Het onderzoeksprotocol werd goedgekeurd door de Ethische Commissie van het Tweede Geaffilieerde Ziekenhuis, Zhejiang Universiteit School voor Geneeskunde (nr. 2025-0581). Alle experimenten en procedures werden uitgevoerd volgens de Verklaring van Helsinki (zoals herzien in 2013). Deze retrospectieve studie omvatte 47 patiënten die werden opgenomen voor LETM in het Second Affiliated Hospital, Zhejiang University School of Medicine. Deze studie heeft geïnformeerde toestemming van alle deelnemers verkregen. Deze retrospectieve cohortstudie omvatte alle in aanmerking komende patiënten. Er werd een post-hoc vermogensanalyse uitgevoerd om de toereikendheid van de steekproefgrootte te beoordelen. De resultaten toonden aan dat met de huidige steekproefgrootte de waargenomen effectgrootte 1,213515 was, en de behaalde kracht (1-β err prob) 0,9659161, wat de conventionele drempel van 0,8 overschrijdt. Dus voldoet de steekproefgrootte aan statistische vereisten.
Patiëntenwerving
Inclusiecriteria: Inclusief patiënten die leden aan acute aanvallen, volledige klinische gegevens hebben, waarvan het serum negatief testte op MOG-, AQP4- en GFAP-antilichamen, en waarvan de getroffen segmenten meer dan of gelijk waren aan drie18. Uitsluitingscriteria: Sluit patiënten uit die andere ziekten hadden die invaliditeit kunnen veroorzaken, en patiënten die efgartigimod bij acute aanvang haddengeaccepteerd 18. Verzameling patiëntinformatie: Demografie, waaronder leeftijd, geslacht, ziekteduur en de lengte van de betrokken wervelsegmenten, werden geregistreerd.
Behandeling en klinische evaluatie
Groepeer patiënten volgens hun respectievelijke behandelregimes. Patiënten werden verdeeld in twee groepen: de efgeartigimod-behandelgroep (n = 11) en de conventionele behandelgroep (n = 36). In de efgatigimod-groep werden patiënten behandeld met 400 mg efgatimodmod-toediening gedurende 2 weken, samen met een intraveneuze infusie van 1.000 mg methylprednisolon gemengd met 500 mL 10% glucoseoplossing, toegediend gedurende eenbehandelperiode van 2 weken. In de traditionele behandelgroep werden patiënten behandeld met een intraveneuze infusie van 1.000 mg methylprednisolon gemengd met 500 mL 10% glucoseoplossing, toegediend over eenbehandelperiode van 2 weken.
Klinische beoordelingsparameters van de patiënten
De invaliditeit van patiënten werd geëvalueerd met een reeks indices, waaronder de uitgebreide invaliditeitsstatus schaal (EDSS) en de klinische zwakteschaal (CFS)20,21. De kwaliteit van leven van de patiënten werd beoordeeld met de Health Survey Short Form-36 (SF-36), inclusief lichamelijk functioneren (PF), geestelijke gezondheid (MH), pijn (PA), algemene gezondheid (GH), vitaliteit (VT), sociaal functioneren (SF), rol-emotioneel (RE) en rol-fysiek (RP)22.
Meting van interleukine-6 (IL-6), IL-10 en IL-41
Nuchtere bloedmonsters werden 's ochtends afgenomen. Serum werd uit het bloed geïsoleerd door 10 minuten centrifugatie op 1.000 x g en opgeslagen bij -80 °C voor verdere analyse. De opslagduur van alle monsters varieerde van 6 tot 48 maanden.
Serumniveaus van IL-6, IL-10 en IL-41 werden gemeten met enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) kits, volgens de instructies van de fabrikant (Table of Materials). Evenwichtig alle reagentia uit de ELISA-kit tot kamertemperatuur gedurende 20 minuten vóór de test. Standaard-, monster- en blancoputten werden gebruikt. 50 μL standaardoplossing bij verschillende concentraties (0-100 pg/mL) werd toegevoegd aan de standaardputten, 50 μL van het serummonster werd toegevoegd aan de monsterputten, en 50 μL monsterverdunner werd toegevoegd aan de blanco putten. Een wasbuffer werd gemaakt door de geconcentreerde wasoplossing te verdunnen met dubbel gedestilleerd water in een verhouding van 1:24. De voorbereide buffer werd op dezelfde dag gebruikt om optimale wasefficiëntie te garanderen.
Het werkvolume van de oplossing werd berekend op basis van experimentele eisen (100 μL per put). 15 minuten voor gebruik centrifugeerde het 100x geconcentreerde biotinylatie-antilichaam op 7.150 x g gedurende 1 minuut en verdund met een biotinyleerde antilichaamverdunningsbuffer in een verhouding van 1:99 om een werkconcentratie van 1x te bereiken. Gebruikte onmiddellijk de voorbereide werkoplossing om zijn activiteit voort te zetten. De HRP-conjugatie bestond uit HRP-geconjugeerde streptavidine. Het vereiste volume werd berekend op basis van experimentele eisen (100 μL per put), met een extra 100-200 μL bereid om een voldoende hoeveelheid te garanderen. 15 minuten voor gebruik centrifugeerde het 100x geconjugeerde HRP-conjugaat op 11.173 x g gedurende 1 minuut en verdund vervolgens met een HRP-geconjugeerde verdunningsbuffer in een verhouding van 1:99 om een 1x werkconcentratie te bereiken. Gebruikte onmiddellijk de voorbereide werkoplossing om zijn activiteit te behouden.
Bereid standaardputten (100 μL verdunde standaardputten), blanco putten (100 μL standaard- en monsterverdunningsbuffer) en monsterputten (100 μL verdund testmonster) dienovereenkomstig voor. Nadat de oplossingen zijn toegevoegd, sluit je de plaat af met een membraan en broede je 1,5 uur op kamertemperatuur. Na de incubatie verwijder je de vloeistof uit de wells zonder te wassen. Vervolgens werd 100 μL biotinyleerde antilichaamwerkoplossing aan elke put toegevoegd. Sluit de plaat af en incubeer bij 37 °C gedurende 1 uur om de binding van het biotinyleerde antilichaam aan de antigeen-antilichaamcomplexen te vergemakkelijken. Na de incubatie verwijder je de vloeistof uit de vellen en dep je de plaat droog op schoon absorberend papier. Vul elke put met 350 μL wasbuffer en laat het 1 minuut staan. Na het verwijderen van de vloeistof dep je het bord weer droog op absorberend papier. Deze wasprocedure vier keer herhaald.
Voeg na het wassen 100 μL enzymconjugaatwerkoplossing toe aan elke put. Sluit de plaat af en incubeer 30 minuten bij 37 °C om een volledige binding tussen het HRP-conjugaat en het biotinyleerde antilichaam mogelijk te maken. Na de incubatie verwijder je de vloeistof volledig uit de holtes en dep je de plaat droog op schoon, absorberend papier. Herhaal de hierboven beschreven wasprocedure 5 keer om de ongebonden enzymconjugaten grondig te verwijderen en niet-specifieke reacties te minimaliseren. Voeg na het wassen 90 μL substraatoplossing toe aan elke put. Sluit de plaat af en broei ongeveer 15 minuten in het donker op 37 °C. De microplaatlezer werd 15 minuten voorverwarmd om detectienauwkeurigheid te garanderen. Na de incubatie werd 50 μL stopoplossing aan elke put toegevoegd om de kleurontwikkeling en enzymatische reactie te beëindigen. Nadat de reactie was beëindigd, werd de optische dichtheid (OD) bij 450 nm van elke put onmiddellijk gemeten, en werden de resultaten geregistreerd met een microplaatlezer voor latere data-analyse en berekening.
Statistische analyse
Statistische analyse werd uitgevoerd op SPSS 27.0 en GraphPad Prism 8.4.3. Onafhankelijke steekproeven t-test en χ2-test werden gebruikt om basislijngegevens tussen de twee groepen te vergelijken. De gepaarde steekproef t-test of Wilcoxon-test werd gebruikt om klinische scores en levenskwaliteitsscores voor en na behandeling te vergelijken. Daarnaast werden de niveaus van serum IL-6, IL-10 en IL-41 voor en na de behandeling vergeleken met behulp van een gepaarde t-test. Een vergelijking tussen de twee groepen werd uitgevoerd met behulp van een onafhankelijke steekproef t-test. De Pearson-correlatiecoëfficiënt werd gebruikt om de correlatie tussen het niveau van ontstekingsfactoren en EDSS te meten. Verschillen werden als statistisch significant beschouwd bij p < 0,05.