Name: De Gespaard Nerve Injury (SNI) Model van Induced mechanische allodynie in Muizen (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-08-18T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 44 s
Description: Leer het SNI-model voor neuropathische pijn bij muizen door partiële denervatie van de nervus ischiadicus. Deze methode kwantificeert mechanische allodynie met von Frey-filamenten voor gedragsanalyse.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Dit werk werd ondersteund door de Lundbeck Foundation, de Carlsberg Foundation en Dagmar Marshall Foundation.

1. von Frey nulmetingen voorafgaand aan de operatie Voor Von Frey test procedure, verwijzen wij u naar hoofdstuk 5. 2. Anesthesie / het preparaat <ol><li> Verdoven van de dieren (intraperitoneale injectie van een mengsel van 100mg/kg ketamine en 15 mg / kg Xylazine). </li><li> Plaats het dier in een rustige plaats tot volledig onder narcose (bijvoorbeeld bedekt met een papieren handdoek). </li><li> Controleer reflexen door knijpen het uiteinde van de staart en de poten met een pincet. Zorg ervoor dat de dieren niet reageren voordat u verdergaat. </li><li> Subcutaan injecteren (rug schouder gebied) 0,5 ml isotone zoutoplossing met antibiotica, zoals ampicilline (om uitdroging te vermijden en te voorkomen infecties, maar dit is een kleine chirurgische ingreep). </li><li> Met behulp van een elektrisch scheerapparaat, scheer het operatiegebied van iets onder de knie gebied om de heup (voor rechtshandige personen de linker achterste ledematen wordt aanbevolen). </li><li> Van toepassing oogzalf om de ogen met een watten knop. </li><li> Leg het dier op zijn rechterzijde en plaats het linker achterbeen op een klein platform te houden verhoogd. Zet de been met plakband. </li><li> Ontsmet het operatiegebied met afwisselend scrubs van ethanol en betadine van chirurgisch website uit. </li></ol> 3. Chirurgie <ol><li> Zoek de knie met de duim van je linkerhand en gebruik een scalpel om een ​​app te maken. 1 cm incisie in de lengterichting proximaal van de knie. </li><li> Open de huid door stompe dissectie behulp van de punt van een paar steriele schaar. </li><li> Scheid de spierlaag door stompe dissectie vlak naast de duidelijk zichtbare bloedvat, dicht bij het dijbeen (femur). Als dit juist gebeurt, zal de spierlagen gemakkelijk uit elkaar, zonder bloeden, waaruit de heupzenuw rechts onder de spieren. Als bloeden gebeurt bijvoorbeeld door beschadiging van een bloedvat dicht bij de knie, gebruik van steriele watten knoppen of stukken blik om het bloed op te vangen. Druk op totdat het bloeden stopt. </li><li> Plaats de muis onder een stereo microscoop en zorgvuldig de spieren los met een paar steriele pincet (nr. 2) om de heupzenuw te visualiseren. Oprolmechanismen kan ook worden toegepast. </li><li> Identificeer het gebied waar de Sural zenuw takken van de nervus ischiadicus. De Sural zenuw is de kleinste van de drie takken, vertakking naar rechts in het linker been. </li><li> Van toepassing zijn hechting (6-0 hechtdraad) rond de andere twee takken die nog lopen parallel (de tibia en de gemeenschappelijke peroneus zenuwen), die zeer voorzichtig naar de Sural tak raken. Dit is een belangrijke stap omdat de Sural zenuw moet worden gelaten volledig intact. </li><li> Maak een strakke chirurgische knoop. Als de eerste knoop is strak, zal contracties van de ledemaat in acht worden genomen. </li><li> Pak de zenuwen te snijden onder de hechtdraad met een pincet (nr. 5) en snijd de zenuwen boven en onder pincet met een kleine schaar. Door eerst te snijden boven het pincet, trekken van de zenuwen wordt vermeden. </li><li> Snijd hechtdraad eindigt met een paar van micro-schaar en sluit de spierlaag. Voeg een druppel van lidocaïne op de wond en de hechtdraad met chirurgische knopen. </li></ol> 4. Na de operatie <ol><li> Controleer of oogzalf is nog steeds voldoende. </li><li> Plaats de muis in een schone kooi onder een papieren handdoek in een comfortabele houding. Als de kamer koud is, plaats dan een warmte-pad onder een deel van de kooi (alleen onder een deel van de kooi als het dier moet kunnen ontsnappen naar een koudere omgeving indien gewenst). </li><li> Zorg ervoor dat gemakkelijk toegankelijk water en voer. </li></ol> 5. von Frey testen (baseline, en vanaf de dag na de operatie) <ol><li> Leg de muizen in rood gekleurde plastic cilinders geplaatst op een gaas tafel twee dagen en een dag voorafgaand aan de operatie. Wennen voor de 15 min in cilinders voor de test. De rode kleur van de cilinders helpt de muizen om snel te ontspannen als ze niet kunnen zien elkaar en zijn in een donkere omgeving. </li><li> Controleer of de muizen rust en gelden von Frey draden naar het laterale deel van de poot: beginnen met de 0,02 g gloeidraad, eerst van toepassing kracht om de linkerpoot vijf keer over een totale periode van 30 seconden (ongeveer 2 seconden per stimulus) en peilen naar de muis reactie na elke toepassing. Herhaal dit met dezelfde filament en de linker poot van een andere muizen, en dan opnieuw beginnen met de juiste poot van de eerste muis voordat u naar de volgende filament, bijvoorbeeld: <ul><li> Muis 1: linker poot 5 keer voor gloeilampen en 0,02 g </li><li> Muis 2: linker poot 5 keer voor gloeilampen en 0,02 g, etc. </li><li> Muis 1: rechts poot 5 keer voor gloeilampen en 0,02 g </li><li> Muis 2: rechter poot 5 keer voor gloeilampen en 0,02 g, etc. </li><li> Muis 1: linker poot 5 keer voor gloeilampen en 0,04 g </li><li> Muis 2: linker poot 5 keer voor gloeilampen en 0,04 g, etc. </li></ul></li><li> Respons in drie van de vijf stimuli wordt beschouwd als een positieve reactie. Filamenten boven threshold kan worden toegepast op de drempel te controleren. Response = plotselinge poot terugtrekken, plotselinge spier te vertrekken, plotselinge poot likken. </li></ol> 6. Representatieve resultaten <img src="/files/ftp_upload/3092/3092fig1.jpg" alt="Figuur 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 1"> Figuur 1. Von Frey testen op C57BL / 6 muizen leeftijd 8-10 weken oud werd uitgevoerd een dag voorafgaand aan de operatie en herhaaldelijk na de operatie. 4-8 dieren werden opgenomen in elke groep. Von Frey testen op de geopereerde kant wordt vertegenwoordigd door ipsilaterale en de niet-geopereerde controle kant wordt vertegenwoordigd door de contralaterale. De dag na de operatie van de dieren te ontwikkelen belangrijke overgevoeligheid op de geopereerde poot, terwijl de niet-geopereerde is slechts licht aangetast ten opzichte van sham bediend muizen. (* &lt;0.05, ** &lt;0.01, *** &lt;0.001, ipsilateraal ten opzichte van contralateraal).

<ol><li>Costigan, M., Scholz, J., Woolf, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuropathic+pain%3A+a+maladaptive+response+of+the+nervous+system+to+damage%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Neuropathic pain: a maladaptive response of the nervous system to damage.</a> Annu. Rev. Neurosci. 32, 1-32 (2009).</li>
<li>Decosterd, I., Woolf, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spared+nerve+injury%3A+an+animal+model+of+persistent+peripheral+neuropathic+pain%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">Spared nerve injury: an animal model of persistent peripheral neuropathic pain.</a> Pain. 87, 149-158 (2000).</li>
<li>Bourquin, A. -F., Süveges, M., Pertin, M., Gilliar, N., Sardy, S., Davidson, A. C., Spahn, D. R., Decosterd, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessment+and+analysis+of+mechanical+allodynia-like+behavior+induced+by+spared+nerve+injury+%28SNI%29+in+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">Assessment and analysis of mechanical allodynia-like behavior induced by spared nerve injury (SNI) in the mouse.</a> Pain. 122, 14.e1-14.e14 (2006).</li>
<li>Chaplan, S. R., Bach, F. W., Pogrel, J. W., Chung, J. M., Yaksh, T. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+assessment+of+tactile+allodynia+in+the+rat+paw%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci.+Methods%22%5BJournal%5D)">Quantitative assessment of tactile allodynia in the rat paw.</a> J. Neurosci. Methods. 53, 55-63 (1994).</li>
<li>Bennett, G. J., Xie, Y. -K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+peripheral+mononeuropathy+in+rat+that+produces+disorders+of+pain+sensation+like+those+seen+in+man%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">A peripheral mononeuropathy in rat that produces disorders of pain sensation like those seen in man.</a> Pain. 33, 87-107 (1988).</li>
<li>Seltzer, Z., Dubner, R., Shir, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+behavioral+model+of+neuropathic+pain+disorders+produced+in+rats+by+partial+sciatic+nerve+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">A novel behavioral model of neuropathic pain disorders produced in rats by partial sciatic nerve injury.</a> Pain. 43, 205-218 (1990).</li>
<li>Hargreaves, K., Dubner, R., Brown, F., Flores, C., Joris, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+and+sensitive+method+for+measuring+thermal+nociception+in+cutanous+hyperalgesia%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">A new and sensitive method for measuring thermal nociception in cutanous hyperalgesia.</a> Pain. 32, 77-88 (1988).</li>
<li>Erichsen, H. K., Blackburn-Munro, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pharmacological+characterization+of+the+spared+nerve+injury+model+of+neuropathic+pain%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">Pharmacological characterization of the spared nerve injury model of neuropathic pain.</a> Pain. 98, 151-161 (2002).</li>
</ol>

Geen belangenconflicten verklaard.

Kritische stappen Schade aan de Sural zenuw moet worden vermeden om de pathologische veranderingen in de intacte Sural zenuw na letsel aan de tibia en de gemeenschappelijke peroneus zenuwen te bestuderen. Bijkomende schade aan het Sural zenuw kan leiden tot verlamming en kan dus worden gevisualiseerd als het slepen van de geopereerde achterste ledematen. Alleen de zijkant van de poot wordt geïnnerveerd door de zenuw gespaard Sural, en dus alleen op dit gebied ontwikkelt neuropathie. Het testen van andere gebieden, geïnnerveerd door de zenuwen doorsneden, kunnen sterk vooroordeel de evaluatie van de veranderde mechanische drempel. Eventuele wijzigingen Andere soorten ligaties kan dienen als aanvulling op het gebied van het bestuderen van pathologische pijn voorwaarden na perifere zenuwschade, zoals chronische vernauwing letsel [5] of gedeeltelijke zenuw ligatie [6]. Elke experimentele procedure resulteert in verschillende fenotypische veranderingen die moeten voorafgaand aan de post-operatie testen worden overwogen. Bovendien kunnen andere sensorische tests zoals thermische hyperalgesie worden toegepast [7], hoewel dit fenotype is minder robuust volgende DNI. Toekomstige toepassingen Deze techniek kan gebruikt worden voor het testen van drugs het veranderen van de ontwikkeling of het onderhoud van mechanische allodynie [8]. Analyse van de nervus ischiadicus, de achterwortelganglia (DRG) en / of de lumbale ruggenmerg kan er onderzoek van de moleculaire mechanismen die verantwoordelijk zijn voor de geïnduceerde fenotype. Dierproeven werd uitgevoerd volgens de goede laboratoriumpraktijken in volledige overeenstemming met Deense en Europese regelgeving. Alle experimenten werden goedgekeurd door de Deense Inspectie Dierproeven onder het Ministerie van Justitie (toestemming nummer 2006/561-1206).

<table border="1"><tbody><tr><td> Anesthesie: Ketamine en xylazine </td><td> Scalpel </td></tr><tr><td> Oogzalf </td><td> Pincet nr. 2 </td></tr><tr><td> Elektrisch scheerapparaat </td><td> Pincet nr. 5 </td></tr><tr><td> Handschoenen </td><td> Schaar voor stompe dissectie </td></tr><tr><td> 70% (v / v) ethanol </td><td> Micro-schaar </td></tr><tr><td> Watten knoppen / blik </td><td> 6.0 Prolene niet-resorbeerbare hechtdraad </td></tr><tr><td> Stereo microscoop </td><td> 2 x naald houders </td></tr><tr><td> Plakband </td><td> Warmte pad </td></tr><tr><td colspan="2"> von Frey filamenten (0,02 - 2,0 g voor muizen) (Stoelting) </td></tr></tbody></table>

de gespaard nerve injury (sni) model van induced mechanische allodynie in muizen

The Spared Nerve Injury (SNI) Model of Induced Mechanical Allodynia in Mice

Perifere neuropathische pijn is een ernstige chronische pijn aandoening die het gevolg zijn van een trauma voor sensorische zenuwen in het perifere zenuwstelsel. De gespaard zenuwletsel (SNI) model induceert symptomen van neuropathische pijn, zoals mechanische allodynie dat wil zeggen pijn als gevolg van tactiele prikkels die normaal gesproken niet leiden tot een pijnlijke reactie [1]. Het SNI muismodel bestaat ligatie van twee van de drie takken van de n. ischiadicus (de nervus tibialis en de gemeenschappelijke peroneus), terwijl de Sural zenuw is intact gelaten [2]. Het letsel resulteert in duidelijke overgevoeligheid in de laterale gedeelte van de poot, die wordt geïnnerveerd door de gespaard Sural zenuw. De niet-geopereerde kant van de muis kan worden gebruikt als een controle. De voordelen van de DNI model zijn de robuustheid van de reactie en dat het niet nodig expert microchirurgische vaardigheden. De drempel voor mechanische pijn reactie wordt bepaald door te testen met von Frey filamenten van toenemende buiging kracht, die herhaaldelijk worden gedrukt tegen de laterale oppervlakte van de poot [3], [4]. Een positieve reactie van pijn wordt gedefinieerd als een plotselinge terugtrekking poot, een spier te vertrekken en / of poot likken veroorzaakt door de gloeidraad. Een positief antwoord op drie van de vijf repetitieve stimuli wordt gedefinieerd als de pijngrens. Zoals aangetoond in de video-protocol, C57BL / 6 muizen ervaring diepgaande allodynie zo vroeg als de dag na de operatie en onderhouden van deze voor enkele weken.

De Gespaard zenuwletsel diermodel is hier beschreven als een muis model van perifere neuropathische pijn na een gedeeltelijke denervatie van de nervus ischiadicus door lesioning het scheenbeen en de gemeenschappelijke peroneus takken, waardoor de resterende Sural zenuw intact. Gedragsverandering als gevolg van mechanische allodynie wordt gekwantificeerd door von Frey filamenten.

De Gespaard Nerve Injury (SNI) Model van Induced mechanische allodynie in Muizen

Perifere neuropathische pijn is een ernstige chronische pijnaandoening die het gevolg kan zijn van trauma aan sensorische zenuwen in het perifere zenuwstelsel. De gespaarde ...

Het algemene doel van deze procedure is om een muismodel van neuropathische pijn te creëren na beschadiging van een perifere zenuw. Dit wordt bereikt door eerst de muis te anesthetiseren, het achterbeen in de juiste positie te plaatsen en de nervus ischiadicus bloot te leggen. Vervolgens wordt een gedefinieerde zenuwbeschadiging veroorzaakt door twee takken van de nervus ischiadicus te hechten, terwijl de derde tak intact blijft.In deze video worden de nervus tibialis en de nervus peroneus communis gehecht en doorgesneden, terwijl de nervus suralis gespaard blijft. Andere combinaties kunnen echter worden toegepast na zenuwletsel. De Misa wordt in een cilindrische houder op een gaasblad geplaatst en krijgt de tijd om te wennen; vervolgens wordt de Misa getest met de Von Frey-test, waarmee een kwantitatieve meting van geïnduceerde mechanische allodynie mogelijk is.De gekalibreerde Von Frey-filamenten worden in oplopende volgorde aangebracht op het laterale gebied van de geopereerde poot. Om de mechanische drempelwaarde van de geopereerde versus de ongeopereerde achterpoot vast te stellen, wordt een pijnrespons gedefinieerd als een snelle terugtrekking van de poot, krimpen en/of het likken van de poot bij stimulatie met het filament. Uiteindelijk kan de ontwikkeling van mechanische allodynie in het geopereerde been vergeleken met de ongeopereerde zijde worden gevisualiseerd door de mechanische drempelwaarde in de tijd uit te zetten, wat onderzoek naar diverse moleculaire paden of geneesmiddelenbehandelingen na perifeer zenuwletsel mogelijk maakt.Deze methode kan helpen bij het beantwoorden van kernvragen op het gebied van perifere zenuwletsel, zoals de moleculaire pathways die betrokken zijn bij de ontwikkeling van neuropathische pijn. Daarnaast kunnen geneesmiddelen die gericht zijn op het belemmeren van pijnontwikkeling of het verlichten van pijnsymptomen worden getest. Plaats de muizen twee dagen vóór de operatie in rood gekleurde plastic cilinders die op een gaastafel in een rustige ruimte staan. Laat de muizen vóór de test 15 minuten wennen aan de cilinders; verifieer na 15 minuten of de muizen rustig zijn en pas vervolgens von Frey-filamenten toe in oplopende volgorde, beginnend met het 0,02 gram filament. Oefen eerst vijf keer kracht uit op het laterale deel van de linkerpoot over een totale periode van 30 seconden, en beoordeel de reactie van de muis na elke toepassing; herhaal dit met hetzelfde filament en de linkerpoot van de andere muis, en begin daarna opnieuw met de rechterpoot voordat u overgaat naar het volgende filament.Een positieve pijnreactie wordt gedefinieerd als plotselinge terugtrekking van de poot, spreiding van de tenen en/of overmatig likken van de poot veroorzaakt door het filament; een positieve respons bij drie van de vijf herhaalde stimuli wordt gedefinieerd als de pijngrens. Anestheseer de dieren via intraperitonele injectie van een mengsel van ketamine en xylazine en plaats de dieren op een rustige plek tot ze volledig onder narcose zijn. Controleer de reflexen door met een pincet in de punt van de staart en de poot te knijpen, om er zeker van te zijn dat de dieren niet reageren voordat u verdergaat.Inject vervolgens subcutaan 0,5 milliliters isotoon zout met antibiotica om dehydratie te voorkomen en infecties te vermijden. Scheer met een elektrisch scheerapparaat het operatieveld vanaf net onder het kniegebied tot aan het heupgebied; voor rechtshandigen is het werken met het linker achterpoot het meest praktisch. Breng met een wattenstaafje zalf aan in de ogen.Plaats het dier op zijn rechterzijde en positioneer het linkerachterpoot op een klein platform om deze verhoogd te houden; zet het been vast met plakband. Zodra het dier is gepositioneerd, wordt het operatieveld gedesinfecteerd door afwisselend ethanol en Betadine aan te brengen, waarbij vanuit de chirurgische plek naar buiten wordt gewerkt; laat dit vervolgens drogen. Lokaliseer de knie met de duim van de linkerhand en gebruik een scalpel om een kleine incisie in longitudinale richting proximaal van de knie te maken. Open de huid door middel van botte dissectie met de punt van een schaar.Plaats de muis vervolgens onder een stereomicroscoop en lokaliseer het duidelijk zichtbare bloedvat vlakbij het dijbeen. Scheid daarna de spierlaag door middel van stompe dissectie. Bij een correcte uitvoering zullen de spierlagen eenvoudig scheiden zonder bloedingen, waardoor de nervus ischiadicus direct onder de spieren zichtbaar wordt.Indien er een bloeding optreedt door beschadiging van een nabijgelegen bloedvat, gebruik dan wattenstaafjes of stukjes gaas om het bloed te absorberen door te drukken totdat de bloeding stopt. Spreid de gescheiden spierlagen voorzichtig met een pincet nummer twee. Om de nervus ischiadicus te visualiseren, plaatst u indien nodig retractoren en identificeert u het gebied waar de nervus suralis afsplitst van de nervus ischiadicus.De nervus suralis is de kleinste van de drie takken die naar rechts aftakken in het linkerbeen. Pas bij C 57 black six muizen een 6-0 hechting strak aan rond de andere twee takken die nog parallel lopen. Wees zeer voorzichtig om de surale tak niet aan te raken.Pak de te knippen zenuwen onder de hechting vast met een pincet nummer vijf en knip de zenuwen vervolgens eerst boven en daarna onder het pincet door met een klein schaartje om te voorkomen dat de zenuwen worden voortgetrokken. Zodra de zenuwen zijn doorgeknipt, worden de uiteinden van de hechting met een schaar afgeknipt en wordt de spierlaag vervolgens voorzichtig gesloten. Een hechtring is normaal gesproken niet nodig.Voeg een druppel lidocaïne toe aan de wond en hecht deze met chirurgische knopen. Controleer of de oogzalf nog voldoende is, en plaats de muis vervolgens in een schone kooi met een papieren handdoek. Zorg voor een comfortabele houding en bied gemakkelijk toegankelijk water en voer aan.Indien de ruimte koud is, plaats dan een warmtemat onder een gedeelte van de kooi. Na één dag postoperatief herstel worden de von Frey-metingen verzameld bij zowel de geopereerde als de sham-geopereerde muizen, zoals beschreven bij het verzamelen van de basismetingen. Hier worden de resultaten van de von Frey-testen bij groepen van vier tot zes muizen getoond, zowel één dag vóór de operatie als dagelijks gedurende twee weken na de operatie. De dag na de operatie ontwikkelden de dieren een significante mechanische hypersensitiviteit aan de geopereerde of ipsilaterale poot, terwijl de niet-geopereerde of contralaterale poot onbeïnvloed bleef.De drempelwaarde aan de contralaterale zijde is licht verlaagd in vergelijking met de sham-geopereerde muizen, wat erop wijst dat MI-allodynie in geringe mate kan optreden bij geopereerde muizen. Na het bekijken van deze video zou u een goed inzicht hebben in hoe u de takken van de S-zenuw bij een geanestheseerde muis kunt lokaliseren en manipuleren. De fray-assay maakt verder een kwantitatieve functionele uitlezing mogelijk om de respons van transgene dieren of geneesmiddelen na gedeeltelijke perifere zenuwbeschadiging te testen.

the-spared-nerve-injury-sni-model-induced-mechanical-allodynia

Research

JoVE Journal

Medicine

Geneeskunde

Door de eenvoud van de ingreep en de robuuste gedrag dat eruit voortkomt, chronische vernauwing van de nervus ischiadicus is een van de vooraanstaande dierlijke modellen van neuropathische pijn. Binnen 24 uur na een operatie, wordt de pijn overgevoeligheid vastgesteld en kan kwantitatief gemeten worden met een von Frey aesthesiometer (mechanische test) en plantaire analgesie meter (thermische test).

Chronische Vernauwing van de nervus ischiadicus en Pijn Overgevoeligheid Testen bij ratten

This video demonstrates testing sensory nerve function in a mouse model by surgically denervating one side and leaving the other as a control. The response to mechanical stimulation confirms the role of sensory nerves.

Testing Sensory Nerve Function in a Surgically Denervated Mouse Model

De scheenbeenzenuw doorsnijding model is een goed verdragen, gevalideerde en reproduceerbaar model van de skeletspier atrofie. Het model chirurgische protocol wordt beschreven en gedemonstreerd in C57Black6 muizen.

Scheenbeen Nerve doorsnijding - Een gestandaardiseerd model voor denervatie-geïnduceerde Skeletal Muscle Atrofie in Muizen

Neuropathische pijn is het gevolg van een letsel of ziekte die het somatosensorische systeem. De "cuff model" van neuropathische pijn bij muizen bestaat uit de inplanting van een polyethyleen manchet rond de belangrijkste tak van de nervus ischiadicus. Mechanische allodynie wordt getest met behulp van von Frey filamenten.

De heupzenuw handboeien Model van neuropathische pijn in Muizen

We presenteren een chirurgisch protocol dat beschrijft hoe een snij- of verpletteringsaxotomie op de aangezichtszenuw bij de muis moet worden uitgevoerd. De axotomie van de aangezichtszenuw kan worden gebruikt om de fysiologische reactie op zenuwbeschadiging te bestuderen en therapeutische technieken te testen.

Facial Nerve axotomie in Muizen: een model om motoneuron Response to Injury Study

De aangepaste chirurgie is een vereenvoudigde methode voor een model voor gespaard zenuwletsel bij muizen of ratten dat slechts één ligatie en één snede vereist om zowel de gemeenschappelijke peroneale als de surale zenuwen te verwonden.

Gemodificeerd model voor gespaard zenuwletselchirurgie van neuropathische pijn bij muizen

De mechanische conflictvermijdingstest wordt gebruikt als een niet-reflexieve uitlezing van pijngevoeligheid bij muizen die kan worden gebruikt om affectieve-motiverende reacties in verschillende muispijnmodellen beter te begrijpen.

Mechanische conflictvermijdingstest om pijngedrag bij muizen te meten

Partiële heupzenuwligatie induceert langdurige chronische neuropathische pijn, gekenmerkt door overdreven reacties op thermische en mechanische stimuli. Dit muismodel van neuropathische pijn wordt vaak gebruikt om innovatieve therapieën voor pijnbestrijding te bestuderen. Dit artikel beschrijft in detail de chirurgische procedure om de standaardisatie en reproduceerbaarheid te verbeteren.

Partiële heupzenuwligatie: een muismodel van chronische neuropathische pijn om het antinociceptieve effect van nieuwe therapieën te bestuderen

Chronische vernauwingsschade van de distale infraorbitale zenuw bij muizen induceert veranderingen in spontaan gedrag (verhoogde gezichtsverzorgingsactiviteit) en nocifensief gedrag als reactie op tactiele stimulatie (hyperreactiviteit op von Frey-haarstimulatie) die tekenen zijn van aanhoudende pijn en allodynie, en dient als model voor trigeminusneuropathische pijn.

Chronisch vernauwingsletsel van de distale infraorbitale zenuw (DIoN-CCI) bij muizen om trigeminusneuropathische pijn te bestuderen

Dit protocol presenteert een reproduceerbaar rattenmodel dat sensorische zenuwen gebruikt om menselijke neuroompijn na te bootsen en chirurgische behandelingen te beoordelen, en biedt een waardevol hulpmiddel voor translationeel neuroomonderzoek.

Nieuw chirurgisch knaagdiermodel voor het bestuderen van opties voor de behandeling van neuroompijn met behulp van gerichte spierreïnnervatie door de nervus saphenos

Leer het SNI-model voor neuropathische pijn bij muizen door partiële denervatie van de nervus ischiadicus. Deze methode kwantificeert mechanische allodynie met von Frey-filamenten voor gedragsanalyse.

De Gespaard Nerve Injury (SNI) Model van Induced mechanische allodynie in Muizen

Meer video's verkennen