Diermodellering
Deze studie werd goedgekeurd door de ethische commissie van het Tweede Geaffilieerde Ziekenhuis van de Fujian Universiteit voor Traditionele Chinese Geneeskunde (Goedkeuringsnummer FJPSPH-IAEC2024114) en uitgevoerd in overeenstemming met de richtlijnen voor dierenwelzijn. Mannelijke Sprague-Dawley-ratten van 180-200 g werden onder gecontroleerde omstandigheden gehuisvest bij 22-26°C en 40-70% luchtvochtigheid. SCI werd opgeroepen door de Allen weight-drop methode10: 3-4% isoflurane inhalatie-anesthesie, middenlijnincisie bij T10, blootstelling van T9-T11 segmenten, laminectomie (dura mater intact) en impact (2 mm tip, 0,5 m/s snelheid, 1,3 mm diepte, 1 s duur). Nepratten ondergingen een laminectomie zonder impact. Inclusiecriteria: BBB-score < 8 na 24 uur na de operatie; Exclusiecriteria: infectie, doorsnijding van het ruggenmerg. Postoperatieve zorg: analgesie (buprenorfine, 0,1 mg/kg s.c., elke 12 uur gedurende 3 dagen), blaasexpressie (elke 6 uur gedurende 1 week) en steriele wondverzorging. De succesvolle modelratten werden willekeurig toegewezen aan een modelgroep, en hoge- (2,32 g/kg, n = 10), medium- (1,16 g/kg, n = 10), lage dosis (0,58 g/kg, n = 10) GLGZ-groepen.
Motorische functieanalyse
De score van Basso, Beattie en Bresnahan (BBB) werd blind uitgevoerd. De ratten werden 5 minuten in een open veld geobserveerd, waarbij ze de beweging van de achterpootgewrichten, het dragen van gewicht, het lopen en de coördinatie opleverden.
Schuifgolfelastografie voor het meten van stijfheid rectus femoris
Er werd een Doppler-echosysteem met een lineaire array-probe (18L6) gebruikt. Ratten werden in laterale ligpositie geplaatst (spierontspanning). SWE werd uitgevoerd met de sonde onder een hoek van 90° ten opzichte van de spier, op een diepte van 1-2 cm. Het interessegebied (ROI) werd ingesteld op 0,5 × 0,5 cm, en er werden tien frames per meting verkregen. De uiteindelijke stijfheidswaarde vertegenwoordigde het gemiddelde van drie geldige metingen. Schuifgolfsnelheid (SWV) werd geregistreerd; Groene kwaliteitscontrole gaf geldige beeldenaan 11.
MRI-onderzoek
MRI werd uitgevoerd met een 7,0T-scanner met een T2-gewogen vetgedempte sequentie en een dierspecifieke spiraal. Acquisitieparameters waren als volgt: herhalingstijd (TR) 3.800 ms, echotijd (TE) 72 ms, sneeddikte 1 mm, voxelgrootte 0,1 × 0,1 × 1 mm, matrix 256 × 256, gezichtsveld (FOV) 25,6 × 25,6 mm, vier signaalgemiddelden en ademhalingsgating. Het laesiegebied werd gemeten met beeldverwerkingssoftware.
Histologische kleuring
HE-kleuring werd uitgevoerd door sequentiële deparaffinisatie, rehydratatie, hematoxyline-kleuring van 5 minuten, spoelen in stromend water, differentiatie in 1% zoutzuur-ethanol gedurende 30 seconden, eosinekleuring van 2 minuten, dehydratatie, clearing en mounting. Als visueel controlepunt toonden gekleurde secties blauwe kernen en rood cytoplasma.
Nissl-kleuring werd uitgevoerd door deparaffinisatie, rehydratatie, incubatie in 0,1% toluidineblauw bij 50-60 °C gedurende 30 minuten, gevolgd door spoelen met gedestilleerd water, ethanoldifferentiatie, dehydratatie, clearing en mounting. Als visueel controlepunt werden donkerblauwe Nissl-carrosserieën duidelijk waargenomen in de schijngroep.
Luxol snelle blauw-cresyl violet kleuring werd uitgevoerd door deparaffinisatie, rehydratatie, incubatie in Luxol fast blue bij 60 °C gedurende 2 uur, spoelen met 95% ethanol, differentiatie in lithiumcarbonaat gedurende 30 seconden, gevolgd door 70% ethanoldifferentiatie, cresyl violet tegenkleuring gedurende 10 minuten, dehydratatie, clearen en mounten. De werkconcentratie van cresylviooltjes was 0,1%. Als visueel controlepunt werd donkerblauwe myeline waargenomen in de schijngroep.
Multiplexe immunofluorescentiekleuring werd uitgevoerd, beginnend met deparaffinisatie, rehydratatie en antigeenterugwinning met behulp van een citraatbuffer (pH 6,0) bij 95 °C gedurende 20 minuten. Secties werden 10 minuten behandeld met 3% waterstofperoxide, gevolgd door blokkering met 5% BSA bij 37 °C gedurende 1 uur. Primaire antilichamen werden 's nachts geïncubeerd bij 4 °C (ASC: 1:500; Caspase-8: 1:400; RIPK3: 1:500). Na het wassen met PBS-T (0,1% Tween-20, 3 x 5 min) werden secties geïncubeerd met HRP-gelabelde secundaire antilichamen (1:1000) bij 37 °C gedurende 1 uur. Fluorochroom-labeling werd vervolgens toegepast: YTR520 Plus voor ASC, TYR570 Plus voor Caspase8, en TYR690 Plus voor RIPK3 (30 min), gevolgd door DAPI nucleaire kleuring voor 5 minuten. Er werden dia's gemonteerd en beeldvorming werd uitgevoerd met een fluorescentiemicroscoop ingesteld op 500 ms belichting, versterking 1,0, vergroting ×200, waarbij filtersets overeenkwamen met de respectievelijke fluorochromen.
Voor xyleen en ethanol werden alle bewerkingen uitgevoerd in een dampkap, en werden handschoenen en bril gedragen tijdens gebruik. Voor kleurstoffenreagentia werd direct huidcontact strikt vermeden. Alle afvalreagentia werden gestort in aangewezen containers voor gevaarlijk afval. Voor biohazardmaterialen werd een grondige sterilisatie van de autoclaaf uitgevoerd voorafgaand aan de uiteindelijke verwijdering om mogelijke biologische besmetting te voorkomen.
Statistische analyse
Eenrichtings-ANOVA met LSD post-hoc test werd gebruikt voor groepsvergelijkingen. P < 0,05 werd als statistisch significant beschouwd.