Algemene informatie
De patiënt, een 15-jarig meisje, kreeg in oktober 2022 een koorts van onbekende oorsprong. De koortsaanvallen vonden vooral 's nachts plaats, met een maximumtemperatuur van 38,3 °C, en gingen gepaard met keelpijn, rillingen en vermoeidheid. Eerste bloedtesten toonden een licht verlaagd aantal witte bloedcellen, normale C-reactieve eiwitniveaus, verhoogde lymfocyten en een EBV-DNA-niveau van 1,50 × 103 kopieën/mL, wat leidde tot de diagnose infectieuze mononucleose. Na symptomatische en ondersteunende behandeling verbeterden haar klachten. Drie maanden later kreeg ze echter terugkerende koorts, met temperaturen die piekten tot 38,5 °C, samen met een droge hoest en het verschijnen van een massa van 1 cm × 1 cm in de linker frontale en temporale regio's, evenals meerdere vergrote bilaterale cervicale lymfeklieren. Herhaalde EBV-DNA-tests toonden een niveau van 1,99 × 103 kopieën/mL, en een perifere bloeduitstrijkje toonde 38% lymfocyten, wat overeenkomt met een diagnose CAEBV (voldoet aan diagnostische criteria: aanhoudende infectieuze symptomen langer dan 6 maanden, aanhoudende verhoging van EBV-DNA). Ondanks behandeling met ganciclovir, koortsonderdrukkende middelen en vochtvervanging bleven haar symptomen aanhouden. In februari 2023 had de patiënt aanhoudende hoge koorts, met temperaturen die consequent boven de 40°C lagen, samen met pijn aan de rechterkant op de borst en benauwdheid op de borst. Positronemissietomografie-computertomografie (PET-CT) toonde verdikking van het subcutane zachte weefsel met verhoogde metabole activiteit in de linker frontale, temporale en pariëtale regio's. Daarnaast werd diffuse verdikking van het rechter pleura met verhoogde metabole activiteit, meerdere hypermetabole en vergrote lymfeklieren diep in de bilaterale middenrifma's en hypermetabole brandpunten in de rechter costale boog en linker schaambeen waargenomen, wat wijst op een hoge kans op multisysteembetrokkenheid door een kwaadaardige lymfohematopoëtische tumor (Figuur 1A).
Een biopsie van de massa van de hoofdhuid toonde een pathologie die overeenkomt met ENKTL. Het merendeel van het biopsieweefsel vertoonde necrotische veranderingen, waaronder necrose van het gestrieerde spierweefsel. Atypische cellen met grote, donker kleurende kernen werden waargenomen die de gebieden rondom resterende bloedvaten binnendrongen, met overvloedig nucleair puin op de achtergrond. De immunohistochemische bevindingen waren als volgt: CK (-), CD3 (+), CD5 (-), CD10 (-), CD4 (-), CD8 (+), CD2 (+), CD7 (-), CD43 (+), CD20 (-), CD56 (+), Granzyme B (+), TIA-1 (+), Ki-67 (hoge proliferatie-index, ~90%), CD79a (-), CD34 (-), CD117 (-), TdT (-) en EBER (+) (Figuur 2). Moleculaire pathologie bevestigde RNA-positiviteit die door het Epstein-Barr-virus werd gecodeerd. Bevindingen van beenmerguitstrijk, pathologie en flowcytometrie waren niet opvallend. De patiënt had in het vroege stadium lymfadenopathie, maar er werd geen lymfeklierbiopsie uitgevoerd, waardoor het onmogelijk was om het initiële aanvangsmoment van ENKTL vast te stellen. Definitieve diagnose: ENKTL is getransformeerd van CAEBV.
Chemotherapiecyclus
De patiënt begon op 8 maart 2023 met chemotherapie met het VDLP-regime, dat onder andere vincristine (2 mg op dag 1, 8, 15 en 22), doxorubicine-liposoom (20 mg op dag 1, 8, 15 en 22), pegaspargas (op dag 2 en 16) en prednison (80 mg op dag 1–21) omvatte. Tegelijkertijd werden symptomatische en ondersteunende behandelingen verbeterd. Na chemotherapie ontwikkelde de patiënt neutropenie met koorts en abnormale stollingsfunctie. Deze complicaties werden behandeld met anti-infectieuze therapie met cefoperazone-sulbactam, meropenem en caspofungin. Transfusies van bloedproducten, waaronder cryoprecipitaat, plasma en bloedplaatjes, werden ook toegediend. Na de eerste chemotherapiecyclus was er een lichte krimp van de lymfeklieren van de patiënt, maar de koorts keerde af en toe terug. De patiënt voldeed aan 6 van de 8 diagnostische criteria voor HLH volgens de HLH-2004-richtlijnen: (1) aanhoudende koorts; (2) verhoogde oplosbare CD25 (4213 U/mL); (3) verminderde NK-celactiviteit (13,8%); (4) serumferritine 742,5 ng/mL (normaal: 13–150 ng/mL); (5) splenomegalie; (6) hemofagocytose bij beenmerguitstrijkjes, waarbij voldeend aan de HLH-diagnostische criteria17. Op 7 april 2023 werd het chemotherapieregime omgezet naar MEAD (reden: het MEAD-regime bevat krachtigere antitumor- en ontstekingsremmers zoals mitoxantroneliposoom en etoposide, die beter geschikt zijn voor lymfoom gecompliceerd door HLH), bestaande uit mitoxantronliposoom (30 mg op dag 1), etoposide (100 mg op dag 2–4 en 15–16), dexamethason (10 mg op dag 2–4 en 15–16), en cytarabine (100 mg op dag 2–5). Op 10 april 2023 verbeterde de koorts van de patiënt (maximaal 37,5 °C), wat wijst op een eerste respons. De koorts keerde terug op 17 april 2023, gecompliceerd door infectie. Op 26 april 2023 werden immuuncheckpointremmers toegevoegd, waarna de koorts volledig verdween. Op 4 mei 2023 kreeg de patiënt het Gemox-chemotherapieregime gecombineerd met pegaspargas (reden: het Gemox-regime is een eerstelijns chemotherapieregime voor ENKTL, en de toevoeging van pegaspargas kan de antitumoreffectiviteit verder versterken om CR te consolideren). Dit omvatte gemcitabine (1,5 g op dag 1 en 8), pegaspargas (3750 IE op dag 2) en oxaliplatine (150 mg op dag 1). Daarnaast werd een kortdurend HLH04-regime ingevoerd (etoposide 100 mg op dag 1–2 en dexamethason 10 mg op dag 1–7) om HLH aan te pakken. Tijdens de daaropvolgende beenmergsuppressiefase ontwikkelde de patiënt een buikinfectie, die geleidelijk onder controle werd gebracht met behandeling, waaronder tigecycline, cefoperazone-sulbactam en caspofungin voor antischimmeltherapie. Een herhaalde PET-CT-scan op 27 mei 2023 toonde volledige resolutie van de laesies, en de patiënt werd geëvalueerd als volledig in remissie (Figuur 1B). Op 5 juni 2023 werd consolidatiechemotherapie opnieuw gestart met gemcitabine (1,5 g op dag 1), oxaliplatine (150 mg op dag 1), pegaspargas (3750 IE op dag 2), VP-16 (etoposide, 100 mg op dag 1–2) en dexamethason (10 mg op dag 1–7). Intrathecale injecties van cytarabine en methotrexaat werden ook toegediend via lumbale punctie om betrokkenheid van het centrale zenuwstelsel door lymfoom te voorkomen. Met een volledig HLA-gematchte donor geïdentificeerd, onderging de patiënt een allo-HSCT.
Stamcelverzameling en implantatietesten
De patiënt had een volledig gematchte broer of zus, met een 10/10 HLA-match. De donor was de 25-jarige zus van de patiënt, beiden deelden bloedgroep A+. Om stamcellen te mobiliseren werd de donor subcutaan geïnjecteerd met granulocytenkoloniestimulerende factor van 5 μg/kg tweemaal daags gedurende vier dagen. Op de ochtend van de vijfdedag werd 200 ml perifere bloedstamcelsuspensie verzameld met behulp van een bloedcelscheider. Op de dag van de transplantatie werd 170 mL van de verzamelde suspensie teruggetransfuseerd in de patiënt. De geïnfuseerde cellen omvatten een CD34+ celtelling van 2,94 × 106/kg en een nucleaire celtelling van 5,7 × 108/kg. Daarnaast werden drie zakken stamcellen gereserveerd, elk met 10 mL, met CD34+ celtellingen van 0,17 × 106/kg en genucleeerde celtellingen van 0,34 × 108/kg. Na transplantatie werd donorlymfocyteninfusie uitgevoerd als preventieve maatregel tegen recidive. De engraftmentstatus van de patiënt wordt gemonitord 1, 2, 3, 6 en 12 maanden na de transplantatie. Omdat donor en ontvanger van hetzelfde geslacht zijn, zal DNA-vingerafdrukken via PCR-technologie worden gebruikt om chimerisme te monitoren. De follow-upperiode duurt tot september 2024, met de analyse van hematopoëtische reconstitutie, het optreden van acute en chronische GVHD- of andere complicaties, evenals het volgen van beeldvormingsresultaten, EBV-DNA-niveaus en het chimerismepercentage.
Transplantatieproces en uitkomsten
De patiënt voltooide de voorbereiding vóór de transplantatie en kreeg het mitoxantrone-liposoomversterkte BUCY-conditioneringsregime (reden voor het toevoegen van mitoxantroneliposoom: Het heeft een sterke antitumoractiviteit, kan de doding van resterende tumorcellen en EBV-geïnfecteerde cellen verbeteren, en synergieert met busulfan en cyclophosfamamide om de transplantatie-effectiviteit te verbeteren; toegediend op dag -8, met een interval van 8 dagen vóór stamcelinfusie, waardoor voldoende tijd is voor medicijnmetabolisme (halfwaardetijd van ongeveer 40 uur) zonder de donorstamcel-enplantatie te beïnvloeden. Op 7 juli 2023 werd de stamcelinfusie met succes afgerond, gevolgd door ondersteunende zorg zoals anti-infectie, GVHD-profylaxe en het bevorderen van hematopoëtisch herstel. Op devierde dag na de transplantatie kreeg de patiënt buikpijn, koorts en neutropenie, wat werd bemoeilijkt door een buikinfectie. Na behandeling met meropenem en tigecycline voor bacteriële infecties en caspofungin voor antischimmeltherapie verbeterden de symptomen van de patiënte en normaliseerde haar lichaamstemperatuur. Neutrofiele en bloedplaatjestransplantatie vonden plaats op dag 12 na de transplantatie, en een maand later normaliseerde haar volledige bloedbeeld. Een beenmergbiopsie toonde actieve proliferatie van nucleaire cellen, en DNA-vingerafdrukken toonden een 100% donorcel-engraftementpercentage. De patiënt werd meer dan een jaar na de transplantatie gemonitord, en er werden geen complicaties waargenomen, zoals acute of chronische GVHD of infecties. De opvolging loopt tot september 2024. PET-CT-scans uitgevoerd 3 maanden en 12 maanden na de transplantatie toonden aan dat de patiënt volledig in remissie bleef. EBV-DNA in plasma was na transplantatie niet detecteerbaar, en af en toe laag-niveau EBV-DNA in bloedcellen werd als normaal beschouwd (Figuur 3). DNA-vingerafdrukken 1 maand en 6 maanden na transplantatie bevestigden 100% donor-engraftment, wat volledige donorhematopoëse aantoonde (Figuur 4). Analyse van lymfocytensubset toonde aan dat CD3+CD8+-cellen en EBV-geïnfecteerde CD56+-cellen na transplantatie niet detecteerbaar waren (Figuur 4).

Figuur 1: PET-CT-beeldvorming resultaten tijdens behandeling en follow-up. (A) PET-CT-afbeelding vóór inductie chemotherapie toont lymfoombetrokkenheid in het subcutane zachte weefsel van het linker frontotemporaal-pariëtale gebied, rechter pleura en lymfeklieren onder het bilaterale middenrif met verhoogde metabole activiteit. (B) PET-CT-afbeelding na inductie chemotherapie die volledige resolusie van alle laesies toont, consistent met volledige remissie. (C,D) PET-CT vervolgbeelden genomen 3 maanden (C) en 12 maanden (D) na transplantatie, die een aanhoudende volledige remissie aantonen. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 2: Pathologische en immunohistochemische bevindingen van een hoofdhuidmassa. Biopsieweefsel toonde necrotische veranderingen; atypische grote hyperchromatische cellen infiltreerden rond resterende bloedvaten met overvloedig nucleair afval op de achtergrond. Immunohistochemie: CK(-), CD3(+), CD5(-), CD10(-), CD4(-), CD8(+), CD2(+), CD7(-), CD43(+), CD20(-), CD56(+), Granzyme B(+), TIA-1(+), Ki-67 (proliferatie-index ~90%), CD79a(-), CD34(-), CD117(-), TdT(-), EBER(+), consistent met EBV-geassocieerd extranodaal NK/T-cellymfoom. Schaalbalken: 100 μm. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 3: Dynamische monitoring van Epstein–Barr virus DNA-niveaus. (A) Plasma Epstein–Barr virus (EBV)-DNA niveaus over tijd. Plasma EBV-DNA bleef op alle momenten na transplantatie ondetecteerbaar, wat wijst op het ontbreken van EBV-reactivatie. (B) Cellulaire EBV-DNA-niveaus in de tijd. Af en toe werd laag-niveau cellulair EBV-DNA na transplantatie aangetroffen zonder duidelijke klinische relevantie. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 4: Analyse en detectie van Epstein–Barr-virus geïnfecteerde lymfocytensubsets na transplantatie. (A) DNA-vingerafdrukprofiel van de ontvanger vóór transplantatie. (B) DNA-vingerafdrukanalyse 1 maand na transplantatie, waarbij 100% donorchimerisme en volledige donor-afgeleide hematopoëse werden aangetoond. (C) Pre-transplantatie lymfocytensubsetanalyse die een Epstein–Barr-virus (EBV)-infectie toont in CD3+CD8+ en CD56+ cellen. (D) Post-transplantatie lymfocytensubset analyse toont geen detecteerbare EBV-geïnfecteerde CD3+CD8+ of CD56+ cellen, wat volledige opruiming van EBV-infectie aangeeft. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.