Name: Immunokleuring van ontleed zebravis embryonale hart (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-01-10T12:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 23 s
Description: Leer een snelle methode voor immunokleuring van ontleed zebravis embryonaal hart met verbeterde antilichaampenetratie. Deze techniek biedt hogeresolutiebeelden en verkort de verwerkingstijd aanzienlijk voor ontwikkelingsbiologisch onderzoek.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Wij danken Beninio Jomok voor zijn hulp in de zebravis veehouderij. Dit werk wordt gefinancierd door NIH HL81753.

1. De voorbereiding van dia&#39;s en vochtige kamer <ol><li> De bevochtigde kamer kan worden gemaakt van een doos, zoals een leeg tip box. Wikkel zowel de kamer en het afdekken met aluminiumfolie om de monsters te beschermen tegen licht. </li><li> In de kamer, zet een stapel natte papieren zakdoekjes om de vochtigheid in de kamer, die het hart monsters te voorkomen dat het drogen te behouden. Stel een klein microplaat op de top van de papieren handdoek als een rek voor de dia&#39;s. </li><li> Teken of lijnen of cirkels op het oppervlak van een objectglaasje met behulp van de immEdge pen om putten te maken voor het hart monsters met een afmeting ongeveer 5x5 mm. Laat de dia&#39;s drogen. </li><li> Zet de dia&#39;s in de bevochtigde kamer en voeg 50ul verse 4% formaldehyde in elk putje. </li></ol> 2. Dissectie van embryonale hart <ol><li> Verdoven de vissen embryo in E3 ei water zeven met 0,4% tricaïne voor ongeveer 1 minuut tot de vis te stoppen beweging van het lichaam, maar hebben nog steeds normaal hartkloppen. </li><li> Doe een concave microscoopglaasje op het podium van een dissectie microscoop. Breng de embryo&#39;s naar de uitgehold goed. </li><li> Pas de lichte combinatie van de dissectiemicroscoop om duidelijk te openbaren het hart. Afhankelijk van persoonlijke voorkeur, kan het zowel donker veld of DIC-achtige gepolariseerd licht. </li><li> Schoon twee insuline-injectiespuiten met 75% ethanol, dan droog. </li><li> Stel de dissectie microscoop naar hogere vergroting en zich richten op het hart. Fysiek stelt een embryo door het invoegen van een naald in de dooier-somiet grens dicht tegen het hoofd. Plaats een andere naald dicht bij het hart streek en trek het hart snel uit. Als het hart niet volledig gescheiden van het embryo, afgesneden van de rest verbonden weefsel tussen het hart en de dooier. </li><li> Stel de microscoop om lagere vergroting en zich richten op de gescheiden hart. Gebruik een 10μl pipetteman en stel deze in op 1μl volume. Breng de tip van de pipetteman om ofwel te trekken en raak hethart monster, zodat het geïsoleerde hart zal zijn, hetzij binnen of aan het oppervlak van de tip. </li><li> Dompel de pipetpunt in 4% formaldehyde-oplossing op voorbereid dia&#39;s en druk de pipet zuiger naar het hart introductie in de oplossing. De spanning van het wateroppervlak helpt ook om het hart bevrijden van pipettip aan de oplossing. Zet minder dan 3 harten in elk putje. </li></ol> 3. Immunokleuring <ol><li> Sluit de tank af en zet het op een shaker met een zachte wiegende beweging. Bevestig het hart monster gedurende 20 minuten bij kamertemperatuur. </li><li> Veeg het water aan de achterzijde van de dia&#39;s en zet de dia&#39;s op het podium van een dissectie microscoop voor het uitwisselen van buffer. </li><li> Dompel de tip van een 10μl pipetteman in een leeg gebied in elk putje en houd de punt zo ver mogelijk van het hart monsters. Neem de waarschuwingen om te voorkomen dat het hart verbonden aan de tip, want harten zou kunnen bewegen met de waterstroom wanneer de oplossing wordt getrokken in de tip. Veranderingde tip lokalisatie, indien nodig. </li><li> Gooi de oplossing op een tissue en vermijd het produceren van alle belletjes in de punt, omdat het hart monster wordt gemakkelijk verloren in de aanwezigheid van luchtbellen. Houden van het hart monsters gedeeltelijk droog voor een korte tijd kan helpen de harten aangesloten blijven op de dia&#39;s. </li><li> Voeg 50μl PBST naar het hart monster te dekken en in de bevochtigde kamer in een langzame schommelende beweging gedurende 5 minuten incuberen. Herhaal het spoelen nog een keer. Na deze stap kan het hart monsters worden opgeslagen in de bevochtigde kamer maximaal 1 week bij 4 ° C. </li><li> Blokkeer het hart monster met 10% schapen serum in PBST gedurende 1 uur bij kamertemperatuur. </li><li> Incubeer het hart monster met primaire antilichamen, zoals 1:200 verdunning van β-catenine antilichaam en 1:200 verdunning van mef2 specifiek antilichaam, in 10% schapen serum / PBST gedurende 1 uur bij kamertemperatuur. </li><li> Was het hart monster met PBST drie keer (5 min.. Elk) bij kamertemperatuur. </li><li> Incubeer het monster met secundaireantilichamen, zoals 1:1000 verdunning van Alexa-gelabeld anti-muis en / of anti-konijn antilichamen, in PBST gedurende 0,5 uur. </li><li> Was het hart monsters met PBST drie keer (5 min.. Elk) bij kamertemperatuur. </li></ol> 4. Imaging <ol><li> Verwijder PBST en voeg 10 ul montage medium aan elke well. Rock de kamer voor een aantal minuten tot de oplossing helder wordt. </li><li> Verwijder het grootste deel van de montage-medium en alle van de putten in een dia met een microscoop afdekglas (24x50). </li><li> Afbeelding vis hart met behulp van Zeiss Axioplan 2 microscoop uitgerust met apotome (Carl Zeiss). </li></ol> 5. Representatieve resultaten Een voorbeeld van een beeld dat membraan en kernen van alle zebravis hartspiercellen onthult wordt getoond in Fig. 1. mef2c en β-catenine antilichamen werden gebruikt samen aan het hart monsters ontleed van 52 hpf zebravis embryo vlek. Terwijl mef2c antilichaam vlekken de kernen van cardiomyocyten, β-catenineantilichaam onthult de rand van elke cel 8-10. Door het aanpassen van de fase van de samengestelde microscoop, kunnen beelden van het hart monsters worden aangepast aan de dezelfde richting, waardoor de waarneming van uiterlijke en innerlijke kromming kromming in het hart 11 zal toestaan. Het totale aantal cardiomyocyten, cardiomyocyt celgrootte, en circulariteit kan dan worden gemeten. Een ander voorbeeld dat de sarcomeer structuur van een embryonale hart laat zien is te zien in Fig. 2. We voerden immunokleuring met behulp van F59, een myosine antilichaam, in een ontleed embryonale hart. De myofibril netwerk in een hele embryonale hart kan duidelijk worden onthuld bij lagere vergroting, terwijl de gestreepte band van dik filament kan worden onthuld bij hogere vergroting (afb. 2) 6. <img alt="Figuur 1" src="/files/ftp_upload/3510/3510fig1.jpg" /> Figuur 1. Immunokleuring van mef2 (rood) en β-catenine (groen) om de kernen en OutL tonenines van de cardiomyocyten in een zebravis ventrikel. Schaalbalk = 10μm <img alt="Figuur 2" src="/files/ftp_upload/3510/3510fig2.jpg" /> Figuur 2. Immnostaining van myosine aan de dikke gloeidraad in een zebravis ventrikel show in ofwel een lage vergroting (A) of hoge vergroting (B). Schaal bar = 10μm

<ol><li>Shin, J. T., Fishman, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((From+Zebrafish+to+human%3A+modular+medical+models%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Genomics+Hum.+Genet%22%5BJournal%5D)">From Zebrafish to human: modular medical models.</a> Annu. Rev. Genomics Hum. Genet. 3, 311-340 (2002).</li>
<li>Beis, D., Stainier, D. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+cell+biology%3A+following+the+zebrafish+trend%5BTitle%5D)+AND+%22Trends.+Cell.+Biol%22%5BJournal%5D)">In vivo cell biology: following the zebrafish trend.</a> Trends. Cell. Biol. 16, 105-112 (2006).</li>
<li>Schoenebeck, J. J., Yelon, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Illuminating+cardiac+development%3A+Advances+in+imaging+add+new+dimensions+to+the+utility+of+zebrafish+genetics%5BTitle%5D)+AND+%22Semin.+Cell.+Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Illuminating cardiac development: Advances in imaging add new dimensions to the utility of zebrafish genetics.</a> Semin. Cell. Dev. Biol. 18, 27-35 (2007).</li>
<li>Nasevicius, A., Ekker, S. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effective+targeted+gene+%27knockdown%27+in+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Genet%22%5BJournal%5D)">Effective targeted gene 'knockdown' in zebrafish.</a> Nat. Genet. 26, 216-220 (2000).</li>
<li>Dahme, T., Katus, H. A., Rottbauer, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fishing+for+the+genetic+basis+of+cardiovascular+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Dis.+Model+Mech%22%5BJournal%5D)">Fishing for the genetic basis of cardiovascular disease.</a> Dis. Model Mech. 2, 18-22 (2009).</li>
<li>Huang, W., Zhang, R., Xu, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Myofibrillogenesis+in+the+developing+zebrafish+heart%3A+A+functional+study+of+tnnt2%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Myofibrillogenesis in the developing zebrafish heart: A functional study of tnnt2.</a> Dev. Biol. 331, 237-249 (2009).</li>
<li>Westerfield, M. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aWesterfield%2C+M+%22The+Zebrafish+Book%22">The Zebrafish Book</a>. , (2007).</li>
<li>Buckingham, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Muscle%3A+the+regulation+of+myogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Opin.+Genet.+Dev%22%5BJournal%5D)">Muscle: the regulation of myogenesis.</a> Curr. Opin. Genet. Dev. 4, 745-751 (1994).</li>
<li>Wheelock, M. J., Knudsen, K. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cadherins+and+associated+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Vivo%22%5BJournal%5D)">Cadherins and associated proteins.</a> Vivo. 5, 505-513 (1991).</li>
<li>Sun, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+hypertrophy+involves+both+myocyte+hypertrophy+and+hyperplasia+in+anemic+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Cardiac hypertrophy involves both myocyte hypertrophy and hyperplasia in anemic zebrafish.</a> PLoS One. 4, e6596-e6596 (2009).</li>
<li>Auman, H. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+modulation+of+cardiac+form+through+regionally+confined+cell+shape+changes%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Biol%22%5BJournal%5D)">Functional modulation of cardiac form through regionally confined cell shape changes.</a> PLoS Biol. 5, e53-e53 (2007).</li>
<li>Chen, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Depletion+of+zebrafish+essential+and+regulatory+myosin+light+chains+reduces+cardiac+function+through+distinct+mechanisms%5BTitle%5D)+AND+%22Cardiovasc.+Res%22%5BJournal%5D)">Depletion of zebrafish essential and regulatory myosin light chains reduces cardiac function through distinct mechanisms.</a> Cardiovasc. Res. 79, 97-108 (2008).</li>
</ol>

Geen belangenconflicten verklaard.

In vergelijking met klassieke ganse berg immunokleuringen methoden, onze methode heeft de volgende voordelen. Ten eerste kan veel sterker fluorescerende signalen consequent worden verkregen dankzij de verbeterde penetratie. In de ganse berg immunokleuring methode, de dichte huid weefsel rondom het hart aanzienlijk verminderd de penetratie van vele antilichamen, wat resulteert in hoge achtergrond in het hele lichaam. Dit probleem is vooral ernstig voor embryo&#39;s ouder dan drie-dagen post-bevruchting (DPF). In tegenste...

<table border="1"><tbody><tr><td> Naam van het reagens </td><td> Vennootschap </td><td> Catalogus nummer </td></tr><tr><td> tricaïne </td><td> Onderzoek organische </td><td> 3007T </td></tr><tr><td> Formaldehyde </td><td> Polysciences </td><td> 04018 </td></tr><tr><td> Insulinespuit </td><td> Becton Dickinson </td><td> 329461 </td></tr><tr><td> Triton-X-100 </td><td> Sigma </td><td> T8532 </td></tr><tr><td> Anti-β-catenine antilichaam </td><td> Sigma </td><td> C7207 </td></tr><tr><td> Anti-Mef2c antilichaam </td><td> Santa Cruz Biotech </td><td> SC313 </td></tr><tr><td> F59 </td><td> Zfin </td><td></td></tr><tr><td> Anti-α-actinine antilichaam </td><td> Sigma </td><td> A7811 </td></tr><tr><td> Anti-Ilk antilichaam </td><td> Cell signaling </td><td> # 3862 </td></tr><tr><td> Alexa fluor 568 Geit anti konijn IgG </<html> td&gt; <td> Invitrogen </td><td> A11011 </td></tr><tr><td> Alexa fluor 488 geit anti muis lgG1 </td><td> Invitrogen </td><td> A21121 </td></tr><tr><td> Montage medium voor fluorescentie </td><td> Vector </td><td> H-1200 </td></tr><tr><td> ImmEdge pen </td><td> Vector </td><td> H-4000 </td></tr><tr><td> Poly-L-lysine gecoate glaasjes </td><td> Elektronenmicroscopie wetenschappen </td><td> 63410-01 </td></tr><tr><td> Microscoop afdekglas </td><td> Visser </td><td> 12 tot 543-D </td></tr><tr><td> Uitgehold objectglaasjes </td><td> Visser </td><td> 7-1305-8 </td></tr><tr><td> Dissection microscoop </td><td> Leica MZ95 </td><td></td></tr><tr><td> Samengestelde microscoop </td><td> Zeiss </td><td> Axioplan2 </td></tr><tr><td> Apotome </td><td> Zeiss </td><td></td></tr></tbody></table> PBST: 1 x PBS 0,5% Triton-X 100 ENT &quot;&gt; 25X tricaïne: 400 mg tricaïne 97,9 mL DDH 2 O 2,1 ml (1 M Tris pH9) Pas de pH tot 7,0

immunokleuring van ontleed zebravis embryonale hart

Immunostaining of Dissected Zebrafish Embryonic Heart 

Zebravis embryo wordt een populair in vivo vertebrate model voor het bestuderen van ontwikkeling van het hart en het menselijk hart-en vaatziekten als gevolg van de gunstige embryologie en genetica 1,2. Ongeveer 100-200 embryo&#39;s zijn verkrijgbaar elke week vanaf een enkel paar van de volwassen vissen. De transparante embryo&#39;s ex utero ontwikkelen maken ze ideaal voor de beoordeling van hartafwijkingen 3. De expressie van een gen kan worden gemanipuleerd via morfolino technologie-of RNA-injectie 4. Bovendien, naar voren genetische screens hebben al een lijst van mutanten die verschillende perspectieven van cardiogenese 5 beïnvloeden. Whole mount immunokleuring is een belangrijke techniek in dit diermodel om de expressie patroon van de beoogde eiwit openbaren aan een bepaald weefsel 6. Echter, hebben een hoge resolutie beelden die kunnen onthullen cellulaire of subcellulaire structuren is moeilijk, vooral als gevolg van de fysieke location van het hart en de slechte penetratie van de antilichamen. Hier presenteren we een methode om deze knelpunten aan te pakken door het ontleden van het hart en vervolgens het uitvoeren van de kleuring proces op het oppervlak van een microscoop dia. Om het verlies van kleine monsters het hart te voorkomen en om de oplossing te hanteren te vergemakkelijken, beperken wij het hart monsters binnen een cirkel op het oppervlak van de microscoop dia&#39;s getrokken door een immEdge pen. Na de kleuring, kan de fluorescentie signalen direct worden waargenomen door een samengestelde microscoop. Onze nieuwe methode verbetert de penetratie voor antilichamen, want een hart van een embryonale vis slechts bestaat uit enkele cellagen. Beelden van hoge kwaliteit uit intacte hart kunnen worden verkregen binnen een veel lagere processie tijd voor zebravis embryo&#39;s de leeftijd van dag 2 tot dag 6. Onze methode kan mogelijk worden uitgebreid naar andere organen ontleed van zowel zebravis of andere kleine dieren vlek.

Een snelle manier om immunokleuring van zebravis embryonale hart gedrag wordt beschreven. In vergelijking met de ganse berg immunokleuring aanpak, deze methode verhoogt dramatisch de penetratie van de antilichamen, die het mogelijk maakt het verkrijgen van een hoge resolutie beelden, die cellulaire / subcellulaire structuren openbaren in het hart in een veel lagere verwerkingstijd.

Immunokleuring van ontleed zebravis embryonale hart

Het zebravissenembryo is een populair in vivo gewervdenmodel geworden voor het bestuderen van de hartontwikkeling en menselijke hartaandoeningen vanwege de gunstige embryologie ...

Het algemene doel van deze procedure is om immunokleuring uit te voeren op gedisseceerde harten van zebravisembryo's om cellulaire of subcellulaire structuren in hoge resolutie zichtbaar te maken. Dit wordt bereikt door eerst preparaten in een bevochtigingskamer voor te bereiden voor de immunokleuring. Vervolgens wordt het hart gedissecteerd uit een geanestheseerd zebravisembryo, gevolgd door immunokleuring van het embryonale hart met een specifiek antilichaam.Vervolgens worden beelden van vissenharten gedocumenteerd met een microscoop uitgerust met een aome. Ten slotte worden cellulaire of subcellulaire structuren in een embryo-hart van een zebravis zichtbaar gemaakt met immunofluorescentiemicroscopie dankzij de sterk verhoogde penetratie. Het belangrijkste voordeel van deze techniek ten opzichte van bestaande methoden, zoals home mount immunokleuring, is de mogelijkheid om beelden van hoge kwaliteit van een standaard zebravishart te verkrijgen. Om een bevochtigingskamer te prepareren en de monsters tegen licht te beschermen, wordt aluminiumfolie gebruikt om de kamer en de kap van een lege tipdoos in te pakken.Voorkom dat de monsters uitdrogen door een stapel natte papieren handdoeken op de bodem van de kamer te plaatsen en plaats een kleine microplaat bovenop de papieren handdoeken als rek voor de objectglazen. Gebruik een image pen om met cirkels of lijnen van ongeveer vijf bij vijf millimeter wells te tekenen op het oppervlak van een objectglas. Laat de objectglazen drogen.Plaats de objectglazen in de bevochtigingskamer en voeg 50 µL formaldehyde toe aan elk putje. Om het embryonale hart te dissekeren, anestheseert u het visembryo in E3-eierwater met 0,4% tricaine totdat de vis alle lichaamsbewegingen stopt, maar nog steeds een normale hartslag behoudt. Dit duurt ongeveer één minuut.Breng de embryo's over naar een concave glasplaat. Plaats een concave microscoopglasplaat op de tafel van een dissectiemicroscoop met gebruik van donkerveld- of DIC-gepolariseerd licht. Stel het licht van de microscoop zo in dat het hart duidelijk zichtbaar is.Reinig vervolgens twee insulinespuiten met 75% ethanol. Droog deze daarna en verhoog de vergroting van de microscoop om op het hart te focussen. Fixeer vervolgens een embryo fysiek door één naaldpunt in de dooier te steken, zodat de rand van de mijt dicht bij de kop ligt.Plaats vervolgens een andere naald dicht bij de hartregio en trek het hart snel naar buiten. Als het hart niet volledig is gescheiden van het embryo, snijd dan het resterende verbindingsweefsel tussen het hart en de dooier door. Focus op het hart bij een lagere vergroting.Gebruik een 10 µL pipetteerhulpmiddel dat is ingesteld op een volume van 1 µL. Plaats de punt van het pipetteerhulpmiddel zodanig dat het hartmonster wordt opgezogen of aangeraakt, zodat het geïsoleerde hart zich in of aan het oppervlak van de pipetpunt bevindt. Dompel de pipetpunt in de formaldehydeloplossing op de voorbereide objectglazen en druk op de zuiger van de pipet om het hart in de oplossing vrij te laten.Sluit de kamer met de harten in formaldehyde op de verdieppingsglasplaatjes en plaats deze 20 minuten bij kamertemperatuur op een schudmachine met een zachte wiegende beweging. Veeg het water aan de achterzijde van de glasplaatjes af en plaats de plaatjes op de tafel van een dissectiemicroscoop voor het uitwisselen van de buffer. Gebruik een pipet van 10 µL om voorzichtig de formaldehyde van het glasplaatje te aspireren, terwijl de harten ongestoord blijven. Voeg 50 µL PBST toe om de hartmonsters te bedekken en incubeer deze vijf minuten in de bevochtigde kamer.Spoel de harten een tweede keer met PBST. Blok vervolgens het hartmonster met 10% schapenserum in PBST gedurende één uur bij kamertemperatuur. Incubeer daarna de hartmonsters gedurende één uur bij kamertemperatuur met beta catenin en F twee specifieke primaire antilichamen in een verdunning van 1:200 in PBST met 10% schapenserum.Was de hartmonsters drie keer met PBST gedurende vijf minuten per keer bij kamertemperatuur. Incubeer de monsters gedurende 30 minuten met een verdunning van 1:1000 van een Alexa-tag, anti-muis en/of anti-konijn secundaire antilichamen in PBST. Was de monsters opnieuw drie keer met PBST om de monsters te kunnen afbeelden.Verwijder de PBST en voeg één µL montagemedium toe aan elk monster. Schud de kamer gedurende enkele minuten voorzichtig totdat de oplossing helder wordt. Beeld het vishart af met een Zeiss Axio Plan 2-microscoop uitgerust met een Aome. In deze afbeelding worden de kernen en celmembranen van zebravis-cardiomyocyten van een zebravisembryo 52 uur na bevruchting geïdentificeerd met antilichamen tegen respectievelijk MEF2C en bèta-actine.Door de tafel van de lichtmicroscoop aan te passen, kunnen de beelden van de hartmonsters in dezelfde oriëntatie worden gebracht, waardoor de buitenste en binnenste kromming van het hart kunnen worden waargenomen. Het totale aantal cardiomyocyten, de celgrootte van de cardiomyocyten en de circulariteit kunnen vervolgens worden gemeten. Hier wordt de sarcomerenstructuur van een geprepareerd embryonaal hart getoond met behulp van het myosin-antilichaam F 59. Het myofibrillenetwerk in een volledige embryonale hartventrikel is duidelijk zichtbaar bij een lagere vergroting, terwijl de gestreepte band van dikke filamenten zichtbaar is bij een hogere vergroting.Na het bekijken van deze video zou u een goed begrip moeten hebben van hoe u immunostaining uitvoert op een gedissecteerd zebravisheart, en in het bijzonder hoe u het hart uit de zebravis dissecteert en hoe u het hart hanteert tijdens het proces van immunostaining.

immunostaining-of-dissected-zebrafish-embryonic-heart

Research

JoVE Journal

Biology

Biologie

Een duidelijke, gestandaardiseerde methode voor dissectie en isolatie van de zebravis hart op meerdere ontwikkelingsstadia worden beschreven. Annotatie en kwantificatie technieken worden ook besproken.

Hart Dissection in larvale, jeugdige en volwassen zebravis, Danio rerio</em

De zebravis is een waardevol model om de mechanismen van het hart regeneratie studeren in gewervelde dieren. Hier presenteren we een protocol voor inductie van een hartinfarct bij volwassen zebravissen met cryoinjury. Deze methode resulteert in een massale celdood binnen 20% van de ventriculaire wand, vergelijkbaar met dat in zoogdiercellen infarcten.

Inductie van myocardinfarct bij Adult Zebravissen Met behulp van Cryoinjury

Deze video beschrijft een techniek om het hart te isoleren van een zebravis in meerdere ontwikkelingsstadia om hartontwikkeling, rijping en veroudering te bestuderen.

Hartdissectie: een methode om zebravis hartontwikkeling te observeren

Cardiale genexpressie profielen te analyseren tijdens zebravis ontwikkeling van het hart, heeft totaal RNA worden geëxtraheerd uit geïsoleerde harten. Hier presenteren we een protocol voor het verzamelen van functionele / kloppende harten door snelle handmatige dissectie van de zebravis embryo's tot cardiale-specifieke mRNA te verkrijgen.

Grootschalige de zebravis embryonale Hart Dissection voor Transcriptionele Analyse

Het gebruik van zebravissen voor cardiovasculair onderzoek breidt zich uit naar onderzoek naar volwassen harten. Voor deze toepassingen is snelle en eenvoudige isolatie van hartweefsels essentieel om postmortale veranderingen te voorkomen en om een voldoende aantal monsters te verkrijgen. Hier beschrijven we een snelle en reproduceerbare methode voor het dissecteren van harten van volwassen zebravissen.

Herstel van de Adult zebravis Harten voor High-throughput Toepassingen

Mutaties die leiden tot aangeboren hartafwijkingen profiteren van in vivo onderzoek van de hartstructuur tijdens de ontwikkeling, maar hoogwaardige structurele studies in het embryonale muishart zijn technisch uitdagend. Hier presenteren we een robuuste immunofluorescentie- en beeldanalysemethode om cardiomyocyt-specifieke structuren in het zich ontwikkelende muishart te beoordelen.

Analyse van Cardiomyocyte Development behulp Immuunfluorescentie in Embryonale Muis Hart

Dit protocol toont sequentiële immunofluorescentie en immunohistochemie op cryosecties van in het beginstadium zebravis-embryo's die precieze colokalisatie analyses in specifieke celpopulaties mogelijk maken.

Sequentiële immunofluorescentie en immunohistochemie op Gecryode zebravis-embryo's

Hier presenteren we een protocol voor fluorescerende antilichaamgemedieerde detectie van eiwitten in hele preparaten van zebravissen embryo's en larven.

Hele mount immunohistochemie in zebravissen embryo's en larven

Dit protocol maakt gebruik van een immunofluorescentietest om PM2,5-geïnduceerdeDNA-schade in de ontlede harten van zebravisembryo's te detecteren.

Immunofluorescentie gebruiken om PM2.5-geïnduceerdeDNA-schade in zebravisembryoharten te detecteren

We beschrijven geoptimaliseerde hulpmiddelen om het hart van de zebravis in vivo te bestuderen met fluorescentiemicroscopie van lichtplaten. In het bijzonder stellen we heldere cardiale transgene lijnen voor en presenteren we nieuwe zachte inbeddings- en immobilisatietechnieken die ontwikkelings- en hartafwijkingen voorkomen. Een mogelijke data-acquisitie- en analysepijplijn aangepast aan cardiale beeldvorming wordt ook verstrekt.

Light Sheet Microscopie van snelle hartdynamica in zebravisembryo's

Deze studie stelt een op gevoelige immunofluorescentie gebaseerde beeldvormingsmethode vast om globale DNA-methylering in individuele zebravisembryonale harten te kwantificeren. Deze aanpak overwint de uitdaging van beperkt weefselmateriaal en omzeilt de noodzaak van bisulfietconversie.

Detectie van wereldwijde DNA-methylering in het hart van zebravislarven

Leer een snelle methode voor immunokleuring van ontleed zebravis embryonaal hart met verbeterde antilichaampenetratie. Deze techniek biedt hogeresolutiebeelden en verkort de verwerkingstijd aanzienlijk voor ontwikkelingsbiologisch onderzoek.

Immunokleuring van ontleed zebravis embryonale hart

Meer video's verkennen