology Key Project van het Nationaal Key R&D-programma van het Ministerie van Wetenschap en Technologie van China (2023YFC3404300; naar Jiangping Song), Speciaal Project van het Ministerie van Wetenschap en Technologie van China, ondersteund door het State Key Laboratory of Cardiovascular Disease, Fuwai Hospital en Chinese Academy of Medical Sciences (2024GZZD-03; naar Jiangping Song).
Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.
Materialen
```html
| Naam | Bedrijf | Catalogusnummer | Opmerkingen |
|---|---|---|---|
| 10-degree aortic cross-clamp | Sinoview | CP40431-19 | Aortische occlusie |
| 10-degree aortic cross-clamp | Sinoview | CP40431-19 | Aortische occlusie |
| 30-degree arch branch vascular clamp | Sinoview | CP40432-19 | |
| 45-degree aortic cross-clamp | Sinoview | CP40044-18 | |
| ACT-K Cartridge | Abbott | 03P74-25 | ACT-monitoring |
| ACT-LR Test Tubes | Medtronic | 809 | ACT-monitoring |
| Affinity Fusion Oxygenation System | Medtronic | BB841 | Cardiopulmonale bypass |
| Anesthesia machine | Mindray | A9 | Anesthesie en anderen |
| Apical Ring (Sewing Cuff) | Cor-Heart | - | Geïmplanteerde component. Genaaid aan de harttop om ondersteuning en afdichting te bieden voor de verbinding van de pomp met het hart. |
| Arterial cannula | Medtronic | 18Fr | Cardiopulmonale bypass |
| Atracurium | Hengrui Pharmaceutical | - | Anesthesie en anderen |
| Atraumatic flat forceps | SureMed | GF04021-25 | |
| Atraumatic flat forceps | SureMed | GF04021-25 | |
| Balanced handle pen-style microsurgical forceps | Sinoview | FC12010-21 | |
| Juvenile Landrace Swine | Institute of Zoology, Chinese Academy of Sciences, Northern Large Animal Research Facility | - | Experimentele dieren |
| Blood gas analyzer | Ediagnosis | PT1000 | Anesthesie en anderen |
| Cable Puller | Cor-Heart | - | Chirurgisch accessoire. Wordt tijdens de chirurgie gebruikt om de percutane kabel uit het lichaam te trekken. |
| Cardiopulmonary bypass circuit | Medtronic | B-HL-159 | Cardiopulmonale bypass |
| Central venous catheter | Baihe Medical | - | Anesthesie en anderen |
| Charger Base | Cor-Heart | - | Externe component. Laadt de batterij op. |
| CoaguChek XS PT Test Strips | Roche | 4015630936854 (EAN) | INR-monitoring |
| Communication Adapter | Cor-Heart | - | Optioneel extern onderdeel, herbruikbaar. Maakt communicatieverbinding mogelijk tussen de monitor en de controller. |
| Connector Protector | Cor-Heart | - | Externe component. Wordt gebruikt om de verbinding tussen de percutane kabel en de controllerkabel te versterken en connectorrotatie/losraken te voorkomen. |
| Connector Seal Sleeve | Cor-Heart | - | Chirurgisch accessoire. Wordt tijdens de chirurgie gebruikt om de kabeltrekker met de percutane kabel te verbinden en de afdichtingsintegriteit te garanderen. |
| Controller | Cor-Heart | - | Externe component. Verbindt zich met en bewaakt de werking van de pomp, en biedt alarmfuncties voor abnormaliteiten. |
| Coring Knife | Cor-Heart | - | Chirurgisch accessoire. Wordt tijdens de chirurgie gebruikt om een opening in de harttop te maken. |
| Curved forceps | SureMed | GC01002-16 | |
| Curved forceps | SureMed | GC01002-12 | |
| Curved forceps | SureMed | GC01002-16 | |
| Disposable blood microembolus filter | Sansin | FAF-2 | Cardiopulmonale bypass |
| Disposable blood reservoir filter | Sansin | FCR300K | Cardiopulmonale bypass |
| Disposable cardioplegia delivery system | Medtronic | XP41 | Cardiopulmonale bypass |
| Dopamine | Jiuan Pharmaceutical | - | Anesthesie en anderen |
| Endotracheal tube | Yaxin Medicine | YS-0000 | Anesthesie en anderen |
| Epinephrine | Jinyao Pharmaceutical | - | Anesthesie en anderen |
| Fine dissecting forceps | SureMed | GC01090-20 | |
| Fine dissection forceps | SureMed | GC01090-20 | |
| Heart-lung machine | LivaNova | S5 | Cardiopulmonale bypass |
| Heparin | North China Pharmaceutical | - | Anesthesie en anderen |
| Ice bucket | SureMed | GQ13018-00D | |
| Ice bucket | SureMed | GQ13018-00D | |
| Infusion pump | Sino MDT | SN-C8 | Anesthesie en anderen |
| INRatio PT/INR Test Strip | HemoSense | REF:0100071 | INR-monitoring |
| Intravenous catheter | KDL | 16G-26G | Anesthesie en anderen |
| Isoflurane | Lunan Pharmaceutical | - | Anesthesie en anderen |
| Isoproterenol | Harvest Pharmaceutical | - | Anesthesie en anderen |
| Lactated Ringer's Solution | Kelun Pharmaceutical | - | Anesthesie en anderen |
| Large basin | SureMed | GQ13033-00D | |
| Large basin | SureMed | GQ13033-00D | |
| Laryngoscope | Hanfeiyl | TD-C-III | Anesthesie en anderen |
| Lidocaine hydrochloride injection | Kelun Pharmaceutical co.,Ltd | H20057816 | |
| Magnesium sulfate for injection | Zdjt Pharmaceutical co.,Ltd | H20051792 | |
| Medical electric sternum saw | Jingdong xiji | HF-X01 | |
| Medical sternum saw, electric sternum saw | Jingdong xiji | HF-X01 |
Referenties
- Nickel, I., et al. Deactivation of LVAD support for myocardial recovery-surgical perspectives. J Heart Lung Transplant. 43 (9), 1489-1500 (2024).
- Burkhoff, D., Topkara, V. K., Sayer, G., Uriel, N. Reverse remodeling with left ventricular assist devices. Circ Res. 128 (10), 1594-1612 (2021).
- Burkhoff, D., Klotz, S., Mancini, D. M. LVAD-induced reverse remodeling: basic and clinical implications for myocardial recovery. J Card Fail. 12 (3), 227-239 (2006).
- Meissner, F., et al. Intra-aortic band impairs transapical device implantation in a pig: a case report. BMC Vet Res. 19 (1), 212(2023).
- Sakota, D., et al. Left ventricular assist device mode: co-pulse left ventricular unloading in a working mode of ex vivo heart perfusion. J Heart Lung Transplant. 42 (6), 707-715 (2023).
- Watanabe, K., Shih, R. Update of pediatric heart failure. Pediatr Clin North Am. 67 (5), 889-901 (2020).
- Howard, T. S., et al. Leadless pacemaker implantation in an adolescent with durable LVAD support. Pediatr Cardiol. , (2025).
- Schweiger, M., Miera, O. Not little adults: outcomes in pediatric intracorporeal LVAD patients. J Heart Lung Transplant. 43 (1), 182-183 (2024).
- Almond, C. S., et al. A prospective multicenter feasibility study of a miniaturized implantable continuous flow ventricular assist device in smaller children with heart failure. J Heart Lung Transplant. 43 (6), 889-900 (2024).
- Beltramo, F., et al. Validation of an ultrasound cardiac output monitor as a bedside tool for pediatric patients. Pediatr Cardiol. 37 (1), 177-183 (2016).
- Pagani, F. D., et al. Concomitant surgical procedures and aspirin avoidance with left ventricular assist device therapy. JACC Heart Fail. 13 (7), 1-13 (2025).
- Lilja, D., et al. Detection of inflow obstruction in left ventricular assist devices by accelerometer: a porcine model study. J Heart Lung Transplant. 42 (8), 1005-1014 (2023).
- Santiago, A., et al. Design and execution of a verification, validation, and uncertainty quantification plan for a numerical model of left ventricular flow after LVAD implantation. PLoS Comput Biol. 18 (6), e1010141(2022).
- De Lazzari, C., Ferrari, G., Mimmo, R., Tosti, G., Ambrosi, D. A desk-top computer model of the circulatory system for heart assistance simulation: effect of an LVAD on energetic relationships inside the left ventricle. Med Eng Phys. 16 (2), 97-103 (1994).
- Yu, X. Y., Shi, J. W., Zang, Y. R., Zhang, J. M., Liu, Z. G. Factors influencing the functional status of aortic valve in ovine models supported by continuous-flow left ventricular assist device. Artif Organs. 46 (7), 1334-1345 (2022).
Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.
Herprints en machtigingen
