1 oktober 2007
Demonstreren we een eenvoudige methode voor het plaatsen van cellen op de gewenste locaties op een substraat. Deze methode patronen cellen door het opgooien van een siliconen chip met microwells gevuld met cellen op de ondergrond. Deze methode biedt een nieuwe manier te moduleren diffundeerbare en juxtacrine signalering tussen cellen.
Ik ben nickel Mital, een promovendus in het Bowman-lab. Vandaag ga ik spreken over een apparaat dat is ontwikkeld door twee voormalige studenten in ons lab, genaamd de bio flip chip.
Dit apparaat maakt het mogelijk om cellen op een substraat naar keuze van de onderzoeker af te leveren in een configuratie naar keuze van de onderzoeker. Het apparaat zelf, we hebben er hier een, is zeer eenvoudig. Het bestaat in feite uit kleine putjes in een stuk silicone.
Elke put is gewoonlijk zo ontworpen dat er slechts één cel in past, maar indien nodig kunnen we deze uiteraard groter maken. De vervaardiging van het apparaat is zo uitgevoerd dat de putten in dezelfde configuratie staan als waarin de cellen uiteindelijk op het substraat terechtkomen. Het apparaat zelf wordt daarom vervaardigd middels zachte lithografie.
In het bijzonder gebruiken we PDMS, wat poly dimethylsiloxaan is, en gieten we dit af van een siliciumwafer. We hebben er hier één. De mal-wafer zelf is gemaakt met standaard fotolithografie om een SU-8 fotolak te patroneren, die op de siliciumwafer is gesponnen.
Kortom, cellen worden overgebracht naar het gekozen substraat door de putjes op de bio-flipchip in wezen te vullen met deze cellen. Vervolgens brengen we de chip aan op het gekozen substraat, vaak een weefselkweekschijf van polystyreen. Ten slotte draaien we de combinatie om, waardoor de cellen uit de putjes op het substraat vallen.
Ik ben Stephanie Flavin. Ik ben een onderzoeker in mijn bacheloropleiding hier in het Goldman-lab, en vandaag zal ik laten zien hoe u de bio flip chip gebruikt om cellen de dag ervoor te patroneren. We willen een patroonexperiment uitvoeren.
We zullen de PDMS via plasmabonding bevestigen aan een glazen objectglas van één bij één inch. Vervolgens weken we de chip een nacht lang met de welzijde naar beneden in een PBS-oplossing. We zullen ook pakkingen snijden voor gebruik in het patroonexperiment en binder clips verzamelen die ebenfalls gebruikt zullen worden.
Breng 200 µL BSA aan op het oppervlak van elke chip. Schud het oppervlak van de chip met de pipetpunt om luchtbellen te verwijderen en laat de BSA-oplossing de putjes vullen. Laat de chips gedurende één uur onder de zu%)kap staan in de UV-lichtpassagecellen zoals gebruikelijk.
Zuig na één uur de BSA-oplossing van de chips af en spoel elke chip met 200 µL PBS. Breng 200 µL cellenoplossing aan met een dichtheid van 10⁶ cellen per ml. Nadat er vijf tot 10 minuten is gewacht tot de cellen in de putjes zijn gezakt, wordt het oppervlak van de chip gespoeld met PBS. Kantel de chip naar één hoek onder een hoek van ongeveer 15 graden en pipetteer de cellenoplossing langzaam af vanuit de onderste hoek van de chip.
Breng de chip terug in een horizontale positie en voeg langzaam 50 µL PBS toe aan de bovenhoek. Herhaal de wasstap indien nodig meerdere keren. Zodra de xls van het chipoppervlak zijn gewassen, voegt u ongeveer 50 µL medium toe aan de binnenste pakking van het schaaltje.
Voeg medium toe aan de bovenkant van elke chip. Keer vervolgens de schaal om en kantel deze terwijl u deze op het oppervlak van de chip plaatst, beginnend bij één hoek. Platte de schaal vervolgens op de chip om de vorming van luchtbellen tussen de schaal en de chip te voorkomen.
Bevestig aan elke zijde van de chip binder clips om deze op zijn plaats te houden. Verwijder de handvatten van elke binder clip, zodat de chip vlak op de schaal ligt wanneer deze wordt omgedraaid. Verplaats de chip naar de incubator en draai deze snel om, waarbij alle onnodige bewegingen worden vermeden.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Deze studie presenteert een nieuwe methode voor het positioneren van cellen op een substraat met behulp van een apparaat dat de bio flip chip wordt genoemd. Door een siliconen chip met microwells gevuld met cellen op het substraat te keren, kunnen onderzoekers de plaatsing van cellen effectief beheersen, waardoor de modulatie van signalering tussen cellen wordt verbeterd.
Precieze ruimtelijke controle over celpopulaties maakt mechanische ondervraging mogelijk van diffuseerbare en juxtacriene signaleringspaden, die cruciaal zijn voor targetvalidatie in op stamcellen gebaseerde ziektemodellen. De Bio Flip Chip biedt een substraat-onafhankelijke, chemie-behoudende methode om gedefinieerde cellulaire micro-omgevingen te patroonvormen, wat reproduceerbare assayontwikkeling voor fenotypische screening ondersteunt. Deze aanpak verhoogt het voorspellend vertrouwen in de vroege ontdekkingsfase door variabiliteit in cel-celcontact en blootstelling aan paracriene factoren te verminderen, waardoor de translationele continuïteit van in vitro modellen naar preklinische validatie wordt verbeterd.
De Bio Flip Chip integreert in vroege discovery-workflows door reproduceerbare patroonvorming van stamcellen mogelijk te maken voorafgaand aan blootstelling aan verbindingen, wat hypothese-gestuurde screening en mechanische follow-up bij lead-optimalisatie ondersteunt.