$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Histon posttranslationele modificaties (hPTM's) zijn centrale regulatoren van chromatineorganisatie en genexpressie. Hun ontregeling wordt in verband gebracht met ontwikkeling, kanker en veroudering. Hoewel massaspectrometrie de voorkeursmethode is om hPTM's te bestuderen, zijn de meeste protocollen ontworpen voor bulkmonsters en kunnen ze cel-tot-cel variabiliteit niet oplossen. Het uitbreiden van histon-PTM-analyse naar het enkelcelniveau is daarom essentieel maar technisch uitdagend, omdat histonen laag in aantallen, rijk aan lysine zijn en sterk gemodificeerd.
Hier beschrijven we een geautomatiseerde single-cell proteomics-workflow voor histon-PTM-analyse met behulp van nanovloeistofbehandeling. Het systeem maakt nanoliter-schaal verwerking van individuele cellen mogelijk met minimale behandeling en hoge reproduceerbaarheid. De workflow omvat de vertering met ArgC Ultra-protease, die arginineresiduen klijvt en de noodzaak van lysineblokkerende derivatisatiestappen, die typisch zijn bij histonproteomics, vermijden. Om kwantitatieve vergelijkingen tussen aandoeningen mogelijk te maken, passen we een twee-plex labelingsstrategie toe met propionanhydride en zijn deutere analoog propionanhydride-d10. Deze combinatie van geautomatiseerde monstervoorbereiding, isotopenmultiplexing en ArgC Ultra-digestie resulteert in een gestroomlijnd en gevoelig protocol voor single-cell histon PTM-analyse.
De methode maakt het mogelijk om chromatine-heterogeniteit en de effecten van epigenetische verstoringen bij enkelcelresolutie te onderzoeken. Om de workflow te demonstreren, genereerden we sferoïden uit HepG2/C3A hepatocellulaire carcinoomcellen en behandelden deze met natriumbutyraat, een histondeacetylase-remmer die hyperacetylatie induceert.