Name: Grootschalige Schermen van Metagenomic Bibliotheken (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2007-05-28T00:00:00.000+00:00
Duration: 16 min 5 s
Description: Leer grootschalige screening van metagenomische bibliotheken met behulp van robotica voor microbiologie en genomica. Deze methode verbetert nauwkeurigheid en reproduceerbaarheid bij het inoculeren van 10.000 kolonies op membraanfilters.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

1. Hybridisatie procedure Een hybridisatie buis duurt een of twee membranen (formaat 22 bij 22 cm). Gebruik 50 ml van hybridisatie mengsel en 0,5 mg van DNA-probe (10 ng / ml uiteindelijke concentratie) per hybridisatie buis. Voor de beste resultaten, gebruik van gel-gezuiverd DNA als probe. Als het opschalen van probe voorbereiding, toename aantal buizen in plaats van verhoging van het bedrag van de reagentia per buis. Sonde voorbereiding (0,5 mg DNA): <ol><li> Verdun 15 ul van cross-linker-oplossing met 60 ul van het water. </li><li> Verdunnen DNA tot 10 ng / ul met water tot 50 ui totaal volume in een schroef-bedekte microbuisjes. </li><li> Denatureren DNA gedurende 5 minuten in kokend water. </li><li> Snel naar ijs en laat afkoelen gedurende 5 minuten. Spin kort. </li><li> Voeg 50 ul van de reactie buffer toe en meng voorzichtig. </li><li> Voeg 10 ul van de etikettering reagens en meng voorzichtig. </li><li> Voeg 50 ul van de verdunde cross-linker-oplossing uit stap 1 en meng voorzichtig. Vortex zacht en spin kort. </li><li> Incubeer bij 37 ° C gedurende 30 minuten. </li><li> Te houden op ijs gedurende maximaal 2 uur of voeg een gelijk volume van 100% glycerol en bewaar bij -20 ° C. Opmerking: Gebruik het water die bij de kit. Houd alle reagentia op ijs, tenzij anders vermeld. </li></ol> Membraan voorbereiding en hybridisatie <ol><li> Verwarm 50 ml hybridisatiebuffer en hybridisatie buis tot 60 ° C. </li><li> Voeg de hybridisatie buffer om de hybridisatie buis. Roll up membraan (s) en toevoegen aan hybridisatie buis. (Als toevoeging van 2 membranen per tube, eerste worp tot een membraan volledig, dan rollen de andere membraan op de top in dezelfde richting.) </li><li> Incubeer hybridisatie buis bij 60 ° C gedurende ten minste ½ uur (Zorg ervoor dat membraan (s) te krijgen grondig doorweekt.) </li><li> Breng ongeveer 1 ml van hybridisatie buffer met een lange pipet uit de hybridisatie buis op de buis met daarin de gelabelde probe. Vortex zacht en spin kort. Transfer terug mengsel hybridisatie buis. </li><li> Incubeer bij 60 ° C gedurende de nacht. Opmerking: Gebruik tang en handschoenen bij het ​​hanteren van membranen. Meng de inhoud van hybridisatie buizen voorzichtig omdat er te veel onrust zal leiden tot een permanente vorming van ongewenste schuim. Membranen moet worden toegevoegd in natte toestand; weken in hybridisatiebuffer of water, indien nodig en afvoer overtollige vloeistof voor het toevoegen. </li></ol> 2. Detectie procedure Wassen van membranen <ol><li> Verwarm de primaire wasbuffer tot 60 ° C. (Gebruik magnetron en / of verwarming plaat.) </li><li> Als er twee membranen in een hybridisatie buis, overdracht een membraan naar een schone, voorverwarmde, lege hybridisatie buis. </li><li> Kort spoelen hybridisatie buis met ongeveer 50 ml van de primaire wasbuffer. </li><li> Voeg ongeveer 100 ml van de primaire wasbuffer tot hybridisatie buis en incubeer bij 60 ° C gedurende 10 minuten. </li><li> Herhaal stap 3 en 4. </li><li> Transfer membraan te wassen container en incubeer met ten minste 250 ml van het voortgezet wasbuffer bij kamertemperatuur gedurende 5 minuten. </li><li> Herhaal stap 6. Opmerking: Membranen kunnen worden bewaard in de secundaire wasbuffer bij kamertemperatuur maximaal ½ uur voordat het signaal generatie. </li></ol> Signaal generatie en detectie (procedure voor een membraan) <ol><li> Tape twee stukken SaranWrap plat op het tafelblad (een voor stap 2 en een voor stap 4). </li><li> Zorgvuldig afvoer van overtollige buffer van het membraan door het aanraken van de hoeken van het membraan tegen de zijkant van de container en breng het membraan onto de SaranWrap (sample kant naar boven). </li><li> Giet 6-7 ml van ECF reagens meer dan membraan en vouw Saran wrap op membraan. Zorgvuldig verdelen ECF reagens op membraan door voorzichtig het verplaatsen van een Kimwipe over de SaranWrap. Incubeer gedurende 5 minuten. </li><li> Afvoer van overtollig ECF reagens van het membraan en breng deze op nieuwe SaranWrap, vouw wrap meer dan membraan, en verzegel de randen met tape. Bedek het membraan met aluminiumfolie. Incubeer 1-2 uur. </li><li> Bereid de glasplaat plaat door het verspreiden van 1-2 ml van ECF reagens op de glasplaat. Vervolgens overbrengen van het membraan op de glazen plaat (staal naar beneden) en distribueren nog 1-2 ml van ECF reagens over het membraan. Overlay met SaranWrap en zorgvuldig duw alle luchtbellen uit de buurt van het membraan. (Je kan een stijve plaat op de top van de SaranWrap om membraan gedrukt tegen de glazen plaat te houden.) </li><li> Gebruik maken van de Fuji FLA-5100 fluorescentie scanner (&quot;een laser een afbeelding&quot; modus) met de volgende instellingen: excitatie 473 nm, detectie filter LPB (510 nm), de resolutie 50 micrometer, 16-bit signaal afstuderen, CH1 400 V. (Scan duurt ongeveer 15-20 minuten per membraan van de grootte van 22 bij 22 cm.) Optioneel: </li><li> Laten we gaan zitten voor 2-4 uur (of langer). </li><li> Herhaal scan als in stap 6. </li></ol> 3. Strippen en opslaan procedure (nuf versie) <ol><li> Transfer membraan tot 100% ethanol en incubeer bij kamertemperatuur gedurende 10 minuten onder zacht schudden. </li><li> Vervangen met verse 100% ethanol en incubeer overnacht bij kamertemperatuur. (Membrane kunnen blijven in ethanol voor meerdere dagen.) </li><li> Vervangen door ethanol met gedestilleerd water en incuberen bij kamertemperatuur gedurende 10 minuten. </li><li> Voeg 100 ml water en 5 ml van 10% SDS (laatste 0,5% SDS) om een ​​hybridisatie buis en meng voorzichtig. Toe te voegen membraan. </li><li> Incubeer bij 80 ° C gedurende 1 uur </li><li> Transfer membraan tot een schone, lege container. </li><li> Voeg 500 ml water en 5 ml van 10% SDS (laatste 0,1% SDS), een beker en warmte aan een krachtige kook in de magnetron. </li><li> Giet de bijna kokende 0,1% SDS oplossing over het membraan en schud er voorzichtig gedurende enkele minuten. Laat afkoelen tot kamertemperatuur. </li><li> Spoel in ten minste 250 ml van een steriele 100 mM Tris pH 8 gedurende minstens 10 minuten. </li><li> Wikkel membraan in SaranWrap en zorgvuldig nauwe randen met tapes. Bewaren bij 4 ° C. (Membranen mag nooit uitdrogen.) </li></ol>

De strippen procedure is nog niet geoptimaliseerd. Echter, de strippen procedure in opdracht van de fabrikant (2 wasbeurten per stuk, 10 min in 100% ethanol, een wash van 1 uur bij 60 ° C in 0,5% SDS) is onvoldoende. In ieder geval overnacht incubatie in 100% ethanol nodig is om de ECF reactieproduct te ontbinden; enkele dagen incubatie in 100% ethanol lijkt te hebben geen nadelige effecten op het vermogen om het membraan reprobe. De door de fabrikant SDS behandeling lijkt ook onvoldoende. Nuf heeft geprobeerd een uur bij 80 ° C met 0,5% SD...

Combinatie pak RPN3692 = RPN3680 + RPN3685

grootschalige schermen van metagenomic bibliotheken

Large-Scale Screens of Metagenomic Libraries

Metagenomic bibliotheken archief grote fragmenten van aaneengesloten genomische sequenties van micro-organismen zonder voorafgaande teelt. Het genereren van een gestroomlijnde procedure voor het maken en screening metagenomic bibliotheken is dus nuttig voor een efficiënte high-throughput onderzoek naar de genetische en metabolische eigenschappen van onbeschaafde microbiële assemblages. Hier zijn de belangrijkste protocollen gepresenteerd op video, die we voorstellen is de meest bruikbare indeling voor het nauwkeurig beschrijven van een lang proces dat afwisselend afhankelijk van de robotica instrumentatie en (menselijke) handmatige interventies. Eerst hebben we in dienst robotica in de bibliotheek van klonen op high-density macroarray membranen, die elk kunnen dupliceren kolonies bevatten twintig-vier 384-wells platen bibliotheek plaats. Automatisering is van essentieel belang voor deze procedure niet alleen voor de nauwkeurigheid en snelheid, maar ook als gevolg van de miniaturisering van voldoende omvang om het grote aantal van de bibliotheek klonen passen in zeer dichte ruimtelijke arrangementen. Eenmaal gegenereerd, hebben we naast gedemonstreerd hoe de macroarray membranen kunnen worden gescreend op genen van belang met behulp van aangepaste versies van standaard protocollen voor probe etikettering, membraan hybridisatie, en signaal detectie. We aanvulling op de visuele demonstratie van deze procedures met gedetailleerde beschrijvingen van de betrokken stappen en de benodigde materialen, die allemaal zijn online beschikbaar naast de video.

Grootschalige Schermen van Metagenomic Bibliotheken

Metagenomische bibliotheken archiveren grote fragmenten van contigue genomische sequenties van micro-organismen zonder dat voorafgaande cultivatie vereist is. Het genereren van een ...

Ons doel hier is om kolonies van enkele van deze metagenomische bibliotheken te inoculeren op membraanfilters, waarbij elk van deze filters 10.000 kolonies kan bevatten. Wat we nu doen, is dit nylonfilter op een blok leggen en het gladstrijken. Het bevindt zich in een kleine hoeveelheid vloeistof, simpelweg het groeimedium luria broth.Vervolgens zal hij dit bevochtigde membraan overbrengen naar de robot die dit membraan automatisch zal inoculeren met 10.000 kolonies. Robotica is essentieel voor dit soort procedures, omdat geen enkel mens het geduld of de precisie heeft om 10.000 kolonies op een van deze membranen aan te brengen. Robots zijn een van de factoren die de genoomwetenschap daadwerkelijk hebben vooruitgeholpen door het mogelijk te maken dat zeer repetitieve handelingen op een zeer kleine ruimtelijke schaal met een hoge nauwkeurigheid worden uitgevoerd.Op dit moment wordt de robot ingesteld om deze drie 84-wells platen te voeden; elke well in deze drie 84-wells platen bevat een individuele kolonie uit de metagenomische bibliotheek. Momenteel steriliseert de robot de inoculatienaalden die gebruikt zullen worden om op het membraan te spotten. De naalden gaan door verschillende oplossingen, waaronder 70% ethanol, om ze te steriliseren, waarna deze inoculatienaalden in een 84-wells plaat worden gedoopt die alle koloniën bevat.Nu wordt het gesteriliseerd en gedroogd door licht. Nadat de inoculatienaalden zijn gedroogd, wordt er een plaat door de robot gevoed. Elke colony wordt in feite gebloteerd en gedupliceerd, wat dient als controle.We zoeken dus eigenlijk naar twee identieke kolonies die een signaal geven na de hybridisatie. Nadat al die kolonies op het filter zijn gespot, wordt dit opnieuw aangebracht op de agarplaat die u hier ziet, waarna ze een nacht bij 37 °C worden geïncubeerd.Wat er gebeurt is dat de kolonies elk uitgroeien en wat u daar in het array ziet zijn 10.000 kolonies op een filter. Uiteraard bevat elk van die kolonies vele, vele kopieën van het recombinante DNA, in dit geval het metagenomische DNA. Dit is afkomstig uit de centrale Noord-Pacifische Oceaan die wij hebben geprepareerd.Wat Saltram vervolgens zal doen, is dat membraan overbrengen naar een reeks oplossingen. De eerste oplossing waarnaar hij het overbrengt, is een basische oplossing van natriumhydroxide, wat de kolonies zal lyseren. Dit lost in feite de celwand op en maakt het DNA vrij, zodat het DNA contact kan maken met het filter.Wat hier gebeurt, is dat alle celwanden van alle bacteriën in die kolonies oplossen, waardoor het DNA nu vrijkomt. Na vijf minuten in natriumhydroxide worden de filters overgezet. Dit is enkel een plek om ze neer te leggen, want ze gaan daarna in kokende stoom.Dit is het tweede deel van de lysestap. Eerst zijn de cellen behandeld met een sterk basische oplossing van natriumhydroxide en het detergent natriumdodecylsulfaat. Nu worden deze kolonies blootgesteld aan hoge hitte, stoomhitte van 100 °C.De combinatie van die base en detergent met deze hitte zal de cellen volledig lyseren, waardoor het DNA op het filter vrijkomt. Na vijf minuten in de stoomdoppen zal de filter worden overgebracht naar een neutraliserende oplossing. De neutraliserende oplossing neutraliseert in feite alle base, waarna het filter wordt gedroogd.Dit is de neutraliserende oplossing, en het filter blijft hier nog vijf minuten in liggen. Vervolgens wordt het filter overgebracht op blottingpapier en doorgaans een nacht laten drogen. Nadat de membranen met de gelyseerde cellen een nacht hebben gedroogd, worden ze geplaatst in een oplossing van tris, EDTA en protease K; de protease K dient om alle eiwitten die zich op het membraan bevinden te verwijderen.U ziet dat de plaat is omgedraaid om ervoor te zorgen dat alle kolonies worden bedekt met protease K. Dit zal een groot deel van het overbodige cellulair materiaal en de eiwitten verteren. Na een incubatie van een half uur in protease K bij 37 °C worden de membranen uit de oplossing gehaald en gedurende de nacht gedroogd op blotpapier. Daarna zijn ze klaar voor de volgende stap, namelijk de hybridisatie.Mijn naam is Vin fm. Ik ben postdoc in het lab van Delong. Aan het MIT gebruik ik macro-arraytechnologie om te screenen op fylogenetische markers en functionele genen.U heeft gezien hoe deze macro-arraybibliotheken werden voorbereid. Ik zal u nu door de rest van de procedure leiden om de screening uit te voeren. Hier is de macro-array; voordat we verder kunnen gaan, moeten we het DNA op het membraan zelf fixeren door middel van cross-linking met uv.Dit doen we met een UV strata linker; voeg deze toe, stel deze in voor autocrosslinken en start het proces. Zodra de crosslinking is voltooid, knip ik de membranen in twee helften. Ik doe dit omdat deze membranen worden gehybridiseerd in hybridisatiebuisjes en het doormidden knippen ervoor zorgt dat het gehele binnenoppervlak van het membraan volledig wordt blootgesteld aan de hybridisatieoplossing.U ziet dat het membraan perfect in de buis past zonder om te krullen. Het membraan is nu dus netjes geplaatst in de hybridisatiebuis. De volgende stap is het toevoegen van de hybridisatiebuffer.Bevat de probe, die ik in deze andere buis heb die was voorverwarmd tot 60 °C. Dat is mijn voorkeurstemperatuur voor hybridisatie. Dus voordat ik dat doe, nou, terwijl ik dat doe, zal ik uitleggen dat de hybridisatiebuffer door de fabrikant samen met onze detectiekit naar ons is gestuurd.Er wordt hybridization buffer gebruikt, waaraan we blocking reagent toevoegen. Ook zijn fosfaatbuffer, SDS, magnesiumchloride en natriumchloride inbegrepen, samen met wat ureum. Uitstekend. De volgende stap is het plaatsen van deze buis met het hybridization buffer membraan en de probe in de hybridisatieoven, die ik op 60 °C heb ingesteld voor een incubatie gedurende de nacht.Na een ideale incubatie van een nacht is het tijd om de membranen te wassen om eventuele ongebonden probes te verwijderen. Er bevinden zich geen gevaarlijke stoffen in de bereiding van de hybridisatiebuffer of de probe. Daarom kan dit veilig via de gootsteen worden afgevoerd.Ik ga nu mijn primaire wasbuffer pakken, die ook op 60 °C wordt opgewarmd. Deze is op dezelfde temperatuur verwarmd als waarop de membranen gedurende de nacht zijn gehybridiseerd. De wasstap zal vervolgens op dezelfde temperatuur worden uitgevoerd.Ik voer gewoonlijk drie wasbeurten uit met de primaire wasbuffer, waarbij elke incubatie ongeveer 5 tot 10 minuten duurt. Nogmaals: de wasbuffer bevat geen radioactieve of bekende gevaarlijke chemicaliën; na elke wascyclus kunt u deze simpelweg in de gootsteen gieten. Er zijn dan drie wasbeurten met de primaire wasbuffer bij 60 °C voltooid.Nu zijn de membranen klaar voor de secundaire wasbeurt, waardoor de membranen de juiste pH krijgen voor blootstelling aan de ECF-detectiechemicaliën. Daarom wassen we de membranen vervolgens in secundaire wasbuffer bij kamertemperatuur. U kunt nu een pincet gebruiken om de membranen te verwijderen, of als u zeer voorzichtig bent, kunt u uw handschoen-hand gebruiken en de membranen alleen aan de achterzijde of bij de randen vasthouden, zodat u de membranen niet besmet met eventuele verontreinigingen die op uw handen zitten, zelfs niet wanneer u handschoenen draagt.De membranen moeten worden overgebracht naar een bak met een secundaire wasbuffer die vooraf is bereid en op kamertemperatuur is gebracht. Leg ze er netjes en plat in. Soms zullen de membranen elkaar overlappen, maar dat is niet problematisch.Onthoud dat deze specifieke stap enkel dient om de pH voor de membranen te equilibreren. Laat dit vervolgens incuberen. Indien gewenst kunt u de membranen licht schudden.Ik heb niet gemerkt dat dit bijzonder nuttig of schadelijk is. Daarom laat ik het nogmaals vijf tot 10 minuten op mijn werkbank staan en herhaal ik vervolgens de tweede wasstap voor een tweede keer. De tweede wasstap van de secundaire wasbeurt is hiermee voltooid.Nu is het tijd om de detectie voor te bereiden, uitvouwen. Ik rol wat vershoudfolie uit; de membranen worden op de vershoudfolie geplaatst met de detectiereagentia bovenop de membranen, waarna de vershoudfolie wordt teruggevouwen. Dit creëert een handig zakje om het detectiereagens in vast te houden.Hier hebben we onze membranen. Ik giet eventueel overtollig wasbuffer af op een stapel droge papieren handdoeken en leg de membranen uit op Theran wrap. Er is reeds voorgemengde ECF-detectievloeistof aanwezig.Deze kunnen gewoonlijk gedurende meerdere maanden in de vriezer worden bewaard; ik giet de reagentia simpelweg op het membraan. Ik vouw het restant in vershoudfolie.Vervolgens maak ik een soort zakje door de uiteinden of randen naar binnen te vouwen en bescherm ik het gehele detectieproces met aluminiumfolie. Dit laat ik ook ongeveer 5 tot 10 minuten rusten. Daarna is het tijd om de detectiechemicaliën uit deze eerste zak af te voeren.U zult merken dat ik een deel van de vershoudfolie op mijn werkbank heb geplakt. Dit kan vaak nuttig zijn om het plakken te voorkomen dat onvermijdelijk gebeurt bij vershoudfolie. Daarnaast is het handig om de vloeistof af te gieten door te deppen op een stapel papieren handdoeken en vervolgens uit te rollen in de verse, schone folie die u vooraf op de werkbank heeft klaargelegd.Oké, de detectiechemicaliën zijn voor het grootste deel verwijderd, dus de membranen zijn klaar voor een incubatie van ongeveer twee uur om het signaal te laten ontwikkelen. Er zijn nu twee uur verstreken en we zijn klaar om het signaal op onze membranen te detecteren. Dat doen we door de membranen te scannen met een fluorescentiescanner, waarbij we de membranen opnieuw alleen bij de randen aanraken.Het kan nuttig zijn om een pipette te gebruiken om eventuele luchtbellen die tussen het membraan en het glas ontstaan, weg te rollen. We zijn nu klaar om de scanning uit te voeren. Stel het gebied in dat op de faceplate door onze membranen werd bedekt en scan bij 4 en 73 nanometers.Wanneer u een voltooide scan vergroot, krijgt u een resultaat dat vergelijkbaar is met deze afbeelding. Daar ziet u een signaal. Telkens wanneer u twee tegenovergestelde stippen ziet, is dat het teken van een positief signaal.Hier is één voorbeeld, hier is een tweede voorbeeld. Zodra u weet welk deel van het membraan het signaal bevat, spoort u vervolgens terug naar welke plaat en welke wells het specifieke signaal overeenkomen. Dat zal u vertellen welke fo smidt het specifieke gen draagt dat u met uw screen probeerde te identificeren.Zodra u de smid heeft geïdentificeerd, kunt u deze verder onderzoeken. Een methode hiervoor is het sequensen van de volledige smid-insert om het gen te vinden waarin u geïnteresseerd bent.

large-scale-screens-of-metagenomic-libraries

Research

JoVE Journal

Biology

Biologie

Dit protocol beschrijft een high throughput scherm voor cellulolytische activiteit van een metagenomic bibliotheek uitgedrukt in Escherichia coli. Het scherm is oplossing gebaseerd en sterk geautomatiseerde, en maakt gebruik van een-pot chemie in 384 goed microtiterplaten met de uiteindelijke uitlezing als een absorptie meting.

Een High Throughput Scherm voor Biomining cellulase activiteit van Metagenomic Bibliotheken

We hebben uitgebreide, onpartijdige genoom-brede schermen van gen-drugs-en gen-omgeving interacties te begrijpen. Methoden voor het screenen van deze mutant collecties worden gepresenteerd.

Concurrerende Genomische Schermen van streepjescode Gist Bibliotheken

Source: Kim, H. et. al., Multi-enzyme Screening Using a High-throughput Genetic Enzyme Screening System. J. Vis. Exp. (2016)This video demonstrates a genetic screening method to detect enzyme expression using metagenomic fosmid libraries and chromogenic substrates. Flow cytometry identifies and isolates single cells producing colored products, enabling high-throughput selection of active enzyme-expressing cells.

Detection of Target Enzyme Expression in Genetically Modified Bacterial Cells

Dit manuscript beschrijft een geautomatiseerde aanpak voor gelgrootteselectie voor het zuiveren van DNA-fragmenten voor next-generation sequencing. De Ranger-technologie biedt volledige automatisering van het gehele proces van agarose gel laden, elektroforetische analyse en herstel van gerichte DNA-fragmenten, waardoor high-throughput en hoge kwaliteit next-generation sequencing bibliotheken mogelijk zijn.

Geautomatiseerde Gel Size Selectie om de kwaliteit van next-generation sequencing bibliotheken Bereid uit Environmental watermonsters Verbeteren

Dit werk presenteert een methode voor hoogdoorvoerscherming met behulp van een universeel genetisch enzymschermingssysteem dat theoretisch kan worden toegepast op meer dan 200 enzymen. Hier identificeert het enkele schermsysteem drie verschillende enzymen (lipase, cellulase en alkalische fosfatase) door eenvoudigweg het gebruikte substraat te veranderen (p-nitrofenylacetaat, p-nitrofenyl-α-D-cellobioside en fenylfosfaat).

Multi-enzym screening met een hoge verwerkingscapaciteit Genetische screening Enzyme System

Metagenomica werd gebruikt om het microbioom van silage rundveevoer te onderzoeken. Analyse werd uitgevoerd door shotgun sequencing. Deze aanpak werd gebruikt om de samenstelling van de microbiële gemeenschap binnen het rundveevoer te karakteriseren.

Metagenomic Analyse van kuilvoer

De identificatie van de fysieke interacties tussen genen en regelgevende elementen is uitdagend maar heeft bevorderd door chromosoom conformatie opname methoden. Deze wijziging van het 4C-seq-protocol PCR bias vermindert door het minimaliseren van de over-amplificatie van PCR sjablonen en maximaliseert de mappability van leest door het opnemen van een toevoeging restrictie-enzym digest stap.

High-throughput identificatie van regelgevende gensequenties met behulp van Next-generation Sequencing van circulaire chromosoom conformatie Capture (4C-seq)

Crispr Cas9-technologie biedt een efficiënte methode om het genoom van zoogdieren in elk celtype nauwkeurig te bewerken en vertegenwoordigt een nieuw middel om genoom-brede genetische schermen uit te voeren. Hier vindt u een gedetailleerd protocol over de stappen die nodig zijn voor het succesvol uitvoeren van gepoolde CRISPR Cas9 schermen.

Gepoolde CRISPR-gebaseerde genetische schermen in zoogdiercellen

Dit manuscript beschrijft een genoom-schaal celgebaseerde screening benadering om extracellulaire receptor-ligand interacties te identificeren.

Celoppervlakreceptoridentificatie met genoomschaal CRISPR/Cas9 genetische schermen

Deze studie presenteert een ruimtelijk Trekker–CUT&amp;Tag multioomprotocol dat directe ruimtelijke streepjescoding van een weefselsectie combineert met enkelcel-multioomanalyse. Deze aanpak maakt ruimtelijk opgeloste enkelcelprofilering van genexpressie en de histon H3K27ac-modificatie mogelijk gelijktijdig, wat mechanistische inzichten biedt in genregulatie in de context van weefselmicroanatomie.

Ruimtelijk opgeloste, geïntegreerde single-cell multiomic profilering van het transcriptoom en epigenomische doelen in bevroren weefselsecties

Leer grootschalige screening van metagenomische bibliotheken met behulp van robotica voor microbiologie en genomica. Deze methode verbetert nauwkeurigheid en reproduceerbaarheid bij het inoculeren van 10.000 kolonies op membraanfilters.

Grootschalige Schermen van Metagenomic Bibliotheken

Meer video's verkennen