4 juni 2009
In deze video presenteren we de microfluïdische probe 1 (MFP). We leggen in detail hoe u de MFP assembleren, monteren bovenop een omgekeerde microscoop, en lijn deze ten opzichte van het substraat oppervlak, en tenslotte laten zien hoe het te gebruiken om een substraatoppervlak ondergedompeld in een bufferoplossing proces.
Deze procedure laat zien hoe de microfluïdische probe of MFP moet worden geassembleerd en gebruikt. De microfluïdische componenten van de MFP zijn gasdichte spuiten, glazen capillaire buisjes, micro-tight connectoren van Upchurch en de MFP-kop. Deze video presenteert de kritieke stappen van de assemblage en uitlijning.
Eenmaal geassembleerd kan de MFP worden gebruikt met een grote verscheidenheid aan substraten en reagentia voor oppervlaktepatronering en -verwerking. Hallo, ik ben Cecil Perot. Ik ben postdoctoraal onderzoeker in het laboratorium van David Yaker van de afdeling Biomedical Engineering aan de McGill University in Montreal, Canada.
Hallo, ik ben Mohammad Kasime. Ik ben PhD-kandidaat in het laboratorium van David Y op de afdeling biomedische technologie van McGill University. Hallo, ik ben David Yoker.
Ik ben universitair hoofddocent bij de afdeling Biomedische Techniek en ik heet u van harte welkom bij onze demonstratie over de microfluïdische probe. Vandaag laten we u de procedure zien voor de bediening en het gebruik van de microfluïdische probe. Wij passen deze procedure in ons laboratorium toe voor oppervlaktebewerking en patroonvorming.
Laten we beginnen. Om dit protocol te starten worden plastic spuiten en naalden gebruikt om glazen gastype-spuiten te vullen met reagentia, waarbij wordt gegarandeerd dat er geen luchtbellen aanwezig zijn. Normaal gesproken gebruiken we een spuit van 1 tot 10 µL voor injectie en een spuit met een vijf tot tien keer groter volume voor aspiratie.
Vervolgens worden de spuiten, gebruikmakend van nano tight-koppelingen met een laag dood volume, verbonden met capillaire buisjes. De capillairen worden daarna gevuld en onder de microscoop gecontroleerd op luchtbellen. De MFP-chip wordt vooraf gevuld met bufferoplossing om te voorkomen dat er luchtbellen ingesloten raken bij het aansluiten van de capillairen.
Ten slotte worden de capillairen in het PDMS-verbindingsstuk in de gefabriceerde MFP-kop geplaatst. Nu de MFP is geassembleerd, kunnen we beginnen met de installatie. Het substraat wordt in een zelfgemaakte houder geplaatst.
Deze is bevestigd aan de objecttafel van de microscoop. De afstand tussen de MFP en het substraat is van cruciaal belang voor oppervlaktepatroneringsprocessen. Met behulp van een driepuntssteun, gevormd door micrometerschroeven, wordt de horizontale uitlijning met micrometerprecisie aangepast.
Dit is noodzakelijk omdat het substraat wordt verwerkt door het onder de MFP te scannen. Om de MFP in te stellen, wordt de probekop in de probehouder geklemd en gemonteerd op het probestation bovenop een omgekeerde microscoop. De spuiten worden vervolgens in precisiespuitpompen geplaatst.
Vervolgens wordt, met behulp van een paar goniometers, de uitlijning van de tafel van de MFP ten opzichte van het substraat aangepast door de Newton-ringen, ook wel interferentiefranjes genoemd, waar te nemen. Deze verschijnen wanneer de MFP in contact wordt gebracht met het substraat; het contactpunt en de frequentie van de ringen dienen als indicatie voor de kanteling. Wanneer de MFP is uitgelijnd met het oppervlak, strekt één enkele interferentiering zich uit over het gehele oppervlak.
Deze meting dient tevens om de afstand tussen de MFP en het substraat te kalibreren. Nu de MFP is opgezet, kunnen we overgaan naar de bediening van de MFP. Tijdens de bediening van de MFP wordt het dispenseren aangestuurd door LabVIEW-software.
De bediening van het apparaat wordt visueel gecontroleerd en met een CCD-camera gevolgd. Voordat de eigenlijke aspiratie begint, dient er wat vloeistof te worden geïnjecteerd om er zeker van te zijn dat de aspiratiespuit correct is georiënteerd en dat er geen luchtbellen aanwezig zijn. De MFP wordt vervolgens in de buffer ondergedompeld.
We kunnen nu beginnen met de injectie van vloeistof terwijl de stroominsluiting van de kraaltjes wordt gemonitord. De injectie-aspiratieverhouding varieert van 1:3 tot 1:10, afhankelijk van de diffusiviteit van het reagens in een omringende buffer en het gewenste geometrische stroompatroon. Ten slotte kan de probe nu worden gebruikt voor diverse toepassingen.
De hier getoonde oppervlaktepatronen zijn gerealiseerd met de MFP met fluoresceïne-gelabeld biotine op strep divide, ENC-gecoate hydrogelglazen dia's. De injectiesnelheid was 1 nanoliter per seconde en de aspiratiesnelheid was 10 nanoliters per second, waarbij respectievelijk spuiten van 10 microliter en 50 microliter werden gebruikt. De afstand tussen het oppervlak en de probe was vijf micrometer.
Het MFP kan ook worden gebruikt voor lokale kleuring en verwerking van cellen en weefsels. De stroominsluiting voorkomt diffusie van het reagens en maakt nauwkeurige chemische kleuring van cellen mogelijk. Zoals hier wordt getoond, werd een monolaag fibroblastcellen gekleurd met 100 µg/mL dai.
We hebben u nu laten zien hoe u de microfluïdische probe bedient. Bij het uitvoeren van deze procedure moet u ervoor zorgen dat er geen luchtbellen in het systeem voorkomen en dat het oppervlak van de microfluïdische probe parallel aan het substraat staat. Dat is alles.
Bedankt voor het kijken en veel succes met uw experimenten.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Deze video demonstreert de assemblage en het gebruik van de microfluïdische probe (MFP). Er wordt ingegaan op de cruciale stappen voor het uitlijnen van de MFP met een omgekeerde microscoop en het bewerken van substraatoppervlakken die zijn ondergedompeld in een bufferoplossing.
De microfluïdische probe maakt een nauwkeurige, lokale toediening van reagentia voor oppervlaktebewerking mogelijk zonder dat gesloten microfluïdische kanalen vereist zijn, wat schaalbare en reproduceerbare assayontwikkeling ondersteunt. Deze mogelijkheid verbetert de targetvalidatie en fenotypische screening door gecontroleerde micro-omgevingen voor cellulaire en moleculaire interacties mogelijk te maken. Het biedt een herbruikbaar platform voor oppervlaktepatronering met een hoge resolutie, waardoor het verbruik van reagentia wordt verminderd en de experimentele doorvoer in vroege discovery-workflows wordt verhoogd.
De microfluïdische probe integreert in het ontdekkingscontinuüm, van vroege doelwitvalidatie via assayontwikkeling tot preklinische screening, ter ondersteuning van iteratieve ontwerp- en testcycli.