Een abonnement op JoVE is vereist om deze inhoud te bekijken. Log in of start vandaag met uw gratis proefperiode.

Methodenartikel

Fosfor-31 magnetische resonantiespectroscopie voor seriële metingen van cardiale energetica tijdens temperatuurgecontroleerde hartconservering

310 weergaven

⸱

DOI:

10.3791/70070

⸱

17 maart 2026

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Division of Cardiac Surgery, Johns Hopkins University School of Medicine, 2Division of MR Research, Russell H. Morgan Department of Radiology and Radiological Science, Johns Hopkins University School of Medicine, 3Krieger School of Arts and Sciences, Johns Hopkins University, 4Johns Hopkins University School of Medicine, 5Department of Pediatric Cardiac Surgery, Johns Hopkins University School of Medicine

* These authors contributed equally

In dit artikel

Samenvatting

In dit artikel hebben we een reproduceerbaar, temperatuurgecontroleerd protocol beschreven voor ex vivo Fosfor-31 Magnetische Resonantiespectroscopie, waarmee seriële, kwantitatieve beoordeling van myocardenergetica tijdens orgaanbehoud mogelijk is.

Samenvatting

Betrouwbare orgaanbehoud is cruciaal om de beschikbaarheid van donoren te vergroten en de transplantatieresultaten te verbeteren. Hoewel statische opslag de standaard blijft voor donorharten, is er behoefte aan precieze methoden om myocardenergetica tijdens de hele conservering te monitoren.

Fosfor-31 Magnetische Resonantiespectroscopie (31P MRS) maakt directe, dynamische meting mogelijk van belangrijke energiemetabolieten, waaronder fosfocreatine (PCr), adenosinetrifosfaat (ATP), anorganisch fosfaat (Pi) en intracellulaire pH. Deze techniek maakt longitudinale, kwantitatieve en precieze evaluatie van de myocardmetabole status tijdens ex vivo opslag mogelijk. Voordelen van MRS zijn onder andere een dynamische beoordeling van de energiestatus en een wereldwijde beoordeling van de ventrikelenergie.

Het protocol begint met het herstel van de varkensdonor, het toedienen van cardioplegie en een cariectomie. De aortabooghoek wordt proximaal van de brachiocefale stam doorgesneden om de lengte van de opstijgende aorta te maximaliseren. Een geribbelde canule wordt vastgezet in de distale opstijgende aorta, het linker atrium wordt gemarkeerd en het hart wordt geplaatst in een cilindrische, geïsoleerde container die vooraf is gevuld met temperatuurspecifieke cardioplegie. Het deksel is verbonden met de canule, waarbij het hart erin wordt opgehangen, en de container wordt afgesloten, waarbij een temperatuur binnen 1 °C gedurende 1 uur wordt gehouden.

De container wordt geplaatst in een op maat gemaakte piepschuimen doos met een opening voor een fosforafgestemde spoel, waarbij het spiraalcentrum ligt uitgelijnd met het centrum van de linker ventrikel (LV). Scout-beelden bevestigen de plaatsing van de LV nabij de 31P spoel. B0 shimming zorgt voor uniforme excitatie, gevolgd door het verwerven van een niet-gelokaliseerd 31P MR-spectrum. Nabewerking identificeert spectrale pieken voor het berekenen van PCr/ATP, PCr/Pi-verhoudingen en intracellulaire pH.

In ons protocol wordt 31P MRS uitgevoerd op seriële tijdstippen tussen h 0 en 8. Tussen tijdstippen wordt het hart opgeslagen in een standaard opslagapparaat op de gewenste temperatuur.

31P MRS heeft ons in staat gesteld tijdsafhankelijke veranderingen in energieverlies te bestuderen en de rol van opslagtemperatuur bij het verminderen van energieverlies in de loop van de tijd.

Inleiding

Harttransplantatie blijft de definitieve behandeling voor geselecteerde patiënten met eindstadium hartfalen1. Echter, een aanhoudend tekort aan geschikte donororganen en de beperkingen van de huidige conserveringsstrategieën vormen grote barrières voor optimale uitkomsten en een grotere beschikbaarheid van transplantaties 2,3. Traditioneel worden donorharten bewaard met koude statische opslag, wat eenvoudig en kosteneffectief is, maar gevoelig is voor subklinische energetische uitputting tijdens langdurig transport 2,4. Nu programma's steeds vaker organen met een hoger risico en geografisch ver weg accepteren, is er een groeiende behoefte aan objectieve instrumenten die de metabole toestand van het myocardas tijdens behoud karakteriseren, in plaats van uitsluitend te vertrouwen op ischemische tijd en grove inspectie 5,6,7. Daarnaast worden myocardmetabolisme en ischemische tolerantie sterk beïnvloed door temperatuur, en zowel onvoldoende koeling als overmatige onderkoeling kunnen de energetische uitputting en celbeschadiging tijdens opslag verergeren. Het evalueren van donorharten bij meerdere, klinisch relevante conserveringstemperaturen helpt daarom om aandoeningen te identificeren die de myocardiale levensvatbaarheid het beste over tijd behouden3.

Nauwkeurige, dynamische beoordeling van myocardiale bio-energetica tijdens opslag is essentieel om conserveringstechnieken te verbeteren en het orgaangebruik te maximaliseren. Momenteel is de standaardpraktijk gebaseerd op statische koude opslag bij temperaturen rond 4-8 °C8. Hoewel dit protocol succesvolle resultaten heeft laten zien over korte opslagtijden, kan langdurige opslag bij deze temperatuur de integriteit van het myocardiale geheugen in gevaar brengen. Daarom is het essentieel om seriële metingen van metabole activiteit uit te voeren over een bereik van temperaturen en duurheden om de optimale opslagcondities te bepalen die nodig zijn voor een succesvolle orgaantransplantatie. Conventionele evaluatie van preservation injury is vaak gebaseerd op histologisch onderzoek of biochemische assays van myocardbiopsieën, die invasief en destructief zijn en slechts intermitterende, regionale momentopnames van weefselstatus9 bieden. Daarentegen is fosfor-31 magnetische resonantiespectroscopie (31P MRS) een krachtige, niet-destructieve methode die directe, seriële metingen mogelijk maakt van belangrijke energiemetabolieten, waaronder fosfocreatine (PCr), adenosinetrifosfaat (ATP), anorganisch fosfaat (Pi) en intracellulaire pH, binnen intact hartweefsel 6,10,11,12. Door herhaalde metingen in hetzelfde orgaan toe te staan zonder extra weefselbehandeling, biedt 31P MRS globale en longitudinale inzichten in de energetische status van het myocard, wat de experimentele precisie en reproduceerbaarheid verbetert in vergelijking met biopsie-gebaseerde of serumsurrogaatbenaderingen 6,13.

De beoordeling van de levensvatbaarheid van harttransplantaten met 31P MRS is beoordeeld door Bernard et al.14. Hier wordt een gedetailleerd, temperatuurgecontroleerd protocol voor ex vivo 3 Tesla 31 PMRS van het varkenshart tijdens conservering gepresenteerd. Deze methode biedt een praktisch kader voor het monitoren van substraatuitputting, het testen van opslagvariabelen en het valideren van conserveringsinterventies. Het protocol is bijzonder geschikt voor laboratoria die seriële metingen van de hele ventrikel tijdens statische koude opslag zoeken, zoals studies naar temperatuurafhankelijke conservering, ischemie-reperfusieschade of optimalisatie van oplossingen voor marginale en uitgebreide criteria donorharten.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

Dit protocol volgt de richtlijnen voor institutionele dierenzorg en is goedgekeurd door de Johns Hopkins Animal Care and Use Committee (Protocol nummer SW24M319) voor alle procedures waarbij levende dieren betrokken zijn tot en met chirurgische oogst. Alle daaropvolgende ex vivo experimenten werden uitgevoerd met weefsels verkregen na euthanasie.

1. Pre-Harvest procedure

  1. Stel de incubator in op een temperatuur die 2 °C lager is dan de beoogde conserveringstemperatuur. Laat de broedmachine minstens 2 uur stabiliseren.
  2. Plaats 6-7 ijszakjes in de broedmachine om ze vooraf te koelen tot de ingestelde temperatuur. Zorg ervoor dat er voldoende ijs is om de temperatuur tijdens het transport te behouden.
  3. Bereid aangepaste Saint Thomas cardioplegieoplossing voor:
    1. Voeg in 1 L van Lactated Ringer's oplossingszak toe
      1. 30 mL 8,4% natriumbicarbonaat
      2. 5 mL 30 mmol/10 mL kaliumchloride
      3. 2,5 mL 20 mmol/10 ml magnesiumsulfaat
      4. 15 mL 50% dextrose
      5. 100 mg 50 mg/10 mL nitroglycerine
      6. 5000 U koude erytropoëtine
    2. Bereid in totaal 3 L cardioplegieoplossing voor en bewaar deze in de voorgekoelde broedmachine.
  4. Zet de geïsoleerde koeler met ingebouwde siliconen slang apart die een optimale positie van de verticale hoogte van het hart mogelijk maakt. Plaats een zwart referentiepunt op de siliconen slang op het punt dat direct onder de punt van de opening van het koeldeksel ligt.
  5. Leg een geribbelde canule apart om het geoogste hart vast te zetten en op te hangen. Plaats een zwart referentiemerk op het buitenoppervlak van de canule om als reproduceerbaar uitlijningspunt te dienen.

2. Oogstprocedure

  1. Sedoer het dier met een combinatie van telazol, ketamine en xylazine in één spuit en toegediend intramusculair om de stress en pijn van meerdere injecties te minimaliseren.
    1. Telazol (50 mg tiletamine + 50 mg zolazepam) op 4,4 mg/kg per component.
    2. Ketamine op 2,2 mg/kg.
    3. Xylazine op 2,2 mg/kg.
  2. Intuber en verdoof het dier.
    1. Getijdenvolume van 5-10 mL/kg.
    2. Ademhalingsfrequentie 12-15 ademhalingen per minuut.
    3. Positieve eind-uitaspiratiedruk bij 5 cm H2O.
    4. Isoflurane ingeademd bij 0,5-2% met een zuurstofstroom van 1-2 L/min.
  3. Plaats perifere intraveneuze lijnen, voer een sternotomie uit en open hetpericardium 15. Dien antiarittica toe indien nodig.
  4. Plaats een cardioplegienaald in de opstijgende aorta, geplaatst boven de aortaklep maar onder de aortaboog.
  5. Spike en verbind een zakje van 1 liter cardioplegieoplossing aan de naald.
  6. Ventileer de linker atrium, de inferieure vena cava en de bovenste vena cava.
  7. Plaats een aortakruisklem proximaal aan de boog.
  8. Start cardioplegiestromen door de kranswonden bij een druk van ongeveer 75-80 mmHg. Monitor de druk met een in-line meter.
  9. Oogst het hart terwijl je de anatomische integriteit behoudt.
  10. Giet voorgekoelde zoutoplossing over het geoogste hart om het oppervlak snel af te koelen.
  11. Plaats het hart in een kom gevuld met een koude cardioplegieoplossing.
  12. Plaats een myocardtemperatuursonde aan de top van het hart en een thermometer in de kom met cardioplegische oplossing om de temperatuur te monitoren.
  13. Scheid de aorta van de longslagader (PA).
  14. Bevestig de geribbelde canule in de aorta met zijden banden en kabelbinders, waarbij het gemarkeerde deel van de canule overeenkomt met de positie van de linker ventrikel (LV).
  15. Vul de koelbox met Saint Thomas-oplossing tot 60-70% capaciteit, en doe dan het hart en de oplossing van de kom over in de koeler voor een volledige vulling, wat de onderdompeling maximaliseert.
  16. Meet en documenteer de eindoplossing en de weefseltemperatuur.
  17. Bevestig de geribbelde canule aan het koeldeksel met siliconen slang op de vooraf bepaalde markering. Zorg ervoor dat de markeringen op de geribbelde canule en de siliconen buis op één lijn liggen, zodat de LV een consistente oriëntatie ten opzichte van het deksel behoudt wanneer de koeler gesloten is, zodat de LV bij elke scan reproduceerbaar is (Figuur 1A).
  18. Ontlucht het orgaan om optimale homogeniteit van het MR-veld en een goede signaal-ruisverhouding tijdens MR-gegevensverzameling te waarborgen.
  19. Zet het koeldeksel vast en zorg dat de LV uitlijning is.
  20. Leg ijspakken en een koelbox in een transporttas.

3. Spectroscopieprotocol

  1. Dit protocol is geoptimaliseerd voor een 3T MR-scanner. De MR-scanner is uitgerust met een multikernspectroscopie-optie, inclusief een 4 kW breedband-radiofrequentieversterker en ontvanger, inclusief de standaard door de leverancier geleverde fosforspoel (P140). De 31P-spoel is een enkele lus zend-/ontvangsspoel met een diameter van 14 cm diameter en twee staven voor afstemmen en afstemmen.
  2. Breng het personeel van de MRI-faciliteit op de hoogte vóór het transport en bevestig de beschikbaarheid van de scan.
  3. Bereid een piepschuimen doos voor met de volgende externe afmetingen: lengte 33,5 cm, breedte 28 cm (langere rand), breedte 23 cm (kortere rand) en dikte 4 cm. Maak aan één kant van de doos een spleet van 3,3 cm breed om de 31P-spoel naast het hart te plaatsen (Figuur 1B).
  4. Plaats de koeler met het hangende hart naast de centrale as van de spoel, gericht op de LV-locatie (Figuur 1C). Bereid een koelbox voor die 25,4 cm hoog en 11,4 cm breed is. De siliconen slang is bevestigd op een lengte van 7 cm vanaf het binnenoppervlak van het deksel, op het punt van hartmontage (Figuur 1D).
  5. Plaats ijszakken in openingen rond de koeler, waarbij je erop let dat er geen ruimte ontstaat tussen de koeler en de spoel, en plak vervolgens het deksel van de doos vast om stabiliteit tijdens het scannen te garanderen (Figuur 1E).
  6. Centreer de koeler op het magnetisocentrum met behulp van de lasergeleiders en het centreringsoriëntatie, om optimale homogeniteit van B0 te waarborgen (Figuur 1F).
  7. Steek de 31P-spoel in de scanconnector en bevestig stem- en matchstangen aan de spoel (Figuur 1F).
  8. Verkrijg tri-plane localizer scout-beelden om de plaatsing van de spoel en de optimale LV-nabijheid tot de 31P-spoel te verifiëren (Figuur 2).
  9. Als de LV-positie niet klopt, draai dan het koeldeksel en voer de scout-scan opnieuw uit.
  10. Verkrijg een statisch veld B0-map voor gelokaliseerde2e orde shimming16 om een uniform magnetisch veld te garanderen over het interessegebied dat vereist is voor hoge spectrale kwaliteit:
    1. Na het verwerven van de B0-map start een "Shimtool"16 automatisch met die map geladen (Figuur 3).
    2. Klikpunten van een gladde veelhoek die de hartspier in alle sneden omlijnt (Figuur 3A).
    3. De "Shimtool" voert vervolgens een beperkte kleinste-kwadraten-fit uit om de gelokaliseerde resonantiefrequentie en eerste- (x, y, z) en tweede-orde (xy, xz, yz, x2-y 2, z2-(x2+y2)/2) shimveldcorrecties te bepalen (Figuur 3C). Upload deze correctietermen naar de scanner en pas ze toe op de volgende scans.
  11. Voor de 31P MRS-verwerving, draai je de stemstangen van de spoel om optimale afstemming van de radiofrequentiespoel te garanderen en de impedantie aan te passen aan het MR-systeem, waardoor de efficiëntie van signaaloverdracht wordt gemaximaliseerd en reflecties in het radiofrequentiesysteem worden geminimaliseerd (Figuur 4).
  12. Verkrijg een initiële niet-gelokaliseerde 31P MR-spectra (herhalingstijd [TR]: 10 s, fliphoek = 90° met behulp van adiabatische B1-Insensitive Rotation-4 (BIR-4) pulsen; echotijd [TE] = 0,1 ms; bandbreedte = 3000 hertz (Hz); 1024 spectrale punten, 5 gemiddelden) om de resonantiefrequentie te bepalen in het centrum tussen de PCr- en γ-ATP-pieken. Totale verwervingstijd: 50 s.
  13. Vervolgens volledig ontspannen niet-gelokaliseerde 31P MR-spectra verkrijgen na het aanpassen van de offsetfrequentie op basis van de berekening in 3,12 (TR: 16 s, fliphoek = 90° met behulp van adiabatische BIR-4 pulsen; TE = 0,1 ms; bandbreedte = 3000 Hz; 512 spectrale punten, 20 gemiddelden). Totale verwervingstijd: 5 minuten 20 s.
  14. Na de scan, meet u de vloeistof- en myocardtemperatuur; ervoor zorgen dat de afwijking van het doel ≤1 °C bedraagt.
  15. Bewaar het hart in de broedmachine op de gewenste temperatuur tot de volgende geplande scan.

4. Data-analyse

  1. Exporteer de volledig ontspannen 31P MRS-gegevens als . SDAT-databestanden en laden in een grafische gebruikersinterface voor verwerking (Figuur 5A)17.
  2. Eerst apodiseer je de spectra met een 15 Hz Lorentz-filter (Figuur 5B), pas vervolgens een faseverschuiving van 0 en1 orde toe, en stel de frequentie in op 0 delen per miljoen (ppm) in het centrum van de PCr-piek (Figuur 5C).
  3. Pas de spectra aan met behulp van de AMARES-functie18 met behulp van de kenniswaarden die in Tabel 1 zijn vermeld.
  4. Bekijk de analyse op een adequate passing in het volgende venster (Figuur 6), door ervoor te zorgen dat elke piek correct is geïdentificeerd (individuele componenten) en dat het minimale restsignaal blijft bestaan na de analyse (residu).
  5. Bereken de myocardmetabolietverhoudingen PCr/ATP en PCr/Pi op basis van de spectroscopische piekamplitude (Figuur 7). De γ-ATP-resonantie wordt gebruikt als maat voor ATP.
  6. Bereken de intracellulaire pH op basis van de chemische verschuiving tussen Pi en PCr na aanpassing, om de temperatuurconditie14 weer te geven.
    OPMERKING: Het protocol kan worden gepauzeerd na elke MRI-scan (stap 3.15). Zorg ervoor dat de temperatuurregeling gedurende de hele tijd wordt gehandhaafd.

5. Vergelijkingen

  1. Bereken de intracellulaire pH (pHi) zoals eerder beschreven19:
    figure-protocol-1
    Waarbij T de temperatuur in °C is, en δ0 het waargenomen chemische verschuivingsverschil tussen de PCr- en Pi-resonanties, in ppm.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

De gelokaliseerde2e-orde shimming16 resulteerde in een homogener B0 magnetisch veld over het interessegebied, zoals blijkt uit een vermindering van de standaardafwijking op elk tijdstip (0 uur: 14,0 tot 4,0 Hz; 4 uur: 17,5 tot 3,2 Hz; 8 uur: 16,0 tot 3,2 Hz). Dit zorgde ervoor dat op elk tijdstip uitstekende spectrale kwaliteit werd bereikt (Figuur 7). De veranderingen in de myocardiale stofwisseling tijdens ...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

Dit manuscript beschrijft een chirurgische voorbereiding en een 31P MRS-acquisitie- en analyseprotocol voor de seriële beoordeling van myocardenergetica tijdens hartbehoud. 31P MRS maakt seriële, niet-destructieve beoordeling van belangrijke hartmetabolieten bij verschillende koude opslagtemperaturen mogelijk, wat nieuwe inzichten biedt in de metabole levensvatbaarheid van het myocardweefsel. Dit 31P MRS-protocol is relatief snel en vereist minimale scann...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

We hebben geen belangenconflict.

Dankbetuigingen

Wij willen ons team van Johns Hopkins op de afdeling hartchirurgie en radiologie erkennen voor het succesvol uitvoeren van dit onderzoek. Deze studie werd gefinancierd door The American Association for Thoracic Surgery (AATS).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
IncubatorBenchmark Scientific H2265-HCMyTemp 65HC Heating Cooling Incubator
IsoleerkoelerGatoradeUPC 052000047097Gatorade Geïsoleerde sportdrankkoeler
jMRUI versie 7.0Javawww.jmrui.euGrafische gebruikersinterface voor gegevensanalyse
Myocard temperatuur sondeDeRoyal81-030415DeRoyal 400 serie myocard temperatuur sonde (15mm)
Magnetische resonantie scannerPhilipshttps://www.philips.com/healthcare/diagnostic-imaging/magnetic-resonance-imagingAchieva 3T, Philips Healthcare
Enkel lus fosfor spoelPhilips Healthcare https://www.philips.com/healthcare/diagnostic-imaging/magnetic-resonance-imagingP140, Philips Healthcare

Referenties

  1. Lechiancole, A., et al. Graft preservation in heart transplantation: current approaches. Front Cardiovasc Med. 10, 1253579(2023).
  2. Kounatidis, D., et al. Donor heart preservation: current knowledge and the new era of machine perfusion. Int J Mol Sci. 24 (23), 16693(2023).
  3. Ughetto, A., et al. Heart graft preservation technics and limits: an update and perspectives. Front Cardiovasc Med. 10, 1248606(2023).
  4. Wang, C. C., et al. Understanding preservation time thresholds in the modern era of heart transplantation. Sci Rep. 15 (1), 1-10 (2025).
  5. Tang, P. C., et al. Risk factors for heart transplant survival with greater than 5 h of donor heart ischemic time. J Card Surg. 36 (8), 2677-2684 (2021).
  6. Peterzan, M. A., Lewis, A. J. M., Neubauer, S., Rider, O. J. Non-invasive investigation of myocardial energetics in cardiac disease using 31P magnetic resonance spectroscopy. Cardiovasc Diagn Ther. 10 (3), 625-639 (2020).
  7. Lerman, J. B., et al. Donor heart recovery and preservation modalities in 2024. JACC Heart Fail. 12 (3), 427-437 (2024).
  8. Al-Ani, M. A. Z., Farr, M. A., Shah, P. Cold precision: enhancing organ preservation with controlled hypothermia. J Heart Lung Transplant. 43 (9), 1527-1529 (2024).
  9. Mishra, P. K., et al. Guidelines for evaluating myocardial cell death. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 317 (5), H891-H922 (2019).
  10. Abdurrachim, D., Prompers, J. J. Evaluation of cardiac energetics by non-invasive 31P magnetic resonance spectroscopy. Biochim Biophys Acta Mol Basis Dis. 1864 (5), 1939-1948 (2018).
  11. Sourdon, J., Lewsey, S. C., Schär, M., Weiss, R. G. Measuring myocardial energetics with cardiovascular magnetic resonance spectroscopy. Heart Fail Clin. 17 (1), 149-156 (2021).
  12. Samuel, T. J., et al. Myocardial ATP depletion detected noninvasively predicts sudden cardiac death risk in patients with heart failure. JCI Insight. 7 (12), e157557(2022).
  13. Buchthal, S. D., et al. 31P-magnetic resonance spectroscopy studies of cardiac transplant patients at rest. J Cardiovasc Magn Reson. 2 (1), 51-56 (2000).
  14. Bernard, M., Kober, F., Caus, T. Assessing cardiac transplant viability with MRS. eMagRes. 4 (3), 627-633 (2015).
  15. Pla, M. M., et al. A porcine heterotopic heart transplantation protocol for delivery of therapeutics to a cardiac allograft. J Vis Exp. (180), e63114(2022).
  16. Schär, M., Kozerke, S., Fischer, S. E., Boesiger, P. Cardiac SSFP imaging at 3 Tesla. Magn Reson Med. 51 (4), 799-806 (2004).
  17. Naressi, A., Couturier, C., Castang, I., De Beer, R., Graveron-Demilly, D. Java-based graphical user interface for MRUI, a software package for quantitation of in vivo/medical magnetic resonance spectroscopy signals. Comput Biol Med. 31 (4), 269-286 (2001).
  18. Vanhamme, L., Van den Boogaart, A., Van Huffel, S. Improved method for accurate and efficient quantification of MRS data with use of prior knowledge. J Magn Reson. 129 (1), 35-43 (1997).
  19. Taylor, D. J., Bore, P. J., Styles, P., Gadian, D. G., Radda, G. K. Bioenergetics of intact human muscle: a 31P nuclear magnetic resonance study. Mol Biol Med. 1 (1), 77-94 (1983).
  20. Kothari, P. Ex vivo preservation of heart allografts-an overview of the current state. J Cardiovasc Dev Dis. 10 (3), 105(2023).
  21. Kober, F., Caus, T., Riberi, A., Le Fur, Y., Bernard, M. Time course of high-energy phosphate depletion during cold storage of human heart grafts using the Celsior solution. Transpl Int. 37, 12994(2024).
  22. Tsampasian, V., Cameron, D., Sobhan, R., Bazoukis, G., Vassiliou, V. S. Phosphorus magnetic resonance spectroscopy (31P MRS) and cardiovascular disease: the importance of energy. Medicina (Kaunas). 59 (1), 174(2023).
  23. Gupta, A. Cardiac 31P MR spectroscopy: development of the past five decades and future vision-will it be of diagnostic use in clinics. Heart Fail Rev. 28 (2), 485-532 (2023).
  24. Michel, S. G., et al. Preservation of donor hearts using hypothermic oxygenated perfusion. Ann Transplant. 19, 409-416 (2014).
  25. Caenegem, O. V., et al. Hypothermic continuous machine perfusion enables preservation of energy charge and functional recovery of heart grafts in an ex vivo model of donation following circulatory death. Eur J Cardiothorac Surg. 49 (5), 1348-1353 (2016).
  26. Spencer, B. L., et al. Extending heart preservation to 24 h with normothermic perfusion. Front Cardiovasc Med. 11, 1325169(2024).
  27. Iyer, A., et al. Normothermic ex vivo perfusion provides superior organ preservation and enables viability assessment of hearts from DCD donors. Am J Transplant. 15 (2), 371-380 (2015).
  28. Brouckaert, J., Dellgren, G., Wallinder, A., Rega, F. Non-ischaemic preservation of the donor heart in heart transplantation: protocol design and rationale for a randomised, controlled, multicentre clinical trial across eight European countries. BMJ Open. 13 (12), e073729(2023).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Tags

Fosfor-31-spectroscopiemyocardiaal metabolismeex vivo hartenergiemetabolietentoediening van cardioplegiePCr-ATP-ratiointracellulaire pH

Dit artikel is gepubliceerd

Video binnenkort beschikbaar

Neem contact met ons op
Aanbevelen aan de bibliotheek

Privacy

Gebruiksvoorwaarden

Beleidsoverzicht

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. Alle rechten voorbehouden.