Deze studie werd beoordeeld door de Ethische Commissie van het Eerste Geaffilieerde Ziekenhuis van de Anhui Universiteit voor Chinese Geneeskunde (Ethiek beoordelingsnummer: 2025AH-101, Ethische goedkeuringsdatum: 2025-07-02).
Onderzoeksonderwerpen
Patiënten met PD en gezonde controles in het Eerste Affilieerde Ziekenhuis van de Anhui Universiteit voor Chinese Geneeskunde werden ingeschreven. Verse ontlastingsmonsters werden verzameld voor vervolganalyse. Verse ontlastingsmonsters werden verzameld, in steriele EP-buizen gealiquoteerd, direct ingevroren in vloeibare stikstof en vervolgens opgeslagen op −80 °C voor langdurige conservering. De inclusiecriteria van patiënten met PD waren als volgt: (1) klinisch gediagnosticeerde PD; (2) leeftijd >70 jaar; (3) voor de Piribedil-groep: gestart met piribedil-monotherapie na inschrijving en geen eerdere blootstelling aan dit medicijn; voor de PD-groep: geen behandeling met anti-Parkinsonmedicatie; (4) geen andere ernstige systemische ziekten, zoals ernstige hartziekten, leverziekten, nierziekten of kanker. Voorafgaand aan de inschrijving werd schriftelijke geïnformeerde toestemming van elke deelnemer verkregen. De exclusiecriteria waren als volgt: (1) ernstige complicaties van PD, zoals ernstige motorische disfunctie; (2) recent antibioticabehandeling ontvangen; (3) aanwezigheid van andere gezondheidsproblemen die de onderzoeksresultaten kunnen beïnvloeden, zoals inflammatoire darmziekte, prikkelbare darmsyndroom, enzovoort; (4) allergisch voor piribedil. De gezonde controlepersonen (blanke groep) waren leeftijdsgematchte (leeftijd >70 jaar) zonder voorgeschiedenis van neurologische of grote gastro-intestinale aandoeningen.
Alle deelnemers moesten hun reguliere eetgewoonten aanhouden voordat ze zich inschrijven. Geen van hen had probiotica, prebiotica, voedingsvezelsupplementen of andere voedingssupplementen ontvangen. Daarnaast hadden alle deelnemers minstens drie maanden vóór de monsterafname geen antibioticabehandeling ontvangen. Tijdens de studie werd geen gestandaardiseerde dieetinterventie uitgevoerd, maar alle deelnemers kregen de instructie om een stabiele levensstijl en dieet te hanteren om mogelijke verstorende effecten op de darmmicrobiota te minimaliseren.
Onderzoeksgroep
Deze studiecohort werd verdeeld in drie groepen: PD-groep (n = 10): fecale monsters verzameld van Parkinsonpatiënten die geen anti-Parkinsonmedicatie gebruikten. Piribedil-groep (n=10): fecale monsters verzameld van patiënten met de ziekte van Parkinson na 21 opeenvolgende dagen behandeling met piribedil (50 mg, tweemaal daags). Blanco controlegroep (n=5): ontlastingsmonsters verzameld van gezonde individuen.
16S ribosomale RNA-sequencing
De sequencing werd uitgevoerd op een sequencingplatform, zoals gerapporteerd in andere studies12,13. Kort gezegd werd totaal microbieel DNA geïsoleerd uit fecale monsters met behulp van de natriumdodecylsulfaat (SDS)-methode 14,15,16. De integriteit van het geëxtraheerde DNA werd geverifieerd met 1% agarosegelelektroforese, en DNA-concentratie en zuiverheid werden bepaald met een spectrofotometer. De hypervariabele regio V3-V4 van het bacteriële 16S rRNA-gen werd geampliceerd uit genomisch DNA met behulp van degeneratieve primers 341F (5'-CCTAYGGGRBGCASCAG-3') en 806R (5'-GGACTACNNGGGTATCTAAT-3') met Polymerase Chain Reaction (PCR) thermocycler. De amplificatie van het bacteriële 16S rRNA-gen werd uitgevoerd onder de volgende thermische omstandigheden: een initiële pre-denaturatiestap bij 94 °C gedurende 2 minuten, gevolgd door 28 cycli bestaande uit 94 °C denaturatie voor 30 s, 55 °C annealing voor 30 s, en 72 °C verlenging voor 30 s. Een laatste verlenging werd uitgevoerd bij 72 °C gedurende 10 minuten, waarna de reactie op 4 °C werd gehandhaafd. De PCR-mengsels bevatten 2× PCR mastermix 25 μL, forward primer (10 μM) 2 μL, reverse primer (10 μM) 2 μL, template DNA 10 ng, en tenslotte ddH2O tot 50 μL. PCR-reacties werden uitgevoerd in drievoud uitvoering. De PCR-mengsels bevatten 2× PCR mastermix 25 μL, forward primer (10 μM) 2 μL, reverse primer (10 μM) 2 μL, template DNA 10 ng, en tenslotte ddH2Otot 50 μL. PCR-reacties werden uitgevoerd in drievoud uitvoering. Het PCR-product werd geëxtraheerd uit 2% agarosegel en gezuiverd met een gelextractiekit. Universal Plus DNA Library Prep Kit voor MGI V2 werd gebruikt om de bibliotheek op te bouwen: (1) Splinter link; (2) Gebruik magnetische kraalafscherming om de gewrichts-zelfaaneengesloten segmenten te verwijderen; (3) Verrijking van bibliotheektemplates door PCR-versterking; (4) Magnetische kralen om PCR-producten terug te winnen; (5) Cyclisering van PCR-producten. Na de validatie van de bibliotheek werd de sequencing uitgevoerd.
Kwaliteitscontrolepunten: Controlepunt 1 (Monsterverzameling): Monsters werden direct na het verzamelen ingevroren en opgeslagen bij −80°C. Elk monster met zichtbare tekenen van ontdooien of besmetting werd weggegooid. Checkpoint 2 (DNA-extractie): Acceptabele zuiverheid: A260/A280 = 1,8–2,0, A260/A230 ≥1,8; Integriteit wordt bevestigd door een enkele band met een hoog moleculair gewicht op 1% agarosegel. Checkpoint 3 (PCR-versterking): Een enkele band bij ~460bp op 2% agarosegel duidt op succesvolle amplificatie (primers 341F/806R, V3-V4 regio); Als deze ontbreekt of niet specifiek is, pas dan de annealingtemperatuur of sjabloonconcentratie aan. Herstelconcentratie ≥0,5 ng/μl was vereist voor de voorbereiding van de bibliotheek. Checkpoint 4 (Bibliotheekvoorbereiding en sequencing): Uitgevoerd door de sequencingfaciliteit volgens hun standaard gevalideerde protocollen; er werd geen extra interne controlepost (bijv. Bioanalyzer-grootte) toegepast.
Veiligheid en afvalverwerking: Handschoenen en laboratoriumjassen werden gedragen bij alle monsterbehandeling. Werkoppervlakken zijn gereinigd met 70% ethanol. Alle besmette verbruiksmaterialen (tips, tubes, gels) werden geautoclaveerd (121°C, 20 min) voordat ze als biologisch gevaarlijk afval werden verwijderd.
Bio-informatica
Ruwe sequencing-reads van het 16S rRNA-gen werden eerst gedemultiplexeerd, onderworpen aan kwaliteitsfiltering met fastp (versie 0.20.0), en geassembleerd via FLASH (versie 1.2.11) volgens gestandaardiseerde screeningscriteria. Kort samengevat: (i) Raw 300 bp-sequenties werden ingekort toen de gemiddelde kwaliteitsscore onder de 20 zakte binnen een schuifvenster van 50 bp. Lezingen met afgekorte lengtes korter dan 50 bp of met ambigue bases werden verwijderd; (ii) Sequentieassemblage werd alleen uitgevoerd bij overlappingen van meer dan 10 bp, waarbij de maximale mismatchverhouding van het overlappende gebied werd vastgesteld op 0,2. Ongepaarde lezingen die niet werden samengesteld, werden geëlimineerd; (iii) Individuele monsters werden verdeeld op basis van barcode- en primersequenties voor latere oriëntatieaanpassing. Barcodematching werd uitgevoerd met exacte uitlijning, terwijl primermatching maximaal 2 nucleotide mismatches toestond. 16S rRNA-lezingen werden geanalyseerd met behulp van de Quantitative Insights into Microbial Ecology (QIIME) pijplijn (versie 1.8.0)17. Tagsequenties werden toegevoegd aan gepaarde eindlezingen met behulp van FLASH (versie 1.2.11)18. Trimming werd uitgevoerd met UPARSE (versie 7.0.1090) met een minimale lengte van 200 bp en een gemiddelde kwaliteit van 25, gevolgd door clustering bij een 97% cutoff om operationele taxonomische eenheden (OTU's)19 te genereren. Representatieve OTU-metingen werden taxonomisch geclassificeerd via RDP Classifier 2.2, met een betrouwbaarheidslimiet ≥0,6. Tag- en leesabundanties werden bepaald door vergelijking met USEARCH global20. De identificatie van chimerische sequenties was gebaseerd op vergelijkingen met de Gold-database met behulp van UCHIME (v4.2.40)21. Principal coördinatenanalyse (PCoA) werd vervolgens uitgevoerd op de sparse dataset gebaseerd op de Bray–Curtis-ongelijkheid, waarbij de sequentiegelijkheidsdrempel werd gesteld op 97% voor clustering. Representatieve OTU's en bijbehorende taxonomische profielen werden verder geanalyseerd met R-software (versie 3.1.1). Het algoritme voor de effectgrootte van de lineaire discriminantanalyse (LEfSe), gebaseerd op de effectgrootte van lineaire discriminantanalyse (LDA), werd toegepast om biomarkers met significante differentiële abundantie op OTU-niveau te screenen. Deze methode benadrukt zowel statistische significantie als biologische relevantie door eerst kenmerken met consistente verschillen tussen groepen te identificeren (met behulp van de Kruskal-Wallis-test voor multigroepsvergelijking) en vervolgens de effectgrootte van elk verschillend overvloedig kenmerk te schatten met behulp van LDA. Een LDA-score >2,0 wordt gedefinieerd als een significant verhoogde abundantievan 22.
Statistische methoden
Statistische analyses werden uitgevoerd met SPSS. Normaal verdeelde gegevens werden geanalyseerd met behulp van de eenrichtingsvariantieanalyse (ANOVA). Gegevens die niet aan de normale verdeling voldeden, werden geanalyseerd met behulp van de Wilcoxon rangsomtest. Alle kwantitatieve gegevens werden uitgedrukt als gemiddelde ± standaardfout (SE) voor parameters die voldoen aan een normale verdeling, terwijl niet-normaal verdeelde gegevens werden gepresenteerd als mediaan met interkwartielbereik. Een p-waarde < 0,05 werd als statistisch significant beschouwd.