Name: Multielectrode Array Opnames van de Vomeronasal Epithelium (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-03-01T16:25:00.000+00:00
Duration: 8 min 27 s
Description: Leer multielectrode array-opnames van het vomeronasale epitheel bij muizen met behulp van een robotarm voor precieze stimuli. Deze methode maakt gedetailleerde studie van sensorische neuronactiviteit mogelijk.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

We willen graag de leden van de Heilige Lab bedanken. Dit werk werd ondersteund door het Nationaal Instituut voor Doofheid en Communicatie Disorders (R01 DC005964 tot DE) en NSF IGERT 0548890 (HAA). Experimenten op dieren werden uitgevoerd in overeenstemming met de Verenigde Staten Animal Welfare Acts en de National Institutes of Health richtlijnen en zijn goedgekeurd door de Washington University Dierverzorging en gebruik Comite.

Deel 1. Elektrische opnemen Instrumentatie <ol><li> We maken gebruik van een vlakke multielectrode array (ALA Scientific Instruments) met 10 micrometer vlakke titanium nitride elektroden geïsoleerd met silicium nitride. 60 elektroden zijn gerangschikt in twee velden die bestaat uit een 5x6 rooster met hart-op-hart afstand van 30 micrometer. (Andere configuraties zijn ook mogelijk; elektroden met een opname-oppervlak 10 micrometer in diameter zijn beter dan grote elektroden op het gebied van het isoleren van de activiteit van enkele neuronen.) </li><li> Elektrische signalen worden versterkt (1000x versterking) met behulp van een MEA 1060 versterker (ALA Scientific Instruments). Signalen worden verworven op 10 kHz met behulp van een data-acquisitie kaart (National Instruments) en aangepaste data-acquisitie software (men kan ook de aankoop van commerciële software). </li><li> Het weefsel wordt vastgehouden aan de MEA door een nylon mesh (53 micrometer), die is bevestigd aan een op maat te voegen, die precies past in de cultuur buis ring van de MEA. </li></ol> Deel 2. Vloeistof Levering Instrumentatie <ol><li> Het weefsel vereist een continue superfusie, die we garanderen door het leveren van Ringer-oplossing (115 mM natriumchloride, 5 mM kaliumchloride, 2 mM calciumchloride, 2 mM magnesiumchloride, 25 mM natriumbicarbonaat, 10 mM HEPES, en 10 mM D-(+ )-glucose) van een HPLC-pomp. Stimuli worden gepresenteerd door het uitvoeren van injecties in een HPLC-klep en het schakelen tussen de doorstroming en de lus. Zowel de HPLC-pomp en de injectie-robot injectiepomp worden geleverd met Ringer's. </li><li> Ringer's oplossing wordt bewaard in een verwarmd waterbad (ISOTEMP 105) bij 42 ° C gedurende het hele experiment en is voortdurend borrelen met 95% O 2 / 5% CO 2. Een aparte fles van Ringer, zonder glucose is voorbereid op de steun van de injectiepomp. Ringer-oplossing wordt geleverd aan het weefsel met behulp van een 307 HPLC-pomp (Gilson) met een snelheid van 3 ml / min. In een typisch 5-6 uur experiment, een L van de oplossing elke Ringer is voldoende. </li><li> Gedurende het experiment wordt het weefsel voortdurend superfused met 37 ° C oplossing Ringer's. Een verwarming sonde is geplaatst direct boven het weefsel. </li><li> Stimuli worden geleverd met behulp van de Gilson 215 Liquid Handler robotarm. Stimuli worden opgeslagen in rubber bedekte glazen flesjes, en onder de controle van Gilson software, de robotarm levert de prikkels naar de perfusie lijn terwijl constant debiet en druk worden gehandhaafd. </li><li> De toestand van de HPLC-klep (lus bezig / niet betrokken) wordt vertegenwoordigd door een elektrische spanning, die door de overname op de computer opgenomen als een extra kanaal om de synchronisatie te zorgen dat de neuronale activiteit. </li></ol> Deel 3. De voorbereiding van de MEA-en Stimulus Delivery Device <ol><li> Voorafgaand aan het uitvoeren van de dissectie, goed vul de MEA met BSA in dH2O voor minstens 5 minuten bij kamertemperatuur. </li><li> Spoel de MEA met behulp van warm-borrelen Ringer's oplossing en plaats de MEA op het ijs. </li><li> Prime de vloeistof handler en de HPLC-pomp volgens de instructies van de fabrikant. </li></ol> Deel 4. VNO Dissection <ol><li> Voor het uitvoeren van de dissectie, vul 2 60x15 mm petrischaaltjes met borrelen Ringer's en leg ze op ijs. Vul ook twee Sylgard gecoate petrischalen van dezelfde grootte met Ringer's en leg ze op ijs. Chill een extra 50 ml warm-geborreld Ringer's voor gebruik tijdens de dissectie. </li><li> De muis is opgeofferd via CO 2 stikken, gevolgd door cervicale dislocatie. </li><li> Maak bilaterale incisies van de kant van de mond, loopt parallel aan de kaaklijn, aan de achterkant van het hoofd. Doe mee met de twee snijdt langs de achterkant van de nek en verwijder het dorsale deel van het hoofd, waardoor de onderkaak aan de muis. </li><li> Met behulp van fijne schaar, knip tussen het weefsel en de beide zijden van de bovenkaak bot om het weefsel te scheiden van het bot. </li><li> Met behulp van # 3 tang, haal het gehemelte weefsel om de neusholte bloot te leggen. </li><li> Met behulp van kleine schaar of een scalpel, knip tussen en aan weerszijden van de bovenste twee voortanden aan de vomeronasale capsule uit het bot vrij. </li><li> Met behulp van # 3 tang, pak de vomeronasale capsule door de platte bot en plaats in de petrischaal op het ijs. De stappen omhoog door onderdompeling moet worden uitgevoerd in minder dan 3 minuten. </li><li> Zet de schaal onder een stereomicroscoop, verlicht met gereflecteerd licht. Haal de capsule uit een benige VNO in een tijd met behulp van # 3 tang. Gebruik een hand om de benige capsule stabiliseren door pakkend vanaf het caudale einde en de andere hand te pellen het bot uit de buurt van het VNO, zorg ervoor dat u het VNO schade. </li><li> Wanneer het bot wordt verwijderd, de overdracht van de VNO om een ​​Sylgard gecoate petrischaal. Gebruik de resterende schotel voor de andere VNO. Schakel de verlichting voor doorvallend licht. </li><li> Met behulp van micro-schaar of # 5 tang, scheid de VNO uit het bloedvat door te snijden langs de rand van het VNO. Op dit punt heb jehebben de neurale plaat volledig gescheiden van het bloedvat. </li><li> Plaats de VNO met de interne (dendritische) omhoog. Met behulp van # 3 tang, anker het VNO om de Sylgard op een hoek van het weefsel. Schil de neurale epitheel van de basale lamina met behulp van een klein fragment van een Teflon-coating scheermesje gehouden met een klem. Houd het mes in een ondiepe hoek (&lt;30 ° van de schotel oppervlak) is het beste. </li><li> Met behulp van een glazen pipet het stuk van de neurale epitheel van de schotel aan de MEA. Plaats de VNO op de top van de elektrode veld met de dendritische kant naar boven. Verwijder overtollig Ringer-oplossing met een pipet. Leg het gaas weefsel houder in de put van de array naar de VNO zijn plaats te houden, en met de oplossing gekoeld Ringer's te vullen. </li></ol> Deel 5. Opname <ol><li> Plaats de MEA in een MEA 1060 versterker en de positie van de verwarming sonde direct boven het weefsel. </li><li> Om te bevestigen een goede verwarming sonde plaatsing, te stimuleren met Ringer's oplossing met 50 mM kalium (de plaats van equimolaire natrium) voor 2 seconden. Stel positionering van de latency van de neurale respons op de kalium-oplossing te minimaliseren. </li><li> Superfuse het weefsel met de oplossing verwarmd Ringer's voor 45 minuten tot 1 uur voor de opname, zodat het weefsel om te acclimatiseren. </li><li> Elektrische signalen worden opgeslagen op de harde schijf met aangepaste opname-software. </li></ol> Deel 6. Data Analysis <ol><li> Offline data-analyse kan worden gedaan met behulp van de ruwe opnames elektrode. Bijvoorbeeld, meten we het afvuren van koerswijzigingen van de opgenomen cellen in reactie op bepaalde liganden. De resulterende data sets zijn groot en kunnen gebruikt worden om veel verschillende vragen te beantwoorden, bekendheid met een programmeer-of analyse taal (C, Matlab, R, Python, of vergelijkbaar) is vereist. </li></ol> Deel 7. Representatieve resultaten Dit preparaat is meestal stabiel genoeg om op te nemen van 6 uur, waardoor een grote hoeveelheid gegevens (6 uur opnametijd van 60 elektroden). <img src="/files/ftp_upload/1845/1845fig1tmb.jpg" alt="Figuur 1" border="0" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 1"> Figuur 1. Een momentopname van de gelijktijdige activiteiten over de ene helft van het array wordt weergegeven. Het tijdvenster overspant 400 ms. Gelieve <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/1845/1845fig1.jpg">Klik hier</a> voor een grotere versie van figuur 1 te zien. <img src="/files/ftp_upload/1845/1845fig2tmb.jpg" alt="Figuur 2" border="0" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 2"> Figuur 2. In een typisch experiment, stimuleren we met bijzondere verbindingen van belang zijn voor 10 seconden. Dit trace is een voorbeeld van een antwoord op de 100-voudig verdund vrouwelijke muizen urine. Gelieve <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/1845/1845fig2.jpg">Klik hier</a> voor een grotere versie van figuur 2 te zien.

<ol><li>Dulac, C., Torelo, A. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+detection+of+pheromone+signals+in+mammals%3A+from+genes+to+behaviour%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Molecular detection of pheromone signals in mammals: from genes to behaviour.</a> Nat Rev Neurosci. 4, 551-562 (2003).</li>
<li>Holy, T. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Responses+of+Vomeronasal+neurons+to+natural+stimuli%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Responses of Vomeronasal neurons to natural stimuli.</a> Science. 289, 1569-1572 (2000).</li>
<li>Nodari, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sulfated+steroids+as+natural+ligands+of+mouse+pheromone-sensing+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Sulfated steroids as natural ligands of mouse pheromone-sensing neurons.</a> J Neurosci. 28, 6407-6418 (2008).</li>
</ol>

Multielectrode reeks opnames laten ons de mogelijkheid om de gelijktijdige activiteit van een grote populatie van neuronen te controleren. Dit is een nuttig hulpmiddel voor het sonderen van de eigenschappen van een sensorisch systeem, met name het VNO. In tegenstelling tot de grote olfactorische systeem, het VNO detecteert stimuli in vloeibare fase. Daarnaast is de VNO is een heterogeen weefsel. Er zijn ongeveer 300 verschillende soorten receptoren in de muis een, vermoedelijk met een verschillende reactie pr...

multielectrode array opnames van de vomeronasal epithelium

Multielectrode Array Recordings of the Vomeronasal Epithelium

Inzicht in neurale circuits vereist methoden om tegelijkertijd op te nemen van vele neuronen. Voor<em&gt; In vitro</em&gt; Studies, een op dit moment beschikbare technologie is planar multielectrode array (MEA) opname. Hier hebben we document het gebruik van MEA&#39;s om de muis te vomeronasale orgaan (VNO), die een essentiële rol speelt bij het opsporen van feromonen en sociale signalen via een diverse bevolking van de sensorische neuronen die honderden soorten receptoren te bestuderen. De combinatie van MEA opname met een robot vloeistof handler op chemische prikkels te leveren, kan de zintuiglijke reacties van een grote en diverse populatie van neuronen worden opgenomen. De voorbereiding laat ons toe om de intacte neuroepithelium van het VNO te verwijderen van de muis en met een batterij van chemicaliën of potentiële liganden te stimuleren, terwijl het toezicht op de elektrische activiteit van de neuronen gedurende enkele uren. Daarom is deze techniek dient als een bruikbare methode voor het beoordelen van ligand-activiteit en het verkennen van de eigenschappen van de receptor neuronen. We presenteren de technieken die nodig zijn om de vomeronasale epitheel, MEA opnemen en chemische stimulatie voor te bereiden.

Multielectrode array (MEA) opnames een methode voor het bestuderen van de elektrische activiteit van grote groepen neuronen. Hier presenteren we de details van een MEA voorbereiding om op te nemen van de muis vomeronasale epitheel, terwijl tegelijkertijd het stimuleren van het weefsel.

Multielectrode Array Opnames van de Vomeronasal Epithelium

Het begrijpen van neurale circuits vereist methoden om gelijktijdig van veel neuronen te registreren. Voor in vitro studies is een momenteel beschikbare technologie ...

Planaire multi-elektrode-arrays worden gebruikt om opnames te maken van het UL-neusorgaan. Het VNO wordt uit de muis verwijderd op een manier waardoor het neuro-epitheel intact blijft. Eerst wordt de VNO-capsule uit de muis verwijderd.Vervolgens wordt het neuro-epitheel gescheiden van de benige capsule, de bloedvaten en de basale lamina. Het weefsel wordt in de MEA geplaatst met de zijde van de dendritische knoppen naar boven. Zodra deze opstelling is voltooid, gebruiken we een robotarm om vloeibare stimuli toe te dienen aan het weefsel.Hoi, ik ben Hannah Arnon van het laboratorium van Tim Wholly van de afdeling Anatomie en Neurobiologie aan de Washington University School of Medicine. Ik ben Cheyenne Fu, ook van het Holy-lab. Vandaag laten we u een procedure zien voor multi-elektrode-array-registratie van het V-nasale orgaan.We gebruiken deze procedure in ons laboratorium om de sensorische eigenschappen of receptorneuronen in het accessoire ademhalingssysteem te bestuderen. Laten we beginnen. Elektrische registraties worden verkregen met een planair multi-elektrode array of MEA met 10 µm platte titaniumnitride-elektroden, geïsoleerd met siliciumnitride.60 elektroden zijn gerangschikt in twee velden bestaande uit een raster van vijf bij zes met een hart-op-hartafstand van 30 micrometers. Met een MEA 10 60-versterker worden de elektrische signalen versterkt. Signalen met een 1000-voudige versterking zijn vereist bij 10 kilohertz.Met behulp van een datacommando-kaart en op maat gemaakte software voor gegevensverwerving wordt het weefsel op de MEA op zijn plaats gehouden door een nylon gaas, dat is bevestigd aan een op maat gemaakt inzetstuk dat nauwsluitend in de kweek past. Nu we de metingen hebben gezien, laten we zien hoe de dissectie van de VNO wordt uitgevoerd. Vul vóór het uitvoeren van de dissectie de MEA-well met bovine serumalbumine of BSA, spoel de MEA vervolgens met warme, gebubbelde ringersoplossing en plaats deze op ijs.Ter voorbereiding op de dissectie vult u twee Petri-schalen van 60 bij 15 millimeter met gebelleerde Ringer-oplossing en plaatst u deze op ijs. Vul daarnaast twee Sillgard-gecoate Petri-schalen van dezelfde grootte met Ringer-oplossing en plaats deze op ijs. Koel nog eens 50 milliliters gebelleerde Ringer-oplossing voor gebruik tijdens de dissectie.Begin bij een geofferde muis door bilaterale incisies te maken vanaf de zijkant van de mond, parallel aan de kaaklijn richting de achterkant van de kop. Verbind de twee sneden langs de nek en verwijder het dorsale deel van de kop met een fijne schaar, waarbij de onderkaak aan de muis bevestigd blijft. Snijd tussen het weefsel en beide zijden van het bovenkaakbeen om het weefsel van het bot te scheiden.Gebruik vervolgens een pincet nummer drie om het gehemelteweefsel te verwijderen, waardoor de neusholte wordt blootgelegd. Gebruik een kleine schaar of een scalpel om tussen en aan weerszijden van de twee bovenste voortanden te snijden, om zo de kwetsbare neuskapsel met een pincet nummer drie van het bot te bevrijden. Pak het kwetsbare neuskapsel bij het platte bot vast en plaats het in de Petrischaal op ijs. De voorafgaande stappen tot en met het onderdompelen van het VNO in gekoelde ringersoplossing moeten in minder dan drie minuten worden uitgevoerd.Om weefselsterfte te voorkomen, plaatst u de schaal onder een stereomicroscoop die is verlicht met gereflecteerd licht. Gebruik een pincet nummer drie om de benige capsule van één VNO per keer te verwijderen. Gebruik één hand om de benige capsule te stabiliseren door deze aan het caudale uiteinde vast te pakken en de andere hand om het bot van de VNO af te pellen, waarbij u er zorg voor draagt de VNO niet te beschadigen.Zodra het bot is verwijderd, brengt u de v en o over naar een met cigar gecoate Petri-schaal. Gebruik de overige schaal voor de andere VNO. Schakel de verlichting over naar doorgelaten licht en gebruik microschaaren.Gebruik een pincet nummer vijf. Scheid de VNO van het bloedvat door langs de rand van de VNO te snijden. Op dit punt is het neurale vel volledig gescheiden van het bloedvat.Plaats het VNO met de binnenzijde naar boven met behulp van pincet nummer drie. Veranker het VO aan de S-beugel bij een hoek van het weefsel met een klein fragment van een Teflon-gecoat scheermesje dat met een klem wordt vastgehouden. Pel het neurale epitheel van de basale lamina door het mesje in een flauwe hoek van minder dan 30 graden ten opzichte van het oppervlak van de schaal te houden.Dit werkt het best. Gebruik een glaspipet. Verplaats het stuk neurale epithelium van de schaal naar de MEA en positioneer het VNO bovenop het elektrodeveld met de dendritische zijde naar boven.Verwijder het overtollige Ringer-oplossing met een pipet en plaats vervolgens de mesh-weefselhouder in de well van de array om de vno op zijn plaats te houden. Vul de well met gekoelde Ringer-oplossing zodra de dissectie is voltooid. Om een opnamesessie te starten, plaatst u de MEA in een MEA 10 60 versterker en positioneert u de verwarmingssonde direct boven het weefsel om de juiste verwarming te bevestigen.Stimuleer de positie van de probe met een ringer-oplossing die 50 millimolaire kalium bevat gedurende twee seconden. Pas de positionering aan om de latentie van de neurale respons op de kaliumoplossing te minimaliseren. Het weefsel vereist continue superfusie, wat wordt gerealiseerd door ringer-oplossing toe te dienen via een HPLC-pomp.Superperfuseer het weefsel gedurende 45 minuten tot één uur vóór de opname met verwarmde Ringer-oplossing om het weefsel te laten acclimatiseren. Stimuli worden toegediend met behulp van de Gilson two 15 liquid handler robotarm. Deze worden gepresenteerd door injecties uit te voeren in een HPLC-ventiel en te schakelen tussen doorstroming en de loop. Onder controle van de Gilson-software dient de robotarm de stimuli toe aan de perfusielijn, terwijl een constante stroomsnelheid en druk worden gehandhaafd.De status van de HPLC-klep wordt weergegeven door een elektrische spanning, die door de acquisitiecomputer als een extra kanaal wordt geregistreerd. Om synchronisatie met de neuronale activiteit te garanderen, worden elektrische signalen met behulp van aangepaste opnamesoftware op de schijf opgeslagen. We tonen u nu enkele representatieve resultaten van de VNO multi electrode array.Recording.Deze procedure levert grote hoeveelheden data op vanwege het grote aantal elektroden, en de preparatie blijft doorgaans ongeveer zes uur stabiel. Hier is een voorbeeld van 400 milliseconden aan data van één helft van de MEA. Deze procedure is nuttig voor het meten van de respons van sensorische neuronen op liganden; hier wordt de respons op 100 maal verdunde urine van vrouwelijke muizen getoond, geregistreerd via een enkele elektrode.De urine werd gedurende 10 seconden toegediend, zoals aangegeven door de zwarte balk. Let op de toename in vuren na de presentatie van de stimulus. We hebben u zojuist laten zien hoe u multi-elektrode-array-registraties uitvoert op het VNO van de muis bij het uitvoeren van deze procedure.Het is belangrijk om geduldig te blijven. Dat is alles. Bedankt voor het kijken en veel succes met uw experimenten.

multielectrode-array-recordings-of-the-vomeronasal-epithelium

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Neurowetenschap

De electroolfactogram (EOG), de opname is een informatieve, gemakkelijk te voeren, en betrouwbare manier te beoordelen olfactorische functie op het niveau van het reukepitheel. Dit protocol beschrijft een recording setup, muis weefsel voorbereiding, het verzamelen van gegevens, en de elementaire data-analyse.

Het analyseren Reacties van Mouse Olfactorische sensorische neuronen Met behulp van de Air-fase Electroolfactogram opnemen

Een krachtige manier om de neuronale lawines, dat wil zeggen schaal-invariant spatio-temporele activiteit uitbarstingen, indicatief van kritieke toestand dynamiek in cortex te bestuderen. Lawines ontstaan ​​spontaan in de ontwikkeling van oppervlakkige lagen van gekweekte hersenschors, die voor de lange termijn metingen van de activiteit mogelijk maakt met vlakke geïntegreerde multi-elektrode arrays (MEA) onder nauwkeurig gecontroleerde omstandigheden.

Multi-electrode array Opnamen van neuronale Lawines in organotypische culturen

De vomeronasale orgaan (VNO) detecteert intraspecies chemische signalen dat de sociale en reproductieve informatie over te brengen. Wij hebben Ca2 + imaging experimenten met transgene muizen die G-CaMP2 in VNO weefsel. Deze aanpak stelt ons in staat om de ingewikkelde reactie patronen van de vomeronasale neuronen te analyseren om een ​​groot aantal feromonen stimuli.

Imaging neuronale responsen bij Slice Bereidingen van Vomeronasal Het uiten van een genetisch gecodeerd Calcium Sensor

This video demonstrates electrophysiological recording of olfactory sensory neurons (OSNs) in mice using a perforated patch-clamp technique. The olfactory epithelium, containing OSNs with fluorophore-tagged odor receptors, is isolated from a mouse and secured in a recording chamber. A recording pipette is clamped to the dendritic knob of an OSN, and nystatin within the pipette perforates the membrane to form electrical connectivity with the cell. Finally, another pipette is used to deliver an...

Perforated Patch-Clamp Recording of Olfactory Sensory Neurons in Mice

The protocol video describes establishing a whole-cell patch clamp for electrophysiological recording from the sensory neurons of the vomeronasal organ (VNO) in mice. A coronal VNO slice with fluorescently labeled sensory neurons is placed in a recording setup. A labeled neuron is patched with a recording pipette in a whole-cell configuration for electrophysiological recording in response to chemical stimuli.

Establishing a Whole-Cell Patch Clamp for Electrophysiological Recording from Vomeronasal Sensory Neurons

Gelijktijdige extracellulaire langdurige opnames van twee verschillende hersengebieden neuropiles of twee verschillende anatomische traktaten werden opgericht in honingbijen. Deze opnamen kan de onderzoek temporele aspecten van neuronale verwerking in verschillende hersengebieden in het neuron en op het ensemble niveau in een dier gedragen.

Gelijktijdige Langdurige Recordings op Twee Neuronale Processing Fasen in Behaving Honingbijen

De muis accessoire reukbol (AOB) is moeilijk te bestuderen in de context van zintuiglijke codering. Hier tonen we een dissectie dat een ex vivo preparaat waarin AOB neuronen blijven functioneel verbonden met hun perifere ingangen, het vergemakkelijken van onderzoek naar de informatieverwerking van de muis feromonen en kairomonen produceert.

Ex Vivo Bereidingen van de Intact Vomeronasal en accessoires bulbus olfactorius

We beschrijven hier hoe je multi-electrode matrix recordings van menselijke epileptische corticale weefsel uit te voeren. Epileptische weefsel resectie, slice voorbereiding en multi-electrode matrix recordings van interictale en ictal gebeurtenissen worden gedemonstreerd in detail.

Multi-electrode array Opnamen van Human Epileptische Postoperatieve Cortical Tissue

Het analyseren van de fysiologische eigenschappen van olfactorische sensorische neuronen kent nog steeds technische beperkingen. Hier registreren we ze door middel van perforated patch-clamp in een intacte voorbereiding van het olfactorische epitheel in gene-targeted muizen. Deze techniek maakt de karakterisering mogelijk van membraaneigenschappen en reacties op specifieke liganden van neuronen die gedefinieerde olfactorische receptoren tot expressie brengen.

Geperforeerde Patch-clamp-opname van de muis olfactorische sensorische neuronen in Intact neuroepithelium: functionele analyse van neuronen uiten van een geïdentificeerd Odorant Receptor

Hier beschrijven we een fysiologische aanpak die identificatie en diepgaande analyse van een gedefinieerde populatie van sensorische neuronen in acute coronale weefselsneden van het vomeronasale orgaan van de muis mogelijk maakt, met behulp van opnames met gehele cel patch-clamp.

Een grondige fysiologische analyse van Defined Cell Populaties in Acute Tissue Slices van de Muis Vomeronasal

Deze studie introduceert een methode voor het gelijktijdig opnemen van lokale veld potentieel in de hersenen, elektrocardiogrammen, electromyograms en signalen voor een vrij bewegend rat te ademen. Deze techniek, die experimentele kosten vermindert en vereenvoudigt gegevensanalyse, zal bijdragen aan het begrip van de interacties tussen de hersenen en perifere organen.

Gelijktijdige opnamen van corticale lokale veld Potentials, elektrocardiogram Electromyogram en ademhaling ritme van een vrij bewegende Rat

Leer multielectrode array-opnames van het vomeronasale epitheel bij muizen met behulp van een robotarm voor precieze stimuli. Deze methode maakt gedetailleerde studie van sensorische neuronactiviteit mogelijk.

Multielectrode Array Opnames van de Vomeronasal Epithelium

Meer video's verkennen