Name: Single Eicel bisulfiet Mutagenese (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-06-27T12:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 18 s
Description: Leer DNA-methylatieanalyse op enkelcelniveau in eicellen met bisulfietmutagenese. Deze methode beschermt minuscule DNA-hoeveelheden en maakt epigenetisch onderzoek naar vroege embryonale ontwikkeling mogelijk.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Dit werk werd ondersteund door de Universiteit van Western Ontario, de afdeling Obstetrie en Gynaecologie, en een subsidie ​​ER06-02-188 uit de Ministryof onderzoek en innovatie, Early Onderzoeker Award. MMD werd ondersteund door een CIHR Training Program in de voortplanting, de vroege ontwikkeling en de impact op gezondheid (REDIH) Graduate Scholarship.

DAG 1 Bereid de volgende oplossingen vers op de dag van de eicel collectie met steriel, gedestilleerd water, zoals GIBCO water. Om de kans op DNA-besmetting te verminderen, veranderen vaak handschoenen en gebruiken filter tips. Houd de buizen weg schuin wanneer het open is, en samen te vatten alle buizen wanneer niet in gebruik. Wij raden aan dat oplossingen zijn als n +1. 3% LMP agarose 30 mg laag smeltpunt (LMP) Agarose tot 1 ml GIBCO H2O te ontbinden @ 70 ° C Lysis Solution 8 pi lysisbuffer 1 pi proteinase K 1 pi 10% IGEPAL plaats op ijs tot aan gebruik 02:01 Agarose: Lysis Solution (10 ul per individuele eicel, het bedrag is voor 3 eicellen) 20 ul 3% LMP agarose 10 pi Lysis Solution Meng @ 70 ° C SDS Lysis Buffer (501 ul per persoon eicel) <table border="0"><tbody><tr><td> 1 x TE pH 7,5 </td><td> 450 ul </td></tr><tr><td> 10% SDS </td><td> 50 ul </td></tr><tr><td> Proteinase K </td><td> 1 pi </td></tr><tr><td></td><td> 501 ul </td></tr></tbody></table> 1. Eicel Collectie <ol><li> Plaats de muis ontleed eileiders in M2 media, en scheur de ampullen aan de cumulus cellen complex te extraheren. </li><li> Scheid de eicellen uit de cumulus cellencomplex gebruik van 0,3 mg / ml hyaluronidase oplossing in een 30 ul druppel M2 media. Houd de eicellen in oplossing slechts zo lang als het duurt om verwijderen van de cumulus cellen, zoals langdurige blootstelling kan beschadigen. Was de oöcyten 3x in 30 pi druppel M2 media verwijderd cumuluscellen periodiek. </li><li> Verwijder de zona pellucida met behulp van zure tyrode-oplossing. Plaats de eicellen in een 30 ul druppel van de oplossing, en dan naar een ander 30pl drop, als het even welke media meegevoerd zal verdunnen het zuur en vermindering van de efficiëntie. Houd de eicellen in oplossing slechts zo lang als het duurt om de zona te verwijderen, zoals langdurige blootstelling kan beschadigen. Opmerking: een verhoogde concentratie van de oplossing zure tyrode of pronase kunnen worden gebruikt voor humane monsters de menselijke zona pellucida beter bestand is tegen de behandeling met zuur oplossing tyrode de van de muis. </li><li> Was de eicellen nog eens in een 30 ul druppel M2 media. </li></ol> 2. Agarose inbedding en Lysis <ol><li> Om agarose inbedding uitvoeren, plaatst u de lysis oplossing op een 70 ° C heatblock. Voeg de voorverwarmde LMP agarose de lysis oplossing produceert een 2:1 agarose: lysis oplossing. </li><li> Plaats een eicel op een schoon glasplaatje in een mum van M2 media. Neem een ​​stijging van 10 ul van de agarose: lysis oplossing in een pipet, en (onder de microscoop) voorzichtig verwijdering van een kleine hoeveelheid (~ 1 ui of minder) op het glasplaatje, waardoor het te mengen met de minimAl media. Voorzichtig pak je de eicel in de pipetpunt en zet alle 10 pl in een eppendorfbuisje met 300 ul minerale olie, zodat de kraal vormt een bol. Opmerking: dit proces moet vrij snel worden uitgevoerd als de agarose hardt als de temperatuur slechts 5 ° C onder 70 ° C. </li><li> Incubeer de buis op ijs gedurende 10 minuten. Lysis uitvoeren verwijderen 300 ul minerale olie en voeg 500 pi van de SDS lysisbuffer. Incubeer overnacht in een 50 ° C waterbad. Opmerking: Lysis oplossing (tabel 1) kunnen ook worden gebruikt voor dit doel. </li></ol> DAG 2 Bereid de volgende oplossingen vers op de dag van bisulfiet mutagenese. Om kans op DNA-besmetting te verminderen, veranderen vaak handschoenen en gebruiken filter tips. Houd de buizen weg schuin wanneer het open is, en samen te vatten alle buizen wanneer niet in gebruik. Wij raden aan dat oplossingen zijn als n +1. <table border="0"><tbody><tr><td> 3 M NaOH </td> &lt;td&gt; 2,4 g NaOH in 20 ml autoclaaf DDH 2 O </td></tr><tr><td> 0,1 M NaOH </td><td> 0,5 ml 3M in 14,5 ml autoclaaf DDH 2 O </td></tr><tr><td> 0,3 M NaOH </td><td> 1,5 ml 3M in 13,5 ml autoclaaf DDH 2 O </td></tr></tbody></table> 2,5 M oplossing bisulfiet <ol class="lalpha"><li> 3,8 g natriumbisulfiet 5,5 ml gedestilleerd GIBCO H2O 1 ml 3 M NaOH te ontbinden @ kamertemperatuur </li><li> 110 mg hydrochinon 1 ml gedestilleerd GIBCO H2O te ontbinden @ 90 ° C (voor zolang het duurt om op te lossen, meng regelmatig) </li></ol> Bij volledig is opgelost, mengen oplossing (a) en (b) * Uit de buurt van het licht * 3. Bisulfiet Mutagenese <ol><li> Volledig verwijderen 500 ul lysisbuffer SDS en voeg 300 ul minerale olie (~ 20 uur). Elke lysisbuffer resterende zal verdunnen ee agarose bij verhitting en de kraal gevoeliger zijn oplossen in de volgende stappen. Ga direct door met bisulfiet mutagenese, of op te slaan bij -20 ° C gedurende maximaal 5 dagen. </li><li> Indien van toepassing, verwijder eicellen uit de vriezer en laat ontdooien (slechts tot agarose kraal is relatief doorzichtig). Incubeer gedurende 2,5 minuut op een 90 ° C warmte-blok, waarna Incubeer op ijs gedurende 10 minuten. Let op: Niet mengen of roeren, het uitbreiden van langer dan 2,5 minuten, of fluctueren temperatuur. </li><li> Om denaturatie uit te voeren, verwijder dan de minerale olie en voeg 1 ml 0,1 M NaOH aan elke buis, flick en omkeren 5-6 keer. </li><li> Incubeer gedurende 15 minuten in een 37 ° C waterbad, om te keren om de 3-4 minuten. De kraal moet drijven in de NaOH. </li><li> Om bisulfiet behandeling uit te voeren, de buis voorzichtig draaien, verwijder vervolgens de NaOH en voeg 300 ul minerale olie en 500 ul bisulfiet oplossing. Incubeer de buis gedurende 3,5 uur in een 50 ° C waterbad. * Uit de buurt van het licht * </strong&gt; Opmerking: lengte van incubatie kan moet empirisch worden bepaald gen van belang. </li><li> Om desulfonation uit te voeren, incuberen op ijs gedurende 3 minuten en verwijder dan de minerale olie en de bisulfiet oplossing, draaien zachtjes en voeg 1 ml 0,3 M NaOH. Flick en omkeren 5-6 keer. </li><li> Incubeer gedurende 15 minuten in een 37 ° C waterbad, om te keren om de 3-4 minuten. De kraal moet drijven in de NaOH. </li><li> Was de monsters, door eerst voorzichtig draaien, verwijder vervolgens de NaOH en voeg 1 ml 1x TE pH 7,5. Schudden gedurende 5-10 minuten bij kamertemperatuur (op een schudapparaat). Weer voorzichtig Spin, verwijder dan de 1x TE. Herhaal dit twee keer wassen. </li><li> Voeg 1 ml autoclaaf DDH 2 O. Schudden gedurende 5-10 minuten bij kamertemperatuur (op een schudapparaat). Draai voorzichtig, verwijder vervolgens de H 2 O. Twee keer herhalen DDH 2 O wassen. </li><li> De pH van de bovenstaande vloeistof, het moet pH 5,0. Als nog te basic, weer wassen met H 2 O. Verwijder alle bovenstaande vloeistof, waardoor alleen de agarose zijnadvertentie. </li></ol> 4. 1 e en 2 e ronde PCR-amplificatie <ol><li> Bereid 1 e ronde PCR-mix ** tijdens het wassen ** </li></ol><table border="0"><tbody><tr><td> 10 uM Primer Forward Outer </td><td> 0,5 ul </td></tr><tr><td> 10 uM Primer Reverse Outer </td><td> 0,5 ul </td></tr><tr><td> 240 ng / ml tRNA </td><td> 1 pi </td></tr><tr><td> H2O </td><td> 13 pl </td></tr></tbody></table> Toevoegen aan Illustra Ready-to-Go Hot Start PCR kralen Schuif de vaste agarose kraal in de PCR-buis (~ 10 pi) Na verwarming tot 70 ° C en meng Voeg 25 ul minerale olie Totaal: 50 pi <ol start="2"><li> Versterken Opmerking: Een voorbeeld van fietsen voorwaarden muis Snrpn is denaturatie 2 minuten bij 94 ° C, gevolgd door 40 cycli van 30 seconden bij 94 ° C, 1 minuut bij 50 ° C en 1minuten bij 68 ° C en een laatste 10 minuten verlengingsstap bij 68 ° C. Annealing temperatuur voor 1 e ronde PCR voor muis H19 en Peg3 is 50 ° C. </li><li> Bereid 2 e ronde PCR-mix </li></ol><table border="0"><tbody><tr><td> 10 uM Primer Forward Inner </td><td> 0,5 ul </td></tr><tr><td> 10 uM Primer Reverse Inner </td><td> 0,5 ul </td></tr><tr><td> H2O </td><td> 19 pl </td></tr></tbody></table> Toevoegen aan Illustra Ready-to-Go Hot Start PCR kralen Voeg 5 pl 1 e ronde product als een sjabloon. Verwarm de 1e ronde product tot 70 ° C gedurende 1 minuut op de agarose verzachten. Zorg ervoor dat u pipetteer onder de laag van minerale olie. Voeg 25 ul minerale olie Totaal: 50 pi Let op: Geneste primersequenties voor Snrpn, H19 en Peg3 zijn te vinden in de markt-Velker et al. 10,12. <ol start="4"><li> Versterken Opmerking: fietsen voorwaarden muis Snrpn is denaturatie 2 minuten bij 94 ° C, gevolgd door 40 cycli van 30 seconden bij 94 ° C, 1 minuut bij 50 ° C en 1 minuut bij 68 ° C en een laatste 10 minuten rek stap bij 68 ° C 10. Muis H19 en Peg3 vereisen een 50 ° C annealing temperatuur voor de 2 e ronde PCR. </li><li> Als een diagnostische test, kan tweede ronde monsters worden gesneden met een restrictie-enzym dat methylatie-of stam-specifieke. </li></ol><table border="0"><tbody><tr><td> 2 e Ronde product </td><td> 4 pi </td></tr><tr><td> Restrictie-enzym </td><td> 1 pi </td></tr><tr><td> Buffer </td><td> 1 pi </td></tr><tr><td> H2O </td><td> 4 pi </td></tr></tbody></table><ol start="6"><li> Electrophorese de vertering producten 8% acrylamide gel. Een heterogene bands vertegenwoordigen meer dan een SequeNVU. </li></ol> 5. TA Klonering en kolonie-PCR <ol><li> Om 2e ronde product eerst warmte 70 klonen ° C gedurende 1 minuut op de agarose dan ligeren in de vector volgens de Promega pGEM-T vectorsysteem (Fisher Scientific Cat # A1360) verzachten. </li></ol><table border="0"><tbody><tr><td> 2 e Ronde PCR </td><td> 1 pi </td></tr><tr><td> pGEMT-EASY vector </td><td> 1 pi </td></tr><tr><td> Ligase </td><td> 1 pi </td></tr><tr><td> H2O </td><td> 2 pi </td></tr><tr><td> 2x ligatiebuffer </td><td> 5 pi </td></tr></tbody></table> Incubeer overnacht @ 4 ° C in PCR-machine. <ol start="2"><li> Ontdooi bevoegde E.coli-cellen op ijs gedurende 15 minuten (Zymo Research Corp Cat # T3009). Voeg 3 pi ligatiereactie 8 pi E. coli en incubeer ligatie op ijs gedurende 15 minuten. </li><li> Heat shock gedurende 40 seconden in een 42 ° C waterbad,en incubeer op ijs gedurende 2 minuten. Voeg 60 pi SOC medium en incuberen bij 37 ° C gedurende 1 uur (shaker). </li><li> Plaats alle van de reactie mix op een LB / Agar / IPTG / Xgal / Amp plaat en incubeer plaat bij 37 ° C gedurende de nacht. </li><li> Bereid kolonie PCR-mix </li></ol><table border="0"><tbody><tr><td> 20 uM M13 voorwaartse primer </td><td> 0,7 pl </td></tr><tr><td> 20 uM M13 reverse primer </td><td> 0,7 pl </td></tr><tr><td> 5x Green Go Taq-Buffer </td><td> 7,0 pl </td></tr><tr><td> 10 mM dNTP </td><td> 0,7 pl </td></tr><tr><td> Taq DNA polymerase </td><td> 0,28 ul </td></tr><tr><td> H2O </td><td> 25,62 pl </td></tr><tr><td></td><td> 35 pl Totaal </td></tr></tbody></table> Voeg 35 pl kolonie PCR Master Mix in een PCR-buis. Kies een witte bacteriële kolonie van de plaat met een pipet, en zwenk het in de PCR-reactie. <ol start="6"><li> Versterken met denaturatie gedurende 10 minuten bij 94 ° C, gevolgd door 30 cycli van 45 seconden bij 94 ° C, 30 seconden bij 57 ° C en 1 minuut bij 72 ° C en een laatste 10 minuten rek bij 72 ° C. Electrophorese 4 pi van een 1,5% agarosegel. Stuur ~ 30 pi van het PCR product sequentie. Opmerking: Voor eicellen, 5 kolonie PCR-producten worden gesequenced. </li><li> Zodra sequencing resultaten worden verkregen, kan methyleringspatronen worden gelezen. Elke originele CG dat bleef als een CG is gemethyleerd, en alle originele CG dat het nu een TG werd ongemethyleerd. </li></ol> 6. Representatieve resultaten In ons werk hebben we test ingeprent methylatie in individuele eicellen en embryo&#39;s (figuur 1). Na geneste PCR amplificatie met primers bisulfiet omgezet, is het mogelijk om een conversie bevestigen visualiseren een juiste fragmentgrootte op een agarosegel (figuur 2). Een afzonderlijke oöcytvertegenwoordigt een ouderlijke allel en in principe heeft een bedrukt methylatiepatroon. Als zodanig kan tweede PCR-producten worden getest onbedoelde verontreiniging. Een restrictie-enzym gevoelig DNA methylering (zoals Hinfl of DpnII) kan worden gebruikt om de tweede PCR-product verteerbaar beoordelen of het een gemethyleerd of gemethyleerd allel (figuur 3) bevat. Een gemethyleerde C in het enzym herkenningssequentie gesplitst terwijl een gemethyleerd C wordt omgezet T niet meer herkend door het enzym en afgesneden. Elke MII eicel monster die zowel gemethyleerde en niet-gemethyleerd allelen dient te worden weggegooid, omdat het wijst op cumulus cellen verontreiniging (figuur 3). Na ligatie en transformatie kunnen succesvolle kolonie-PCR amplificatie gevisualiseerd op een agarose gel om monsters met de juiste grootte product worden verzonden voor sequencing (figuur 4). Tenslotte is de volgorde van vijf afzonderlijke cldie van een MII eicel moet produceren vijf identieke methylatie patronen en identieke nonCpG omrekeningskoersen (figuur 5a). Alle monsters meer dan een patroon bevat moet worden verwijderd (figuur 5b). Aangezien geovuleerde MII oöcyten twee exemplaren chromosoom of een aangesloten polaire lichaam, is het mogelijk voor het verkrijgen twee identieke sequentie patronen (figuur 5c). Wij raden gegevens te verwijderen uit eicellen die zeer ongelijke methylatie patronen hebben sinds cumulus cellen besmetting kan niet worden uitgesloten. <img alt="Figuur 1" src="/files/ftp_upload/4046/4046fig1.jpg" /> Figuur 1. Schematische voorstelling van de interne Eicel bisulfiet Mutagenese test. <img alt="Figuur 2" src="/files/ftp_upload/4046/4046fig2.jpg" /> Figuur 2. Vertegenwoordiger van de resultaten van 2 e ronde versterking voor Snrpn van een zingenle MII eicel op een 1,5% agarosegel. Lanes 1-4 zijn vier enkele MII eicellen en baan 5 is een negatieve controle (geen eicel). Verwachte amplicongrootte voor Snrpn is 420 bp. L, ladder. <img alt="Figuur 3" src="/files/ftp_upload/4046/4046fig3.jpg" /> Figuur 3. Representatieve resultaten van 2 t ronde Methylatiespecifieke restrictiedigestie van Snrpn van een MII eicel van een 8% acrylamide gel. Hinfl diagnostische restrictiedigestie toont ongemethyleerd DNA dat een T de restrictieplaats schaft herbergt (420bp, laan 1) of gemethyleerd DNA dat een C in herkenningsplaats bevat (cut, 262, 103 en 54 bp, laan 2). Spijsvertering met zowel gemethyleerde en niet-gemethyleerd restrictie-enzym sites (cut &amp; uncut bands, laan 3) zijn een indicatie van cumulus cellen besmetting. L, ladder. <img alt="Figuur 4" src="/files/ftp_upload/4046/4046fig4.jpg" /> Figuur 4. </strong&gt; Representatieve resultaten kolonie-PCR amplificatie voor Snrpn van een MII eicel op een 1,5% agarosegel. Verwachte amplicongrootte na ligatie van Snrpn in de pGEM-T Easy-vector en het gebruik van M13 forward en reverse primers is 656 bp. Lane 1-8 amplicons van klonen 1-8. Kloon 5 heeft een onjuiste ampliconlengte en mag niet worden verzonden voor het rangschikken. <img alt="Figuur 5" src="/files/ftp_upload/4046/4046fig5.jpg" /> Figuur 5. Vertegenwoordiger van sequencing resultaten voor Snrpn van een enkele MII eicel. Snrpn wordt gemethyleerd in eicellen. Zwarte cirkels geven gemethyleerde CpGs. Witte cirkels geven aan niet-gemethyleerd CpGs. CpG aantal en plaatsing is vertegenwoordiger voor een B6 stam vrouwelijke muis. a) Verwachte sequencing resultaten voor Snrpn van een enkele MII eicel. Slechts een enkele streng van het DNA te versterken in alle vijf klonen. Eicellen met een methylatie patroon en dezelfde niet-CpG conversie babbeln worden opgenomen in analyses (percentage omzetting van niet-CpGs rechts naast werd berekend als het aantal niet-CpG cytosines omgezet thymine als percentage van de totale niet-CpG cytosines). b) Sequencing resultaten voor Snrpn uit een enkele eicel MII met cumulus cellen besmetting. Let op de ongelijkheid tussen methylatie staten en conversie patronen die aangeven meerdere streng versterking. c) Sequencing resultaten voor Snrpn uit een enkele eicel MII met beide chromosoom-kopieën of polaire lichaam integratie.

<ol><li>Jaenisch, R., Bird, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epigenetic+regulation+of+gene+expression%3A+how+the+genome+integrates+intrinsic+and+environmental+signals%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Genet%22%5BJournal%5D)">Epigenetic regulation of gene expression: how the genome integrates intrinsic and environmental signals.</a> Nat. Genet. 33, 245-254 (2003).</li>
<li>Rodenhiser, D., Mann, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epigenetics+and+human+disease%3A+translating+basic+biology+into+clinical+applications%5BTitle%5D)+AND+%22CMAJ%22%5BJournal%5D)">Epigenetics and human disease: translating basic biology into clinical applications.</a> CMAJ. 174, 341-348 (2006).</li>
<li>Frommer, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+genomic+sequencing+protocol+that+yields+a+positive+display+of+5-methylcytosine+residues+in+individual+DNA+strands%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">A genomic sequencing protocol that yields a positive display of 5-methylcytosine residues in individual DNA strands.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 89, 1827-1831 (1992).</li>
<li>Clark, S. J., Harrison, J., Paul, C. L., Frommer, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+sensitivity+mapping+of+methylated+cytosines%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">High sensitivity mapping of methylated cytosines.</a> Nucleic Acids Res. 22, 2990-2997 (1994).</li>
<li>Feil, R., Charlton, J., Bird, A. P., Walter, J., Reik, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methylation+analysis+on+individual+chromosomes%3A+improved+protocol+for+bisulphite+genomic+sequencing%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">Methylation analysis on individual chromosomes: improved protocol for bisulphite genomic sequencing.</a> Nucleic Acids Res. 22, 695-696 (1994).</li>
<li>Raizis, A. M., Schmitt, F., Jost, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+bisulfite+method+of+5-methylcytosine+mapping+that+minimizes+template+degradation%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Biochem%22%5BJournal%5D)">A bisulfite method of 5-methylcytosine mapping that minimizes template degradation.</a> Anal. Biochem. 226, 161-166 (1995).</li>
<li>Patterson, K., Molloy, L., Qu, W., Clark, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DNA+Methylation%3A+Bisulphite+Modification+and+Analysis%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">DNA Methylation: Bisulphite Modification and Analysis.</a> J. Vis. Exp. (56), e3170(2011).</li>
<li>Olek, A., Oswald, J., Walter, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+modified+and+improved+method+for+bisulphite+based+cytosine+methylation+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">A modified and improved method for bisulphite based cytosine methylation analysis.</a> Nucleic Acids Res. 24, 5064-5066 (1996).</li>
<li>Mann, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+loss+of+imprinting+in+the+placenta+following+preimplantation+development+in+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Selective loss of imprinting in the placenta following preimplantation development in culture.</a> Development. 131, 3727-3735 (2004).</li>
<li>Market-Velker, B. A., Zhang, L., Magri, L. S., Bonvissuto, A. C., Mann, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dual+effects+of+superovulation%3A+loss+of+maternal+and+paternal+imprinted+methylation+in+a+dose-dependent+manner%5BTitle%5D)+AND+%22Hum.+Mol.+Genet%22%5BJournal%5D)">Dual effects of superovulation: loss of maternal and paternal imprinted methylation in a dose-dependent manner.</a> Hum. Mol. Genet. 19, 36-51 (2010).</li>
<li>Meng, L. H., Xiao, S. Q., Huang, X. F., Zhou, Y., Xu, B. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+study+on+bisulfite+sequencing+method+for+methylation+status+of+imprinted+genes+in+single+human+oocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Zhonghua+Yi+Xue+Yi+Chuan+Xue+Za+Zhi%22%5BJournal%5D)">A study on bisulfite sequencing method for methylation status of imprinted genes in single human oocytes.</a> Zhonghua Yi Xue Yi Chuan Xue Za Zhi. 25, 289-292 (2008).</li>
<li>Denomme, M. M., Zhang, L., Mann, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Embryonic+imprinting+perturbations+do+not+originate+from+superovulation-induced+defects+in+DNA+methylation+acquisition%5BTitle%5D)+AND+%22Fertil.+Steril%22%5BJournal%5D)">Embryonic imprinting perturbations do not originate from superovulation-induced defects in DNA methylation acquisition.</a> Fertil. Steril. 96, 734-738 (2011).</li>
<li>Tahiliani, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Conversion+of+5-methylcytosine+to+5-hydroxymethylcytosine+in+mammalian+DNA+by+MLL+partner+TET1%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Conversion of 5-methylcytosine to 5-hydroxymethylcytosine in mammalian DNA by MLL partner TET1.</a> Science. 324, 930-935 (2009).</li>
<li>Hajj, N. E. l <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Limiting+dilution+bisulfite+%28pyro%29sequencing+reveals+parent-specific+methylation+patterns+in+single+early+mouse+embryos+and+bovine+oocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Epigenetics%22%5BJournal%5D)">Limiting dilution bisulfite (pyro)sequencing reveals parent-specific methylation patterns in single early mouse embryos and bovine oocytes.</a> Epigenetics. 6, 1176-1188 (2011).</li>
</ol>

De auteurs hebben niets te onthullen.

Deze ene eicel test bevat een groot aantal stappen met een aantal die kritisch zijn en vereisen speciale zorg. De eerste is eicel wassen. Het is bijzonder belangrijk voor elke eicel wassen meerdere malen in vers medium daalt na hyaluronidase behandeling om zoveel cumuluscellen mogelijk. Bovendien, wanneer de overdracht van eicellen om de oplossing te zure tyrode voor zona pellucida verwijderen zorg ervoor dat omringende medium vrij is van cumulus cellen. De eicel is zeer kleverig na zona verwijderen, en alle omringende ...

Tabel specifieke reagentia en materialen. <table border="1"><tbody><tr><td> Naam van het serum </td><td> Vennootschap </td><td> Catalogusnummer </td><td> Reacties </td></tr><tr><td colspan="4"> Eicel Collectie </td></tr><tr><td> Hyaluronidase </td><td> Sigma </td><td> H4272 </td><td></td></tr><tr><td> Zure tyrode </td><td> Sigma </td><td> T1788 </td><td></td></tr><tr><td> Proteinase K </td><td> Sigma </td><td> P5568 </td><td></td></tr><tr><td> 10% IGEPAL </td><td> Bioshop </td><td> NON999.500 </td><td></td></tr><tr><td colspan="4"> Lysis Solution </td></tr><tr><td> Tris pH 7,5 </td><td> Bioshop </td><td> TRS001.5 </td><td></td></tr><tr><td> LiCl </td><td> Sigma </td><td> L9650 </td><td> &amp; Nbsp; </td></tr><tr><td> EDTA pH 8,0 </td><td> Sigma </td><td> E5134 </td><td></td></tr><tr><td> LIDS </td><td> Bioshop </td><td> LDS701.10 </td><td></td></tr><tr><td> DTT </td><td> Invitrogen </td><td> P2325 </td><td></td></tr><tr><td colspan="4"> SDS Lysis Buffer </td></tr><tr><td> TE pH 7,5 </td><td> Bioshop (Tris) Sigma (EDTA) </td><td> TRS001.5 E5134 </td><td></td></tr><tr><td> 10% SDS </td><td> Bioshop </td><td> SDS001.500 </td><td></td></tr><tr><td colspan="4"> Bisulfiet Conversie </td></tr><tr><td> Natriumhydroxide </td><td> Sigma </td><td> S8045 </td><td></td></tr><tr><td> Natrium Hydrogensulfite (natriumbisulfiet) </td><td> Sigma </td><td> 243973 </td><td>; </td></tr><tr><td> Hydrochinon </td><td> Sigma </td><td> H9003 </td><td></td></tr><tr><td> Low Melting Point (LMP) Agarose </td><td> Sigma </td><td> A9414 </td><td></td></tr><tr><td> Minerale olie </td><td> Sigma </td><td> M8410 </td><td></td></tr><tr><td> M2 Medium </td><td> Sigma </td><td> M7167 </td><td></td></tr><tr><td> GIBCO Gedistilleerd water </td><td> Invitrogen </td><td> 15230-196 </td><td></td></tr><tr><td> Geautoclaveerd dubbel gedistilleerd (dd) water </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td colspan="4"> PCR </td></tr><tr><td> Illustraties Hot Start Mix RTG </td><td> GE Healthcare </td><td> 28-9006-54 </td><td></td></tr><tr><td> 240 ng / ml gist tRNA </td><td> Invitrogen </td><td> 15401-011 </td><td></td></tr><tr><td> 5x Green GoTaq reactiebuffer </td><td> Promega </td><td> M7911 </td><td></td></tr><tr><td> Binnen en buiten geneste primers </td><td> Sigma </td><td></td><td></td></tr><tr><td colspan="4"> Ligatie </td></tr><tr><td> Promega pGEM-T Easy-vector </td><td> Fisher Scientific </td><td> A1360 </td><td></td></tr><tr><td colspan="4"> TA Cloning </td></tr><tr><td> Bevoegde E.coli-cellen </td><td> Zymo Research Corp </td><td> T3009 </td><td></td></tr><tr><td colspan="4"> Uitrusting </td></tr><tr><td> Stereomicroscoop </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> 70 ° C en 90 ° C warmte Blokken </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> 37 ° C en 50 ° C waterbaden (42 ° C voor transformaties) </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Schommelstoel </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> PCR-machine </td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

single eicel bisulfiet mutagenese

Single Oocyte Bisulfite Mutagenesis

Epigenetica omvat alle erfelijke en reversibele aanpassingen van chromatine, dat alter gen toegankelijkheid, en dus zijn de belangrijkste mechanismen voor het reguleren van gentranscriptie 1. DNA-methylatie is een epigenetische modificatie die voornamelijk fungeert als een repressieve merk. Door de covalente toevoeging van een methylgroep op cytosines in CpG dinucleotiden, kan het werven extra repressieve eiwitten en histon-modificaties aan processen die betrokken zijn in condenserende chromatine en zwijgen genen 2 te starten. DNA-methylatie is essentieel voor normale ontwikkeling, want het speelt een cruciale rol in het ontwikkelings-programma&#39;s, celdifferentiatie, onderdrukking van retrovirale elementen, X-chromosoom inactivatie en genomic imprinting. Een van de meest krachtige methoden voor DNA methylatie analyse is bisulfiet mutagenese. Natriumbisulfiet is een DNA-mutageen dat cytosines deaminates in uracils. Na PCR-amplificatie en Seque<html> ncing, worden deze conversie gebeurtenissen gedetecteerd als thymines. Gemethyleerde cytosines worden beschermd tegen deaminering en dus blijven cytosines, waardoor de identificatie van DNA-methylatie op individueel nucleotide niveau 3. De ontwikkeling van de bisulfiet mutagenese test in een vergevorderd stadium van de oorspronkelijk gemelde 4-6 de richting van degenen die meer gevoelig en reproduceerbaar 7. Een belangrijke verbetering is het inbedden van kleinere hoeveelheden DNA in een agarose kraal, waardoor de bescherming van DNA van de harde bisulfiet behandeling 8. Hierdoor konden methylatie analyse worden uitgevoerd op zwembaden van eicellen en het blastocyst-stadium embryo&#39;s 9. De meest geavanceerde bisulfiet mutagenese protocol tot op heden is aan de individuele blastocyst-embryo&#39;s 10. Aangezien blastocysten hebben gemiddeld 64 cellen (die 120 tot 720 pg van DNA), deze methode niet doeltreffend voor methylering studies individuele oöcyten of splitsing-embryo&#39;s. tent &quot;&gt; Met aanwijzingen van agarose inbedding van minuut DNA-bedragen inclusief eicellen 11, hier presenteren wij een methode waarbij eicellen direct zijn ingebed in een agarose en lysis oplossing kraal onmiddellijk na het ophalen en verwijderen van de zona pellucida van de eicel. Dit stelt ons in staat omzeilen de twee belangrijkste uitdagingen van een eicel bisulfiet mutagenese:. bescherming van een geringe hoeveelheid DNA van degradatie, en de daarop volgende verlies tijdens de vele stappen protocol is belangrijk, aangezien de gegevens zijn verkregen van enkele eicellen, de kwestie van de PCR-vertekening in zwembaden wordt geëlimineerd Verder. , onopzettelijke cumulus cellen besmetting is detecteerbaar met deze methode, omdat een monster met meer dan een methylatie patroon kan worden uitgesloten van de analyse 12. Dit protocol biedt een verbeterde methode voor een succesvolle en reproduceerbare analyses van DNA-methylatie op de single-cell niveau en is bij uitstek geschikt individuele eicellen en splitsing-embryo&#39;s.

Bisulfiet mutagenese is de gouden standaard voor het analyseren van DNA-methylatie. Onze gewijzigde protocol zorgt voor een DNA-methylatie analyse op de single-cell niveau en is speciaal ontworpen voor individuele eicellen. Het kan ook worden gebruikt voor splitsing-embryo&#39;s.

Single Eicel bisulfiet Mutagenese

Epigenetica omvat alle overerfbare en omkeerbare modificaties van chromatine die de toegankelijkheid van genen veranderen, en vormt daarmee het primaire mechanisme voor ...

Het algemene doel van deze procedure is om de DNA-methylering in een enkele oocyten te analyseren. Dit wordt bereikt door eerst cumuluscellen en soap palita uit de verzamelde oocyten te verwijderen. De tweede stap is om de oocyt in een lysisoplossing in een verhouding van twee op één in te bedden om te voorkomen dat de minieme hoeveelheid DNA verloren gaat of degradeert.Vervolgens wordt bisulfiet-mutagenese uitgevoerd, gevolgd door amplificatie via een nested polymerasekettingreactie. De laatste stap is het ligeren en klonen van het PCR-product. De klonen worden vervolgens geselecteerd, via PCR geamplificeerd en ter sequencing verzonden.Uiteindelijk wordt bisulfietmutagenese en sequencing gebruikt om DNA-methylering aan cytosine-fosfaat-guanine, of CpG-dinucleotiden, van een regio van belang in een enkele oocyte aan te tonen. Het belangrijkste voordeel van deze techniek ten opzichte van bestaande methoden, zoals bisulfietmutagenese van grote celaantallen, is dat gegevens kunnen worden verkregen uit één enkele oocyte zonder het samenvoegen van cellen, PCR-bias en contaminatie door somatische cellen. Bereid op de dag van de oocytecollectie de oplossingen voor die in het geschreven protocol worden vermeld; verminder bij het maken van de oplossingen de kans op DNA-contaminatie door vaak de handschoenen te wisselen en filtertips te gebruiken, en houd buisjes schuin weg wanneer ze openstaan en sluit alle buisjes af wanneer ze niet in gebruik zijn.Begin de OSI-collectie door de gedissecteerde oviducten van de muis in M2-medium te plaatsen en aan de M-pulley te trekken om het cumuluscelcomplex te extraheren. Scheid vervolgens de oocyten van het cumuluscelcomplex met behulp van een hyaluronidase-oplossing van 0,3 mg/mL in een druppel van 30 µL M2-medium. Houd de oocyten slechts zo lang mogelijk in de oplossing als nodig is om de cumuluscellen te verwijderen, aangezien langdurige blootstelling ze kan beschadigen.Was de oocyten in druppels van 30 µL M twee medium door de oocyten van druppel naar druppel over te brengen. Verwijder periodiek de cumuluscellen voor een totaal van drie wasbeurten. Verwijder de Z van LUCITA met behulp van een zure tyro-oplossing.Plaats de oocyten eerst in één druppel van 30 µL van de oplossing en breng ze vervolgens over naar een andere druppel van 30 µL. Elk meegelopen medium zal het zuur namelijk verdunnen en de efficiëntie verminderen. Houd de cellen slechts zo kort mogelijk in de oplossing om de zona te verwijderen, aangezien langdurige blootstelling ze kan beschadigen.Na het verwijderen van de zona worden de cyten opnieuw gewassen in een druppel van 30 µL M2-medium om vervolgens Agarose-embedding uit te voeren. Plaats eerst de lysisoplossing op een warmteblok van 70 °C. Voeg de voorverwarmde laag-smeltende agarose (LMP Agarose) toe aan de lysisoplossing, zodat een verhouding van twee op één tussen de Agarose en de lysisoplossing ontstaat. Plaats vervolgens een enkele oöcyt in een minimale hoeveelheid M2-medium op een schoon glazen objectglas.De volgende stap is om de enkele cel in de Agros- en lysisoplossing in te bedden. Dit moet snel gebeuren, aangezien de agros stolt bij temperaturen onder de 65 °C. Neem onder een microscoop 10 µL van de Agros-lysisoplossing op met een pipetpunt.Breng voorzichtig ongeveer 1 µL of minder van de agros lysiselectie aan op de glazen plaat, zodat het mengt met het minimale medium. Neem de oocyten voorzichtig op in de pipetpunt. Breng vervolgens alle 10 µL over in een einor-buisje met 300 µL minerale olie, zodat de resulterende druppel een bolvorm aanneemt.Incubeer de buis 10 minuten op ijs voor de lyse. Verwijder de 300 µL minerale olie en voeg 500 µL van de SDS-lysebuffer toe. Incubeer het monster de volgende dag gedurende de hele nacht in een waterbad ingesteld op 50 °C.Bereid de bisulfiet-mutagenese-oplossingen vers zoals beschreven in het schriftelijke protocol. Begin de mutagenese door de 500 µL SDS-lysebuffer volledig te verwijderen. Houd er rekening mee dat elke resterende lysebuffer de agarose zal verdunnen wanneer deze wordt verhit, waardoor de kraal in de volgende stappen gevoeliger wordt voor oplossen.Nadat de lysisbuffer volledig is verwijderd, worden 300 µL minerale olie toegevoegd. Incubeer het monster gedurende twee en een halve minuut op een warmteblok van 90 °C. Vermijd het mengen, roeren of laten fluctueren van de temperatuur.Na twee en een halve minuut. Incubeer het monster 10 minuten op ijs. Om de denaturatie uit te voeren, verwijdert u de minerale olie en voegt u één milliliter 0,1 molar natriumhydroxide toe aan de buis; tik tegen de buis en keer deze vijf tot zes keer om.Incubeer het monster gedurende 15 minuten in een waterbad ingesteld op 37 °C, waarbij elke drie tot vier minuten wordt omgekeerd; de kraal moet in het natriumhydroxide drijven. Let op dat de kraal zich niet langer onderin de buis bevindt.Om de sulfietbehandeling uit te voeren, wordt de buis eerst voorzichtig gecentrifugeerd nadat het natriumhydroxide is verwijderd. Voeg 300 µL minerale olie en 500 µL BIS-sulfietoplossing toe. Zorg dat er geen blootstelling aan licht plaatsvindt en incubeer de buis gedurende drie en een half uur in een waterbad van 50 °C.Voer nu de denaturatie uit. Incubeer het monster eerst drie minuten op ijs voordat de minerale olie en de BIS-sulfietoplossing worden verwijderd. Voeg na een korte centrifugatie één milliliter 0,3 M natriumhydroxide toe en tik en keer de buis vijf tot zes keer om.Incubeer het monster 15 minuten lang. In een waterbad van 37 °C, waarbij elke drie tot vier minuten wordt omgekeerd; nogmaals, de kraal moet in het natriumhydroxide drijven voordat de PCR wordt gestart. Was de monsters door ze eerst voorzichtig te centrifugeren.Verwijder vervolgens het natriumhydroxide en voeg één milliliter van één xte pH 7,5 toe. Schud gedurende vijf tot 10 minuten bij kamertemperatuur. Na een tweede korte centrifugatie wordt de one XTE verwijderd.Herhaal dit wasproces tweemaal. Voeg vervolgens één milliliter autoclaveer-dubbelgedestilleerd water toe. Schud gedurende vijf tot 10 minuten bij kamertemperatuur, centrifugeer voorzichtig voor een derde maal en verwijder het water.Herhaal het wassen met dubbel gedestilleerd water tweemaal. Verwijder tot slot al het supernatant, zodat alleen de aros-kraal overblijft. Controleer of de pH van het supernatant 5,0 is.Als het supernatant nog te basisch is, was de beads dan opnieuw met dubbel gedestilleerd water. Voeg ondertussen de PCR-mix voor de eerste ronde toe aan de PCR-buis, zoals beschreven in het schriftelijke protocol. Schuif de solid agro naar de rand van de einor-buis.Breng vervolgens de agro speed voorzichtig over naar de PCR-buis, verhit deze één minuut lang tot 70 °C, meng en amplificeer zoals gesuggereerd in het schriftelijke protocol. Bereid na de eerste amplificatieronde de tweede PCR-reactieronde voor met vijf µL van het product uit de eerste ronde als template. Zorg ervoor dat u pipetteert onder de laag minerale olie.Voer de tweede ronde van amplificatie uit zoals beschreven in de tekst voor een diagnostische test. De monsters van de tweede ronde kunnen worden geknipt met een restrictie-enzym dat methylerings- of stamspecifiek is; voer elektroforese uit van de digestieproducten op een 8% acrylamidegel. Eventuele heterogene banden die ontstaan, vertegenwoordigen meer dan één sequentie. Om het product van de tweede ronde te kloneren, wordt dit in de vector geligeerd en wordt TA-klonering uitgevoerd zoals beschreven in het manuscript dat bij deze video hoort. Na de TA-klonering wordt het gehele reactiemengsel op een LB-agarplaat geplaatst, aangevuld met ampicilline, X-gal en IPTG, waarna de plaat gedurende één nacht bij 37 °C wordt geïncubeerd.Voeg vervolgens de colony PCR-mastermix toe aan de PCR-buis zoals beschreven in het geschreven protocol. Pak met een pipetpunt een witte bacteriële kolonie van de plaat en meng deze door middel van swirling in 35 µL van de colony PCR-mastermix in een PCR-buis. Ga verder met het amplificeren van de suspensie zoals beschreven in de tekst na de PCR-amplificatie; voer vervolgens een elektroforese uit met 4 µL van het PCR-product op een 1,5% AGROS-gel.Stuur tenslotte ongeveer 30 µL van het PCR-product ter sequenering van vijf kolonie-PCR's per cyte. Zodra de sequeneringsresultaten bekend zijn, kunnen de methyleringspatronen worden afgelezen; elke oorspronkelijke cytosine-guanine die ongewijzigd is gebleven, was gemethyleerd. Omgekeerd was elke oorspronkelijke cytosine-guanine die nu een thymine-guanine is, niet gemethyleerd na nested PCR-amplificatie met gebruik van bisulfit-geconverteerde primers.Het is mogelijk om een succesvolle conversie te bevestigen door de juiste fragmentgrootte te visualiseren op een agarosegel van een individuele metafase. Twee oocyten vertegenwoordigen één ouderlijk allel en hebben in theorie één geïmprint methyleringspatroon. PCR-producten uit de tweede ronde kunnen worden getest op onbedoelde contaminatie.Een restrictie-enzym dat gevoelig is voor DNA-methylering kan worden gebruikt om het product van de tweede PCR-ronde te digesteren om vast te stellen of het een gemethyleerd of ongemethyleerd allel bevat. Hierbij wordt een gemethyleerd cytosine binnen de herkenningssequentie van het enzym gesplitst. Terwijl een ongemethyleerd cytosine dat is omgezet in thymine niet langer door het enzym wordt herkend en ongesneden blijft, moet elk monster van een oocyten in metafase twee dat zowel gemethyleerde als ongemethyleerde allelen bevat, worden weggegooid, aangezien dit duidt op contaminatie door cumuluscellen of de aanwezigheid van een pollichaam na ligatie en transformatie.Een succesvolle colony PCR-amplificatie kan worden gevisualiseerd op een agarosegel om te garanderen dat monsters met de juiste productgrootte voor sequencing worden verzonden. Voor dit voorbeeld is de verwachte amplicongrootte na ligatie 56 basenparen. Hier heeft kloon vijf een onjuiste amplicongrootte en mag deze niet voor sequencing worden verzonden.De sequentie van vijf individuele klonen uit een oöcyt in metafase II zou vijf identieke methyleringspatronen en identieke niet-CpG-conversiesnelheden moeten produceren. Alle monsters die meer dan één patroon bevatten, moeten worden weggegooid. Aangezien ovulaties oöcyten in metafase II twee chromosoomkopieën of een aangehecht pollichaam hebben, bestaat de mogelijkheid dat er twee soortgelijke sequentiepatronen worden verkregen.Gegevens moeten worden verworpen van alle cellen die sterk afwijkende methyleringspatronen vertonen. Aangezien contaminatie door cumuluscellen bij deze procedure niet kan worden uitgesloten, is het belangrijk om eerst de oocyten meerdere malen te wassen in vers medium na de HI IDE-behandeling, om zoveel mogelijk cumuluscellen te verwijderen. Ten tweede zal de laagsmeltende agarose stollen bij temperaturen onder 65 °C, dus werk zorgvuldig maar snel.En tot slot zijn natriumbisulfaat en hydrochinon lichtgevoelig, dus reactiebuizen en oplossingen moeten in folie worden gewikkeld.

Research

JoVE Journal

Biology

Biologie

Eicellen zijn gevoelig voor te wijten aan fouten in chromosoom segregatie aneuploïdie tijdens de meiotische rijping. Aneuploïde eieren kan leiden tot onvruchtbaarheid, miskramen of ontwikkelingsstoornissen, zoals het syndroom van Down. Hier beschrijven we methoden om materialen van keuze te introduceren in eicellen en methoden om meiotische rijping onderzoeken en te beoordelen ploïdie.

Eicel muis micro-injectie, rijping en ploïdie Assessment

Hier presenteren we een protocol specifieke siRNA-gemedieerde mRNA afbraak gevolgd door immunofluorescentie analyse meiotische spileenheid en organisatie evalueren muizen oöcyten. Dit protocol is geschikt voor in vitro depletie van transcripties en functionele beoordeling van verschillende spil en / of MTOC geassocieerde factoren in oöcyten.

Meiotische Spil Assessment in Muis Eicellen door siRNA-gemedieerde silencing

Genetisch gecodeerde histon-miniSOG induceert genoom-brede erfelijke mutaties in een blauw licht-afhankelijke manier. Dit mutagenese methode is eenvoudig, snel, vrij van giftige chemicaliën, en zeer geschikt voor forward genetische screening en transgene integratie.

Optogenetische willekeurige mutagenese met behulp van histon-miniSOG in<em&gt; C. elegans</em

Als de genetische varianten die zijn gekoppeld aan ziekten bij de mens begint te worden blootgelegd, wordt het steeds belangrijker systemen waarmee snel evalueren de biologische betekenis van deze geïdentificeerde varianten te ontwikkelen. Dit protocol wordt beschreven methoden voor de evaluatie van menselijke genfunctie tijdens vrouwelijke meiose ik met behulp van de muis eicellen.

Met behulp van de muis eicellen te beoordelen van menselijke genfunctie tijdens de meiose I

Fout in chromosoomsegregatie is een veel voorkomend kenmerk in eicellen. Daarom geeft het bestuderen van het controlepunt voor de spindelassemblage belangrijke aanwijzingen over de mechanismen die nodig zijn om gezonde eieren te produceren. Het huidige protocol beschrijft drie complementaire testen om de integriteit van het controlepunt van de spindelassemblage in muizenoöcyten te evalueren.

Evaluatie van de integriteit van het spindelassemblagecontrolepunt in muizenoöcyten

Dit artikel presenteert twee methoden op basis van fluorescentie in situ hybridisatie om het X-chromosomale gehalte van eierstokcellen te bepalen in niet-geënt en geënt ovariumschorsweefsel van vrouwen met X-chromosomale afwijkingen.

Onderzoek naar X-chromosomale afwijkingen in eierstokcellen met behulp van fluorescentie in situ hybridisatie

In dit protocol werden de translating ribosome affinity purification (TRAP) methode en de isolatie van nuclei tagged in specific cell types (INTACT) methode geoptimaliseerd voor de gepaarde ondervraging van het celspecifieke ovariumtranscriptoom en epigenoom met behulp van het NuTRAP muismodel gekruist naar een Cyp17a1-Cre muislijn.

Celspecifieke gepaarde ondervraging van het ovarium-epigenoom en transcriptoom van de muis

Het handhaven van de integriteit van het oöcytengenoom is noodzakelijk om de genetische getrouwheid in het resulterende embryo te waarborgen. Hier presenteren we een nauwkeurig protocol voor het detecteren van DNA-dubbelstrengsbreuken in vrouwelijke geslachtscellen van zoogdieren.

Detectie van DNA-dubbelstrengsbreuken in eicellen van muizen

Dit artikel stelt een pijplijn op voor hoogwaardige eencellige en kernsuspensies van gastrulerende muizenembryo's voor sequencing van individuele cellen en kernen.

Single-cell RNA-sequencing van gemuteerde hele muizenembryo's: van de epiblast tot het einde van de gastrulatie

Meiotische fouten in synapsen en recombinatie komen vaak voor bij eicellen van zoogdieren. Grondige analyse van eiwitten die bij deze processen betrokken zijn, is essentieel om te begrijpen hoe en waarom oögenese vaak fout gaat. De hier gepresenteerde technieken maken een uitgebreide monitoring van recombinatie en synapsen mogelijk om de eicelkwaliteit bij muizen te evalueren.

Voorbereiding van meiotische chromosoomspreads van eicellen van muizen voor beoordeling van synapsis en recombinatie

Leer DNA-methylatieanalyse op enkelcelniveau in eicellen met bisulfietmutagenese. Deze methode beschermt minuscule DNA-hoeveelheden en maakt epigenetisch onderzoek naar vroege embryonale ontwikkeling mogelijk.

Single Eicel bisulfiet Mutagenese

Meer video's verkennen