Waarom is de methode voor veneuze toegang belangrijk voor targetvalidatiestudies?

Consistente intraveneuze toediening via jugulaire catheterisatie garandeert een reproduceerbare blootstelling aan de verbinding, wat essentieel is voor een nauwkeurige beoordeling van de target-engagement en het farmacologische effect in vivo.

Hoe draagt het isoleren van de veneuze toedieningsroute bij aan de integriteit van de discovery-pipeline?

Door de toedieningsroute te standaardiseren, vermindert de methode de variabiliteit in de systemische blootstelling, waardoor een duidelijkere interpretatie van dosis-responsrelaties tijdens de targetvalidatie mogelijk wordt.

Welke kwantitatieve metingen worden mogelijk gemaakt door deze toedieningsmethode?

De techniek ondersteunt kwantitatieve biodistributie, farmacokinetische profilering en op beeldvorming gebaseerde uitlezingen door een betrouwbare en consistente intraveneuze toediening van middelen mogelijk te maken.

Waarom zijn replicatie-eisen cruciaal voor cross-functionele samenwerking in deze procedure?

Reproduceerbare catheterisatie zorgt ervoor dat chirurgie-, beeldvormings- en farmacologieteams consistente resultaten verkrijgen, wat essentieel is voor een gelijke interpretatie en besluitvorming over de verschillende functies heen.

Welke statistische analysevaardigheden zijn vereist voordat deze methode in studies wordt geïmplementeerd?

Onderzoekers moeten in staat zijn om de variabiliteit in afgifte-efficiëntie en fysiologische respons te beoordelen om passende groepsgroottes te bepalen en betekenisvolle verschillen in experimentele resultaten te detecteren.

Catheter Based Intravenous Injection of Experimental Agents: A Technique for Delivering Experimental Agents Intravenously Through Jugular Vein in Mouse Model

JoVE Encyclopedia of Experiments

Biologie

0 weergaven • 2:57 min • July 8th, 2025

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

The jugular vein is a paired vasculature in the neck that transports deoxygenated blood from the brain, face, and neck to the heart. Through the jugular vein, experimental agents such as fluorescent tracers and drugs are delivered intravenously to the head region.

To catheterize the right jugular vein, place an anesthetized mouse in the supine position on a heating pad. Prepare the mouse by removing the fur surrounding the neck region.

Make a skin incision right to the ventral midline, starting beneath the lower mandibular region and extending to the sternum. The jugular vein is present adjacent to the pectoralis muscle.

Next, take a catheter pre-filled with a warm, sterile, physiological saline and insert a needle into it. Penetrate the catheter-needle assembly through the pectoralis muscle into the jugular vein. The pectoralis muscle acts as a compression point and prevents bleeding at the site of vein injection.

Gently remove the needle from the catheter and connect a syringe containing fluorescent tracer solution to the catheter. Use a drop of glue to secure the catheter in its position.

The catheterized mouse is now ready for the intravenous injection of fluorescent tracers into the jugular vein.

To begin, transport the mouse to the imaging room. Switch on the microscope and computer and set up the required parameters. Once the mouse is completely anesthetized, place the mouse on a heated plate warmed to 37 degrees Celsius for all following manipulations.

Shave the head and throat of the mouse, and apply the gel to the eyes to prevent dryness. Place the mouse on its back and fix the interior legs with surgical tape to stretch the throat. After disinfecting the throat, make a 0.7 to 1 centimeter incision over the right or left jugular vein using scissors, and stretch the adjacent connective tissue to expose the external jugular vein and top of the pectoral muscle.

Gerelateerde video's

0 Bekeken

Laatst bijgewerkt: 15 augustus 2026

Catheter Based Intravenous Injection of Experimental Agents: A Technique for Delivering Experimental Agents Intravenously Through Jugular Vein in Mouse Model

Overzicht

Belangrijkste studiecomponenten

Wetenschappelijk vakgebied

Achtergrond

Doel van de studie

Gebruikte methoden

Belangrijkste resultaten

Conclusies

Veelgestelde vragen

Industriële Relevantie voor Leidinggevenden

Strategische toepassingen in biofarmaceutische R&D

Vroege ontdekking & targetvalidatie

Screening & Assay-ontwikkeling

Translationeel & Preklinisch Onderzoek

Integratie van Pipeline & Workflow

Operationele & Bedrijfsimpact

Overwegingen voor implementatie

Biopharma Veelgestelde Vragen

Femorale arteriële en veneuze catheterisatie voor bloedafname, Drug Administration en bewust Bloeddruk en hartslag metingen

Catheterisatie van de halsslagader en de halsader aan hemodynamische maatregelen uitvoeren, Infusions en Blood Sampling in een Conscious Rat Model

Halsslagader Infusions voor farmacokinetische en farmacodynamische analyse van Taxanen in Muizen

Levering van therapeutische middelen door intracerebroventriculaire (ICV) en intraveneuze (IV) injectie in Muizen

Methoden voor intraveneuze toediening Zelf in een muismodel

Intracerebroventricular Injection in Mouse: An Ommaya Mediated Direct Drug Administration Method to Deliver Drugs to Cerebral Ventricles of Mouse Brain

Intraveneuze injecties in pasgeboren muizen

Meervoudige intraveneuze bolusdosering en invasieve hemodynamische beoordeling in een door hypoxie geïnduceerd model voor hypertensie van de longslagader van muizen

Intracerebroventriculaire injecties uit de vrije hand bij muizen

Het vergemakkelijken van herhaalde intracarotisinjecties in muismodellen door een nieuwe techniek voor het herstellen van de injectieplaats