Name: Een orthotope Blaas Tumor Model en de evaluatie van Intravesicale Sarna behandeling (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-07-28T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 43 s
Description: Leer een orthotopisch blaastumormodel opzetten in immuungecompromitteerde muizen en de effectiviteit van intravesicale saRNA-behandeling evalueren met behulp van echografie en bioluminescentiebeeldvorming.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Dit onderzoek wordt gefinancierd door de AACR Henry Shepard Bladder Cancer Research Grant (09-60-30-LI).

Procedures waarbij proefdieren zijn goedgekeurd door de Institutional Animal Care en gebruik Comite (IACUC) aan de Universiteit van Californië, San Francisco. 1. Celpreparaat <ol><li> De menselijke blaaskanker cellijn KU-7-luc2-GFP (Remklauw Life Sciences, Hopkinton, MA) gekweekt in RPMI-1640 medium aangevuld met 10% foetaal runderserum en 50 pg / ml gentamicine. </li><li> Cultures op 37 ° C, 5% CO2 met medium verandert elke twee tot drie dagen. </li><li> De cellen werden geoogst door trypsine spijsvertering en geteld met behulp van een hemocytometer. Een celsuspensie van 2 x 10 6 cellen in 50 ul werd bereid in met fosfaat gebufferde zoutoplossing en op ijs bewaard. </li></ol> 2. Orthotope Blaas Tumor Model <ol><li> Vrouwelijk naakt (nu / nu) muizen 8-10 weken oud (Simonsen Laboratory, Gilory, CA) werden gebruikt. </li><li> Plaats een steriel laken meer dan een verwarmingselement aan een dienstis een chirurgische platform. Steriel glijmiddel, 24-GEKOME TEKST katheters met stilet naalden, zilvernitraatoplossing, en steriel water worden bereid. </li><li> Narcose wordt geïnduceerd in de muizen met geïnhaleerde isofluraan (3% inductie 1-2% voor onderhoud) en onderhouden via neuskegel. Steriele oogzalf wordt toegevoerd aan ogen van het dier en een warmte pad wordt de lichaamswarmte handhaven. </li><li> Plaats de muis in rugligging. </li><li> Voorzichtig te begrijpen van het dier vulva met een pincet om te stabiliseren. </li><li> Met behulp van een 24-GEKOME TEKST intraveneuze katheter met de verwijderde naald stilet, wordt de muis plasbuis gecatheteriseerd. Voldoende smering moet worden gebruikt. Met de muis rugligging, wordt de plasbuis zich direct plaatsvond na de vulva plooien en juist voor de vagina. Een hoek van 45 graden initieel genomen om de urethra canule en passeren onder het schaambeen. Een kleine hoek wordt genomen door de urethra overgaan in de blaas. Zachte bekken drukervoor dat u recht de urinebuis kan vaak helpen. Er moet worden genomen om te voorkomen dat te hard duwen tegen weerstand, omdat dit kan leiden tot urethra of blaas perforatie. Urine gezien binnen de katheter bevestigt haar locatie in de blaas lumen. </li><li> Zuig urine van de katheter en de blaas lumen met behulp van de stilet naald. De stilet naald wordt bij alle volgende verlangens en injecties, waardoor de katheter plaats. Hierdoor injectie van nauwkeurige volumes, doordat het dode ruimte binnen de katheter, en maakt herhaald katheterisaties overbodig. </li><li> Om de glycosaminoglycaan laag van de blaas urotheel schaden, wordt 10 pi van 0,5 M zilvernitraatoplossing geïnjecteerd en toegestaan ​​om te wonen voor 10 seconden. Dit kan vormen een witte neerslag met de rest van urine. </li><li> Zuig en gooi de neerslag en de blaas de inhoud met behulp van een stilet naald. </li><li> Was de blaas door het injecteren van 100 ul steriel water. Zuig en gooi het water. Repebij wassen met steriel water 3 keer voor een totaal van 4 wasbeurten. </li><li> Plaats een 4-0 zijden stropdas rond de urethrale meatus om de urinebuis af te sluiten ter voorbereiding van katheter verwijderen. </li><li> Injecteer eerder bereide 2 x 10 6 KU-7-luc2-GFP-cellen in 50 ul met behulp van de stilet naald. </li><li> Tegelijkertijd verwijdert de katheter en stilet naald, waardoor de urinebuis afgesloten door de zijden das. </li><li> De muis zal worden gehandhaafd onder algemene verdoving voor 2 uur voor de zijden stropdas wordt verwijderd en het dier wordt gewekt. </li></ol> 3. Ultrageluid <ol><li> Algemene anesthesie wordt geïnduceerd met verdampte isofluraan en onderhouden via neuskegel. </li><li> Een VisualSonics Vevo 770 in vivo met hoge resolutie Micro-Imaging System (VisualSonics Inc, Toronto, Ontario, Canada) met de RMV-704 40 MHz probe werd gebruikt. </li><li> Plaats de muis in liggende positie op de echografie platform. </li><li> Zet het dier achterpotenmet tape om het teveel aan beweging te vermijden tijdens het manipuleren van het echoapparaat. </li><li> Breng echografie gel om de muis te bekken. </li><li> Laat een RMV-704 (40 MHz) ultrasone sonde op de muis bekken om dwars-of langsrichting beelden te verkrijgen. </li><li> Als tumor wordt gevonden, kunnen de beelden worden opgeslagen voor het meten van de tumor dimensies. </li></ol> 4. Bioluminescente Imaging <ol><li> Voer intraperitoneale injectie van 200 ul (150 mg / kg) luciferine substraat. </li><li> Laten narcose met verdampte isofluraan en te onderhouden via de neuskegel. </li><li> Plaats muizen in liggende positie binnen de bioluminescentie imager. </li><li> Vijf minuten na luciferine injectie, het meten van de bioluminescentie van het dier in fotonen per seconde. </li></ol> 5. Sarna Voorbereiding <ol><li> Synthetiseren RNA oligonucleotiden op een schaal van 50-100 mol. </li><li> Gloei complementaire enkelstrengs oligonucleotiden iNTO duplex saRNAs. </li><li> Lipide-nanodeeltjes (LNP)-Sarna bereid met de ioniseerbare lipide 1,2-dilinoleyl-4-(2 - dimethylamino) - [1,3]-dioxolaan (DLinKC2-DMA), disteroylphosphatidyl choline, cholesterol en PEG-DMG met een spontane vesicles formulering procedure als eerder beschreven. een </li></ol> 6. Intravesicale toediening van geformuleerde Sarna <ol><li> Na oprichting van de orthotope blaas tumor model worden muizen behandeld met intravesicale kleine activerende RNA (Särna) geformuleerd in lipide nanodeeltjes (LNPs) (tabel 1). </li><li> Narcose wordt opgesteld en bijgehouden met verdampte isofluraan, en steriele oftalmologische smeermiddel wordt toegepast. </li><li> Plaats het dier in rugligging. </li><li> Voer urethrale catheterisatie zoals eerder beschreven. </li><li> Plaats een 4-0 zijden stropdas rond de plasbuis en katheter. </li><li> Zuig alle urine van de katheter enblaas met behulp van een lege spuit en stilet naald. </li><li> Intravesicaal Injecteer LNP-Sarna voor een totale dosis van 50 pL (3 mg / kg). Tegelijkertijd verwijdert de katheter en stilet naald, waardoor de urinebuis afgesloten door de zijden das. </li><li> De muis blijft verdoofd met de urethra opgesloten gedurende 2 uur. </li><li> Behandeling met intravesicale LNP-Sarna begon op dag 4 na tumor implantatie. Muizen werden serieel behandeld elke 3 dagen, een totaal 14 behandelingen. </li></ol> 7. Representatieve resultaten Blaastumoren als gevolg van de KU-7-luc2-GFP-cellen kan gevolgd worden door luciferase bioluminescente beeldvorming (figuur 1A en C) en blaas echografie (figuur 1B en D). Tumoren zijn vaak waarneembaar binnen 3-5 dagen na de inenting cel. We vonden succesvolle blaas tumor implantatie in meer dan 90% van de muizen. Als de behandeling met intravesicale dsRNA volgt, kan de progressie van de tumor worden gecontroleerd wie deze modaliteiten. Nadat het dier is geslacht, kan groei van de tumor ook worden bevestigd met behulp van GFP-fluorescentie. In het algemeen betekent bioluminescentie gecorreleerd met gemiddelde afmetingen ultrasone blaastumoren zoals visueel gezien in fig. 1C en 1D. Na dieren gedood en tumor werd bevestigd door GFP, vonden wij dat bioluminescentie nauwer gecorreleerd met de aanwezigheid van levensvatbare tumor dan wel echometingen. Dit was vooral duidelijk bij muizen behandeld met Sarna (in tegenstelling tot controles), omdat resterende littekenweefsel in behandelde muizen was vaak gevisualiseerd door middel van ultrageluid, maar kon niet worden onderscheiden van de live-tumor. <img src="/files/ftp_upload/4207/4207fig1.jpg" alt="Figuur 1" /> Figuur 1. Tumor groeikinetiek van blaastumoren. (A) bioluminescentie meet de luciferase-activiteit binnen de blaastumoren te bevestigen hun locatie en groei. (B) In vivo blaas ultrasound het gebruik van een 40 MHz probe produceert tumor beelden waarvan de afmetingen nauwkeurig kan worden gemeten. (C) Grafieken ter illustratie van de tumor de progressieve toename van de bioluminescentie en echografie afmetingen. Waarden vertegenwoordigen de gemiddelde (+ / - standaarddeviatie) metingen van 6 dieren. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/4207/4207fig1large.jpg" target="_blank">Klik hier om een grotere afbeelding te bekijken</a> .

<ol><li>Semple, S. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rational+design+of+cationic+lipids+for+siRNA+delivery%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Rational design of cationic lipids for siRNA delivery.</a> Nature. 28, 172-176 (2010).</li>
<li>Li, L. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Small+dsRNAs+induce+transcriptional+activation+in+human+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Small dsRNAs induce transcriptional activation in human cells.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 103, 17337-17342 (2006).</li>
<li>Chen, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antitumor+effect+of+dsRNA-induced+p21%28WAF1%2FCIP1%29+gene+activation+in+human+bladder+cancer+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+cancer+therapeutics%22%5BJournal%5D)">Antitumor effect of dsRNA-induced p21(WAF1/CIP1) gene activation in human bladder cancer cells.</a> Molecular cancer therapeutics. 7, 698-703 (2008).</li>
<li>Chancellor, M. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preliminary+results+of+myoblast+injection+into+the+urethra+and+bladder+wall%3A+a+possible+method+for+the+treatment+of+stress+urinary+incontinence+and+impaired+detrusor+contractility%5BTitle%5D)+AND+%22Neurourology+and+urodynamics%22%5BJournal%5D)">Preliminary results of myoblast injection into the urethra and bladder wall: a possible method for the treatment of stress urinary incontinence and impaired detrusor contractility.</a> Neurourology and urodynamics. 19, 279-287 (2000).</li>
<li>Hadaschik, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+validated+mouse+model+for+orthotopic+bladder+cancer+using+transurethral+tumour+inoculation+and+bioluminescence+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22BJU+international%22%5BJournal%5D)">A validated mouse model for orthotopic bladder cancer using transurethral tumour inoculation and bioluminescence imaging.</a> BJU international. 100, 1377-1384 (2007).</li>
<li>Fu, C., Apelo, C. A., Torres, B., Thai, K. H., Hsieh, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mouse+Bladder+Wall+Injection%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Mouse Bladder Wall Injection.</a> J. Vis. Exp. (53), e2523(2011).</li>
<li>Dobek, G. L., Godbey, W. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+Orthotopic+Model+of+Murine+Bladder%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer.+J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">An Orthotopic Model of Murine Bladder.</a> Cancer. J. Vis. Exp. (48), 2535(2011).</li>
<li>Dinney, C. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+characterization+of+metastatic+variants+from+human+transitional+cell+carcinoma+passaged+by+orthotopic+implantation+in+athymic+nude+mice%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+urology%22%5BJournal%5D)">Isolation and characterization of metastatic variants from human transitional cell carcinoma passaged by orthotopic implantation in athymic nude mice.</a> The Journal of urology. 154, 1532-1538 (1995).</li>
</ol>

LCL is een benoemde uitvinder op octrooi-aanvragen met betrekking tot Sarna die zijn ingediend door de Universiteit van Californië in San Francisco en in licentie gegeven aan Alnylam Pharmaceuticals.

We presenteren een protocol voor de oprichting van een muis orthotope xenograft blaas tumor model, gevolgd door intravesicale behandeling van de tumoren met LNP geformuleerd Sarna dat de promotor van p21 cip1/waf1 (p21) richt zich voor transcriptionele activering. 2, 3 De resulterende tumoren kan bevestigd en bewaakt met bioluminescente beeldvorming en blaas echografie. Orthotope modellen kunnen beter intraperitoneaal, subcutaan of intraveneus modellen door een milieu van urine en urotheel die bete...

<table border="1"><tbody><tr><td> Naam van het serum </td><td> Vennootschap </td><td> Catalogusnummer </td><td> Opmerkingen (optioneel) </td></tr><tr><td> KU-7-luc-GFP-cellen </td><td> Caliper </td><td> 128091 </td><td></td></tr><tr><td> thymus naakt muizen (nu / nu) </td><td> Simonsen Laboratories </td><td> 6-7 weken oud </td><td> Sim: (NCR) nu / nu fisol </td></tr><tr><td> Ultrasound-eenheid </td><td> Visualsonics </td><td> Vevo 770 </td><td> RMV-704 probe </td></tr><tr><td> Bioluminescentie-eenheid </td><td> Caliper </td><td> IVIS Spectrum </td><td></td></tr><tr><td> Exel safelet katheter </td><td> Visser </td><td> 14-841-21 </td><td> 24G x ¾ &quot; </td></tr><tr><td> Zilvernitraat </td><td> Sigma </td><td> S8157 </td><td></td></tr><tr><td> Hamilton spuit </td><td> Hamilton company </td><td> 80301 </td><td></td></tr><tr><td> LNP-Sarna </td><td> Alnylam Pharmaceuticals </td><td></td><td></td></tr></tbody></table> Tabel 1. Specifieke reagentia en materialen.

een orthotope blaas tumor model en de evaluatie van intravesicale sarna behandeling

An Orthotopic Bladder Tumor Model and the Evaluation of Intravesical saRNA Treatment

We presenteren een nieuwe methode voor de behandeling van blaaskanker met intravesicaal afgeleverd kleine activerende RNA (Särna) in een orthotope xenograft muis blaas tumor model. De muis model wordt vastgesteld door urethrale catheterisatie onder inhalatie-narcose. Chemische brandwonden wordt vervolgens naar de blaas slijmvlies met behulp van intravesicale zilvernitraatoplossing om de blaas te glycosaminoglycaan laag verstoren en maakt het mogelijk cellen te hechten aan. Na enkele wasbeurten met steriel water, menselijke blaaskanker KU-7-luc2-GFP cellen worden bijgebracht door de katheter in de blaas te wonen gedurende 2 uur. Na de groei van blaastumoren wordt bevestigd en gecontroleerd door in vivo blaas echografie en bioluminescente beeldvorming. De tumoren worden dan intravesicaal behandeld met Särna geformuleerd in lipide nanodeeltjes (LNPs). Groei van de tumor wordt gecontroleerd met echografie en bioluminescentie. Alle stappen van deze procedure worden aangetoond in de bijgevoegde video.

De oprichting van een orthotope blaas tumor model om anti-tumor effecten van intravesicaal geleverd Sarna en monitoring groei van de tumor door middel van ultrageluid en bioluminescente beeldvorming te evalueren.

Een orthotope Blaas Tumor Model en de evaluatie van Intravesicale Sarna behandeling

Wij presenteren een nieuwe methode voor de behandeling van blaas kanker met intravesicaal toegediend small activating RNA (saRNA) in een orthotoop xenograft-muisblaas...

Wij presenteren een methode voor het vestigen van een orthotoop blaas-tumormodel in immuungecompromitteerde muizen. Deze tumoren worden behandeld met intravasculair toegediend kort dubbelstrengs RNA en gemonitord met zowel blaasultrasoon onderzoek als bioluminescentie-imaging. Algehele anesthesie wordt geïnduceerd met verdampt isofluraan en er wordt steriel oogsalf aangebracht.De muis wordt vervolgens in rugligging geplaatst en de anesthesie wordt in stand gehouden met isofluraan via een neuscone. Vervolgens moet de muis worden gecatheteriseerd. We gebruiken een intravenuze katheter van gauge 24 waarbij de inschuifnaald is verwijderd.Catheterisatie is vaak de moeilijkste en meest onvoorspelbare stap van het protocol. Voldoende smering met KY-gel en de juiste techniek zijn essentieel voor een succesvolle catheterisatie. Hier is het gebied van de vulva van de muis weergegeven.De urethra bevindt zich vlak onder de vulvaire plooien. Na het aanbrengen van glijmiddel worden de kathetertang gebruikt om de vulva en de urethra voorzichtig vast te pakken en te stabiliseren. Aanvankelijk werd een steilere hoek van 45 graden gebruikt om de urethra te canuleren, maar zodra de catheter in de urethra is, wordt een vlakkere hoek gehanteerd om soepel de blaas in te gaan.We laten dit proces hier zien. Nogmaals: zachte druk op het bekken om de urethra te rechtlijken kan vaak helpen en er moet zorgvuldig worden gewerkt om te voorkomen dat er te hard tegen weerstand wordt geduwd, aangezien dit kan leiden tot perforatie van de urethra of de blaas. Urine die hier in de katheter zichtbaar is, bevestigt deze positie binnen het lumen van de blaas.De urine in de katheter wordt vervolgens met de styletnaald verwijderd en de katheter blijft nu op zijn plaats. Er moeten ongeveer vijf millimeter van de katheter buiten de urethra zichtbaar blijven, zodat de punt van de katheter in het lumen van de blaas blijft en niet tegen de blaaswand rust. Als de katheter te ver wordt geplaatst, kan de punt in de blaaswand vast komen te zitten, wat injecties kan belemmeren.Voor alle volgende injecties wordt een spuit die is aangesloten op de styletnaald door de katheter geplaatst. Hierdoor kunnen nauwkeurige volumes worden geïnjecteerd door de dode ruimte in de katheter te elimineren, waardoor herhaaldelijke katheterisaties om een brandwond aan de blaaswand te veroorzaken overbodig worden.10 µL van 0,5 M zilvernitraat wordt geïnjecteerd en gedurende 10 seconden gelaten om in te werken. Het zilvernitraat kan een wit neerslag vormen met resterende urine binnen de blaas. Dit neerslag en de overgebleven oplossing worden uit de katheter verwijderd.Vervolgens wassen we de blaas vier keer met 100 µL steriel water, waarbij we telkens de vloeistof uit het lumen van de katheter verwijderen. Na deze eerste wasbeurt is het witte neerslag nog steeds zichtbaar in de katheter, maar bij elke wasbeurt wordt de vloeistof helderder. Er wordt een 4-0 zijden hechtdraad gebruikt om de urethra af te sluiten, waarna we klaar zijn om de kankercellen te injecteren.De cellen worden in een spuit geladen die is bevestigd aan de styletnaald, waarna de cellen in de blaas worden geïnjecteerd. De katheter wordt verwijderd en de urethra blijft vastgebonden terwijl de muis gedurende twee uur onder anesthesie blijft. De tumorprogressie wordt op vooraf vastgestelde intervallen gemonitord.Met behulp van in vivo bioluminescentie-imaging worden de muizen eerst geïnjecteerd met Lucifer en substraat via een intraperitoneale injectie. Nadat er een algemene anesthesie is opgewekt met verdampt isofluoraan, worden de muizen in rugligging in het ivus-apparaat geplaatst. De bioluminescentie wordt gemeten in eenheden van fotonen per seconde.De aanwezigheid van KU seven-cellen in de blaas van de muis is duidelijk zichtbaar en de bioluminescentie-intensiteit kan in de tijd worden gevolgd. De aanwezigheid en progressie van blaastumoren kunnen ook worden gemonitord met echografie. Nadat de algehele anesthesie is geïnduceerd met verdampt isofluraan, wordt steriele oogzalf aangebracht.De muis wordt in rugligging op de echotafel geplaatst. De narcose wordt in stand gehouden met isofluraan via een neusmasker. De achterpoten van de muis kunnen aan de tafel worden vastgemaakt om overmatige beweging van het lichaam te voorkomen tijdens het manipuleren van de echoprobe.Zodra dit is voltooid, wordt echogel aangebracht op het middenrif van het bekken van het dier. Nadat de gel is aangebracht, wordt een 40 megahertz probe bevestigd aan de houder en langzaam op het lichaam van het dier neergelaten. De blaas is duidelijk zichtbaar als een ronde, hypoechoïsche structuur in de middellijn.Indien het dier vóór de anesthesie geen significante irritatie heeft ondergaan, is de blaas gewoonlijk al uitgezet en hebben we gemerkt dat het niet nodig is om de muis te catheteriseren om blaasdistentie te bereiken. Zowel transversale als longitudinale beelden kunnen hier worden verkregen. Een tumor is eenvoudig zichtbaar binnen het lumen van de blaas.Indien er een tumor wordt vastgesteld, kunnen beelden worden opgeslagen voor het meten van de tumorafmetingen. Na de vestiging van de blaastumor worden de muizen intravesicaal behandeld met klein dubbelstrengs RNA geformuleerd in lipidenanodeeltjes. Er wordt een algemene anesthesie toegediend en er wordt opnieuw oogzalf aangebracht.De muis wordt vervolgens in rugligging geplaatst en er wordt een urethrale catheterisatie uitgevoerd. Zoals we eerder hebben beschreven, wordt een 4-0 zijden hechtdraad gebruikt om de urethra rond de katheter af te sluiten. Normaal gesproken worden er twee knopen gelegd, zoals hier wordt getoond.Een lege spuit die is voorzien van een stylet-naald wordt gebruikt om de blaas volledig te legen. Er worden 50 microliters kleine dubbelstrengs RNA intravesicaal toegediend voor een totale dosis van drie milligram per kilogram. De naald en de katheter worden vervolgens verwijderd.De muis blijft gedurende in totaal twee uur onder narcose terwijl de urethra is afgesloten. Na het bekijken van deze video zou u een goed inzicht moeten hebben in een methode voor het creëren van een orthotoop muisblaastumormodel, waarbij de tumor wordt gemonitord met bioluminescentie-imaging en echografie, en waarbij de tumor wordt behandeld met intravesicaal toegediend klein RNA. Er zijn enkele nuances aan de techniek, die enige oefening vereisen, vooral bij de catheterisatie, maar over het algemeen is het een protocol dat eenvoudig repliceerbaar zou moeten zijn.We hebben goede resultaten behaald bij het implanteren van blaas-tumoren in muizen, en de behandelingseffecten met het kleine RNA zijn zeer veelbelovend. Wat echter het meest opwindend is aan dit protocol, is dat hoewel we de muizen met klein RNA hebben behandeld, dezelfde techniek kan worden gebruikt om elke intravesicale therapie voor blaaskanker te testen.I.

an-orthotopic-bladder-tumor-model-evaluation-intravesical-sarna

Research

JoVE Journal

Medicine

Geneeskunde

Blaastumoren zijn gevestigd in vrouwelijke muizen in een minimaal invasieve wijze via catheterisatie, lokale cauterisatie, en de daaropvolgende aanhechting van carcinoom cellen om de branden sites.

Een orthotope Model van Murine Blaaskanker

In this video, we describe the orthotopic transplantation of cultured bladder tumor organoids into the murine bladder to study the role of the organ environment on developing tumors.

Bladder Tumor Organoid Model: A Method for Orthotopic Transplantation of Bladder Organoids into Recipient Murine Bladder

In this video, we describe the intravesical procedure of delivering cancer cells into the bladder of a mouse model. This procedure helps generate an orthotopic bladder tumor model that can be used to develop therapeutic strategies.

Modeling Orthotopic Bladder Tumor in Mouse Model: A Procedure for Intravesical Administration of Cancer Cells into Murine Bladder

Implantatie van kankercellen in het orgaan van oorsprong kan dienen als een nuttige preklinisch model om nieuwe therapieën te evalueren. MB49 blaascarcinoom cellen kunnen worden gekweekt in de blaas na intravesicale instillatie. Dit protocol toont katheterisatie van de blaas muis behoeve van tumor implantatie en adenovirale levering.

Een orthotope Blaaskanker Model voor Gene Delivery Studies

De gevestigde techniek om primaire invasieve orthotoop blaaskanker xenotransplantaten te enten vereist laparotomie en mobilisatie van de blaas. Deze procedure toebrengt significante morbiditeit op de muizen, technisch uitdagend en tijdrovend. Daarom hebben wij een hoge precisie, percutane benadering gebruik te maken van echografie begeleiding.

Minimaal Invasieve Oprichting van Muriene Orthotope Blaas Xenografts

Hier wordt de methode beschreven om een syngene muismodel van orthotope blaastumor op te zetten om de antitumoreffectiviteit van het bacteriële eiwit HP-NAP te evalueren.

Evaluatie van de werkzaamheid van de<em&gt; H. pylori</em&gt; Protein HP-NAP als een therapeutisch hulpmiddel voor de behandeling van blaaskanker in een orthotope Murine Model

Dit protocol beschrijft de generatie van muizen orthotope blaastumoren bij vrouwelijke C57BL / 6J muizen en de monitoring van tumorgroei.

Een muizen orthotope Blaas Tumor Model en Tumor Detection System

Lymfkliertest blaas tumoren zijn geïnduceerd met de kankerverwekkende stof van N-butyl-N-(4-hydroxybutyl), nitrosamine (BBN). Blaas tumor generatie is heterogeen; Daarom is een nauwkeurige beoordeling van tumor last nodig voordat randomisatie aan experimentele behandeling. Hier presenteren we een snelle, betrouwbare MRI-protocol om de grootte van de tumor en stadium te beoordelen.

Magnetische resonantie beeldvorming beoordeling van carcinogeen-geïnduceerde lymfkliertest blaas tumoren

Dit protocol beschrijft de generatie van door patiënten afgeleide orthotopic xenotransplantaatmodellen is-modellen door intra-vesisch bijbrengen van hoogwaardige urotheelcelcarcinoom cellen of intra-rectale injectie van colorectale kankercellen in niet-zwaarlijvige diabetische/ernstige gecombineerde immunodeficiëntie (NOD/SCID) muizen voor primaire tumorgroei en spontane metastasen onder invloed van lymfeklier stromale cellen, die de progressie van humane gemetastaseerde ziekten nabootst.

Patiënt-afgeleide Orthotopic xenograft modellen voor humaan Urotheelcelcarcinoom en colorectale kanker tumor groei en spontane metastasen

Een uitgebreid overzicht van de technieken die betrokken zijn bij het genereren van een muismodel van orale kanker en kwantitatieve controle van de tumor invasie in de tong door middel van multi-foton microscopie van gelabelde cellen wordt gepresenteerd. Dit systeem kan dienen als een nuttig platform voor de moleculaire beoordeling en werkzaamheid van het geneesmiddel van anti-invasieve verbindingen.

Multi-foton Imaging van de tumorcel invasie in een orthotope Muis Model van Oral plaveiselcelcarcinoom

Leer een orthotopisch blaastumormodel opzetten in immuungecompromitteerde muizen en de effectiviteit van intravesicale saRNA-behandeling evalueren met behulp van echografie en bioluminescentiebeeldvorming.

Een orthotope Blaas Tumor Model en de evaluatie van Intravesicale Sarna behandeling

Meer video's verkennen