Dertig mannelijke C57BL/6J-muizen, 7-8 weken oud en met een gewicht van 18-22 g (zie Materiaaltabel), werden ondergebracht in een SPF-faciliteit van het New Drug Evaluation Center van het Hebei Yiling Pharmaceutical Research Institute. De omgevingstemperatuur bleef 20-26 °C met een relatieve luchtvochtigheid van 40%-70%, onder een licht/donker cyclus van 12/12 uur. De muizen hadden ad libitum toegang tot standaard laboratoriumvoedsel voor knaagdieren en schoon water. Na een acclimatisatieperiode van 1 week werden de muizen willekeurig verdeeld in drie groepen (n = 10): de normale controlegroep (Con), de chronische hypoxiemodelgroep (CH) en de behandelgroep met chronische hypoxie plus elektroacupunctuur (CH+EA). Alle experimentele procedures zijn goedgekeurd door de Ethische Commissie voor Dieronderzoek van het Hebei Yiling Farmaceutisch Onderzoeksinstituut (Goedkeuringsnummer: TTN-2025001) en werden strikt uitgevoerd volgens de richtlijnen voor de verzorging en het gebruik van proefdieren.
Vaststelling van een chronisch hypoxie-muismodel (Figuur 1)
Het model van chronische hypoxie van de muis is opgesteld op basis van een eerder beschreven methode met aanpassingen17. Een geautomatiseerd gasregel- en leveringssysteem werd gebruikt om een hypoxische omgeving te genereren en te onderhouden. Dit systeem was geprogrammeerd om solenoïdekleppen nauwkeurig te regelen die zuivere zuurstof en stikstof in een specifieke verhouding mengden, waardoor het mengsel in een op maat gemaakte roestvrijstalen hypoxiekamer werd gebracht. Deze opstelling maakte nauwkeurige controle mogelijk over zowel de timing als de concentratie van de gasafgifte. De zuurstofconcentratie in de kamer werd continu gemonitord met een digitale zuurstofanalyzer en gehandhaafd op 10,0% ± 0,5% via een terugkoppelingsmechanisme dat de gasstroom dienovereenkomstig aanpaste. Muizen in de CH- en CH+EA-groepen werden samen gehuisvest in de hypoxiekamer en onderworpen aan hypoxische omstandigheden gedurende 8 uur per dag (van 9:00 tot 17:00 uur), waarna ze voor de rest van de dag werden teruggebracht naar normoxische omstandigheden. Dit protocol werd dagelijks herhaald gedurende 12 weken. Gedurende de hypoxische blootstelling hadden dieren ad libitum toegang tot voedsel en water. Tijdens de eerste stikstofinfusie werd speciale zorg besteed aan het verminderen van de zuurstofconcentratie; Dit proces werd geleidelijk uitgevoerd om acute diersterfte als gevolg van een snelle daling van het zuurstofgehalte te voorkomen. Muizen in de Con-groep werden onder normoxische omstandigheden gehuisvest in een aangrenzende kamer, waarbij alle andere huisvestingsomstandigheden identiek waren aan die van de experimentele groepen.
Anesthesie (Figuur 2)
Om de stabiliteit van dieren tijdens de elektroacupunctuurinterventie te waarborgen en interferentie door fysiologische stress op de uitkomsten te minimaliseren, werd ingeademde isofluraan gebruikt voor anesthesie in deze studie17. Anesthesie werd toegediend aan alle muizen in de experimentele groepen tijdens procedures om consistente operationele omstandigheden te waarborgen. Voorafgaand aan de anesthesie werden een anesthesiemachine voor kleine dieren (zie Materiaaltabel) en een thermostatisch geregeld verwarmingskussen ingesteld op 37 °C voorbereid om onderkoeling bij de dieren tijdens de ingreep te voorkomen. Anesthesie-inductie werd uitgevoerd in een afgesloten inductiekamer met 2%-2,5% isofluraan (zie Materiaaltabel) gedurende ongeveer 1 minuut. Na het verlies van spontane beweging en een significante vermindering van de spiertonus werd elke muis overgebracht naar het verwarmingskussen. Een speciaal ontworpen miniatuurmasker werd voorzichtig over de snuit geplaatst om de anesthesie te behouden met 0,5%-1,2% isofluraan. De effectieve diepte van de anesthesie werd bepaald door het ontbreken van de knipperreflex en het ontbreken van een significante terugtrekkingsreflex als reactie op plantaire stimulatie. Dit anesthesieprotocol hield een stabiele anesthesietoestand in de muizen gedurende meer dan 30 minuten, wat voldoende was om alle volgende procedures te voltooien.
Elektroacupunctuurbehandeling
Elektroacupunctuurinterventie begon voor de CH+EA-groep muizen in de elfde week van chronische hypoxie-blootstelling. De geselecteerde acupunkturen waren Baihui (GV20) en Shenting (GV24) op het hoofd, samen met bilaterale Zusanli (ST36). GV20 bevindt zich op de middenlijn van het schedelvertex, ongeveer in het midden tussen de twee oorpunten18. GV24 bevindt zich op de middellijn van het voorhoofd, ongeveer 1-2 mm boven het midden van de lijn die de binnenste canthi van de ogen19 verbindt. ST36 bevindt zich op de achterste ledemaat, onder en lateraal van het kniegewricht, in een deuk ongeveer 2 mm onder de onderrand van het kuithoofd20,21. Nadat de muizen een stabiele anesthesietoestand hadden bereikt, hield de operator een wegwerpbare, steriele roestvrijstalen acupunctuurnaald (specificatie: 0,18 × 7 mm; zie Materiaaltabel) in de rechterhand. Voor de hoofdacupunkturen (GV24 en GV20) werd de hoofdhuid voorzichtig met de linkerhand opgetild, en werd de naald subcutaan ingebracht onder een hoek van 15-30°, met een diepte van ongeveer 2 mm naar achteren. Voor het ST36-acupointuur op de onderste ledemaat werd de naald loodrecht op een diepte van ongeveer 3-4 mm ingebracht. De uitgangselektroden van het elektroacupunctuurapparaat (zie Materiaaltabel) werden vervolgens aangesloten op de naaldhandvatten: één set elektroden verbond GV20 en de linker ST36, terwijl de andere set GV24 en de rechter ST36 verbond. Gelijktijdige elektroacupunctuurstimulatie werd toegepast via twee draadsets. EA-parameters werden als volgt ingesteld: continue golf, 2 Hz frequentie22,23. De stroomintensiteit werd geleidelijk verhoogd van 0,1 mA totdat er een lichte ritmische twitching van het lokale ledemaat werd waargenomen (meestal rond de 2 mA). Elektroacupunctuur werd eenmaal per dag uitgevoerd gedurende 30 minuten, onafgebroken gedurende 6 dagen met 1 rustdag, voor een totale periode van 2 weken. Ondertussen ondergingen muizen in de Con- en CH-groepen een anesthesie en fixatie van identieke duur en omstandigheden, maar zonder naaldinsteek of activatie van het elektroacupunctuurapparaat.
Open veldtest
De Open Field Test (OFT) werd uitgevoerd om de spontane locomotorische activiteit, verkennend gedrag en angstachtige reacties van muizen in eennieuwe omgeving te evalueren. Het OFT-apparaat was een wit hokje (50 cm 50 cm 30 cm), waarvan de vloer vrijwel was verdeeld in een raster van 25 vierkanten (elk 10 cm 10 cm) voor gedragsanalyse. Voorafgaand aan de formele test werden alle muizen 1 uur geacclimatiseerd aan de testruimte om de impact van stress veroorzaakt door de omgevingsverandering op gedragsuitkomsten te minimaliseren. Tijdens het testen werd elke muis voorzichtig in het midden van het apparaat geplaatst. Na een habituatieperiode van 2 minuten werd het gedrag formeel geregistreerd voor 10 minuten. De hele sessie werd opgenomen met een videotrackingsysteem (zie Materiaaltabel) om het bewegingstraject automatisch te volgen. Geanalyseerde parameters omvatten de totale afgelegde afstand, tijd doorgebracht in de middenzone, snelheid in de middenzone en het aantal ingangen in de middenzone. Alle muizen begonnen de verkenning vanaf dezelfde centrale locatie, en elke muis werd slechts één keer getest. Om reukstoornissen te voorkomen, werd het apparaat grondig gereinigd met 75% ethanol na het testen van elke muis
Morris waterdoolhof (MWM)
De Morris water maze (MWM) test, een standaardmethode om geheugenfunctie te beoordelen, werd voornamelijk gebruikt om ruimtelijk leren en geheugencapaciteiten bij muizen25 te evalueren. Het apparaat bestond uit een cirkelvormig bassin, 120 cm in diameter en 30 cm diep, dat conceptueel was verdeeld in vier gelijke kwadranten (I, II, III, IV). Om externe afleidingen te minimaliseren, werden verduisteringsgordijnen rond het zwembad gehangen en werden duidelijke visuele aanwijzingen op de muren erboven bevestigd, die gedurende het hele experiment constant bleven. Het bassin werd gevuld met water dat op 22-24 °C werd gehouden, en het waterpeil bleef ongeveer 1 cm boven het platformoppervlak staan. Niet-giftig titaniumdioxidepoeder werd aan het water toegevoegd met een concentratie van 20% om het ondoorzichtig te maken, waardoor het contrast tussen de muis en de achtergrond werd verbeterd voor nauwkeurigere videotracking. De experimentele procedure duurde 6 opeenvolgende dagen en bestond uit een 5-daagse ruimtelijke acquisitietrainingsfase gevolgd door een ruimtelijke probe van één dag. Tijdens de trainingsfase werd een cirkelvormig platform met een diameter van 10 cm geplaatst in kwadrant III, dat als doellocatie diende. Op de eerste dag werd het platform iets boven het wateroppervlak geplaatst (~1 cm) om de muizen vertrouwd te maken met het ontsnappingsdoel. Van dag 2 tot 5 was het platform ongeveer 1 cm onder water om ruimtelijk leren te beoordelen. Elke dag werd elke muis in een vooraf bepaalde volgorde in het water geplaatst, gericht op de zwembadwand, met het gezicht naar de zwembadwand. De onderzoeker verliet direct de kamer nadat hij het dier had geplaatst om te voorkomen dat het een onbedoeld ruimtelijk signaal werd. De tijd die nodig was om het verborgen platform te vinden (ontsnappingslatentie) werd voor elke proef geregistreerd. Als een muis het platform niet binnen de afkaptijd van 90 seconden vond, werd hij voorzichtig naar het platform geleid en daar 30 seconden gelaten om ruimtelijk leren te versterken, en werd de latentie geregistreerd als 90 seconden. Als de muis het platform binnen 90 seconden vond, mocht hij er 10 seconden op blijven staan. Na elke trainingssessie werd de muis afgedroogd met een handdoek en teruggebracht naar zijn thuiskooi. De volgorde van het startkwadrant werd systematisch gevarieerd, met een interval van ongeveer 20 minuten per muis. Een videotrackingsysteem (zie Materiaaltabel) registreerde automatisch parameters zoals zwemafstand, snelheid en ontsnappingslatentie. Op de zesde dag werd een probe-proef uitgevoerd om het ruimtelijke geheugen te beoordelen. Het platform werd verwijderd uit het doelkwadrant (kwadrant III), en elke muis werd losgelaten uit het kwadrant tegenover de vorige doellocatie (kwadrant I) en mocht 90 seconden vrij zwemmen. De tijd die in het doelkwadrant werd doorgebracht (waar het platform zich eerder bevond), het aantal overgangen over de exacte voormalige platformlocatie en de zwembaan werden geregistreerd. Direct na de probe-proef werd de muis grondig gedroogd en teruggebracht naar zijn thuiskooi onder een warmtebron om onderkoeling te voorkomen. Gedurende het hele experiment bleven de posities van alle visuele aanwijzingen rondom het doolhof ongewijzigd om consistentie in de experimentele omstandigheden te waarborgen.
Echocardiografie
Echocardiografie bij muizen is een niet-invasieve realtime beeldvormingstechniek die cruciaal is voor het beoordelen van de hartstructuur en -functie, en is uitgebreid toegepast in onderzoek naar cardiovasculaire ziekten. Het onderzoek wordt uitgevoerd onder algehele anesthesie, waarbij de anesthesietoestand gedurende de hele procedure behouden blijft volgens het eerder beschreven protocol. De muis staat op rug op een thermostatisch bediend platform dat op 37 °C wordt gehouden. Nadat de ledematen voorzichtig zijn vastgezet, wordt een depilatiecrème gelijkmatig aangebracht op het thoracale en buikgebied. Alle haar- en restcrème worden na 1-2 minuten grondig verwijderd om een optimale echotransmissie te garanderen. Voor fysiologische monitoring in realtime worden elektrodepatches gebruikt die via geleidende gel met de ledematen zijn verbonden om continu het elektrocardiogram en de ademhalingsfrequentie vast te leggen. Om standaard ultrageluidsbeelden te verkrijgen, wordt de positie van de muis zo aangepast dat de kop iets hoger is dan de staart, zodat de lange as van het hart parallel aan het platform loopt. Er wordt speciale zorg besteed aan het voorkomen van overmatige druk op de borstwand met de sonde, omdat dit de hartgeometrie kan veranderen en de meetnauwkeurigheid kan beïnvloeden. Er wordt een royale hoeveelheid bubbelvrije ultrageluidsgel (2-5 mm dik) op het geschoren gebied aangebracht. Er wordt een hoogfrequente lineaire array-probe (30-50 MHz) gebruikt, waarbij de oriëntatiemarkering van de probe consequent naar de kop van de muis wijst. De sonde wordt aanvankelijk parallel aan de lange as van het lichaam van de muis geplaatst en vervolgens ongeveer 30°-45° tegen de klok in gedraaid. Fijne aanpassingen worden gedaan om een duidelijk parasternaal langasbeeld van de linker ventrikel te krijgen. Dynamische beeldacquisitie begint zodra het echobeeld duidelijk de linker ventrikelkamer, aorta- en mitraliskleppen laat zien, en de horizontale uitlijning van de hartapex met de aorta-uitstroombaan laat zien. Alle beelden worden gemaakt door een ervaren operator met consistente parameterinstellingen om de gegevensvergelijkbaarheid te waarborgen. Na het onderzoek wordt de echoprobe volgens standaardprocedures schoongemaakt en wordt eventuele resterende gel van het lichaam van de muis verwijderd. De muis wordt vervolgens overgebracht naar een warme kooi voor nauwlettend toezicht totdat hij volledig hersteld is van de narcose en weer normaal kan lopen.
Bereiding van paraffinesecties
Na afronding van gedragstests werden de muizen verdoofd via intraperitoneale injectie van natriumpentobarbital (20 mg/kg). Systemische fixatie werd vervolgens bereikt door transcardiale perfusie met zoutoplossing, gevolgd door 10% paraformaldehyde (zie Materiaaltabel). Nadat het hersenweefsel zorgvuldig was verwijderd, werden ze 72 uur fixatie bij kamertemperatuur ondergedompeld in 10% paraformaldehyde. Het is belangrijk op te merken dat, omdat cardiale perfusie de microstructuur van het hart verandert, de hartmonsters die voor histologische analyse in deze studie werden gebruikt, specifiek afkomstig zijn van muizen die de perfusieprocedure niet hebben ondergaan, terwijl alle andere hanteringscondities identiek bleven. Na voltooiing van de fixatie werden de weefsels 6 uur onder stromend water gespoeld. De daaropvolgende gradiëntdehydratie werd uitgevoerd met een geautomatiseerde weefselverwerker (zie Materiaaltabel), waarbij sequentiële onderdompeling in 60%, 70% en 90% ethanol voor elk 1 uur werd toegepast, gevolgd door 95% en 100% ethanol voor elk 2 uur. De gedehydrateerde monsters werden vervolgens 2 uur in xyleen vrijgemaakt en 3 uur geïnfiltreerd met paraffine bij 60°C. Ten slotte werden de weefsels met behulp van een inbeddingsmachine in paraffine ingebracht, wat gegarandeerd standaard anatomische oriëntatie verzorgde. Nadat de ingebedde blokken volledig waren gestold, werden seriële secties van 4 μm dik met een roterend microtoom gesneden, gemonteerd op poly-L-lysine-gecoate glasglaasjes, aan de lucht gedroogd en opgeslagen voor latere kleuring en analyse.
Hematoxyline-eosine-kleuring
Het histologisch onderzoek van hersen- en hartweefsel werd uitgevoerd met behulp van hematoxyline- en eosinekleuring (HE) om hypoxisch letsel te beoordelen en de therapeutische effecten van elektroacupunctuurinterventie te evalueren. Weefselsecties, 4 μm dik, werden eerst gedeparaffiniseerd in xyleen I en xyleen II (elk 10 minuten) en vervolgens gerehydrateerd via een gegradueerde ethanolserie (100%, 95% en 80%, elk 2 minuten), gevolgd door een laatste spoeling met gedestilleerd water. Voor de kleuring werden de secties 3-8 minuten ondergedompeld in hematoxyline-oplossing totdat er een duidelijke nucleaire kleuring was bereikt, onder stromend water afgespoeld om blauwing te induceren, en vervolgens 1-3 minuten tegengekleurd met eosine om een geschikte roze kleur in het cytoplasma te bereiken. Ten slotte werden de gekleurde delen gedehydrateerd in absolute alcohol, gezuiverd met xyleen en gemonteerd met neutrale balsem.
Nissl-beitsing
Om de overlevingsstatus van neuronen in het hippocampale gebied te evalueren, werd Nissl-kleuring gebruikt om de verdeling van Nissl-lichamen en cellulaire morfologie binnen neuronen te observeren. Na deparaffinisatie en rehydratatie van de paraffinesecties van het hersenweefsel werden de plakjes ondergedompeld in een voorverwarmde toluidineblauwe kleuroplossing en 1 uur geïncubeerd bij 56 °C in een incubator bij constante temperatuur. Na het kleuren werden de secties voorzichtig afgespoeld met gedestilleerd water en vervolgens enkele seconden tot 2 minuten in een Nissl-differentiatieoplossing gebracht. Het differentiatieproces werd zorgvuldig onder een microscoop gevolgd totdat de achtergrond bijna kleurloos werd. Vervolgens werden de gedifferentieerde secties snel gedehydrateerd door een absolute ethanolreeks, vrijgemaakt in xyleen en uiteindelijk gemonteerd met neutrale hars voor permanente conservering en observatie.
Masson trichrome kleuring
Masson trichrome kleuring, een klassieke bindweefselkleuringstechniek, werd voornamelijk gebruikt om collageenvezels te onderscheiden van spiervezels in hartweefsel. Na deparaffinisatie en rehydratatie van de cardiale paraffinesecties werd de kleuringsprocedure uitgevoerd volgens de instructies van de fabrikant die bij de Masson trichrome kleurkit werden geleverd (zie Materiaaltabel). Het kleuringsprotocol werd als volgt uitgevoerd. Aanvankelijk werden de secties 4 minuten ondergedompeld in een vers bereide Weigert's ijzerhematoxyline werkoplossing om de kernen te kleuren, met zachte beweging om een uniforme kleuring te garanderen. Vervolgens werden de secties afgespoeld onder stromend water, gedifferentieerd in 1% zuur alcohol gedurende 5-10 seconden, en vervolgens 4 minuten behandeld met een blauwe oplossing om een duidelijke blauw-paarse nucleaire kleuring te bereiken. De secties werden vervolgens 5 minuten gekleurd met een ponceauzuurfuchsine oplossing, gevolgd door differentiatie in 0,2% fosfofolybdiczuuroplossing gedurende 1 minuut. Na een korte spoeling in een zwakke zuur werkoplossing van 1 minuut, werden de secties 2 minuten gekleurd met een 0,2% anilineblauwe oplossing (pH 6,8) om de collageenvezels te benadrukken. Na voltooiing van de kleuringsstappen werden de secties gedehydrateerd via een gegradeerde ethanolserie, gezuiverd met xyleen en uiteindelijk gemonteerd met neutrale balsem. Alle gemonteerde secties werden digitaal vastgelegd met een volledig geautomatiseerd dia-scansysteem (zie Materiaaltabel) voor verdere analyse.
Statistische analyse
De verkregen resultaten worden gepresenteerd als het gemiddelde ± SEM. De gegevens werden geanalyseerd met eenrichtings-ANOVA, gevolgd door de LSD post hoc test of t-test. Tweerichtings-ANOVA werd gebruikt om de gegevens van de OFT en MWM te analyseren. p < 0,05 werd beschouwd als het significantieniveau. De statistische analyse en grafieken zijn gemaakt door de GraphPad Prism 9.0-software.