Urine Depletion and Bladder Rinsing in Mouse Model: A Catheter-based Procedure to Empty and Wash Murine Urinary Bladder
JoVE Encyclopedia of Experiments
Kankeronderzoek
0 weergaven • 3:02 min • April 30th, 2023
To empty and wash a mouse's urinary bladder, begin by taking an anesthetized female mouse in the supine position. Next, obtain an appropriately-sized catheter. Lubricate the tip of the catheter to reduce friction and ensure a smooth urethral insertion. Then, slowly and gently insert the lubricated catheter, passing it through the urethral opening, into the bladder.
Upon successful catheterization, the urine begins to drain out of the bladder into the catheter. Now, empty the urine-filled catheter. Using a pipette, add a suitable buffered saline into the outer end of the catheter while its opposite end is within the bladder. To the outer end of the catheter, then attach a syringe. Gently push the syringe to deliver the saline to the bladder.
Now, remove the syringe. Allow the saline, along with the residual urine, to drain out of the bladder through the catheter. Subsequently, vacate the residual urine mixed with saline from the catheter. Repeat the bladder washing with saline twice to ensure complete removal of the urine from the bladder. The prepped mouse is finally ready for further experimental procedures.
To begin this procedure, autoclave all surgical instruments and sterilize the workspace with 70% ethanol. Spray surgical instruments and the gloves with 70% ethanol frequently when performing the subsequent procedures to maintain sterile conditions.
To begin, anesthetize the mouse and shave the surgical area. To deplete the urine, apply lubricant to the catheter and ensure that its outer surface is fully covered. Next, insert the catheter into the urethral opening of the mouse and slowly push it until it reaches the bladder. Gently press the abdomen to help urine depletion.
Subsequently, discard the urine with a pipette into a waste beaker. Then, pipette 80 microliters of PBS into the outer end of the catheter with the other end still in the bladder. Next, carefully attach a 1-milliliter syringe to the catheter. Gently push the syringe to inject PBS into the bladder.
Leave some PBS in the catheter to avoid creating air bubbles in the bladder. Afterward, remove the syringe and wait for PBS to drain out of the bladder. Gently press the abdomen to evacuate PBS. Then, discard the PBS in the catheter with the pipette into the waste beaker. Repeat PBS washing for two more times.
Overzicht
Dit artikel beschrijft de procedure voor het legen en wassen van de urineblaas van een muis, wat essentieel is voor diverse experimentele protocollen. De methode waarborgt steriele omstandigheden en een correcte hantering van de muis tijdens het proces.
Belangrijkste studiecomponenten
Wetenschapsgebied
- Neurowetenschappen
- Dierfysiologie
- Chirurgische technieken
Achtergrond
- Een correct beheer van de urineblaas is cruciaal in experimentele settings.
- Het handhaven van steriliteit is essentieel om infecties te voorkomen.
- Kennis van de anatomie en fysiologie van de muis is noodzakelijk voor een effectieve catheterisatie.
- Catheterisatietechnieken variëren afhankelijk van de specifieke experimentele behoeften.
Doel van de studie
- Om een gestandaardiseerde methode te beschrijven voor het spoelen van de blaas bij muizen.
- Om de verwijdering van urine en resterende vloeistoffen te waarborgen vóór verdere procedures.
- Om gedurende het gehele proces steriele omstandigheden te handhaven.
Gebruikte methoden
- Anesthesie van de muis om stress te minimaliseren.
- Inbrengen van een gesmeerde katheter in de urethra.
- Spoelen van de blaas met gebufferde zoutoplossing of PBS.
- Herhaaldelijk wassen om volledige verwijdering van urine te garanderen.
Belangrijkste resultaten
- Een succesvolle catheterisatie maakt urineafvoer mogelijk.
- Herhaaldelijk spoelen met zoutoplossing reinigt de blaas effectief.
- Het handhaven van steriliteit voorkomt complicaties bij opeenvolgende experimenten.
- De methode bereidt de muis voor op verdere experimentele procedures.
Conclusies
- De beschreven techniek is effectief voor het beheer van de blaas bij muizen.
- Een adequate training in catheterisatie is essentieel voor onderzoekers.
- Het naleven van steriele protocollen is cruciaal voor de integriteit van het experiment.
Veelgestelde vragen
Industriële Relevantie voor Management
Betrouwbare urinelediging en spoeling van de blaas in muismodellen vormen de basis voor daaropvolgende urologische studies, onderzoek naar infectieziekten en gentherapie. Gestandaardiseerde kathetervoorbereiding waarborgt de experimentele consistentie en minimaliseert biologische variabiliteit op kritieke punten tijdens de vroege ontdekkingsfase en preklinische overgangsfasen. Deze procedurele striktheid ondersteunt de translationele continuïteit en de reproduceerbaarheid binnen de gehele portfolio van biofarmaceutische R&D.
Strategische toepassingen in biofarmaceutische R&D
Vroege ontdekking & targetvalidatie
- Maakt gecontroleerde toediening van experimentele middelen aan het urotheel van de blaas mogelijk voor mechanistische studies.
- Vermindert storende variabelen door een urinevrije omgeving vóór de interventie te waarborgen.
- Ondersteunt functionele validatie van urologische targets door pre-interventiecondities te standaardiseren.
Screening & Assayontwikkeling
- Bereidt een reproduceerbaar biologisch systeem voor voor de toediening van verbindingen of infectiemodellen.
- Faciliteert de kwantitatieve beoordeling van de afgifte van middelen en de daaropvolgende effecten.
- Verbetert de betrouwbaarheid van de assay door interferentie van residuele urine te minimaliseren.
Translationeel & Preklinisch Onderzoek
- Stemt de voorbereiding van preklinische modellen af op de vereisten voor translationele biomarkerstudies.
- Ondersteunt de continuïteit van ontdekking tot preklinische validatie door de dierpreparatie te standaardiseren.
- Vermindert biologische ruis, waardoor de voorspellende waarde voor vervolgstudies wordt verhoogd.
Integratie van Pipeline & Workflow
Deze catheter-gebaseerde methode voor blaaspreparatie bevindt zich op het grensvlak van vroege ontdekking en preklinische workflows, wat een nauwkeurige toediening van stoffen en standaardisatie van het model mogelijk maakt.
- Ontdekkingsbiologie: Biedt een zuivere basislijn voor hypothesetoetsing en het verminderen van mechanistische risico's in studies die gericht zijn op de blaas.
- Screening: Garandeert assay-gereedheid en reproduceerbaarheid door urine als storende factor te elimineren.
- Analytiek: Ondersteunt de kwantitatieve meting van de opname van middelen en de biologische respons na het spoelen.
- Translationeel onderzoek: Faciliteert afstemming met biomarker- en farmacodynamische studies die gecontroleerde blaasomgevingen vereisen.
- Bedrijfsbrede hergebruik: Stelt een gestandaardiseerd, herbruikbaar protocol vast voor diverse onderzoeksapplicaties gericht op de blaas.
Operationele & Bedrijfsimpact
- Wetenschappelijke waarde: Verhoogt het voorspellend vertrouwen en vermindert mechanistische ambiguïteit in studies gericht op de blaas.
- Operationele waarde: Levert gestandaardiseerde, reproduceerbare dierpreparatie voor verschillende onderzoeksteams.
- Strategische waarde: Maakt betere go/no-go beslissingen mogelijk door procedurele variabiliteit en biologisch risico te minimaliseren.
- Impact op portfolio: Ondersteunt risico-gecorrigeerde prioritering en voortgang van urologische programma's en programma's voor genoverdracht.
Overwegingen voor implementatie
- Vereist technische expertise in muizencatheterisatie en steriele techniek.
- Toegang tot geautoclaveerde chirurgische instrumenten en een steriele werkruimte is noodzakelijk.
- Vereist strikte naleving van gestandaardiseerde preparatieprotocollen door het hele team.
- Moet naar behoefte worden aangepast voor verschillende muizenstammen of experimentele eindpunten.
- Potentiële beperkingen omvatten procedurele variabiliteit en het risico op weefseltrauma bij onjuiste uitvoering.
Veelgestelde vragen over Biopharma
Oprichting en karakterisering van UTI en Cauti in een muismodel
Gerelateerde video's
0 Bekeken
Urineweginfectie in een kleine diermodel: transuretrale catheterisatie van mannelijke en vrouwelijke muizen
Gerelateerde video's
0 Bekeken
Een gedecentraliseerd (ex vivo) Murine blaas model met de detrusor spier verwijderd voor directe toegang tot het Suburothelium tijdens blaas vulling
Gerelateerde video's
0 Bekeken
Het gebruik van Cystometry in kleine knaagdieren: Een studie van de blaas Chemosensation
Gerelateerde video's
0 Bekeken
Evaluatie van biomaterialen voor Blaas Vergroting van het gebruik Cystometrische analyses in verschillende diermodellen
Gerelateerde video's
0 Bekeken
Catheter-Associated Urinary Tract Infection in a Mouse Model
Gerelateerde video's
0 Bekeken
Modeling Orthotopic Bladder Tumor in Mouse Model: A Procedure for Intravesical Administration of Cancer Cells into Murine Bladder
Gerelateerde video's
0 Bekeken
Establishment of a Urinary Tract Infection Model in Female Mice
Gerelateerde video's
0 Bekeken
Urineblaas Uitzetting Evoked visceromotorische Responses als een model voor de pijn in de blaas in Muizen
Gerelateerde video's
0 Bekeken
Evaluatie van de procedure voor het uitvoeren van Awake Cystometry in een muis model
Gerelateerde video's
0 Bekeken
Laatst bijgewerkt: 22 augustus 2026