Name: Oogsten Murine alveolaire macrofagen en evalueren van cellulaire activatie geïnduceerd door polyanhydride Nanodeeltjes (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-06-08T12:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 26 s
Description: Leer alveolaire macrofagen oogsten en activering evalueren met polyanhydride nanodeeltjes bij muismodellen. Deze methode helpt onderzoekers immunologische responsen bestuderen.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

De auteurs willen graag de US Army Medical Research en Materieel Command (Grant Numeri W81XWH-09-1-0386 en W81XWH-10-1-0806) bedanken voor financiële steun en Dr Shawn Rigby van de Iowa State University flowcytometrie faciliteit voor zijn deskundige technische bijstand.

1. Oogsten alveolaire macrofagen (AMɸ) van de muis met behulp van Lung Lavage <ol><li> Draag geschikte persoonlijke beschermingsmiddelen (PBM), zoals een laboratoriumjas, wegwerphandschoenen, en een goede oogbescherming. </li><li> Bereid volledige AMɸ (cAMɸ) medium voor de aanvang van de oogst. Voeg 2,5 ml penicilline / streptomycine (pen / strep) oplossing, 250 ul van β-mercaptoethanol (2-mercaptoethanol) en 25 ml hitte geïnactiveerd foetaal runderserum (FBS) tot 222,25 ml Dulbelcco&#39;s Gemodificeerd Eagle Medium (DMEM). Filter-steriliseren cAMɸ medium met behulp van een 0,2 micrometer poriegrootte fles bovenste filter onder vacuüm. </li><li> Euthanaseren van een gezonde muis door CO 2 stikken in een euthanization kamer. Hoewel C57BL / 6 muis (6-8 weken oud) werd gebruikt voor dit project kan deze long lavage techniek worden uitgevoerd op een stam van de muis. Met behulp van een cilinder met samengeperst gas-, gas-stroom in de kamer voor te laten gedurende 1 minuut aan het plaatsen van de muis in de lamber om te verzekeren dat de kamer volledig is opgeladen met CO 2. Plaats de muis in de kamer voor ten minste een minuut om de muis te euthanaseren. Bovendien exsanguinate elke muis via hartpunctie als fysische methode voor muizen dood bevestigen beschreven in 1.4. </li><li> Leg de muis op zijn rug (dorsale zijde), spray met 70% ethanol, zoekt u het borstbeen en, in een hoek van 30 graden uit de buik, een 23 gauge naald (aangesloten op een 1 ml spuit) plaats ongeveer 50 mm in de borstholte . Met de juiste plaatsing van de naald moet het mogelijk zijn tussen 0,4 en 1 ml bloed, afhankelijk van de grootte van de muis verzamelen. Onderzoek het dier voor de beëindiging van de vitale functies. </li><li> Plaats muis op laboratoriumtafel zodat ligt op het achterlijf (buikzijde). Spray muis met 70% ethanol om de werkomgeving te steriliseren. Knijp de huid ongeveer halverwege de rug van de muis. Met behulp van dissectie schaar die zijn gesteriliseerd met 70% ethanol, een kleine incisie door de huid. &lt;/ Li&gt; <li> Pak de huid aan beide zijden van de insnijding en trek de huid in tegengestelde richtingen langs de craneo caudale as van de muis. Wanneer dit juist gebeurt, zal de huid worden verwijderd uit de onderliggende karkas. </li><li> De hals van de muis moet nu blootgesteld spieren en klieren. Knip voorzichtig dat weefsel en trek hem naar het voorste deel van de muis met behulp van een tang, waardoor het blootstellen van het strottenhoofd, de luchtpijp en de slokdarm van de muis. Vermijd het snijden van de halsader of halsslagader. </li><li> De luchtpijp is nu zichtbaar en kan worden gezien als het weefsel met kraakbenige ringen er omheen. Fijn houdt de luchtpijp met een tang en til en scheiden de trachea van de slokdarm, welke aan de rugzijde. </li><li> Maak een kleine incisie anterior naar de plaats waar men houdt van de luchtpijp, maar achterste aan het strottenhoofd. De insnijding worden bij ongeveer 45 ° graden. Ook niet helemaal doorsnijden van de luchtpijp, omdat dit te voorkomen terugtrekken inde lichaamsholte. </li><li> Vul een 1 cc injectiespuit voorzien van een Tom Cat katheter met steriele PBS in voorbereiding om de katheter in te brengen in het lumen van de luchtpijp. Houd de luchtpijp met behulp van pincet en met je hand de catheter in de buurt van de tip om de controle te vergroten en steekt hem voorzichtig in de tracheale incisie site. Steek de katheter in de trachea ongeveer 20 mm. Pak de trachea die rond de katheter, vrij anderzijds. </li><li> Met een 1 ml injectiespuit voorzien van de katheter voorzichtig trekken 0,75 ml kamertemperatuur steriele PBS in de longen en Zuig de PBS terug spuit. Herhaal dit proces drie keer, terwijl buiten het masseren van de borst. Haal de spuit uit de katheter en breng de lavage vloeistof in een 15 ml centrifugebuis. Na het vullen van de spuit met 0,75 ml vers PBS en opnieuw aansluiten van de spuit aan de katheter, herhaalt u de stappen 1,9 en 1,10 twee keer voor elke muis. Fluid herstel kan gedeeltelijk, het verkrijgen van minder dan de volume toegediend. Als het verzamelen van cellen van meer dan een muis, zet de 15 ml buis met de geoogste cellen op ijs totdat alle long lavages zijn uitgevoerd. </li></ol> 2. Verwerking van Lung Lavage AMɸ Harvest <ol><li> Centrifugeer longen wasvloeistof 250 x g gedurende 10 min bij 4 ° C. </li><li> Met behulp van steriele techniek, giet bovenstaande vloeistof in een geschikte afvalbak in een bioveiligheid kast. Resuspendeer de celpellet door voorzichtig harken de centrifugebuis aan de bovenkant van een reageerbuis rek. Voeg 1 ml cAMɸ medium aan de cellen kunnen mengen. </li><li> Som de cellen met een Coulter deeltjesteller Z1 door het pipetteren 20 pi cellen in 10 ml Isoton II oplosmiddel in Coulter Counter flacon. Voeg 3 tot 4 druppels van de Zap-oglobin II lytische reagens in flacon, voorzichtig omdraaien 3 tot 4 keer en dan is het monster flacon te laden op de teller naar een cel concentratie te verkrijgen. Zorg ervoor dat de teller te programmeren met een verdunningsfactor van 2 x 10 4 om het schermcelconcentratie het aantal cellen per ml. </li><li> Verdun cellen tot 2,5 x 10 5 per ml met cAMɸ medium. </li><li> Breng 2 ml van 2,5 x 10 5 cellen / ml in elk putje van een 6-wells weefselkweekplaten schotel. </li><li> Om verrijken AMɸ, geïncubeerd kweekschalen in een 37 ° C bevochtigde incubator met 5% CO2 atmosfeer gedurende 6 uur om cellen te houden aan de bodem van de put. Zuig het supernatant om niet hechtende cellen te verstoren. </li><li> Spoel de putjes met steriele PBS (calcium en magnesium vrij) niet-hechtende cellen en resten te verwijderen. Voeg 2 ml cAMɸ medium aan elk putje. </li><li> Incubeer voorafgaande cellen overnacht in een 37 ° C bevochtigde incubator met 5% CO2 atmosfeer toevoeging van stimulerende. Na deze verrijkingsstap ongeveer 87% van de cellen positief voor de macrofaag markers CD11b en F4/80 (figuur 2c). </li></ol> 3. Toevoeging van Polyanhydride Nanodeeltjes en Control Behandelingen <ol><li> Vervaardig nanodeeltjes via polyanhydride anti-solvent nanoencapsulation 15. Hierbij wordt het polymeer opgelost in methyleenchloride (4 ° C bij een concentratie van 25 mg / ml) en neergeslagen in pentaan (-20 ° C in een verhouding 1:200 methyleenchloride: pentaan). </li><li> Weeg polyanhydride nanodeeltjes door middel van gesteriliseerd papier te wegen op een balans die nauwkeurig kan meten microgram bedragen. Voeg deeltjes met een 1,5 mL microcentrifugebuisje. </li><li> Resuspendeer de nanodeeltjes in ijskoude cAMɸ. De berekeningen zijn zodat niet meer dan 0,3 ml medium toegevoegd aan elk putje om de gewenste concentratie van nanodeeltjes te verkrijgen. Houd de geresuspendeerde deeltjes op ijs tot de nanodeeltjes aan de kweek toegevoegd zijn. </li><li> Voorafgaand aan het toevoegen van de nanodeeltjes aan de AMɸ culturen, ultrasone trillingen deeltjes met behulp van een bankje top ultrasoonapparaat met een microtip. Steriliseer microtip door te besproeien met 70% ethanol en wiping met een steriele Kimwipe voor sonicatie. Ultrasone trillingen bij 10-20 joules 30 tot 45 s terwijl de buis op ijs. Macroscopisch Let op nanodeeltjes schorsing. Indien deeltjes onvoldoende verspreid, zodat de suspensie op ijs gezet gedurende 1 tot 2 minuten dat de nanodeeltjes onder de glasovergangstemperatuur van het polymeer voordat sonicatie weer 30 tot 45 sec. De bedoeling van deze sonificatie stap voldoende dispergeren de nanodeeltjes als 50:50 CPTEG: CPH nanodeeltjes vaak totale bij blootstelling aan een waterig milieu. Echter, sommige kleine aggregaten van nanodeeltjes nog steeds in de suspensie. </li><li> Nanodeeltjes suspensie (voldoende verspreid) moet worden bewaard op ijs en worden onmiddellijk wordt gebruikt voor vroegtijdige oppervlakte-erosie of aggregatie te voorkomen. </li><li> Verwijder de cultuur gerechten met de AMɸ van de incubator en plaats in de bioveiligheid kast. Tilt plaat op ongeveer een hoek van 45 graden en de pipet uit de hoogte van medium die worden toegevoegd aan de suspensie nanodeeltjes (mag niet hoger dan 0,3 ml). Niet storen de hechtende cellen bij het verwijderen van het medium. </li><li> Vortex de polyanhydride nanodeeltjes schorsing kort voorafgaand aan toe te voegen aan de juiste bronnen. Pipetteer de hoeveelheid nanodeeltjes suspensie (niet meer dan 0,3 ml) in de specifieke bron (s), maar niet pipetteer op en neer om te mengen. Deze actie kan AMɸ los van de aanhanger uit de put. De deeltjes op de bodem van de put en contact cellen. Voor studies beschreven in dit rapport, de eindconcentratie van nanodeeltjes samen gekweekt met AMɸ was 125 pg / ml. Ga verder met de volgende putten en gewenste behandelingsgroepen. Inclusief de positieve en negatieve controle groepen, zoals als medium alleen en 200 ng / ml lipopolysaccharide (LPS) de aangewezen bronnen. </li><li> Breng de kweekschalen de 37 ° C bevochtigde incubator met 5% CO2 atmosfeer gedurende 48 uur. Kinetische studies in onze laboratory hebben aangetoond dat 48 uur om de optimale cultuur periode voor het evalueren van zowel celoppervlak marker expressie en cytokine secretie als het mogelijk maakt voldoende tijd voor de transcriptie en eiwitsynthese te komen zijn. Hoewel de hogere niveaus van cytokines ontstaan ​​bij een langere cultuur periode (dat wil zeggen, 72 uur), kan de evaluatie van het celoppervlak marker uitdrukking op dit tijdstip worden verward door de bijdrage van de verhoogde niveaus van cytokinen. De veranderingen in de oppervlakte marker expressie vastgesteld, kunnen niet direct toe te schrijven aan stimulatie met de nanodeeltjes zelf. </li></ol> 4. Het evalueren van AMɸ Activering met behulp van flowcytometrie <ol><li> Bereid fluorescentie-geactiveerde celsortering (FACS) (0,1% natriumazide en 0,1% runderserumalbumine (BSA)) in 0,1 M fosfaatgebufferde zoutoplossing (pH 7,4) voor het oogsten de geïllustreerde macrofagen die zijn samen gekweekt met nanodeeltjes or stimulerende middelen. </li><li> Bereid te werken oplossingen van de blokkerende buffer en de monoklonale antilichamen. Om het blok buffer bereiden verdunnen rat IgG (Sigma) en anti-CD16/32 (eBioscience) tot 1 mg / ml en 10 pg / ml, in FACS-buffer. Verdun oppervlak merker-antilichaam paneel in FACS-buffer hetzij de fabrikant aanbevolen concentratie of de gebruiker geoptimaliseerde concentratie. Voor de resultaten die in dit werk, het oppervlak marker panel bestaat uit antilichamen tegen MHC II, CD86, CD40 en CIRE (CD209). Anti-muis antilichamen tegen de macrofaag markers F4/80 en CD11b zijn ook opgenomen in het paneel aan de macrofaag fenotype positief te identificeren tijdens de data-analyse. Voorzichtigheid is geboden bij het selecteren van antilichamen tegen MHC II moleculen, zoals inteelt muizenstammen verschillen vaak in hun MHC II haplotypes. De geselecteerde antilichamen moet reageren met de specifieke MHC allo-antigenen die door uw muis stam van belang. </li><li> Na 48 uur incubatie met nanodeeltjes en / ofstimulerende middelen, plaats celkweek gerechten op ijs gedurende 20 minuten. Om de aanhanger macrofagen van de platen te verwijderen, voorzichtig schrapen putten met een 24 cm cel schraper. </li><li> Een 5 ml serologische pipet Zuig de cellen en medium op en neer vijfmaal een celsuspensie gegenereerd. Pipetteer de inhoud van afzonderlijke putjes in afzonderlijke 5 ml polystyreen buizen zodat geen mengen cellen verschillende experimentele behandeling. </li><li> Voeg 2 ml FACS-buffer aan elke buis. </li><li> Centrifugebuis cellen bij 250 x g bij 4 ° C gedurende 10 minuten. </li><li> Giet supernatant voorzichtig Resuspendeer celpellet in resterende vloeistof door harken de buizen aan de bovenkant van een reageerbuis rek. </li><li> Om niet-specifieke binding van monoklonale antilichamen voorkomen, wordt 10 uL blokkeringsbuffer (bereid 4.2) aan elke buis van cellen. Vortex buizen en op ijs incuberen gedurende 30 minuten. </li><li> Voeg het juiste volume van de verdunde monoklonale antilichamen aan elke buis en incubaten in het donker op ijs gedurende 15 minuten. Buizen die monsters bevatten te analyseren dienen de bij de combinatie van antilichamen van de polycromatic panel (vorige optimalisatie van de combinatie van antilichamen moeten uitgevoerd door individuele laboratoria worden). Extra controle groepen moeten worden opgenomen om juist ingesteld de acquisitie parameters op de flowcytometer, met inbegrip van een buis van cellen die niet werden bestempeld, en compensatie buizen die overeenkomen met gelabelde cellen met behulp van elke afzonderlijke kleur apart. Voor een juiste keuze de poorten voor flowcytometrische analyse, de Fluorescentie Minus One (FMO) controles moeten worden genomen tijdens de overname. FMO controles cellen gelabeld met het fluorochroom-geconjugeerde antilichamen die het paneel op een na die wordt vervangen door de respectieve isotypecontrole. Positieve en negatieve populaties (dat wil zeggen, afzonderlijke fracties van cellen behandeld met een positieve controle stimulerend middel en medium alleen) moeten ook worden opgenomen in de FMO en de compensatieregeling, buizen. </li><li&gt; 2 ml FACS-buffer aan elke buis, vortex en centrifugeer bij 250 x g bij 4 ° C gedurende 10 minuten. </li><li> Giet supernatant en resuspendeer celpellet in resterende vloeistof door harken de buizen aan de bovenkant van een reageerbuis rek. </li><li> Als het antilichaam paneel bestaat uit een antilichaam niet direct geconjugeerd aan een fluorochroom, maar maakt geconjugeerd aan biotine wordt een fluorochroom-geconjugeerde streptavidine nodig om het oppervlak marker visualiseren. In deze stap, voeg toe een passende volume van de verdunde fluorochroom-geconjugeerde streptavidine en incubeer in het donker gedurende 15 minuten op ijs. Zoals in 4.2 wordt de streptavidine worden verdund tot een concentratie aanbevolen door de fabrikant of een geoptimaliseerd door de gebruiker. Deze stap is alleen nodig voor panelen met gebiotinyleerde primaire antilichamen. </li><li> Voer een wasstap beschreven in 4.10. </li><li> Verdun een zodanige hoeveelheid van de BD stabiliseren fixatief 01:03 in gedeïoniseerd water. Voeg 100 ul van verdunde fixatief aan elke buis, terwijl voorzichtig vortexing voorkomen samenklonteren van cellen. Gelabelde cellen gefixeerd en stabiel kan worden in het donker bewaard bij 4 ° C gedurende ongeveer een week voor de verkrijging van een flow cytometer. </li></ol> 5. Representatieve gegevens Nanodeeltjes vervaardigd in stap 3.1 een gemiddelde diameter van 163 ± 24 nm en een morfologie overeen met die verkregen in eerdere studies 5,16. Nanodeeltjes in oplossing vóór en na sonificatie zijn weergegeven in figuur 1 de noodzaak van sonificatie tonen voldoende dispersie van de deeltjes te waarborgen. Flow cytometrische analyse van geoogst AMɸs verkregen via long lavage is weergegeven in figuur 2. Labelen cellen met een combinatie van anti-muis CD11b en anti-muis antilichamen F4/80 alsmede de overeenkomstige FMO mogelijk maakt voor het vaststellen achtergrond etikettering identificeren AMɸs en gating voor verdere analyse. De behandeling van alveolaire macrofagen met polyanhydridenanodeeltjes verbetert activering zoals aangegeven door de hogere gemiddelde fluorescentie-intensiteit van MHC II, CD40, CD86, en CIRE (figuur 3). <img alt="Figuur 1" src="/files/ftp_upload/3883/3883fig1.jpg" /> . Figuur 1 50:50 CPTEG: CPH nanodeeltjes voor (A) en na (B) 30 s van sonificatie. <img alt="Figuur 2" src="/files/ftp_upload/3883/3883fig2.jpg" /> Figuur 2. Flowcytometrische analyse van geoogst alveolaire voorzien (A) Alexa Fluor 700 anti-CD11b en PE-Cy7 FMO Control, (B) Alexa Fluor 700 FMO controle en PE-Cy7 anti-F4/80 en (C ) Alexa Fluor 700 anti-CD11b en PE-Cy7 anti-F4/80. Het aantal in de rechter bovenhoek geeft het percentage dubbele-positieve cellen. <img alt="Figuur 3" src="/files/ftp_upload/3883/3883fig3.jpg" /> Figuur 3. Histogrammen tonen een verhoging van de fluorescentie intenteit voor oppervlakte-expressie van MHC II (A), CD40 (B), CD86 (C) en CIRE (D) na co-cultuur alveolaire met 50:50 CPTEG: CPH polyanhydride nanodeeltjes gedurende 48 uur. Histogrammen tonen resultaten voor AMɸ gelabeld als FMO controles ( <img alt="Grafiek Lijn 1" src="/files/ftp_upload/3883/3883line1.jpg" /> ), Onbehandelde AMɸ voorzien antilichamen tegen celoppervlaktemerkers ( <img alt="Grafiek Lijn 3" src="/files/ftp_upload/3883/3883line3.jpg" /> ) En AMɸ gekweekt met nanodeeltjes en voorzien van antilichamen tegen alle celoppervlaktemerkers ( <img alt="Grafiek Lijn 2" src="/files/ftp_upload/3883/3883line2.jpg" /> ).

<ol><li>Mallapragada, S. K., Narasimhan, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunomodulatory+biomaterials%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+J.+Pharm%22%5BJournal%5D)">Immunomodulatory biomaterials.</a> Int. J. Pharm. 364, 265-271 (2008).</li>
<li>Torres, M. P., Vogel, B. M., Narasimhan, B., Mallapragada, S. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synthesis+and+characterization+of+novel+polyanhydrides+with+tailored+erosion+mechanisms%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biomed.+Mater.+Res.+A%22%5BJournal%5D)">Synthesis and characterization of novel polyanhydrides with tailored erosion mechanisms.</a> J. Biomed. Mater. Res. A. 76, 102-110 (2006).</li>
<li>Lopac, S. K., Torres, M. P., Wilson-Welder, J. H., Wannemuehler, M. J., Narasimhan, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+polymer+chemistry+and+fabrication+method+on+protein+release+and+stability+from+polyanhydride+microspheres%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomedical+Materials+Research+Part+B%3A+Applied+Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Effect of polymer chemistry and fabrication method on protein release and stability from polyanhydride microspheres.</a> Journal of Biomedical Materials Research Part B: Applied Biomaterials. 91, 938-947 (2009).</li>
<li>Torres, M. P., Determan, A. S., Anderson, G. L., Mallapragada, S. K., Narasimhan, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Amphiphilic+polyanhydrides+for+protein+stabilization+and+release%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Amphiphilic polyanhydrides for protein stabilization and release.</a> Biomaterials. 28, 108-116 (2007).</li>
<li>Ulery, B. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Design+of+a+Protective+Single-Dose+Intranasal+Nanoparticle-Based+Vaccine+Platform+for+Respiratory+Infectious+Diseases%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Design of a Protective Single-Dose Intranasal Nanoparticle-Based Vaccine Platform for Respiratory Infectious Diseases.</a> PLoS ONE. 6, e17642(2011).</li>
<li>Petersen, L. K., Xue, L., Wannemuehler, M. J., Rajan, K., Narasimhan, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+simultaneous+effect+of+polymer+chemistry+and+device+geometry+on+the+in+vitro+activation+of+murine+dendritic+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">The simultaneous effect of polymer chemistry and device geometry on the in vitro activation of murine dendritic cells.</a> Biomaterials. 30, 5131-5142 (2009).</li>
<li>Petersen, L. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Activation+of+innate+immune+responses+in+a+pathogen-mimicking+manner+by+amphiphilic+polyanhydride+nanoparticle+adjuvants%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Activation of innate immune responses in a pathogen-mimicking manner by amphiphilic polyanhydride nanoparticle adjuvants.</a> Biomaterials. 32, 6815-6822 (2011).</li>
<li>Torres, M. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polyanhydride+microparticles+enhance+dendritic+cell+antigen+presentation+and+activation%5BTitle%5D)+AND+%22Acta.+Biomater%22%5BJournal%5D)">Polyanhydride microparticles enhance dendritic cell antigen presentation and activation.</a> Acta. Biomater. 7, 2857-2864 (2011).</li>
<li>Kirby, A. C., Coles, M. C., Kaye, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Alveolar+macrophages+transport+pathogens+to+lung+draining+lymph+nodes%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Alveolar macrophages transport pathogens to lung draining lymph nodes.</a> J. Immunol. 183, 1983-1989 (2009).</li>
<li>Barletta, K. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Leukocyte+compartments+in+the+mouse+lung%3A+Distinguishing+between+marginated%2C+interstitial%2C+and+alveolar+cells+in+response+to+injury%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol.+Methods%22%5BJournal%5D)">Leukocyte compartments in the mouse lung: Distinguishing between marginated, interstitial, and alveolar cells in response to injury.</a> J. Immunol. Methods. , (2011).</li>
<li>Rubins, J. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Alveolar+macrophages%3A+wielding+the+double-edged+sword+of+inflammation%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Respir.+Crit.+Care+Med%22%5BJournal%5D)">Alveolar macrophages: wielding the double-edged sword of inflammation.</a> Am. J. Respir. Crit. Care Med. 167, 103-104 (2003).</li>
<li>Sun, K., Gan, Y., Metzger, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+Murine+Genetic+Predisposition+to+Pneumococcal+Infection+Reveals+a+Critical+Role+of+Alveolar+Macrophages+in+Maintaining+the+Sterility+of+the+Lower+Respiratory+Tract%5BTitle%5D)+AND+%22Infect.+Immun%22%5BJournal%5D)">Analysis of Murine Genetic Predisposition to Pneumococcal Infection Reveals a Critical Role of Alveolar Macrophages in Maintaining the Sterility of the Lower Respiratory Tract.</a> Infect. Immun. 79, 1842-1847 (2011).</li>
<li>Morimoto, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Alveolar+Macrophages+that+Phagocytose+Apoptotic+Neutrophils+Produce+Hepatocyte+Growth+Factor+during+Bacterial+Pneumonia+in+Mice%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Respir.+Cell+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Alveolar Macrophages that Phagocytose Apoptotic Neutrophils Produce Hepatocyte Growth Factor during Bacterial Pneumonia in Mice.</a> Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 24, 608-615 (2001).</li>
<li>Gordon, S., Taylor, P. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Monocyte+and+macrophage+heterogeneity%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Monocyte and macrophage heterogeneity.</a> Nat. Rev. Immunol. 5, 953-964 (2005).</li>
<li>Ulery, B. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polymer+chemistry+influences+monocytic+uptake+of+polyanhydride+nanospheres%5BTitle%5D)+AND+%22Pharm.+Res%22%5BJournal%5D)">Polymer chemistry influences monocytic uptake of polyanhydride nanospheres.</a> Pharm. Res. 26, 683-690 (2009).</li>
<li>Petersen, L. K., Sackett, C. K., Narasimhan, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-throughput+analysis+of+protein+stability+in+polyanhydride+nanoparticles%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Biomater%22%5BJournal%5D)">High-throughput analysis of protein stability in polyanhydride nanoparticles.</a> Acta Biomater. 6, 3873-3881 (2010).</li>
<li>Irvin, C. G., Bates, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measuring+the+lung+function+in+the+mouse%3A+the+challenge+of+size%5BTitle%5D)+AND+%22Respir.+Res%22%5BJournal%5D)">Measuring the lung function in the mouse: the challenge of size.</a> Respir. Res. 4, 4(2003).</li>
</ol>

Geen belangenconflicten verklaard.

Polyanhydride nanodeeltjes vaccin platforms hebben laten zien werkzaamheid indien intranasaal toegediend in een enkele dosis regimes 5. Het meten van de activering van de bewoner fagocytaire celpopulaties in de longen geïnduceerd door het vaccin afgifte, maakt evaluatie van de potentiële mogelijkheid om uiteindelijk te bevorderen adaptieve immuunrespons. In het bijzonder, het oogsten van alveolaire macrofagen van de long lavage vloeistof en ze te behandelen met verschillende formu...

<table border="1"><tbody><tr><td> Naam van het serum </td><td> Vennootschap </td><td> Catalogusnummer </td><td> Reacties </td></tr><tr><td> CAM Media </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> DMEM </td><td> Cellgro </td><td> 15 tot 013-CV </td><td></td></tr><tr><td> 50 mM 2-mercaptoethanol </td><td> Sigma </td><td> M3148-25ML </td><td></td></tr><tr><td> Penicilline / streptomycine 10.000 pg / ml oplossing </td><td> Cellgro </td><td> 30-002-CI </td><td></td></tr><tr><td> Foetaal runderserum </td><td> Atlanta Biologicals </td><td> S11150 </td><td></td></tr><tr><td> FACS-buffer </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Natriumchloride </td><td> Fisher Scientific </td><td> S671-500 </td><td></td></tr><tr><td> Natriumfosfaat </td><td> Fisher Scientific </td><td> MK7868500 </td><td></td></tr><tr><td> Kaliumchloride </td><td> Fisher Scientific </td><td> P217500 </td><td></td></tr><tr><td> Kaliumfosfaat </td><td> Fisher Scientific </td><td> P288-200 </td><td></td></tr><tr><td> BSA (Bovine Serum Albumine) </td><td> Sigma </td><td> A7888 </td><td></td></tr><tr><td> Natriumazide </td><td> Sigma </td><td> S2002 </td><td></td></tr><tr><td> Antilichamen </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Rat IgG </td><td> Sigma </td><td> I4341 </td><td></td></tr><tr><td> Anti-mevrouw CD16/32 </td><td> eBioscience </td><td> 16-0161 </td><td></td></tr><tr><td> Anti-mevrouw MHC II haplotype IA / IE, clone M5/114.15.2, geconjugeerd met fluoresceïne-isothiocyanaat (FITC) </td><td> EBIOScience </td><td> 11-5321 </td><td></td></tr><tr><td> Anti-Muis CD86, kloon GL-1, geconjugeerd aan allophycocyanin (APC)-Cy7 </td><td> Biolegend </td><td> 105030 </td><td></td></tr><tr><td> Anti-muis CD40, kloon 1C10, geconjugeerd aan APC </td><td> eBioscience </td><td> 17-0401 </td><td></td></tr><tr><td> Anti-muis CD209, een kloon 5H10, geconjugeerd aan Biotine </td><td> eBioscience </td><td> 13-2091 </td><td></td></tr><tr><td> Anti-muis CD11b, kloon M1/70, geconjugeerd met Alexa Fluor 700 </td><td> eBioscience </td><td> 56-0112 </td><td></td></tr><tr><td> Anti-muis F4/80, kloon BM8, geconjugeerd aan phycoerythrin (PE)-Cy7 </td><td> eBioscience </td><td> 25-4801 </td><td></td></tr><tr><td> PE-Texas rode geconjugeerd streptavidine </td><td> BD Biosciences </td><td> 551487 </td><td></td></tr><tr><td> Andere benodigdheden en reagentia </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Ethanol </td><td> Fisher Scientific </td><td> A405-20 </td><td> Gebruikt als 70% (v / v) </td></tr><tr><td> Gecomprimeerde CO 2 </td><td> Linweld </td><td> 16000060 </td><td></td></tr><tr><td> 1 ml spuit </td><td> BD Biosciences </td><td> 309659 </td><td></td></tr><tr><td> Sovereign 3 ½ &quot;Fr Tom Catcatheter </td><td> Kendall </td><td> 703021 </td><td></td></tr><tr><td> Bioveiligheid kabinet </td><td> NUAIRE </td><td> Series 22 </td><td></td></tr><tr><td> Dissection Schaar </td><td> Visser </td><td> 138082 </td><td></td></tr><tr><td> Pincet </td><td> Roboz </td><td> RS-8254 </td><td></td></tr><tr><td> PBS, 1X zonder calcium en magnesium </td><td> Cellgro </td><td> 21 tot 040-CM </td><td></td></tr><tr><td> 15 ml Centrifuge buizen met schroefdop </td><td> VWR International </td><td> 21008-216 </td><td></td></tr><tr><td> Zes-en Tissue Culture behandeld Platen </td><td> Costar </td><td> 3516 </td><td></td></tr><tr><td> Plastic buis Rekken </td><td> Nalgene </td><td> 5970 </td><td></td></tr><tr><td> Cell Scraper 24 cm </td><td> TPP </td><td> 99002 </td><td></td></tr><tr><td> 5 ml Polystyreen Round-benedenbuis </td><td> Valk </td><td> 352008 </td><td></td></tr><tr><td> Pipet-aid XL </td><td> Drummond </td><td> 4-000-105 </td><td></td></tr><tr><td> 10 5 en 2 ml pipetten </td><td> Visser </td><td> 13-675 </td><td></td></tr><tr><td> 200 en 10 pi micropipettors </td><td> Gilson Pipetman </td><td> F123601 </td><td></td></tr><tr><td> 200 en 10 pi pipettips </td><td> Visser </td><td> 02-707 </td><td></td></tr><tr><td> BD stabiliserenFixatief </td><td> BD Biosciences </td><td> 338036 </td><td></td></tr><tr><td> Isoton II Diluent </td><td> Beckman Coulter- </td><td> 8546719 </td><td></td></tr><tr><td> Zap-oglobin II Lytische Reagens </td><td> Beckman Coulter- </td><td> 7546138 </td><td></td></tr><tr><td> Coulter Counter Polystyreen Vials </td><td> Beckman Coulter- </td><td> 14310-684 </td><td></td></tr><tr><td> Reageerbuizen </td><td> BD Biosciences </td><td> 352008 </td><td></td></tr><tr><td> Uitrusting </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Gekoelde centrifuge </td><td> LABNET </td><td> 50075040 </td><td></td></tr><tr><td> Bevochtigde incubator CO 2 </td><td> Nuaire </td><td> Model Autoflow 8500 </td><td></td></tr><tr><td> FACSCanto Flow Cytometer </td><td> BD Biosciences </td><td> 338960 </td><td></td></tr><tr><td> Coulter Particle Counter Z1 </td><td> Beckman Coulter- </td><td> WS-Z1DUALPC </td><td></td></tr><tr><td> Ultrasoonapparaat Liquid Processing Equipment met microtip </td><td> Misonix </td><td> Model No S-4000 </td><td></td></tr></tbody></table>

oogsten murine alveolaire macrofagen en evalueren van cellulaire activatie geïnduceerd door polyanhydride nanodeeltjes

Harvesting Murine Alveolar Macrophages and Evaluating Cellular Activation Induced by Polyanhydride Nanoparticles

Biologisch afbreekbare nanodeeltjes naar voren zijn gekomen als een veelzijdig platform voor het ontwerp en implementatie van nieuwe intranasale vaccins tegen respiratoire infectieziekten. Specifiek, polyanhydride nanodeeltjes bestaande uit alifatische sebacinezuur (SA) de aromatische 1,6-bis (p-carboxyphenoxy) hexaan (CPH) of de amfifilische 1,8-bis (p-carboxyphenoxy) -3,6-dioxaoctane (CPTEG) weer te geven unieke bulk-en oppervlakte-erosie kinetiek 1,2 en kan worden benut om langzaam functionele biomoleculen (bijvoorbeeld eiwit antigenen, immunoglobulinen, etc.) laat in vivo 3,4,5. Deze nanodeeltjes bezitten ook intrinsieke adjuvant activiteit, waardoor ze een uitstekende keuze voor een vaccin platform voor de levering 6,7,8. Om de mechanismen die de activering van aangeboren immuniteit na intranasale mucosale vaccinatie toe te lichten, moet men de evaluatie van de moleculaire en cellulaire reacties van het antigeen phekel cellen (APC&#39;s) die verantwoordelijk is voor het initiëren van immuunreacties. Dendritische cellen zijn de voornaamste APC&#39;s gevonden in het uitvoeren van de luchtwegen, terwijl de alveolaire macrofagen (AMɸ) overheersen in het longparenchym 9,10,11. AMɸ zijn zeer efficiënt in het opruimen van de longen van microbiële ziekteverwekkers en celresten 12,13. Bovendien is dit type cel speelt een belangrijke rol in het vervoer van microbiële antigenen aan de drainerende lymfeklieren, dat is een belangrijke eerste stap in de inleiding van een adaptieve immuunrespons 9. AMɸ ook uitdrukking verhoogde niveaus van aangeboren patroonherkenning en scavenger receptoren, scheiden pro-inflammatoire mediatoren, en eerste naïeve T-cellen 12,14. Een relatief zuivere populatie van AMɸ (bijv. meer dan 80%) kan eenvoudig worden verkregen via de longen lavage voor studie in het laboratorium. Resident AMɸ geoogst van immuuncompetente dieren zorgen voor een vertegenwoordiger fenotype van de macrofagen die encounter de deeltjes gebaseerd vaccin in vivo. Hierin beschrijven we de protocollen die worden gebruikt om te oogsten en cultuur AMɸ van muizen en onderzoekt de activering fenotype van de macrofagen na behandeling met polyanhydride nanodeeltjes in vitro.

Hierin beschrijven we protocollen voor het oogsten van muizen-alveolaire macrofagen, die aangeboren immuunsysteem cellen woonachtig zijn in de longen, en de behandeling van hun activering in reactie op de co-cultuur met polyanhydride nanodeeltjes.

Oogsten Murine alveolaire macrofagen en evalueren van cellulaire activatie geïnduceerd door polyanhydride Nanodeeltjes

Biologisch afbreekbare nanodeeltjes zijn ontstaan als een veelzijdig platform voor het ontwerp en de implementatie van nieuwe intranasale vaccins tegen respiratoire...

Het algemene doel van deze procedure is om het vermogen van polyanhydride nanodeeltjes te evalueren om gezuiverde mirroring alveolaire macrofagen te activeren. Eerst wordt de trachea van de muis chirurgisch blootgesteld en wordt er een lavage uitgevoerd om cellen uit de luchtwegen te oogsten. Alveolaire macrofagen worden vervolgens gecentrifugeerd om ze te isoleren en overnacht gekweekt.Vervolgens wordt een suspensie van polyanhydride nanodeeltjes bereid en toegevoegd aan de alveolaire macrofagen. De macrofagen worden geïncubeerd om activatie na 48 uur mogelijk te maken. De expressie van celoppervlaktemarkers wordt geanalyseerd via flowcytometrie.Analyse van de gegevens maakt het mogelijk formuleringen van Polly Anhydride-nanodeeltjes te identificeren die in staat zijn om alveolaire macrofagen te activeren. Dit kan helpen bij het beantwoorden van vragen op het gebied van biomaterialen en immunologie. In het bijzonder kunnen we biomaterialen identificeren met intrinsieke adjuvante activiteit, aangetoond door het vermogen om antigeenpresenterende cellen te activeren, waaronder alveolaire macrofagen.We kregen voor het eerst het idee om deze methode in ons onderzoek te gebruiken toen we ontdekten dat een polyanhydride nanovaccinplatform tegen respiratoire pathogenen volledige bescherming bood tegen bacteriële pneumonie. In het huidige werk hebben we getracht de specifieke interacties van het vaccinplatform met respiratoire immuuncellen te onderzoeken. Begin deze procedure door een geëuthanaseerde muis op haar rug te plaatsen.Sproei de muis in met 70% ethanol; hoewel hier een C 57 BL six muis van zes tot acht weken oud wordt gebruikt, kan deze techniek bij elke muizenstam worden uitgevoerd. Lokaliseer het borstbeen en breng, onder een hoek van 30 graden ten opzichte van de buik, een 23 gauge naald met een spuit van één milliliter in. Verzamel ongeveer 50 millimeter in de borstholte 0,4 tot één milliliter bloed, over het algemeen uit de vaten.Bij het uitvoeren van deze procedure kan het lastig zijn om een representatief monster te verkrijgen voor de experimenten. Daarom is het essentieel om de handeling zorgvuldig uit te voeren, zoals hier gedemonstreerd. Om de lavage uit te voeren, plaatst u de muis op de buik en bespuit u deze met 70% ethanol.Knijp vervolgens de huid ongeveer halverwege de ruggengraat samen met dissectieschaarknippers die zijn gesteriliseerd met 70% ethanol. Maak een kleine incisie door de huid. Pak de huid aan beide zijden van de incisie vast en trek deze in tegenovergestelde richtingen langs de craniaal-caudale as van de muis.Zodra de spieren en klieren van de nek zijn blootgelegd, wordt het spierweefsel voorzichtig ingesneden. Trek vervolgens met een pincet het weefsel richting de anterior van de muis om het strottenhoofd, de luchtpijp en de slokdarm bloot te leggen.Voorkom dat de vena jugularis of de arteria carotis worden doorgesneden. De trachea is te herkennen aan het weefsel met kraakbenenringen eromheen. Pak de trachea voorzichtig vast met de pincet en til deze zachtjes op om deze te scheiden van de slokdarm, die zich aan de dorsale zijde bevindt.Vul een spuit van 1 cc, voorzien van een tomcat-katheter, met steriele PBS. Maak vervolgens onder een hoek van 45 graden een kleine incisie in de trachea anterieur van de forceps, maar posterieur van de larynx.Voorkom dat de trachea volledig wordt doorgesneden, zodat wordt voorkomen dat deze in de lichaamsholte terugtrekt. Houd de trachea vast met een pincet en voer de katheter voorzichtig ongeveer 20 millimeter in via de incisieplaats van de trachea. Pak vervolgens de trachea rond de katheterbuis vast om de andere hand vrij te maken voor het extern masseren van de borstkas.Gebruik een spuit van één milliliter voorzien van de katheter om voorzichtig 0,75 milliliter steriele PBS op kamertemperatuur in de longen te infuseren. Aspireer vervolgens de PBS voorzichtig terug in de spuit. Herhaal dit proces drie keer.Koppel de spuit los van de katheter en breng de spoelvloeistof over in een centrifugebuis van 15 milliliter. Vul de spuit met 0,75 milliliters verse PBS, sluit de spuit opnieuw aan op de katheter en herhaal de spoeling. Het herstel van de vloeistof kan gedeeltelijk zijn, waardoor er een kleiner volume kan worden verkregen dan het geïnfuseerde volume.Indien cellen van meer dan één muis worden verzameld, wordt de 15 milliliter buis met de geoogste cellen op ijs bewaard totdat alle longlavages zijn voltooid. Om de populatie alveolaire macrofagen in de geoogste cellen te verrijken, wordt de longlavagevloeistof gecentrifugeerd bij 250 ×g gedurende 10 minuten bij vier graden Celsius.Decanteer het supernatant met behulp van steriele techniek in een geschikte afvalcontainer in een biologische veiligheidskast. Resuspendeer de celpellet door de centrifugebuis voorzichtig over de bovenkant van een reageerbuisrek te wrijven. Voeg één milliliter compleet alveolaire macrofaagmedium toe om de cellen te resuspenderen voor het tellen van de cellen.Pipetteer 20 µL cellen in 10 mL isotone two diluent in een telbuisje voor celculturen. Voeg drie tot vier druppels zog globin, twee lytisch reagens toe aan het buisje en keer het voorzichtig drie tot vier keer om. Plaats vervolgens het monsterbuisje in een Colter particle counter Z one teller.Zorg ervoor dat de teller wordt geprogrammeerd met de verdunningsfactor van 2 × 10⁴ om de celconcentratie weer te geven als het aantal cellen per milliliter. Zodra de celconcentratie is bepaald, worden de cellen verdund tot 2,5 × 10⁵ per milliliter met volledig alveolaire macrofaagmedium in een buis van 15 milliliter. Verdeel vervolgens twee milliliter van de oplossing over elke put van een zes-wells weefselkweekschaal.Om de alveolaire macrofagen te verrijken, worden de kweekschalen gedurende zes uur geïncubeerd in een bevochtigde incubator bij 37 °C met een 5% CO2-atmosfeer. Tijdens de incubatie zullen de macrofagen zich hechten aan de bodem van de well; aspireer na de incubatie voorzichtig het supernatant, waarbij u er zorg voor draagt de gehechte cellen niet te verstoren. Spoel vervolgens de wells met steriele, calcium- en magnesiumvrije PBS.Voeg twee milliliters compleet alveolair macrofaagmedium toe aan elke put om niet-adherente cellen en debris te verwijderen. Incubeer de cellen vervolgens gedurende de nacht bij 37 °C. Na deze verrijkingsstap zal ongeveer 87% van de cellen positief zijn voor de macrofaagmarkers CD 11 B en F4/80.Zodra de populatie alveolaire macrofagen is verrijkt, is de volgende stap van de procedure het toevoegen van polyanhydride-nanodeeltjes. Produceer eerst nanodeeltjes via polyanhydride antisolvent-nano-encapsulatie. In dit proces wordt het polymeer opgelost in methyleenchloride en neergeslagen in pentaan. Weeg de juiste hoeveelheid polyanhydride-nanodeeltjes af met steriel weegpapier.Hier worden 125 microgram partikels toegevoegd per milliliter cultuur. Voeg de partikels toe aan een microcentrifugebuis van 1,5 milliliter, resuspendeer de nanodeeltjes in de juiste hoeveelheid ijskoude, complete alveolaire macrofaagmedium en plaats dit op ijs. Vervolgens steriliseert u de microtip van een benchtop sonicator.Sproei het in met 70% ethanol en veeg het af met een steriele kim wipe terwijl de buis op ijs wordt gehouden. Soniceren bij 10 tot 20 joule gedurende 30 tot 45 seconden. Observeer de nanodeeltjessuspensie macroscopisch indien de deeltjes onvoldoende zijn gedispergeerd.Plaats de suspensie één tot twee minuten op ijs om er zeker van te zijn dat de nanodeeltjes onder de glasovergangstemperatuur van het polymeer zijn. Sonicate vervolgens opnieuw gedurende 30 tot 45 seconden. Het doel van de sonicatiestap is om de nanodeeltjes adequaat te dispergeren als de 50 50 CCP tag.CPH-nanodeeltjes neigen tot aggregatie wanneer ze aan een waterige omgeving worden blootgesteld. Desondanks kunnen er nog steeds enkele kleine aggregaten van nanodeeltjes in de suspensie aanwezig zijn. De nanodeeltjessuspensie moet op ijs worden bewaard en onmiddellijk worden gebruikt om voortijdige oppervlakte-erosie of aggregatie te voorkomen.Haal de kweekschalen met de alveolaire macrofagen uit de incubator en plaats ze in de veiligheidskast. Kantel de plaat voorzichtig zodat de adherente cellen niet worden verstoord en pipetteer de hoeveelheid medium af die aan de nanodeeltjessuspensie zal worden toegevoegd. Vortex de polyanhydide-nanodeeltjessuspensie kort en pipetteer vervolgens tot 0,3 milliliters van de nanodeeltjessuspensie in de juiste putjes.Zorg opnieuw dat de adherentiecellen niet worden verstoord. De deeltjes zullen naar de bodem van de well zakken en contact maken met de cellen. Ga op dezelfde wijze te werk met de volgende wells en de gewenste behandelgroepen.Voeg positieve en negatieve controlegroepen toe, zoals alleen medium en 200 nanogram per milliliter Lipopolysaccharide in de aangewezen putjes, en incubeer deze vervolgens gedurende 48 uur bij 37 graden Celsius. Na de incubatie kan de alveolaire activatie worden beoordeeld via flowcytometrie, zoals beschreven in het bijbehorende document.Alveolaire macrofagen werden verkregen uit C 57 BL six muizen en verrijkt zoals beschreven in het video-artikel om de cellulaire activatie te beoordelen. 125 µg/mL 50:50 CPT:CPH polyanhydride nanodeeltjes werden gedurende 48 uur toegevoegd aan vijf keer 10⁵ cellen/mL verrijkte alveolaire macrofagen. De expressie van de alveolaire macrofaagmarkers MHC II, CD 40, CD 86 en SIRPα werd vervolgens beoordeeld via antilichaamkleuring en flowcytometrie, zoals te zien is in dit histogram.Alveolaire macrofagen die waren geïncubeerd met nanodeeltjes, aangegeven door de doorgetrokken blauwe lijn, vertoonden een verhoogde oppervlaksexpressie van MHC II, een molecuul dat vereist is voor de presentatie van antigenen aan CD 4 T-cellen, vergeleken met cellen die niet met nanodeeltjes waren behandeld, zoals verwacht. Lagere kleuringsniveaus werden waargenomen in de fluorescence minus one (FMO)-controles, wat aangeeft dat het waargenomen signaal niet te wijten is aan autofluorescentie. Alveolaire macrofagen geïncubeerd met nanodeeltjes, aangegeven door de doorgetrokken blauwe lijn, vertoonden een verhoogde expressie van CD 40, een co-stimulerend molecuul dat noodzakelijk is voor de juiste activering van T-cellen, vergeleken met onbehandelde cellen.De expressie van een ander T-cel co-stimulerend molecuul, CD 86, was eveneens verhoogd na een behandeling met polyanhydride nanodeeltjes gedurende 48 uur. De expressie van CY, een C-type lectine-receptor die koolhydraatmotieven op het oppervlak van pathogenen bindt, is sterk verhoogd in alveolaire macrofagen na behandeling met polyanhydride nanodeeltjes. Na het bekijken van deze video zou u een goed inzicht hebben in hoe u een longlavage uitvoert met als doel alveolaire macrofagen te oogsten, hoe u deze cellen kweekt en hoe u deze cellen stimuleert om de cellulaire activatie van deze cellen met polyhydro nanodeeltjes te meten of te evalueren.Bij het uitvoeren van deze procedure is het belangrijk om steriele laboratoriumtechnieken toe te passen om contaminatie van de geoogste primaire cellen te voorkomen en om de introductie van verontreinigingen in de behandelingen te vermijden.

harvesting-murine-alveolar-macrophages-evaluating-cellular-activation

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Bio-engineering

Een werkwijze om het vermogen van geïsoleerde muis alveolaire macrofagen om de groei van Aspergillus gefagociteerde sporen bedienen door confocale microscopie evalueren.

Evaluatie anti-schimmel activiteit van geïsoleerde alveolaire macrofagen door confocale microscopie

Beendermergcellen gekweekt met granulocyte macrophage colony stimulerende factor (GM-CSF) genereren een heterogene cultuur die macrofagen en dendritische cellen (DC's) bevat. Deze methode benadrukt het gebruik van MHCII en hyaluronan (HA) binding om macrofagen te onderscheiden van de DC's in de GM-CSF cultuur. Macrofagen in deze cultuur hebben veel overeenkomsten met alveolaire macrofagen.

Generatie en identificatie van GM-CSF Afgeleide alveolaire-achtige macrofagen en dendritische cellen van de muis beenmerg

Hier beschrijven we het model en de aanpak om functies van pulmonaire alveolaire macrofagen in kankermetastase te bestuderen. Om de rol van deze cellen in metastase te demonstreren, werd het syngene (4T1) model van borstkanker gebruikt in combinatie met de depletie van alveolaire macrofagen met clodronat liposomen.

Het bestuderen van de rol van alveolaire macrofagen in de uitzaaiing van borstkanker

De gezondheidsstatus van de long wordt weerspiegeld door het type en het aantal immuuncellen die aanwezig zijn in de bronchiolen van de long. We beschrijven een bronchoalveolaire lavage techniek die de isolatie en studie van niet-adherente cellen en oplosbare factoren uit het onderste luchtwegen van muizen mogelijk maakt.

Bronchoalveolaire lavage van meneuze longen om ontstekingscelinfiltratie te analyseren

Deze mededeling beschrijft methodologieën voor isolatie en cultuur van de alveolaire macrofagen van mens en lymfkliertest modellen voor experimentele doeleinden.

Isolatie en In Vitro cultuur van lymfkliertest en menselijke alveolaire macrofagen

Wij rapporteren hier gemeenschappelijke methoden voor het analyseren van de fagocytische functie van lymfkliertest alveolaire macrofagen en bacteriële klaring van de Long. Deze methoden bestuderen in vitro fagocytose van fluoresceïne isothiocyanaat kralen en in vivo fagocytose van Pseudomonas aeruginosa Green Fluorescent Protein. Ook beschrijven we een methode voor het ontruimen van P. aeruginosa bij muizen.

Alveolaire macrofaag fagocytose en bacteriën mijnen in muizen

We beschrijven een methode voor de verwerking van bronchoalveolaire spoeling vloeistof en matched perifeer bloed van chronisch HIV-geïnfecteerde individuen op antiretrovirale therapie om pulmonale HIV-reservoirs te beoordelen. Deze methoden resulteren in de verwerving van zeer zuivere CD4 T-cellen en alveolaire macrofagen die vervolgens kunnen worden gebruikt voor immunophenotypering en HIV-DNA/RNA-quantificaties door ultragevoelige polymerase-kettingreactie.

Verwerking van bronchoalveolaire lavage vloeistof en geëvenaard bloed voor alveolaar macrofaag en CD4+ T-cel Immunophenotypering en HIV-reservoir beoordeling

Dit manuscript beschrijft een protocol om te bepalen of blootstelling aan ozon, een criterium luchtverontreinigende stof, in vivo alveolaire macrofaag-efferocytose belemmert. Dit protocol maakt gebruik van veelgebruikte reagentia en technieken en kan worden aangepast aan meerdere modellen van long letsel om de effecten op alveolaire macrofaag efferocytose te bepalen.

In vivo beoordeling van alveolaire macrofaag Efferocytose na blootstelling aan ozon

Dit protocol biedt onderzoekers een snelle, indirecte methode voor het meten van TLR-afhankelijke NF-кB/AP-1 transcriptiefactor-activiteit in een muriene macrofaag cellijn in reactie op een verscheidenheid aan polymere oppervlakken en geadsorbeende eiwit lagen die de micro omgeving van het biomateriaal implantaat modelleren.

Een macrophage reporter Celassay om Tolachtige receptor-gemedieerde NF-kB/AP-1-signalering op geadsorbeerde proteïne lagen op polymere oppervlakken te onderzoeken

Hier gepresenteerd is een protocol voor primaire menselijke bloed monocyten isolatie evenals hun differentiatie in macrofagen en dendritische cellen en assemblage met epitheliale cellen in een meercellige menselijke long model. Biologische reacties van coculturen bestaande uit immuuncellen onderscheiden van vers geïsoleerde of ontdooide monocyten, bij blootstelling aan pro-inflammatoire stimuli, worden vergeleken.

Meercellige human alveolaire model samengesteld uit epitheelcellen en primaire immuuncellen voor hazard assessment

Leer alveolaire macrofagen oogsten en activering evalueren met polyanhydride nanodeeltjes bij muismodellen. Deze methode helpt onderzoekers immunologische responsen bestuderen.

Oogsten Murine alveolaire macrofagen en evalueren van cellulaire activatie geïnduceerd door polyanhydride Nanodeeltjes

Meer video's verkennen