JoVE Encyclopedia of Experiments
Kankeronderzoek
0 weergaven • 3:21 min • April 30th, 2023
To isolate and purify peptides, begin with a suspension of protein lysate containing a mixture of digested peptides.
Treat the mixture with trifluoroacetic acid or TFA-based reagent. This anionic or negatively charged reagent forms an ion-pair complex with basic or positively charged residues on peptides, thus masking their charge and improving peptide hydrophobicity.
Now, assemble a reversed-phase high-performance liquid chromatography, or RP-HPLC, column containing a porous silica-based stationary phase, immobilized with non-polar hydrophobic ligands. Add a peptide-compatible equilibration buffer to the column to prepare the stationary phase before sample application.
Now, load the acidified sample into the column. Within the column, the hydrophobic peptides selectively adsorb to the hydrophobic ligands of the stationary phase. Run a wash buffer through the column to elute any unbound or unwanted particles.
Next, pass a less polar organic elution buffer, with high hydrophobicity, through the column. Owing to their selective affinity towards the elution buffer, the bound peptides desorb from the column matrix.
Collect the peptide-containing eluate from the column. Lyophilize the eluate to remove the water content and obtain a dry powder of pure and stable peptides.
To acidify the sample, add approximately 20 microliters of 5% trifluoroacetic acid, or TFA, per milliliter of lysate. Mix the tube well and use a pH strip to measure the pH. If necessary, add extra 5% TFA to adjust the pH to 2.5. Next, connect to the shorter end of a C18 column to a vacuum manifold. After setting the vacuum between 17 and 34 kPa, use 3 milliliters of 100% acetonitrile and a glass pipette to wet the column.
Equilibrate the column by using a glass pipette and applying two 3-milliliter aliquots of 0.1% TFA. Then, load the acidified sample onto the column. Use three 3-milliliter volumes of 0.1% TFA to wash the column. Then, apply 2 milliliters of 40% ACN, 0.1% TFA to elute the sample and collect two 2-milliliter fractions into glass culture tubes. With parafilm, cover the eluate tubes, and use a 20 gauge needle to punch three to five holes into the cover before lyophilizing the samples overnight.
In dit artikel wordt een methode beschreven voor het isoleren en zuiveren van peptiden uit een proteinelysaat met behulp van reversed-phase high-performance liquid chromatography (RP-HPLC). Het proces omvat het behandelen van het lysaat met trifluorazijnzuur om de hydrofobiciteit van de peptiden te verhogen, gevolgd door een reeks was- en elutiestappen om pure peptiden te verkrijgen.
Peptidezuivering via RP-HPLC maakt een betrouwbare isolatie van verteerde peptiden uit complexe lysaten mogelijk, ter ondersteuning van downstream proteomische analyses bij geneesmiddelenonderzoek. Deze methode verbetert de validatie van targets door hoogzuivere peptide-monsters te leveren voor mechanistische studies en de ontdekking van biomarkers. Het lost een kritieke bottleneck in de monstervoorbereiding op, waardoor de reproduceerbaarheid en datakwaliteit in vroege discovery-workflows worden verbeterd.
Deze methode past binnen het ontdekkingscontinuüm van monstervoorbereiding tot analytische uitlezing, waardoor betrouwbare peptidegeneratie voor massaspectrometrie en functionele assays mogelijk wordt gemaakt.
Gerelateerde video's
0 Bekeken
Gerelateerde video's
0 Bekeken
Gerelateerde video's
0 Bekeken
Gerelateerde video's
0 Bekeken
Gerelateerde video's
0 Bekeken
Gerelateerde video's
0 Bekeken
Gerelateerde video's
0 Bekeken
Gerelateerde video's
0 Bekeken
Gerelateerde video's
0 Bekeken
Gerelateerde video's
0 Bekeken
Laatst bijgewerkt: 22 augustus 2026