Name: Mozaïek zebravis Transgenese voor het evalueren van Enhancer Sequences (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-07-16T17:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 23 s
Description: Leer mozaïek transgenese in Danio rerio voor het analyseren van enhancer-sequenties en transcriptieregulatie. Deze methode helpt onderzoekers genfunctie in skeletontwikkeling bestuderen.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Wij danken mevrouw Paula Roy voor uitstekende vis veeteelt, en Steve Ekker voor het soort geschenk van de pDB600 plasmide. Deze studies werden gefinancierd door een subsidie ​​aan SF van NHGRI.

1. Selectie en klonen van geconserveerde sequenties voor het testen van <ol><li> Men moet eerst identificeren van potentiële regulerende sequenties voor functionele testen. Wij vertrouwen op evolutionaire opeenvolging behoud als een criterium om sequenties te selecteren, en het meest gebruikt het algoritme PhastCons, die toegankelijk is als een track op de UCSC Genome browser (http://genome.ucsc.edu/cgi-bin/hgGateway). Echter, er zijn vele andere algoritmes beschikbaar om de sequentie van het behoud te evalueren tussen soorten. </li><li> Zodra we onze reeksen geselecteerd, ontwerpen we primers voor elke sequentie versterken van genomisch DNA. Primers moeten worden geselecteerd om de geconserveerde regio plus 30 of meer baseparen aan beide kanten te versterken. </li><li> Voor versterking van de geselecteerde sequenties we gebruik van de Takara LA TaqTM systeem. Andere polymerasen zal werken, maar het is belangrijk om een ​​mix die een enzym met proeflezen mogelijkheid is inclusief gebruik, om de kans op fouten die tijdens versterking te minimaliseren. We controleren de amplicongrootte door agarose gelelektroforese. </li><li> We gebruiken de pCR 8/GW/TOPO TA Cloning Kit (Invitrogen) om het PCR-product kloon in een entry vector die attL recombinatie sites, op de gateway entry kloon te genereren. Het klonen reactie is efficiënter met verse PCR-product, dus het is het beste om het klonen uit te voeren binnen een dag van de PCR. Transformatie in DH5a stammen wordt uitgevoerd, gevolgd door spectinomycine weerstand selectie. </li><li> We controleren of het product van de TA klonering door digestie van ~ 500ng van plasmide met EcoRI om de insert release, en bevestig de grootte van de insert door agarose gelelektroforese. We raden sequencing om de volgorde te voegen en de oriëntatie te controleren; primers gebruikt voor de amplificatie kan ook worden gebruikt voor het rangschikken. </li><li> Vanaf de datum van kloon, is het niet-coderende geconserveerde sequentie geschuif door LR recombinatie naar onze Gateway klaar voor bestemming vector, pGW_cfosGFP1, met behulp van Gateway LR Clonase II enzym Mix (Invitrogen). Transformatie in DH5a stammen wordt uitgevoerd, gevolgd door ampicilline-resistentie selectie. </li><li> We controleren of het product van de LR recombinatie door digestie van ~ 500ng van plasmide met EcoRV om de insert release, en bevestig de grootte van de insert door agarose gelelektroforese. Zodra een nauwkeurige kloon is geïdentificeerd, bereiden we plasmide DNA met behulp van de Qiagen HiSpeed ​​® Plasmid Midi Kit. We verder zuiveren het plasmide met behulp van de PCR Purification Kit QIAquick, volgens de fabrikant protocollen, en elueer het DNA met 30 pi RNase vrij water. Het plasmide wordt verdund tot een concentratie van 125 ng / ul en bewaard bij 4 ° C voorafgaand aan de injecties. </li><li> RNA-codering functionele Tol2 transposase enzym is getranscribeerd in vitro van de pDB600 plasmid2. We zuiveren het plasmide met behulp van de Qiagen Midi-Prep kit, dan lineariseren 10-20 ug met Xbal. Het mRNA-synthese wordt uitgevoerd naar aanleiding van de mMESSAGE mMACHINE Kit-protocol (Ambion). </li><li> We zuiveren en het neerslaan van de RNA volgens de kit instructies. We mengen RNA tot een uiteindelijke concentratie van ~ 1μg/μl, of 20 ul voor een enkele reactie, in het RNase vrij water, en te kwantificeren door UV spectrofotometrie. Analyseren we ook ~ 1μg van RNA door agarosegelelektroforese over de gehele lengte transcriptie te controleren. Hoewel een standaard TAE of TBE gel is voldoende voor deze analyse, moet het denatureren sample buffer die bij de transcriptie kit worden gebruikt volgens de kit instructies. </li><li> We testen elke nieuwe partij transposase RNA voor effectiviteit door het uitvoeren van injecties met een bekende plasmide (zie figuur 1). Na verificatie, wordt het RNA verdeeld in kleine porties en opgeslagen bij -80 ° C, om herhaalde ontdooien en opnieuw bevriezen van de individuele monsters te voorkomen. <img src="/files/ftp_upload/1722/1722fig1.jpg" alt="Figuur 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 1"> Figuur 1. Zebravis embryo geïnjecteerd met de muis Sox10 enhancer als een controle. (Top) Helderveld beeld (Bottom) GFP fluorescentie beeld. Elke nieuwe partij transposase RNA is getest op werkzaamheid. </li></ol> 2. Micro-injectie van de zebravis embryo's voor mozaïek transgene analyse <ol><li> We trekken de naalden voor de micro-injectie van 1,2 mm OD gloeidraad capillair glas op een Sutter P-97 Micropipet Puller, met een programma dat is ontworpen om een ​​sterke tip met een vrij scherpe kaars aan intacte chorions dringen opleveren. We breken de tips met de hand onder een stereomicroscoop voor een buitendiameter van ongeveer 15 urn, met behulp van een schoon scheermesje en een micrometer. De naalden kunnen worden gemaakt op de dag voor injecties, en opgeslagen in een overdekte holding schotel schoon te houden. </li><li> Wij handhaven onze zebravis op een regelmatige licht-donker-cyclus, met 14 uur licht, onder normale conditions3. De dag voorafgaand aan het uitvoeren van micro-injecties, zetten we vissen voor de timing van paringen in kleine fokkerij tanks, elk bestaande uit een basislaag tank, een schuimspaan uit de voegen, en een plastic deksel. Plaatsen we drie vrouwtjes of twee mannetjes per tAnk in parallelle rijen. </li><li> Op de ochtend van de micro-injecties, kort nadat het licht cyclus begint, starten we het combineren van mannen en vrouwen in schoon systeem behandelde water voor de productie van eieren. Het is belangrijk om te controleren op de vis vaak, en het verzamelen van de eieren binnen een paar minuten van de leg, om goed gesynchroniseerd batches te krijgen. Ei-productie kan worden gehandhaafd voor twee tot drie uur, door te blijven verse groepen van vis te combineren in de ochtend. </li><li> Met een brede boring, 5 1 / 4 "glas Pasteur pipet voorzien van een latex bol, we de verzamelde embryo's te sorteren in 60 x 15 mm petrischaaltjes, gedeeltelijk gevuld met Embryo Medium2, in groepen van 50 embryo's, en geven de tijd verzameld op het deksel van elk gerecht. </li><li> Zodra de vissen zijn begonnen leggen, bereiden we verse injectie oplossing door het mengen van de volgende in een microfugebuis op ijs: <table border="1"><tbody><tr><td> Bestanddeel </td><td></td></tr><tr><td> Transposon plasmide voorraad (125ng/μl) </td><td> 1μl </td></tr><tr><td> Transposase RNA voorraad (175ng/μl) </td><td> 1μl </td></tr><tr><td> Fenolrood voorraad (2% in H 2 O) </td><td> 0.5μl </td></tr><tr><td> RNase vrij water </td><td> 2.5μl </td></tr></tbody></table> De injectie naalden zijn vastgelegd in de holding gerechten en ingevuld door pipetteren 500 nl druppels van de injectie-oplossing op het brede einde van elke naald. Nadat de vloeistof is gevestigd op de punt door middel van capillaire werking, kunnen aanvullende oplossing worden toegevoegd tot een totaal van 1,5-2 pl. We bereiden ten minste twee naalden voor elke oplossing voor injectie. </li><li> De gevulde naald is geladen in de hand gehouden naald houder van een pneumatische Pico-pomp of een soortgelijke druk injector, geconfigureerd en aangesloten op een N2 tank volgens de instructies van de fabrikant. We kalibreren injectie volumes door het meten van de diameter van de druppeltjes in minerale olie op een micrometer. Meestal zal een injectie van 120 ms met een druk van 20 psi opbrengst een druppel van ongeveer 1 nl, maar lichte variaties in de naald met een diameter is van invloed op deze parameters en herkalibratie kan nodig zijn tussen de naalden. </li><li> De injecties worden uitgevoerd onder een stereomicroscoop bij 6-10X vergroting. We maken gebruik van een paar van fijne pincetten voor het embryo zijn plaats te houden, druk de injectienaald met constante druk door het chorion en in de dooier van een embryo aan de ene cel of vroeg twee cellig stadium. In het ideale geval hebben we de positie van de naaldpunt in de dooier net onder de blastomeren. Ongeveer 1 nl van de injectie-oplossing wordt uitgestoten en de naald teruggetrokken. Voor elk construct we injecteren ≥ 200 embryo's. Het is ook heel belangrijk, voor elke koppeling van de verkregen embryo's, om op te slaan een schotel van uninjected controle embryo's. </li><li> Na de injecties zijn afgerond we sorteren de embryo's door het verwijderen van onbevruchte eieren, beschadigde embryo's, en mislukte injecties (embryo's zonder fenolrood in blastomeren). Vervolgens hebben we Incubeer de embryo's in embryo medium bij 28,5 ° C tot het juiste moment voor waarnemingen. </li></ol> 3. Analyse van de mozaïek expressiepatronen <ol><li> Naar aanleiding van een geschikte incubatietijd, onderzoeken we de geïnjecteerde embryo's voor fluorescentie. De timing hangt af van het normale expressiepatroon van de endogene zebravis-gen, maar we meestal kijken dagelijks door de eerste 5 dagen na de bevruchting. </li><li> We onderzoeken de embryo's voor fluorescentie op een Olympus MVX10 macroscoop uitgerust voor epifluorescentie, maar een soortgelijke microscoop die een laag stroomverbruik imaging zal werken. Als er een groot aantal embryo's dat overleed of ontwikkeld abnormaal in de eerste dagen, kijk naar de uninjected controles voor die koppeling om te zien of ze er normaal. Als de controles er normaal uitzien, het meest voorkomende probleem is onvoldoende zuiverheid van de geïnjecteerde DNA. Ook de embryo's in een vroeg stadium zijn gevoelig voor de totale hoeveelheid ingespoten plasmide, dus het is mogelijk dat de kwantificering onjuist was en te veel DNA werd geïnjecteerd. </li><li> Bij het onderzoek van de embryo's, in gedachten te houden dat ze allemaal zullen worden mozaïek voor de geïnjecteerde bouwen. Het zal nodig zijn om zorgvuldig te kijken naar alle van de embryo's, vooral als de verwachte domein van expressie klein is. Bedenk ook dat de uitdrukking zou kunnen worden dynamische, sterke fluorescentie op dag 1 kunnen verdwijnen op dag 2, en embryo's negatief voor de expressie van de eerste 3 dagen misschien iets laten zien op dag 4. </li><li> We kiezen een aantal embryo's met uitgebreidere expressie, en deze gebruiken om het patroon van de fluorescentie door photomicroscopy document. Na 5 dagen van waarnemingen, moet de embryo's worden teruggegeven aan de faciliteit en opgevoed als een voorraad. In een aantal maanden, kunnen de volwassenen worden gescreend op kiembaan overdracht van de transgenen. </li></ol> 4. Resultaten We zien een grote variety van patronen en het niveau van expressie, afhankelijk van de versterker element wordt geanalyseerd. We zijn meestal geïnteresseerd in zeer weefsel-specifieke expressie patronen, en zijn vaak gericht op genen die, uitgedrukt in het skelet. en zijn vaak gericht op genen die, uitgedrukt in het skelet. Figuur 2 toont voorbeelden van mozaïek expressie patronen hebben we gezien bij onze geïnjecteerd embryo's, met versterkers reguleren van expressie in kraakbeen en bot. Tot slot, een substantieel deel van de geteste sequenties niet reguleren weefsel-specifieke expressie. Voor deze, we meestal zien zeer weinig fluorescentie, misschien een paar losse cellen per embryo. Minder vaak, misschien zien we fluorescentie, maar slechts in twee algemene sites voor ectopische expressie, de opperhuid en de skeletspieren (figuur 3). <img src="/files/ftp_upload/1722/1722fig2.jpg" alt="Figuur 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 2"> Figuur 2. Voorbeeld van kraakbeen en bot expressie waargenomen patronen in de geïnjecteerde embryo's. <img src="/files/ftp_upload/1722/1722fig3.jpg" alt="Figuur 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 3"> Figuur 3. Er is weinig correlatie tussen de locatie van de enhancer ten opzichte van het gen en de regulering van meningsuiting. Een substantieel deel van de geteste sequenties niet reguleren weefsel-specifieke expressie. Deze hebben vaak zeer weinig fluorescentie, of kunnen hebben twee gemeenschappelijke locaties voor ectopische expressie: de opperhuid en de skeletspieren. (Top) Helderveld beeld (Bottom) GFP fluorescentie beeld.

<ol><li>Fisher, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluating+the+biological+relevance+of+putative+enhancers+using+Tol2+transposon-mediated+transgenesis+in+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Evaluating the biological relevance of putative enhancers using Tol2 transposon-mediated transgenesis in zebrafish.</a> Nat Protoc. 1 (3), 1297-12 (2006).</li>
<li>Balciunas, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Harnessing+a+high+cargo-capacity+transposon+for+genetic+applications+in+vertebrates%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Genet%22%5BJournal%5D)">Harnessing a high cargo-capacity transposon for genetic applications in vertebrates.</a> PLoS Genet. 2 (11), e169-169 (2006).</li>
<li><a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22The+Zebrafish+Book%22">The Zebrafish Book</a>. Westerfield, M. , 3 ed, University of Oregon Press. Eugene, OR. (1995).</li>
</ol>

We hebben aangetoond dat de aanpak die in ons laboratorium voor de efficiënte analyse van de potentiële versterkers met behulp van zebravis transgenese. Meestal gebruiken we deze benadering te zoeken naar weefsel-specifieke enhancers geassocieerd met menselijke genen. Ondanks het ontbreken van voor de hand liggende sequentiehomologie de meeste van de tijd tussen mens en vis niet-coderende sequenties, vinden we dat deze aanpak succesvol is meestal bij het identificeren van versterkers voor de genen die voor ons van belan...

<table><tbody><tr><td>Takara LA Taq</td><td>Takara Bio Inc</td><td>RR02M</td><td></td></tr><tr><td>pCR8/GW/TOPO TA Cloning Kit</td><td>Invitrogen</td><td>K2500-20</td><td></td></tr><tr><td>Gateway LR Clonase II enzyme Mix</td><td>Invitrogen</td><td>11791-100</td><td></td></tr><tr><td>Library efficiency competente cellen DH5&amp;alpha;</td><td>Invitrogen</td><td>12535-019</td><td></td></tr><tr><td>Library efficiency competente cellen DB3.1</td><td>Invitrogen</td><td>11782-018</td><td></td></tr><tr><td>mMESSAGE mMACHINE Kit</td><td>Ambion</td><td>AM1340</td><td></td></tr><tr><td>HiSpeed Plasmid Midi Kit</td><td>Qiagen</td><td>12643</td><td></td></tr><tr><td>QIAquick PCR Purification Kit </td><td>Qiagen</td><td>28104</td><td></td></tr><tr><td>Flaming/Brown Micropipette Puller</td><td>Sutter Instrument Co.</td><td>P-97</td><td></td></tr><tr><td>Pneumatic PicoPump</td><td>World Precision Instruments, Inc.</td><td>SYS-PV820</td><td></td></tr></tbody></table>

mozaïek zebravis transgenese voor het evalueren van enhancer sequences

Mosaic Zebrafish Transgenesis for Evaluating Enhancer Sequences

De voltooiing van het menselijk genoom sequentie, samen met die van vele andere soorten, heeft gewezen op de uitdaging van het toeschrijven van specifieke functie niet coderende sequenties. Een prominente functie uitgevoerd door de niet-coderende deel van het genoom is te regelen gentranscriptie, maar er zijn geen effectieve methoden om in grote lijnen te voorspellen cis-regulatorische elementen van primaire DNA-sequentie. We hebben een efficiënt protocol om functioneel beoordelen van mogelijke cis-regulatorische elementen door middel van zebravis transgenese. Onze aanpak biedt aanzienlijke voordelen ten opzichte van cel-cultuur op basis van technieken voor ontwikkelings belangrijk genen, want het geeft informatie over de ruimtelijke en temporele genregulatie. Omgekeerd, is het sneller en goedkoper dan vergelijkbare experimenten in transgene muizen, en we routinematig toe te passen op sequenties van het menselijk genoom. Hier laten we zien onze benadering van het selecteren van elementen voor het testen op basis van volgorde behoud en onze protocol voor het klonen van sequenties en microinjecting ze in zebravis embryo&#39;s.

We tonen onze aanpak voor het vinden van potentiële enhancer elementen uit de op ontwikkelingsgebied gereguleerde genen en evalueren van hun functie door middel van mozaïek zebravis transgenese.

Mozaïek zebravis Transgenese voor het evalueren van Enhancer Sequences

De voltooiing van de sequentie van het menselijk genoom, samen met die van veel andere soorten, heeft de uitdaging onderstreept om een specifieke functie toe te kennen aan niet- coderende...

Hoi, ik ben Erica Kgi van het laboratorium van Shannon Fisher van de afdeling Cel- en Ontwikkelingsbiologie aan de University of Pennsylvania. Ik ben Chris Weber, ook van het Fisher Lab. En ik ben Shannon Fisher.Vandaag tonen we u een procedure voor het analyseren van de functie van enhancer-elementen met behulp van transgenese in zebravissen. We gebruiken deze procedure om de transcriptionele regulatie van genen te bestuderen die belangrijk zijn voor de skeletontwikkeling. Laten we beginnen.Om niet-coderende sequenties rond kandidaatgenen te identificeren, gebruiken we het algoritme fast cons, dat toegankelijk is als een track in de uc SC genome browser. We zijn primair geïnteresseerd in genen die tot expressie komen tijdens de skeletontwikkeling, maar dezelfde aanpak kan worden gebruikt om elk gen te bestuderen dat tot expressie komt tijdens de vroege ontwikkeling. In het hier getoonde voorbeeld hebben we geconserveerde sequenties geïdentificeerd.In het interval rondom het menselijke bumper-gen onderzoeken we het gehele interval tot aan de aangrenzende genen en bepalen we een lage, grootte-specifieke log-score-afkapwaarde die overeenkomt met ongeveer de top 5% van de niet-coderende sequentie. Na het selecteren van sequenties ontwerpen we primers met behulp van Primer3 om elke sequentie uit menselijk genomisch DNA te amplificeren; primers moeten worden gekozen om de geconserveerde regio plus 30 of meer basenparen aan weerszijden te amplificeren. Amplificeer de regio van interesse met een hoogwaardige polymerase met gebruik van menselijk genomisch DNA en gebruik standaard laboratoriumprocedures voor moleculaire biologie om het geamplificeerde product in een expressievector te kloneren.De vector die in dit protocol wordt gebruikt is PG wc FOS GFPA gateway. Bestemmingsvector. Na de vectorcreatie wordt er instructie gegeven om te transponeren.Het enzym dat nodig is voor transpositie wordt voorafgaand aan de experimentele injecties eerst in vitro getranscribeerd met behulp van de M message M machine kit van Ambion en het PGB 600-plasmide. Test elke batch transposasen op werkzaamheid door te injecteren met een bekende enhancer, zoals de muis socks. 10 enhancer.Trek ter voorbereiding op de injecties de naalden voor micro-injectie uit filamentcapillairglas met een buitendiameter van 1,2 millimeter met een Sutter P 97 micropipet-puller. Gebruik een programma dat een stevige tip met een scherpe tapsheid oplevert om intacte chorions door te kunnen dringen met een schoon scheermesje en een micrometerplaatje. Breek de tips handmatig onder een stereomicroscoop tot een buitendiameter van ongeveer 15 micrometer.De naalden kunnen gedurende een dag worden bewaard in een afgedekte bewaarschaal. Houd de zebravispopulatie de dag vóór het uitvoeren van de micro-injecties op een regelmatige licht-donkercyclus met 14 uur licht onder standaardcondities. Bereid de vissen voor op getimede paringen in kleine kweekbakken.Plaats op de ochtend van de micro-injecties, kort na het begin van de lichtcyclus, drie vrouwtjes of twee mannetjes per tank in parallelle rijen. Combineer mannetjes en vrouwtjes in schoon, behandeld systeemwater voor de eiproductie. Controleer de vissen regelmatig en verzamel de eieren binnen enkele minuten na de productie om goed gesynchroniseerde batches te verkrijgen.Houd de eiproductie gedurende twee tot drie uur op gang door gedurende de ochtend telkens nieuwe groepen vissen te combineren met een glazen pasteurpipet met een wijde opening van 5,25 inch, voorzien van een latex ballon. Verdeel de verzamelde embryo's in groepen van 50 embryo's over Petrischalen van 60 bij 15 millimeter, die gedeeltelijk zijn gevuld met embryo-medium. Noteer het tijdstip van verzameling op het deksel van elke schaal.Bewaar voor elk verzamelde nest embryo's een schaal met 50 embryo's als niet-geïnjecteerde controle tussen de eiverzamelingen door. Bereid verse injectie-oplossingen door de volgende ingrediënten in een microcentrifugebuis te mengen en bewaar deze op ijs. Leg de injectienaalden in bewaarschalen en vul deze met 1,5 tot 2 µL injectie-oplossing.Pipetteer druppels van 500 nanoliter op het brede uiteinde van elke naald. De vloeistof zal door capillaire werking naar de punt worden getrokken. Bereid ten minste twee naalden voor per injectieoplossing.Plaats de gevulde naald in de handgreep van een pneumatische picopomp of een soortgelijke drukinjector. Deze dient te zijn geconfigureerd en aangesloten op een stikstoftank volgens de instructies van de fabrikant. Kalibreer de injectievolumes door de diameter van druppels te meten die in minerale olie op een micrometerglasplaat worden geïnjecteerd, gewoonlijk met een injectietijd van 120 milliseconden.Met een druk van 20 PS produceer ik een druppel van ongeveer één nanoliter met behulp van een stereomicroscoop bij een vergroting van 6 tot 10 x. Houd het embryo op zijn plaats met een fijne pincet en duw de injectienaald met een gelijkmatige druk door het chorion in het dooereiland van een embryo in het ééncellige of vroege tweekellige stadium; positioneer de naaldpunt in het dooereiland net onder de blastomeren, voer ongeveer één nanoliter injectieoplossing toe en trek de naald terug. Voor elk construct injecteren we 200 of meer embryo's. Nadat de injecties zijn voltooid, worden de embryo's gesorteerd door onbevruchte eieren, beschadigde embryo's en mislukte injecties of embryo's zonder fenolrood in de blastomeren te verwijderen.Vervolgens incuberen we de embryo's en het embryo-medium bij 28,5 °C tot het juiste tijdstip voor de waarnemingen. Nu tonen we u enkele representatieve resultaten van enhancer-elementen die weefselspecifieke patronen van GFP-expressie produceren in het zebravissenbryo. We bestuderen genen die tot expressie komen in bot of kraakbeen tijdens.Hier is een voorbeeld van een enhancer-element stroomopwaarts van het acan-gen dat de expressie in het kraniofaciale kraakbeen reguleert op drie dagen na bevruchting. Hier is een andere enhancer, ditmaal van het bumper-gen, die de expressie in botcellen reguleert. Op vijf dagen zien we, van de vele enhancers die we hebben geïdentificeerd, weinig correlatie tussen de locatie ten opzichte van het gen en de regulatie van de expressie.Bij het kiezen van sequenties om te testen, is het belangrijk om te onthouden dat een enhancer honderden kilobasen stroomopwaarts of stroomafwaarts van een gen kan liggen, of in een van de intronen, zoals te zien is in dit embryo. Een aanzienlijk deel van de sequenties lijkt weefselspecifieke expressie niet te reguleren. Deze vertonen vaak zeer weinig fluorescentie of kunnen enkele verspreide cellen vertonen op twee veelvoorkomende locaties voor ectopische expressie: de epidermis en de skeletspieren.We hebben zojuist laten zien hoe u potentiële enhancer-elementen kunt identificeren via sequentieconservatie en hun functie kunt testen via mozaïek-transgenese in zebravis. Wanneer u deze procedure uitvoert, is het belangrijk om de kwaliteit van uw DNA en RNA voor injecties te controleren. Zorg er daarnaast voor dat u alle geïnjecteerde embryo's zorgvuldig onderzoekt, vooral als u expressie slechts in een kleine groep cellen verwacht.Dat was alles. Bedankt voor het kijken en veel succes met uw experimenten.

mosaic-zebrafish-transgenesis-for-evaluating-enhancer-sequences

Research

JoVE Journal

Biology

Biologie

Een stap-voor-stap handleiding voor gerichte chimerisch zebravis embryo's genereren door transplantatie op de blastula of gastrulastadium.

Het genereren van Chimère zebravis embryo&#39;s door transplantatie

De temporele en ruimtelijke resolutie van de genetische manipulaties bepaalt het spectrum van biologische fenomenen die ze kunnen verstoren. Hier gebruiken we tijdelijk en ruimtelijk...

Targeting bulbus olfactorius Neuronen gebruik van Gecombineerd In Vivo Elektroporatie en Gal4-Based Enhancer Trap zebravis Lines

Dit protocol beschrijft de methode van de genetische val insertiemutagenese behulp Gal4-VP16 als primaire verslaggever en GFP / RFP als secundaire verslaggevers in zebravis. Ongeveer een op de tien high-uitdrukken F0 vis opbrengst gene trap nageslacht co-GFP en RFP. De screeningsprocedure kan gemakkelijk worden opgeschaald te passen aan de grootte van het laboratorium dat de insertie mutagenese scherm.

Gene Trapping behulp Gal4 in zebravis

De zebravis is een krachtig modelsysteem voor ontwikkelingsbiologie en onderzoek naar menselijke ziekten vanwege hun genetische overeenkomsten met hogere gewervelde dieren. Dit protocol beschrijft een methodologie om haploïde zebravis-embryo's te creëren die kunnen worden gebruikt voor forward screen-strategieën om recessieve mutaties in genen die essentieel zijn voor vroege embryogenese te identificeren.

Productie van Haploid zebravis embryo&#39;s door<em&gt; In Vitro</em&gt; Bemesting

Het doel van deze studie is om aan te tonen hoe de mozaïek transgenese strategie kan worden gebruikt bij zebravissen om snel en efficiënt de relatieve bijdragen van meerdere oncogenen in tumorinitiatie en progressie in vivo te beoordelen.

Mozaïek zebravis Transgenese voor Functioneel genomische analyse van de kandidaat-coöperatieve genen in Tumor Pathogenese

Hier schetsen we de workflow voor het gebruik van het TetON-systeem om weefselspecifieke genregulatie te bereiken in de regenererende staartvin van een volwassen zebravis.

Gebruik van de Teton systeem om te studeren moleculaire mechanismen van zebravis Regeneratie

Het in beeld brengen van het dynamisch gedrag van organellen en andere subcellulaire structuren in vivo kan licht werpen op hun functie in fysiologische en ziektecondities. Hier presenteren we methoden voor het genetisch markeren van twee organellen, centrosomen en mitochondriën, en het in beeld brengen van hun dynamiek in levende zebravis-embryo's met behulp van breedveld- en confocale microscopie.

Beeldvorming Subcellulaire Structuren in het Living zebravis embryo

Dit werk presenteert een nieuw in vivo model van segmentale nierbeschadiging met behulp van transplantale zebravis van GFP van de nieren. Het model zorgt voor de inductie van de gerichte ablatie van nierepitheelcellen om de cellulaire mechanismen van nephron letsel en reparatie te tonen.

Precise Cellular Ablation Approach voor het modelleren van acute nierbeschadiging bij het ontwikkelen van zebravis

Dit artikel introduceert de methode voor het ontwikkelen, karakteriseren en volgen in real-time van de tumormetastase in het zebravismodel van neuroblastoom, met name in de transgene zebravislijn met overexpressie van MYCN en LMO1, die spontaan metastase ontwikkelt.

Zebravismodel van neuroblastoommetastase

Dit werk beschrijft een protocol voor het modulaire Tol2-transgenesesysteem, een gateway-gebaseerde kloonmethode om transgene constructies in zebravisembryo's te creëren en te injecteren.

Het Zebrafish Tol2-systeem: een modulaire en flexibele gateway-gebaseerde transgenesebenadering

Leer mozaïek transgenese in Danio rerio voor het analyseren van enhancer-sequenties en transcriptieregulatie. Deze methode helpt onderzoekers genfunctie in skeletontwikkeling bestuderen.

Mozaïek zebravis Transgenese voor het evalueren van Enhancer Sequences

Meer video's verkennen