24 februari 2011
De uitoefening in staat is om apoptose in immuuncellen. Er zijn verschillende meet-beperkingen, met name met betrekking tot de hoeveelheid tijd die nodig is om te isoleren en te behandelen een bloedmonster voorafgaand aan de beoordeling. Aangetoond is een snelle en minimaal invasieve procedure voor de analyse van de oefening geïnduceerde apoptose lymfocyten.
Hallo, ik ben James Volta van het Exercise Science Program in de afdeling Kinesiology Recreation and Sport aan de Western Kentucky University. En wat we gaan doen is we gaan je de procedure laten zien die we hebben ontwikkeld en de procedure die we gebruiken om oefening in dues, lymfocyt, apoptose te meten. Dus laten we eens kijken.
Een vingersteekbloedmonster wordt verkregen met behulp van universele voorzorgsmaatregelen vingerstrop. De vingertop wordt gesteriliseerd en vervolgens geprikt. De eerste druppel bloed wordt weggeveegd en vervolgens wordt het bloed in capillaire buisjes of microbedjes opgezogen.
10 microliters vol bloed wordt gepipetteerd in een antilichaampaneel dat flowcytometrie bevat, een staande buffer met geschikte fluorochromen, inclusief annex en V zeven amino actine D, ofwel CD vier, CD acht of CD 19 en CD 45 ra. Naast een buisje met alleen cellen, hebben we compensatiekralen gebruikt als controle om onze experimenten op te zetten. Het monster wordt grondig gemengd in een vortex en vervolgens gedurende 30 minuten op kamertemperatuur in het donker laten incuberen. Na de incubatie worden de monsters gedurende 10 minuten gecentrifugeerd en vervolgens worden de monsters in een vlotte beweging afgelaten.
300 microliters rood bloedcel lysis buffer wordt toegevoegd en de monsters worden grondig gevortext. Het is erg belangrijk dat het monster en de lysis buffer grondig worden gemengd. Om maximale verwijdering van rode bloedcellen te bevorderen, zul je merken dat je monster bewolkt begint te worden.
Maar na minstens 15 minuten incubatie op kamertemperatuur, zal het helder worden als rode bloedcellen worden verwijderd. 300 microliters fosfaatgebufferde zoutoplossing wordt toegevoegd en werkt als een stopoplossing om de lysisreactie te beëindigen. De monsters worden opnieuw gedurende 10 minuten gecentrifugeerd. Merk op dat na de centrifugeprocedure je een pellet van cellen op de bodem van je buis hebt. Decanteer in een vlotte beweging, meng grondig om cellen en oplossing op te schorsen.
En je monster is klaar om te worden geanalyseerd door flowcytometrie. Hier laten we representatieve voorwaartse binnenwaaiersplots zien die in lymfocytsubfracties worden geplaatst, en de identificatie van anex en V positieve cellen binnen de subset. Dus we hebben zojuist de methodologie beschreven die we gebruiken om door oefening geïnduceerde lymfocyt ptosis te bepalen, en we denken dat er veel verdere toepassingen zijn die kunnen worden gebruikt met deze methodologie.
Het kan echt worden gebruikt om naar elk type witte bloedcel te kijken naast lymfocyten en lymfocyten, subfractie. En het kan ook worden gebruikt om elke marker te meten die zich aan de buitenkant van de cel bevindt. Dus we denken echt dat dit enkele grotere toepassingen heeft.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Deze studie presenteert een snelle en minimaal invasieve procedure voor het analyseren van door inspanning geïnduceerde lymfocytenapoptose. Het onderzoek benadrukt de impact van lichaamsbeweging op de apoptose van immuuncellen en pakt meetbeperkingen aan die gerelateerd zijn aan de verwerking van bloedmonsters.
Een snelle beoordeling van door inspanning geïnduceerde lymfocytenapoptose pakt een cruciale uitdaging in het immunologisch onderzoek aan: het onderscheid maken tussen werkelijke biologische effecten en artefacten die zijn ontstaan door vertraagde monsterverwerking. Deze methodologie maakt een nauwkeurigere meting van de dynamiek van immuuncellen mogelijk, wat de validatie van targets in de inspanningsfysiologie en immunofarmacologie ondersteunt. Door de verwerkingstijd en het monstervolume te minimaliseren, wordt de betrouwbaarheid van de gegevens voor mechanistische studies naar immuunmodulatie verbeterd.
Deze methode past binnen het ontdekkingscontinuüm van hypotheseonderzoek tot targetvalidatie, in het bijzonder binnen programma's voor immunologie en inspanningsfysiologie waarbij de dood van immuuncellen als mechanistische readout dient.