Ethische verklaring
Alle experimentele protocollen zijn beoordeeld en goedgekeurd door het Experimental Animal Care and Use Committee van het Fuzong Clinical Medical College van de Fujian Medical University en uitgevoerd in strikte overeenstemming met de Verklaring van de Association for Research in Vision and Ophthalmology (ARVO) voor het gebruik van dieren in oogheelkundig en visieonderzoek.
Dieren en groepstoewijzing
In totaal werden 72 mannelijke C57BL/6 muizen (8–10 weken oud, lichaamsgewicht 20–25 g) verkregen van de gecertificeerde leverancier, volgens de nationale normen voor laboratoriumdierenfok. De muizen werden gehuisvest in individueel geventileerde kooien onder gestandaardiseerde omgevingsomstandigheden, waaronder een licht/donker-cyclus van 12 uur, gecontroleerde temperatuur (22 ± 2 °C) en relatieve luchtvochtigheid (50% ± 10%), met ad libitum toegang tot voedsel en water. Om de modulerende effecten van ALDH2, SIRT1 en ERS-routes op door MNU veroorzaakte netvliesschade te onderzoeken, werden de muizen willekeurig verdeeld over acht experimentele groepen (n = 9 per groep; n = 5 voor de tweede daggroep; n = 4 voor de groep op de vierde dag) met behulp van een computergegenereerde randomisatiesequentie om selectiebias te minimaliseren. De grafische samenvatting van de studie werd weergegeven in Figuur 1.
Bereiding en behandelingsschema's voor reagentia
De experimentele reagentia die in deze studie werden gebruikt, werden vermeld in de Materiaallijst, met gedetailleerde informatie over bereiding en dosering als volgt. (1) MNU (50 mg/kg): 100 mg MNU werd opgelost in 2 mL normale zoutoplossing om een oplossing van 50 mg/mL te bereiden. Vervolgens werd 1,4 mL van deze oplossing verdund met 5,6 mL normale zoutoplossing tot een uiteindelijke concentratie van 10 mg/mL voor dierlijke toediening. (2) Alda-1 (10 mg/kg): 50 mg Alda-1-poeder werd opgelost in 1 mL dimethylsulfoxide (DMSO) om een 50 mg/mL oplossing te bereiden, die werd verdund met 24 mL normale zoutoplossing tot een uiteindelijke concentratie van 2 mg/mL. (3) Daidzin (10 mg/kg): 50 mg Daidzinpoeder werd opgelost in 1 mL DMSO om een 50 mg/mL oplossing te bereiden, die vervolgens werd verdund met 24 mL normale zoutoplossing tot een uiteindelijke concentratie van 2 mg/mL. (4) EX-527 (10 mg/kg): 5 mg EX-527-poeder werd opgelost in 0,1 mL DMSO om een 50 mg/mL oplossing te bereiden, die werd verdund met 2,4 mL normale zoutoplossing tot een uiteindelijke concentratie van 2 mg/mL. (5) SRT1720 (10 mg/kg): 5 mg SRT1720 poeder werd opgelost in 0,1 mL DMSO en goed gemengd. Vervolgens werden 400 μL PEG300, 50 μL Tween-80 en 450 μL normale zoutoplossing toegevoegd om een werkoplossing van 2 mg/mL te bereiden. (6) TUN (10 mg/kg): 5 mg TUN-poeder werd opgelost in 0,1 mL DMSO om een oplossing van 50 mg/mL te bereiden, die vervolgens werd verdund met 2,4 mL normale zoutoplossing tot een uiteindelijke concentratie van 2 mg/mL. (7) 4-fenylbutyraat (4-PBA; 10 mg/kg): 2 mg 4-PBA-poeder werd opgelost in 1 mL normale zoutoplossing om een oplossing van 2 mg/mL te bereiden. Alle bovengenoemde toedieningsvolumes bedroegen 5 × M milliliter (waarbij M = dierlijk lichaamsgewicht in kg). Daarna werden de muizen verdeeld in acht groepen met de volgende behandelprotocollen:
Controlegroep: Een enkele intraperitoneale injectie van normale zoutoplossing.
MNU-groep: Een enkele intraperitoneale injectie van MNU.
MNU + Alda-1 groep: Intraperitoneale injectie van Alda-1, gevolgd door één toediening van MNU 2 uur later. Alda-1 werd vervolgens eenmaal dagelijks intraperitoneaal toegediend.
MNU + Daidzin-groep: intraperitoneale injectie van Daidzin, gevolgd door een enkele toediening van MNU-injectie 2 uur later. Daidzin werd vervolgens eenmaal per dag intraperitoneaal toegediend.
MNU + Alda-1 + EX-527 groep: Intraperitoneale injectie van Alda-1, gevolgd door EX-527 injectie 1 uur later, en MNU-injectie 1 uur daarna (enkele toediening). Alda-1 werd vervolgens eenmaal dagelijks intraperitoneaal toegediend.
MNU + Alda-1 + TUN-groep: Intraperitoneale injectie van Alda-1, gevolgd door TUN-injectie 1 uur later, en MNU-injectie 1 uur daarna. Alda-1 werd vervolgens eenmaal dagelijks intraperitoneaal toegediend.
MNU + Daidzin + SRT1720 groep: Intraperitoneale injectie van Daidzin, gevolgd door SRT1720 injectie 1 uur later, en MNU-injectie 1 uur daarna. Daidzin werd vervolgens eenmaal per dag intraperitoneaal toegediend.
MNU + Daidzin + 4-PBA groep: Intraperitoneale injectie van Daidzin, gevolgd door 4-PBA injectie 1 uur later, en MNU injectie 1 uur daarna. Daidzin werd vervolgens eenmaal per dag intraperitoneaal toegediend.
Lichaamsgewichtmonitoring
Systemische toxiciteit en behandelingsgerelateerde fysiologische effecten werden gemonitord door dagelijks het lichaamsgewicht van elke muis te registreren gedurende vier opeenvolgende dagen na toediening van de MNU. Gewichten werden gemeten met een precisie-digitale weegschaal met een nauwkeurigheid van ±0,1 g, en er werden gegevens gedocumenteerd om trends in gewichtsverlies of -toename tussen groepen te volgen, wat diende als indirecte indicatoren van behandelingstolerantie en systemische stress.
Netvlieshistopathologie onderzoek
Op de momenten van de tweede en vierde dag na het experiment werden muizen geëuthanaseerd door cervicale dislocatie na anesthesie met intraperitoneale (i.p.) injectie van natriumpentobarbital in een dosis van 50–60 mg/kg lichaamsgewicht, strikt volgens de institutionele richtlijnen voor euthanasie. De ogen, met name de linkeroog, werden onmiddellijk geënucleeerd. Voorafgaand aan de enucleatie werd een kleine incisie gemaakt in de nasale limbus om de oriëntatie aan te geven. De bollen werden vervolgens 24 uur lang ondergedompeld in 4% paraformaldehyde (PFA) in fosfaatgeborsterde zoutoplossing (PBS, pH 7,4) bij 4 °C voor fixatie. De gefixeerde ogen werden vervolgens gedehydrateerd via een gegradueerde ethanolreeks (70%, 80%, 95% en 100%), gezuiverd in xyleen en ingebed in paraffineblokken voor histologische verwerking. Tijdens het inbedden werd de oriëntatie gestandaardiseerd door de gemarkeerde neuszijde naar beneden te plaatsen.
Seriële secties (5 μm dik) werden voorbereid met behulp van een roterend microtoom door de oogzenuwkop (ONH) om representatieve bemonstering van het centrale netvliesgebied te waarborgen. Specifiek werden secties van het bovenste aspect naar het gemarkeerde neuspunt gesneden, zodat alle secties door de ONH gingen. Secties werden vervolgens gemonteerd op positief geladen glazen schuilbanen. Hematoxyline- en eosinekleuring (HE) werd uitgevoerd volgens standaardprotocollen. De netvliesmorfologie werd geëvalueerd met lichtmicroscopie bij 400× vergroting. Metingen werden systematisch verricht vanaf het temporale netvlies op vooraf bepaalde afstanden van de ONH: 200, 400, 600, 800, 1000 en 1200 μm. Op elke locatie werden de totale netvliesdikte, de binnenste en buitenste segment (IS/OS) lengte, de dikte van de buitenste kernlaag (ONL), de dikte van de buitenste plexiforme laag (OPL) en de binnenste kernlaag (INL) gemeten.
Om objectiviteit te waarborgen en meetvooroordeel te minimaliseren, werd een rigoureus kwaliteitscontroleprotocol geïmplementeerd. Specifiek werd elk van de acht experimentele groepen onderverdeeld in vijf of vier subgroepen (bijv. Subgroep 1, 2, 3, 4, 5). Vijf of vier onafhankelijke waarnemers, blind voor groepstoewijzingen, kregen de opdracht om dezelfde overeenkomstige subgroep te meten over alle experimentele groepen (bijv. Waarnemer A mat altijd Subgroep 1 van elke groep). Bij elk meetpunt werden drie metingen genomen binnen een bereik van ~5 μm (bijvoorbeeld bij 200 μm, 195 μm en 205 μm) en gemiddeld om technische fouten te minimaliseren. Kwantitatieve metingen werden uitgevoerd met ImageJ-software (versie 1.54g), en de gemiddelde dikte voor elk punt werd berekend om reproduceerbaarheid te waarborgen.
Aldehydemetabolismemarkers
Om oxidatieve stress en aldehydemetabolisme te beoordelen, werden serummonsters geanalyseerd op MDA- en 4-HNE-niveaus, die belangrijke biomarkers zijn voor lipideperoxidatie en aldehydestress. Specifiek werden alle muizen verdoofd via intraperitoneale (i.p.) injectie van natriumpentobarbital in een dosis van 50–60 mg/kg lichaamsgewicht. Nadat de muizen diep waren verdoofd, werd de euthanasie uitgevoerd door een cervicale ontwrichting. Direct na euthanasie werden de oogbollen geïnnucleeerd en werd er snel retrobulbair bloed verzameld. De monsters mochten 30 minuten bij kamertemperatuur stollen, gevolgd door centrifugatie bij 3.000 × g gedurende 10 minuten. De serumfractie werd zorgvuldig overgebracht naar enzymvrije microcentrifugebuizen en opgeslagen bij -80 °C tot verdere analyse. De serum MDA-niveaus werden gemeten met commercieel verkrijgbare enzym-gekoppelde immunosorbent-assay (ELISA) kits volgens de protocollen van de fabrikant. Kort gezegd werden standaarden en monsters toegevoegd aan voorgecoate microplaten, geïncubeerd met specifieke primaire antilichamen, gewassen om ongebonden materialen te verwijderen, en gereageerd met mierikswortelperoxidase (HRP)-geconjugeerde secundaire antilichamen. Daarna werd het tetramethylbenzidine (TMB) substraat toegevoegd en de reactie werd beëindigd met zwavelzuur. Optische dichtheid (OD) waarden werden uitgelezen op 450 nm met een microplaatlezer, en MDA/4-HNE concentraties werden bepaald door de OD-waarden te vergelijken met standaardcurves die werden gegenereerd met bekende concentraties van de analyten.
Statistische analyse
Alle gegevens werden gepresenteerd als gemiddelde ± standaardfout (SE). Gezien de kleine steekproefgrootte (n = 5 voor de groep op de tweede dag; n = 4 op de groep op de vierde dag), werden de statistische methoden van de Bootstrap-test toegepast. Specifiek werd de Bootstrap-resamplingmethode (1.000 iteraties met vervanging) gebruikt om 95% betrouwbaarheidsintervallen (BI) voor groepsgemiddelden te schatten en om verschillen tussen groepen te vergelijken. Voor elke uitkomst (bijv. gewicht, netvliesdikte, MDA/4-HNE-niveaus) werden Bootstrap-monsters uit de oorspronkelijke dataset gehaald en werd het gemiddelde berekend voor elke herbemonstering. De 95% BI werd afgeleid van het 2,5een 97,5epercentiel van de bootstrap-verdeling. De significantie werd indirect beoordeeld via de volgende benadering door het betrouwbaarheidsinterval te onderzoeken. Als de CI van de Bootstrap-resultaten geen nul bevatte, gaf dit doorgaans aan dat het verschil significant was (ervan uitgaande dat de gemiddelden tussen twee of meer groepen werden vergeleken). Figuren werden gegenereerd met de Graphpad-software (versie 5.01).