Name: Het gebruik van LysoTracker tot geprogrammeerde celdood detecteren in embryos en differentiëren van embryonale stamcellen (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-10-11T13:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 44 s
Description: Leer hoe je geprogrammeerde celdood visualiseert in muizenembryo's en differentiërende embryonale stamcellen met LysoTracker-kleuring. Deze methode biedt een eenvoudige en effectieve aanpak voor ontwikkelingsbiologisch onderzoek.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Wij danken de leden van de Mariani lab om hulp te bewerken het protocol. Dit werk werd gefinancierd door een CIRM Postdoctoraal Training Grant (JLF), een CIRM BRUGGEN stage (TZTT), de Robert E. en mei R. Wright Foundation (FVM), en de Universiteit van Zuid-Californië (FVM).

1. LysoTracker Kleuring van muizenembryo&#39;s <ol><li> Genereer muis embryo&#39;s door het plaatsen van jonge (5-6 weken oud) vrouwen in mannelijke stud kooien. Monitor op volgende ochtend voor het verschijnen van een vaginale plug aangeeft dat paring heeft plaatsgevonden. Als het vrouwtje zwanger is, wordt &#39;s middags op de dag genaamd 0,5 dpc (dagen na coïtus). De procedure hier gepresenteerde is ideaal voor embryo&#39;s 7 tot 13 dpc. </li><li> Op de embryonale dag van belang, euthanaseren de vrouwelijke overeenkomstig de goedgekeurde protocollen en verwijder de baarmoeder. Verwijder de embryo&#39;s van de decidua in een 10 cm Petrischaal met Hanks BSS (zonder fenolrood). Verwijder de extra-embryonale membranen en kan ten minste eenmaal met Hanks BSS om vreemde weefsels en bloed te verwijderen. </li><li> Bereid LysoTracker Embryo kleuroplossing (5 mM LysoTracker in Hanks BSS). Een handige volume voor 1-2 nesten is 5 ml. Meng voorzichtig de kleurstof gelijkmatig betalen. </li><li> Voeg&#39;s naar de LysoTracker Embryo Staining Solution in een microfugebuis of flesje en incubeer bij 37 ° C gedurende 45 minuten. </li><li> Spoel heel zacht in Hanks BSS vier keer 5 min elke wasbeurt. </li><li> &#39;S nachts Fix in 4% paraformaldehyde. </li><li> Spoel af en Hanks BSS, 10 min, om de correctie te verwijderen. </li><li> Uitdrogen via een reeks methanol (50%, 75%, 80%, 100%, 5 min per stap) om achtergrondkleuring te elimineren. Dit is belangrijk voor het bereiken van een goede signaal-ruis tijdens het belichten. </li><li> Op dit punt kun je onbeperkt opslaan van de embryo monsters in methanol bij -20 ° C, beschermd tegen licht. </li></ol> Opmerking: Een weefselmonster kan worden bij elke stap van DNA genotypering echter kan het meest geschikt om een monster te nemen net voor opslag zodat tot deze stap alle monsters kan batch-verwerking. Verzamel een steekproef van weefsel uit de staart, ledematen of hoofd van elk embryo en zet alle in aparte buizen. Hydrateren het weefsel monster en voor te bereiden op genotypingen. 2. LysoTracker Kleuring van Differentiëren ES Culturen <ol><li> Bereid embryoid lichamen via de Opknoping Drop-methode 15 met een start dichtheid van 500 cellen per 20 ul druppel. </li><li> Na 3 dagen overdragen embryo lichamen suspensiekweek op 10 cm niet-hechtende petrischalen (die worden gebruikt voor bacteriologische werk). Cultuur gedurende 5 dagen, het veranderen van de media om de 2 dagen. </li><li> Op dag 7, het embryo lichamen over te brengen naar ontsloten 8-wells-kamer dia&#39;s (voeg 0,1% gelatine aan de kamers, wacht 5 minuten, te verwijderen, en de media toe te voegen). Overdracht 1 tot 2 embryo lichamen per kamer. </li><li> Cultuur voor 10 dagen, het veranderen van de media om de andere dag. Zorg ervoor dat de pipet dus plaats op de hoek van de kamer dia niet verstoren het embryo lichaam verbonden aan het glasoppervlak. Ook bij het toevoegen van vers medium ook de pipet plaatsen op de hoek van de kamer en langzaam de media. </li><li> Na 10 dagen van culture, om apoptose als positieve controle, een deel van de putjes te behandelen met 0,1 mM en 1,0 mM H 2 O 2 (voeg de H 2 O 2 naar vers medium, mix, voeg de cellen) gedurende 60 minuten. Spoel tweemaal met D-PBS en cultuur &#39;s nachts in de reguliere media. </li><li> Zuig bestaande media en voeg LysoTracker Cell kleuroplossing (500 nM LysoTracker (eindconcentratie) in media, 300 ul per kamer). </li><li> Incubeer bij 37 ° C gedurende 15 minuten. </li><li> Spoel tweemaal met D-PBS twee keer 5 min elk. </li><li> Fix in 4% paraformaldehyde gedurende 15 min bij RT. </li><li> Spoel tweemaal met D-PBS, 5 minuten. </li></ol> 3. Bekijk LysoTracker Stained Embryo&#39;s of ES culturen <ol><li> Bereid de celmonsters voor microscopie door afzuigen van het D-PBS; verwijderen van de kamer uit de dia lucht drogen gedurende ongeveer 5 min, en vervolgens toevoegen van een waterige fixeermiddel (Vectashield met DAPI of dergelijke). Plaats een folie barrière, terwijl drying bleken te verlagen van de fluorofoor. Monteer embryo&#39;s in een diepe depressie-glazen schaal of kleine petrischaal in Vectashield of iets dergelijks. </li><li> Visualiseer met een dissectie of samengestelde microscoop uitgerust met een rhodamine of Texas Red filter (LysoTracker RED DND-99, Opwinding / Emissie: 577/590 nm). De kleuring is meestal vrij helder dus lange belichtingstijden zijn meestal niet nodig. </li></ol> 4. Kwantificering van de resultaten met imaging-technieken <ol><li> Neem digitale foto&#39;s van uw monsters onder dezelfde blootstellingsomstandigheden in de handmatige modus. </li><li> Open de afbeeldingen in Adobe Photoshop of een vergelijkbaar imaging programma. Om de hoeveelheid LysoTracker vlekken te bepalen, selecteert u het rode kanaal en de drempel de afbeelding (de afbeelding omgezet naar zwart-wit), zodanig dat de rode vlekken nu wordt vertegenwoordigd door witte pixels. Selecteer de witte pixels en gebruik de histogram functie om de totale telling te verkrijgen. </li><li> Gebruik het blauwe kanaal te tellenhet aantal kernen in het veld. Het kan handig zijn om een ​​verslag van de telling te houden door annoteren het beeld. </li><li> Noteer de waarden en bereken dan het gemiddelde vlekken niveau per cel. Herhaal deze analyse met dezelfde drempel instelling voor alle beelden die u wilt proeven. </li></ol> 5. Representatieve resultaten Er is een normaal patroon van PCD tijdens de embryonale ontwikkeling die veranderen als een groeifactor gen, zoals Sonic hedgehog (Shh), 16,17 verwijderd. Aangezien LysoTracker is een kleine molecule kleurstof die zeer diffundeerbare, kan het hele embryo gevisualiseerd om gebieden van PCD ook diep in het mesenchym 12,13 beoordelen Figuur 1 toont de LysoTracker kleurpatroon voor normale en Shh -. / - Mutant mouse embryo&#39;s in 10.5dpc. In dit stadium wordt PCD sterk toegenomen Shh - / - embryo mutant, vooral in de ledemaat en somiet regions. Gedeelten van het embryo kan worden afgebeeld geheel gemonteerde bij een grotere vergroting (1B) om de algehele patroon beoordelen. Ontleed porties kan ook secties met een trillende microtoom (1C) of een cryostaat (DF) om PCD&#39;s tonen in meer detail. TUNEL analyse best op dunne secties waar penetratie van de terminal transferase minder problematisch. LysoTracker kleuring en TUNEL assay kan in hetzelfde weefsel (Figuur 1D-G). Deze resultaten tonen aan dat hoewel er geen strikte correlatie tussen 01:01 en LysoTracker TUNEL kleuring, de algemene gebieden van overlap PCD aanzienlijk. Bij een hogere vergroting, kan men zien dat puncta vlek positief met de TUNEL assay maar niet met de LysoTracker kleurstof, puncta dat alleen de vlek LysoTracker kleurstof en puncta met overlappende kleuring. Wanneer een EB wordt uitgeplaat op een met gelatine beklede oppervlak, differentiërende cellen trekkendee naar buiten. Na 10 dagen kweken zullen cellen differentiëren naar verschillende celtypen waaronder neuronen, spiercellen en hartspiercellen. De culturen in figuur 2 bevatten gemengde populaties van deze celtypen, maar men kan aanpassen ons protocol te bestuderen PCD van een bepaald celtype van belang. Zo kan de EB worden behandeld met retinoïnezuur de differentiatie van neuronen 19 verbeteren en de LysoTracker assay kan worden gebruikt om neuronale celdood te analyseren onder verschillende omstandigheden. In de normale kweek van gedifferentieerde ES cellen, zijn er een paar cellen die PCD ondergaan en deze kunnen worden gedetecteerd met LysoTracker en / of TUNEL assays (Figuur 2A). PCD kan worden veroorzaakt door een aantal verschillende cytotoxische middelen zoals waterstofperoxide (H 2 O 2) die oxidatieve schade veroorzaakt en initieert de apoptotische route 20,21. Een lage dosis van H 2 O 2 verhoogt zowelLysoTracker en TUNEL kleuring vergelijking met geen behandeling, terwijl een hoge dosis, celkrimp en wijdverbreide LysoTracker en TUNEL positiviteit. Vergelijkbaar met de resultaten in het embryo, is het mogelijk te zien dat puncta vlek positief met de TUNEL assay maar niet met de LysoTracker kleurstof, puncta dat alleen de vlek LysoTracker kleurstof en puncta met overlappende kleuring. Het gevolg van de toepassing van een cytotoxisch middel dat apopotosis induceert vergeleken met serum honger voorwaarden autophagy (figuur 2D) induceren. Cellen die een proeftijd serum verhongering (1 uur) vertonen een ander patroon waar LysoTracker en TUNEL kleuring niet sterk correleren. LysoTracker kleuring is sterk toegenomen in vergelijking met niet-behandelde kweken, maar TUNEL positiviteit is op een normaal niveau. Gebruikmakend van standaard tools beschikbaar in Adobe Photoshop kunt LysoTracker vlekken worden gekwantificeerd met een eenvoudige drempelwaarde methodedie toelaat om bereken het gemiddelde niveau voor een kleuring celpopulatie. Figuur 3A-B toont een voorbeeld afbeelding er tijdens de kwantificering proces. Beginnend met een uitgangswaarde beeld met LysoTracker kleuring in het rode kanaal en de DAPI gekleurde kernen in het blauwe kanaal (paneel 3A), werd het rode kanaal van deze afbeelding thresholded om het beeld om te zetten in zwart-wit en de witte pixels waren geselecteerd en geteld (Figuur 3A). Een drempelwaarde niveau werd gekozen, dat staat voor de LysoTracker kleuringspatroon. Zoals met elke methode die kwantificering beelden gebruikt, is het belangrijk om overbelichting foto&#39;s, daar dit kan leiden tot over-benadrukken verschillen. Het aantal kernen in het veld kan worden geteld door naar alleen het blauwe kanaal (Figuur 3B) en het markeren van de kernen met een tekenprogramma zoals een penseel terwijl het tellen (Figuur 3B). Men kan dan uitdrukken ee mate van kleuring door het gemiddelde niveau van kleuring per cel (aantal pixels / kernen count). Wil men dit algoritme gebruiken voor high through-put screening kunnen de meeste screening pakketten meten helderheid in een bepaald kanaal en een object identifier functie die kernen tellen in een vullen, maar de meest gebruikelijke toepassingen de handmatige methode is snel en eenvoudig. Een voorbeeld werd een monster gebied van figuren 2A-C gekwantificeerd en de resultaten bevestigen dat toenemende concentraties H 2 O 2 resulteert in een hoger LysoTracker kleuring (Figuur 3C). <img src="/files/ftp_upload/4254/4254fig1.jpg" alt="Figuur 1"/> Figuur 1. LysoTracker kleuring in normale en Shh - / - embryo&#39;s. A, A &#39;Normal en Shh -. / - Muis embryo op 10,5 dpc, gekleurd met Red LysoTracker, gemonteerd in Vectashield en gefotografeerd ondereen epiflourescence ontleden microscoop. Haakjes geven de locatie van de voorpoten B, B &#39;voorpoot van normale en Shh -.. / - Embryo afgebeeld bij een grotere vergroting. Let op de normale domeinen van celdood zoals de &#39;Posterior Necrotische Zone &quot;(aangegeven met een sterretje) en een gebied in het proximale mesenchym van de ledematen (gemarkeerd met een pijl). Shh null ledematen vertonen sterkere kleuring in de mediale en distale gedeelte . C, C &#39;. Medial secties door de voorpoot knop van zowel normale als null ledematen. Let op de aanwezigheid van kleuring in de proximale mesenchym (pijl) en AER (pijlpunt) van de normale ledematen en sterke kleuring in de dorsale en ventrale en distale mesenchym in de null ledematen. DF. Hetzelfde deel (12 micron, bevroren sectie) werd afgebeeld voor LysoTracker en TUNEL kleuring (Roche 1684795). De sectie passeert het distale deel van de Shh null mesencHyme. De pijlpunt wijst naar de AER. Merk op hoe de algemene patroon is vergelijkbaar met beide methoden, maar de kleuring niet volledig overlappen. G, G &#39;. Bij een hogere vergroting van de AER en mesenchym, kan men zowel de aanwezigheid van die puncta LysoTracker of TUNEL-positieve Alleen als puncta met overlappende kleuring. <img src="/files/ftp_upload/4254/4254fig2.jpg" alt="Figuur 2"/> Figuur 2. LysoTracker kleuring in gedifferentieerde ES cellen. Differentiërende cellen werden uitgeplaat op slides met 8 kamers in afwezigheid van LIF. Te tonen hoe LysoTracker en TUNEL kleuring vergelijken, werd de apoptose route geïnduceerd met 2 verschillende doses H 2 O 2, terwijl de autophagy pathway werd geïnduceerd met 1 uur serum verhongering. Deze beelden zijn gemaakt met een Zeiss LSM5 confocale microscoop A-A&#39;&#39;:. Onbehandeld culturen tonen enkele normale apoptose, zoals aangegeven door LysoTRacker en TUNEL kleuring. Het patroon met behulp van beide technieken vooral overlappingen (witte pijlen), echter, kan men een paar puncta die LysoTracker positief alleen (rode pijlen) zie B-B&#39;&#39;, CC &quot;:. Behandeling met toenemende hoeveelheden van H 2 O 2 stimuleert apoptose . de lagere dosis toont meer LysoTracker en TUNEL positieve puncta in vergelijking met onbehandelde cellen. hogere dosis induceert in nog LysoTracker en TUNEL positieve puncta. White pijlen overlappende kleuring, terwijl rode pijlen wijzen naar puncta die positief zijn voor LysoTracker alleen. Het is ook mogelijk om puncta die alleen positief voor TUNEL kleuring (groene pijlen) DD &quot;:. Serum honger kan induceren autophagy, die een ophoping van materiaal in lysosomen en autophagolysosomes stimuleren. Merk op hoe veel meer LysoTracker puncta zichtbaar zijn in vergelijking met onbehandelde culturen. TUNEL positieve puncta aanwezig zijn (waarvan de meeste overlappende LysoTracker vleking, witte pijlen), maar het aantal is sterk toegenomen in vergelijking met onbehandelde omstandigheden. Bovendien is onder serum honger omstandigheden, LysoTracker alleen positieve puncta vaak voorkomen (rode pijlen). <img src="/files/ftp_upload/4254/4254fig3.jpg" alt="Figuur 3"/> Figuur 3. Kwantificeringsmethode het niveau van kleuren in een populatie cellen met Adobe Photoshop beoordelen. A: Een deel van figuur 2A werd gekozen en de LysoTracker (rode) en DAPI kleuring (kernen, blauwe kanaal) wordt in dit paneel A &#39;:. Het rode kanaal van figuur 3A werd thresholded converteren naar een zwart- -wit beeld. De witte pixels kan vervolgens worden geselecteerd en geteld met behulp van het histogram functie B-B &#39;:. De blauwe kanaal toont de kernen en terwijl ze te tellen, kan het beeld worden geannoteerd met een tekening functie zoals een penseel C:. Dit is een ex-voldoende kwantificering van monsters van panelen 2A-C. De gegevens worden weergegeven als pixels per kernen. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/4254/4254fig3large.jpg" target="_blank">Klik hier om een grotere afbeelding te bekijken</a> .

<ol><li>Baehrecke, E. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((How+death+shapes+life+during+development%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Mol.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">How death shapes life during development.</a> Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 3, 779-787 (2002).</li>
<li>Meier, P., Finch, A., Evan, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Apoptosis+in+development%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Apoptosis in development.</a> Nature. 407, 796-801 (2000).</li>
<li>Ikonomidou, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ethanol-induced+apoptotic+neurodegeneration+and+fetal+alcohol+syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Ethanol-induced apoptotic neurodegeneration and fetal alcohol syndrome.</a> Science. 287, 1056-1060 (2000).</li>
<li>Dunty, W. C., Chen, S. Y., Zucker, R. M., Dehart, D. B., Sulik, K. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+vulnerability+of+embryonic+cell+populations+to+ethanol-induced+apoptosis%3A+implications+for+alcohol-related+birth+defects+and+neurodevelopmental+disorder%5BTitle%5D)+AND+%22Alcohol+Clin.+Exp.+Res%22%5BJournal%5D)">Selective vulnerability of embryonic cell populations to ethanol-induced apoptosis: implications for alcohol-related birth defects and neurodevelopmental disorder.</a> Alcohol Clin. Exp. Res. 25, 1523-1535 (2001).</li>
<li>Price, O. T., Lau, C., Zucker, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+fluorescence+of+5-FU-treated+fetal+rat+limbs+using+confocal+laser+scanning+microscopy+and+Lysotracker%5BTitle%5D)+AND+%22Cytometry+A%22%5BJournal%5D)">Quantitative fluorescence of 5-FU-treated fetal rat limbs using confocal laser scanning microscopy and Lysotracker.</a> Cytometry A. 53, 9-21 (2003).</li>
<li>Jacobson, M. D., Weil, M., Raff, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Programmed+cell+death+in+animal+development%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Programmed cell death in animal development.</a> Cell. 88, 347-354 (1997).</li>
<li>Fuchs, Y., Steller, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Programmed+cell+death+in+animal+development+and+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Programmed cell death in animal development and disease.</a> Cell. 147, 742-758 (2011).</li>
<li>Qu, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autophagy+gene-dependent+clearance+of+apoptotic+cells+during+embryonic+development%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Autophagy gene-dependent clearance of apoptotic cells during embryonic development.</a> Cell. 128, 931-946 (2007).</li>
<li>Grimsley, C., Ravichandran, K. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cues+for+apoptotic+cell+engulfment%3A+eat-me%2C+don%27t+eat-me+and+come-get-me+signals%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Cues for apoptotic cell engulfment: eat-me, don't eat-me and come-get-me signals.</a> Trends Cell Biol. 13, 648-656 (2003).</li>
<li>Lauber, K., Blumenthal, S. G., Waibel, M., Wesselborg, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clearance+of+apoptotic+cells%3A+getting+rid+of+the+corpses%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Cell%22%5BJournal%5D)">Clearance of apoptotic cells: getting rid of the corpses.</a> Mol. Cell. 14, 277-287 (2004).</li>
<li>Haller, T., Dietl, P., Deetjen, P., Volkl, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+lysosomal+compartment+as+intracellular+calcium+store+in+MDCK+cells%3A+a+possible+involvement+in+InsP3-mediated+Ca2%2B+release%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Calcium%22%5BJournal%5D)">The lysosomal compartment as intracellular calcium store in MDCK cells: a possible involvement in InsP3-mediated Ca2+ release.</a> Cell Calcium. 19, 157-165 (1996).</li>
<li>Zucker, R. M., Hunter, S., Rogers, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Confocal+laser+scanning+microscopy+of+apoptosis+in+organogenesis-stage+mouse+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Cytometry%22%5BJournal%5D)">Confocal laser scanning microscopy of apoptosis in organogenesis-stage mouse embryos.</a> Cytometry. 33, 348-354 (1998).</li>
<li>Zucker, R. M., Hunter, E. S. 3rd, Rogers, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Apoptosis+and+morphology+in+mouse+embryos+by+confocal+laser+scanning+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Methods%22%5BJournal%5D)">Apoptosis and morphology in mouse embryos by confocal laser scanning microscopy.</a> Methods. 18, 473-480 (1999).</li>
<li>Gavrieli, Y., Sherman, Y., Ben-Sasson, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+programmed+cell+death+in+situ+via+specific+labeling+of+nuclear+DNA+fragmentation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Identification of programmed cell death in situ via specific labeling of nuclear DNA fragmentation.</a> J. Cell Biol. 119, 493-501 (1992).</li>
<li>Foty, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Simple+Hanging+Drop+Cell+Culture+Protocol+for+Generation+of+3D+Spheroids%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">A Simple Hanging Drop Cell Culture Protocol for Generation of 3D Spheroids.</a> J. Vis. Exp. (51), e2720(2011).</li>
<li>Chiang, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Manifestation+of+the+limb+prepattern%3A+limb+development+in+the+absence+of+sonic+hedgehog+function%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Manifestation of the limb prepattern: limb development in the absence of sonic hedgehog function.</a> Dev. Biol. 236, 421-435 (2001).</li>
<li>Ishibashi, M., McMahon, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+sonic+hedgehog-dependent+signaling+relay+regulates+growth+of+diencephalic+and+mesencephalic+primordia+in+the+early+mouse+embryo%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">A sonic hedgehog-dependent signaling relay regulates growth of diencephalic and mesencephalic primordia in the early mouse embryo.</a> Development. 129, 4807-4819 (2002).</li>
<li>Schuldiner, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induced+neuronal+differentiation+of+human+embryonic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Induced neuronal differentiation of human embryonic stem cells.</a> Brain Res. 913, 201-205 (2001).</li>
<li>Bain, G., Kitchens, D., Yao, M., Huettner, J. E., Gottlieb, D. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Embryonic+stem+cells+express+neuronal+properties+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Embryonic stem cells express neuronal properties in vitro.</a> Dev. Biol. 168, 342-357 (1995).</li>
<li>Dumont, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hydrogen+peroxide-induced+apoptosis+is+CD95-independent%2C+requires+the+release+of+mitochondria-derived+reactive+oxygen+species+and+the+activation+of+NF-kappaB%5BTitle%5D)+AND+%22Oncogene%22%5BJournal%5D)">Hydrogen peroxide-induced apoptosis is CD95-independent, requires the release of mitochondria-derived reactive oxygen species and the activation of NF-kappaB.</a> Oncogene. 18, 747-757 (1999).</li>
<li>Hampton, M. B., Orrenius, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dual+regulation+of+caspase+activity+by+hydrogen+peroxide%3A+implications+for+apoptosis%5BTitle%5D)+AND+%22FEBS+Lett%22%5BJournal%5D)">Dual regulation of caspase activity by hydrogen peroxide: implications for apoptosis.</a> FEBS Lett. 414, 552-556 (1997).</li>
<li>Wood, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mesenchymal+cells+engulf+and+clear+apoptotic+footplate+cells+in+macrophageless+PU.1+null+mouse+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Mesenchymal cells engulf and clear apoptotic footplate cells in macrophageless PU.1 null mouse embryos.</a> Development. 127, 5245-5252 (2000).</li>
<li>Scott, R. C., Juhasz, G., Neufeld, T. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+induction+of+autophagy+by+Atg1+inhibits+cell+growth+and+induces+apoptotic+cell+death%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Biol%22%5BJournal%5D)">Direct induction of autophagy by Atg1 inhibits cell growth and induces apoptotic cell death.</a> Curr. Biol. 17, 1-11 (2007).</li>
<li>Rodriguez-Enriquez, S., Kim, I., Currin, R. T., Lemasters, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tracker+dyes+to+probe+mitochondrial+autophagy+%28mitophagy%29+in+rat+hepatocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Autophagy%22%5BJournal%5D)">Tracker dyes to probe mitochondrial autophagy (mitophagy) in rat hepatocytes.</a> Autophagy. 2, 39-46 (2006).</li>
<li>Bampton, E. T., Goemans, C. G., Niranjan, D., Mizushima, N., Tolkovsky, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+dynamics+of+autophagy+visualized+in+live+cells%3A+from+autophagosome+formation+to+fusion+with+endo%2Flysosomes%5BTitle%5D)+AND+%22Autophagy%22%5BJournal%5D)">The dynamics of autophagy visualized in live cells: from autophagosome formation to fusion with endo/lysosomes.</a> Autophagy. 1, 23-36 (2005).</li>
<li>Boya, P., Mellen, M. A., de la Rosa, E. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((How+autophagy+is+related+to+programmed+cell+death+during+the+development+of+the+nervous+system%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem.+Soc.+Trans%22%5BJournal%5D)">How autophagy is related to programmed cell death during the development of the nervous system.</a> Biochem. Soc. Trans. 36, 813-817 (2008).</li>
<li>Galluzzi, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Guidelines+for+the+use+and+interpretation+of+assays+for+monitoring+cell+death+in+higher+eukaryotes%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Death+Differ%22%5BJournal%5D)">Guidelines for the use and interpretation of assays for monitoring cell death in higher eukaryotes.</a> Cell Death Differ. 16, 1093-1107 (2009).</li>
<li>Klionsky, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Guidelines+for+the+use+and+interpretation+of+assays+for+monitoring+autophagy+in+higher+eukaryotes%5BTitle%5D)+AND+%22Autophagy%22%5BJournal%5D)">Guidelines for the use and interpretation of assays for monitoring autophagy in higher eukaryotes.</a> Autophagy. 4, 151-175 (2008).</li>
</ol>

Geen belangenconflicten verklaard.

Belangrijke kenmerken van apoptose omvatten de detectie van DNA schade met de TUNEL assay, samen met de detectie van caspase activiteit (gedetecteerd met mAbs of een bindend molecuul zoals zVAD-fmk) de waarneming van cellulaire veranderingen, en de presentatie van fosfatidylserine (PS ) op het membraanoppervlak (gedetecteerd door Annexine V binding). Er zijn enkele nadelen met elk van deze assays. Bijvoorbeeld, de terminal transferase in de TUNEL assay niet doordringen dan een paar cellagen. Annexine V kan ook markeren ...

<table border="1"><tbody><tr><td> Naam van het reagens </td><td> Vennootschap </td><td></td><td> Catalogusnummer </td></tr><tr><td> LysoTracker Red DND-99 </td><td> Invitrogen </td><td> # L-7528 </td><td></td></tr><tr><td> Hanks BSS </td><td> Invitrogen </td><td> 14025-076 </td><td></td></tr><tr><td> Paraformaldehyde </td><td> EMD </td><td> EM-PX0055-3 </td><td></td></tr><tr><td> Vectashield </td><td> VECTOR </td><td> H-1200 </td><td></td></tr><tr><td> DMEM </td><td> Cellgro </td><td> 10-013-CV </td><td></td></tr><tr><td> Niet-essentiële aminozuren </td><td> Cellgro </td><td> 25-025 CI- </td><td></td></tr><tr><td> Natriumpyruvaat </td><td> Cellgro </td><td> 25-000-CI </td><td></td></tr><tr><td> FBS </td><td> Hyclone </td><td> SH30071.02 </td><td></td></tr><tr><td> Pen-Strep </td><td> Invitrogen </td><td> 15140-122 </td><td></td></tr><tr><td> b-mercaptoethanol, 50 mM </td><td> Invitrogen </td><td> 21985-023 </td><td></td></tr><tr><td> LabTek-II Kamer dia&#39;s (8-well) </td><td> Nalge Nunc International </td><td> 154534 </td><td></td></tr><tr><td> 0,1% Gelatine </td><td> Millipore </td><td> ES-006-B </td><td></td></tr><tr><td> Dulbecco&#39;s PBS (D-PBS) </td><td> Cellgro </td><td> 21-031-CV </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> Oplossing Recepten 4% paraformaldehyde Voor 100 ml: <ol><li> Meng 4 g paraformaldehyde, 90 ml H 2 O en NaOH (een druppel 2N NaOH). De paraformaldehyde zal niet ingaan op oplossing totdat u hebt toegevoegd een aantal NaOH om de pH te verhogen. </li><li> Roer en warmte bij 60 ° C totdat al het poeder in oplossing (~ 10-20 min.). Niet oververhitten. </li><li> Voeg ~ 10 ml 10x PBS tot een eindvolume van 100 ml te bereiken. </li><li> Bij -20 ° C in geschikte (~ 10 ml of ~ 40 ml) porties. </li></ol> WAARSCHUWING: Paraformaldehyde in &#39;kraag&#39; vorm (gecomprimeerd kleine pellets) minder poederachtig en kan daarom gemeten buiten een kap te worden. Maar je moet nog steeds dragen van een beschermend stofmasker (N95minstens) tijdens hantering. EB Cultuur Media Voor 500 ml EB Media: <table border="1"><tbody><tr><td> DMEM: </td><td> 404,5 ml </td></tr><tr><td> FBS: </td><td> 75,0 ml </td></tr><tr><td> L-Glutamine: </td><td> 5,0 ml </td></tr><tr><td> Penicilline / streptomycine: </td><td> 5,0 ml </td></tr><tr><td> Niet-essentiële aminozuren: </td><td> 5,0 ml </td></tr><tr><td> Natriumpyruvaat: </td><td> 5,0 ml </td></tr><tr><td> β-Mercaptoethanol: </td><td> 500pl </td></tr></tbody></table></td></tr></tbody></table>

het gebruik van lysotracker tot geprogrammeerde celdood detecteren in embryo&#39;s en differentiëren van embryonale stamcellen

Use of LysoTracker to Detect Programmed Cell Death in Embryos and Differentiating Embryonic Stem Cells

Geprogrammeerde celdood (PCD) voor bij volwassenen met normaal weefsel homeostase en tijdens embryonale ontwikkeling aan weefsels en organen 1,2,6,7 vorm. Tijdens de ontwikkeling kan giftige chemicaliën of genetische veranderingen veroorzaken een toename van de PCD of wijzigen PCD patronen resulteert in ontwikkelings-afwijkingen en aangeboren afwijkingen 3-5. De etiologie van deze gebreken begrijpen, kunnen de studie van embryo&#39;s aangevuld met in vitro assays die gebruik differentiëren embryonale stamcellen (ES) cellen. Apoptose is een goed bestudeerde vorm van PCD dat zowel intrinsieke en extrinsieke signalering naar de caspase enzym cascade activeren omvat. Kenmerkend cel veranderingen omvatten membraan blaarachtig, nucleaire krimpen, en DNA-fragmentatie. Andere vormen van PCD niet betrokken caspase activiteit en kan het eindresultaat van langdurige autofagie. Ongeacht de route PCD, stervende cellen moeten worden verwijderd. Bij volwassenen zijn de immuuncellen perfOrm deze functie, terwijl embryo, waar het immuunsysteem nog niet ontwikkeld verwijdering gebeurt door een alternatief mechanisme. Het mechanisme omvat naburige cellen (de zogenaamde &quot;niet-professionele fagocyten&quot;) het nemen van een fagocytische rol, ze herkennen het signaal &#39;ik eet&#39; op het oppervlak van de stervende cel en overspoelen het 8-10. Na afblazen, wordt het puin gebracht naar het lysosoom voor degradatie. Dus ongeacht PCD mechanisme, kan een toename van lysosomale activiteit gecorreleerd met verhoogde celdood. Om PCD, een eenvoudige test om te lysosomen in dikke weefsels en multilayer differentiëren culturen visualiseren studeren kan nuttig zijn. LysoTracker kleurstof is een sterk oplosbare klein molecuul dat wordt vastgehouden in zure subcellulaire compartimenten zoals het lysosoom 11-13. De kleurstof wordt door diffusie en door de circulatie. Omdat penetratie is niet een belemmering, visualisatie van PCD in dikke weefsels en multi-layer culturen is mogelijk 12,13 </sup&gt;. Daarentegen wordt TUNEL (Terminal deoxynucleotidyl transferase dUTP nick end labeling) analyse 14 tot kleine monsters, coupes en monolaagkweken omdat de procedure is de invoer / permeabiliteit van een terminal transferase. In tegenstelling tot Aniline blauw, die verspreidt en wordt opgelost door oplosmiddelen, LysoTracker Red DND-99 is Muur, helder en stabiel. Kleuring kan zichtbaar worden gemaakt met standaard TL-of confocale microscopie in whole-mount of sectie met behulp van water of oplosmiddelen op basis van montage media 12,13. Hier beschrijven we protocollen het gebruik van deze kleurstof te kijken naar PCD in normale en sonic hedgehog null muis embryo&#39;s. Daarnaast tonen we analyse van PCD in differentiëren ES celkweken zijn en een eenvoudige kwantificering methode. Samenvattend kan LysoTracker vlekken zijn een geweldige aanvulling op andere methoden voor het opsporen PCD.

Wij presenteren een eenvoudig protocol om gebieden van geprogrammeerde celdood (PCD) in muizenembryo&#39;s en onderscheidende embryonale stamcellen (ES) celkweken met een sterk oplosbare kleurstof genoemd LysoTracker visualiseren.

Het gebruik van LysoTracker tot geprogrammeerde celdood detecteren in embryo&#39;s en differentiëren van embryonale stamcellen

Geprogrammeerde celdood (PCD) vindt plaats bij volwassenen om de normale weefselhomeostase te handhaven en tijdens de embryonale ontwikkeling om weefsels vorm te geven en ...

Het doel van de volgende procedure is om aan te tonen hoe de lysosomen van twee soorten monsters, muizenembryo's en gedifferentieerde stamcellen, kunnen worden gekleurd met lyso tracker-kleurstof om patronen van celdood te detecteren. Om embryomonsters voor te bereiden, worden embryo's eerst chirurgisch geïsoleerd en in een schaaltje geplaatst om gedifferentieerde cellen voor te bereiden. Embryonale stamcellen worden gebruikt om embryolichamen te creëren.Deze embryo-lichamen worden in suspensie gekweekt en vervolgens als monolaag op een kamerdia gegroeid. De embryo's in de monolaag kunnen worden geïncubeerd in LysoTracker Red en vervolgens worden gespoeld en gefixeerd; de monsters kunnen daarna worden gefotografeerd om de kleuringsresultaten te onderzoeken en te kwantificeren die LysoTracker tonen. Kleuring is een eenvoudige procedure die kan worden gebruikt om geprogrammeerde celdood in embryo's en gekweekte cellen te analyseren.Het belangrijkste voordeel van deze techniek ten opzichte van bestaande methoden, zoals tunnel-analyse, is dat dik weefsel snel en eenvoudig kan worden geanalyseerd omdat OT-tracker-kleurstof een klein molecuul is. Hoewel deze methode inzicht kan geven in patronen van geprogrammeerde celdood in muizenembryo's en gedifferentieerde culturen, kan deze ook worden toegepast op andere weefseltypen, zoals kippenembryo's en differentiërende volwassen stamcellen. Plaats jonge vrouwelijke muizen bij een mannelijk dekdier en controleer de volgende ochtend op een vaginale prop, wat aangeeft dat de paring heeft plaatsgevonden.Het middaguur op de dag dat de vaginale prop verschijnt, wordt effectief beschouwd als dag 0,5. Euthanaseer het vrouwtje volgens goedgekeurde protocollen op de embryonale dag van belang en verplaats de baarmoeder naar een Petrischaal van 10 centimeter met Hank's BSS en spoel al het bloed weg. Scheid de embryo's en verwijder ze uit de baarmoeder.Verwijder de extra embryonale membranen en spoel ten minste één keer met Hank's BSS om vreemde weefsels en bloed te verwijderen. Houd de gedissecteerde embryo's op ijs tijdens het reinigen. De overige.Bereid vijf milliliter Liso tracker embryo-kleuringsoplossing. Dit volume is voldoende voor één of twee embryo-collecties. Meng de oplossing voorzichtig om de kleurstof gelijkmatig te verspreiden, breng vervolgens de embryo's over naar de oplossing en incubeer ze gedurende 45 minuten bij 37 °C.Spoel de embryo's na de incubatie voorzichtig vier keer gedurende vijf minuten per wasbeurt met Hank's BSS. Het is belangrijk om de spoelingen voorzichtig uit te voeren om beschadiging van het weefsel te voorkomen. Verwijder de vloeistof langzaam, waarbij u nauwlettend let op de positie van de delicate embryo's en er altijd voor zorgt dat er een deel van de vloeistof achterblijft om ze te bedekken.Fixeer de embryo's vervolgens gedurende de nacht in 4% paraformaldehyde. Spoel de embryo's één keer gedurende 10 minuten met Hank's BSS om het fixatief te verwijderen. Dehydrateer de weefsels nu via een methanolserie om achtergrondkleuring te elimineren.Deze stap verbetert de signaal-ruisverhouding tijdens de beeldvorming voorafgaand aan de opslag. Verzamel indien nodig een weefselmonster van elk embryo voor genetische analyse. Rehydrateer het weefselmonster later vóór het genotyperen.Scheid de embryo's in individuele buisjes met labels die overeenkomen met het weefselmonster. De geïsoleerde embryo's kunnen nu onbeperkt worden bewaard in methanol bij min 20 °C. Bescherm tegen licht.Begin met het voorbereiden van embryok lichamen via de hanging drop-methode. Met een startdichtheid van 500 cellen per druppel van 20 µL na drie dagen worden de embryolichesamen overgebracht naar suspensieculturen op niet-adherente Petri schalen van 10 cm. Kweek deze gedurende vijf dagen en ververs het medium elke twee dagen na deze eerste vijf dagen.Breng de embryo-lichamen over naar gegelatiniseerde slides met acht kamers, waarbij één of twee embryo-lichamen in elke kamer worden geplaatst. Kweek de embryo-lichamen nog 10 dagen. Vervang na 10 dagen om de dag het medium door het bestaande medium voorzichtig af te zuigen en 300 µL Lyotracker-celkleuringsoplossing aan elke kamer toe te voegen.Zorg ervoor dat u het medium handmatig pipetteert door de pipetpunt in de hoek van de kamer te plaatsen. Op deze manier verwijdert u niet per ongeluk de lichamen die nog bezig zijn zich aan het glasoppervlak te hechten. Plaats bij het opnieuw toevoegen van het medium de pipetpunt in de hoek van de kamer en voeg het medium zeer langzaam toe.Incubeer de kamers 15 minuten bij 37 °C. Spoel ze vervolgens tweemaal met DPBS gedurende vijf minuten per spoelbeurt. Fixeer nu de cellen 15 minuten in 4% paraldehyde bij kamertemperatuur.Verwijder vervolgens het fixeermiddel met DPBS in twee spoelingen van vijf minuten. Om de embryo's te monteren, plaatst u ze in een glasplaatje met een diepe uitsparing of een kleine Petri-schaal met infectiebescherming. Bereid de celmonsters voor op microscopie door de DPBS af te zuigen.Verwijder de kamer van de objectglas en laat deze ongeveer vijf minuten aan de lucht drogen. Bedek met aluminiumfolie om de fluorescente kleuring te beschermen. Voeg vervolgens een waterig montage medium toe, zoals Vector Shield met DAPI, en plaats daarop een dekglas.Nu is het objectglas gemonteerd en klaar voor beeldvorming. Visualiseer de monsters met een dissectiemicroscoop of een samengestelde microscoop die is uitgerust met een rhodamine- of Texas red-filter. De kleuring is doorgaans vrij helder, waardoor lange belichtingstijden in de handmatige modus meestal niet nodig zijn.Maak digitale foto's van alle monsters onder dezelfde belichtingsomstandigheden. Om de beelden te kwantificeren, opent u deze in Adobe Photoshop of een vergelijkbaar beeldbewerkingsprogramma. Selecteer het rode kanaal om de hoeveelheid lyo tracker-kleuring te bepalen.Noteer het aantal pixels voor de gehele afbeelding zoals weergegeven door de histogramfunctie. Pas vervolgens een drempelwaarde toe op de afbeelding, zodat de rode kleuring nu wordt weergegeven door witte pixels. Hiermee wordt de afbeelding omgezet naar zwart-wit.Kies een drempelwaarde en gebruik dit niveau voor alle afbeeldingen in de set. Selecteer de witte pixels met de tool voor kleurbereik en gebruik de histogramfunctie om het totale aantal witte pixels te bepalen. Gebruik het blauwe kanaal om het aantal kernen in het gezichtsveld te tellen.Het kan nuttig zijn om een overzicht van de telling bij te houden door de afbeelding te annoteren, de waarden te registreren en deze te gebruiken om het gemiddelde kleuringsniveau per cel te berekenen. Herhaal deze analyse met dezelfde drempelwaarde voor alle overige afbeeldingen. Om ly o tracker werd gebruikt om sonic hedgehog mutant embryo's te kleuren.Aangezien ly O tracker een klein, zeer diffuseerbaar molecuul is, werden gebieden diep in het midden van een volledig embryo gekleurd op 10,5 dagen na de copulatie. Geprogrammeerde celdood (PCD) was sterk verhoogd in sonic hedgehog null-mutant embryo's, in het bijzonder in de ledematen en somietregio's. Lymknopjes werden in hele mounts bij een hogere vergroting afgebeeld om het algemene patroon te beoordelen. Gedisseceerde delen werden daarnaast gesneden met een vibratiermicrotoom.De pijl wijst naar een toename van de kleuring in de distale punt van de sonic hedgehog-null secties verkregen met een cryostaat. TUNEL-kleuring werd in deze coupes gebruikt in combinatie met LysoTracker; hoewel er geen strikte één-op-één correlatie is tussen LysoTracker- en TUNEL-kleuring, overlappen de algemene regio's van PCD bij een hogere vergroting aanzienlijk. Het is mogelijk om puncta te zien die positief kleurden met de TUNEL-assay, maar niet met de LysoTracker-kleuring, puncta die alleen kleurden met de LysoTracker-kleuring, en puncta met overlappende kleuring. Na 10 dagen embryonale lichaamskweek differentieerden de cellen in een verscheidenheid aan celtypen, waaronder neuronen, spiercellen en cardiomyocyten.In de normale kweek van gedifferentieerde ES-cellen zijn er enkele cellen die PCD ondergingen, zoals aangetoond met lyo tracker- en tunnel-assays. Vervolgens werden de cellen behandeld met waterstofperoxide om celdood door oxidatieve stress op te wekken. Een lage dosis waterstofperoxide verhoogde zowel de lyo tracker- als de tunnel-kleuring in vergelijking met de groep zonder behandeling.Vergelijkbaar met de resultaten in het embryo labelden beide kleuringen zowel gemeenschappelijke als unieke cellen. Een hoge dosis waterstofperoxide resulteerde in celkrimp en een meer wijdverspreide positiviteit voor de OT-tracker en tunnel. Ter vergelijking werd serumuithongering gebruikt om autofagie te induceren na één uur serumuithongering.De kleuring van de OT-tracker nam toe. De TUNEL-positiviteit bleef echter op normale niveaus. Hoewel reer dus eenvoudig en nuttig is, is het belangrijk om na het kwantificeren van de monsters aanvullende assays uit te voeren om te bepalen of de kleuring wijst op apoptose of autofagie.Met de eenvoudige Photoshop-methode die eerder werd gedemonstreerd, bevestigden de resultaten dat toenemende concentraties waterstofperoxide leidden tot een hoger niveau van lys tracker-kleuring. Zodra deze procedure onder de knie is, kan de kleuring in minder dan twee uur worden voltooid als deze correct wordt uitgevoerd. Na deze procedure kunnen andere methoden, zoals NX-5 of lc-3 immuunkleuring, worden toegepast om het type celdood te bevestigen. Houd er rekening mee dat TrackER Green momenteel alleen werkt op levende cellen, waardoor TrackER Red de beste optie is voor monsters die fixatie vereisen.

use-lysotracker-to-detect-programmed-cell-death-embryos

Research

JoVE Journal

Biology

Biologie

Deze video toont technieken voor de etikettering van menselijke embryonale stamcellen en mesenchymale stamcellen met fluorescerende kleurstoffen. Deze techniek kan worden gebruikt voor een in-vivo volgen van getransplanteerde stamcellen met optische beeldvorming en voor histopathologisch correlaties met fluorescentie microscopie.

Labeling stamcellen met fluorescente kleurstoffen voor niet-invasieve detectie met optische beeldvorming

Met de groeiende belangstelling voor stamceltherapieën, moleculaire imaging technieken zijn ideaal voor de bewaking stamceltransplantatie gedrag na transplantatie. Luciferase reporter genen hebben ingeschakeld non-invasieve, repetitieve evaluatie van de overleving van de cel, de locatie en de proliferatie in vivo. Deze video zal laten zien hoe je hESC proliferatie track in een levende muis.

In vitro en in vivo bioluminescente reportergen-beeldvorming van menselijke embryonale stamcellen

Een methode wordt beschreven om enkele cellen met een gekooide fluorescerend eiwit met behulp van twee-foton absorptie van een Ti photoactivate: Sapphire femtoseconde laser oscillator. Het lot kaart brengen van de gefotoactiveerd cel, wordt immunohistochemie gebruikt. Deze techniek kan worden toegepast op elk celtype.

Single Cell Fate Mapping in de zebravis

We beschrijven een aantal methoden om kleurstoffen injecteren van DNA vectoren, virussen en cellen om zowel cellot en fenotype van endogene en geënte cellen uit embryonale of pluripotente cellen in muizenembryo's op embryonale dag (E) 9,5 en latere stadia bewaken ontwikkeling.

Cell Labeling en Injectie in ontwikkelingslanden Embryonale Mouse Hearts

Dit protocol geeft een werkwijze kwantitatieve eencellige voeren in situ analyse van eiwitexpressie van afstamming specificatie mouse pre-implantatie embryo bestuderen. De noodzakelijke voor het verzamelen van blastocysten procedures, whole-mount immunofluorescentie detectie van eiwitten, beeldvorming van de monsters op een confocale microscoop, en nucleaire segmentatie en beeldanalyse worden beschreven.

Kwantitatieve Analyse van eiwitexpressie aan Lineage Specificatie studie in muizenmodellen preimplantatie embryo&#39;s

Terwijl infiltrerende macrofagen continu worden aangeworven op volwassen weefsels uit circulerende precursoren, zitten inwendige macrofagen hun weefsel tijdens ontwikkeling, waar ze worden gehandhaafd zonder verdere input van stamvaders. De voorlopers voor ingezette macrofagen werden recent geïdentificeerd. Hier presenteren wij methoden voor de genetische lotvorming van de ingezeten makrofage stamvaders.

Identificatie van Erythromyeloid Progenitors En Hun Nakomelingen In De Muis Embryo Door Flow Cytometry

Afbeelden van de morfogenese van insecten embryo met licht-sheet based fluorescentiemicroscopie is state of the art worden. Dit protocol beschrijft en vergelijkt drie montagetechnieken geschikt voor Tribolium castaneum embryo, worden twee nieuwe op maat gemaakte transgene lijnen geschikt voor levende imaging bespreekt essentiële kwaliteitscontroles en geeft de huidige experimentele beperkingen.

Light-Sheet gebaseerd fluorescentiemicroscopie van de levens- of gefixeerd en gekleurd<em&gt; Tribolium castaneum</em&gt; Embryo&#39;s

Hier beschrijven we een op massaspectrometrie gebaseerde proteomische karakterisering van cellijnen met bekende weefsellotgevallen in het gewervelde Xenopus laevis-embryo .

Cel-Lineage geleide massaspectrometrie proteomics in het zich ontwikkelende (kikker) embryo

Beschikbare differentiatiesystemen voor pluripotente stamcellen (PSC) naar functionele cellen worden momenteel belemmerd door problemen van ernstige variabiliteit van lijn tot lijn en van partij tot partij. Hier presenteren we, met cardiale differentiatie als belangrijkste voorbeeld, een protocol om het proces van PSC-differentiatie intelligent te monitoren en te moduleren op basis van beeldgebaseerde machine learning.

Een op live-cell beelden gebaseerde machine learning-strategie om pluripotente stamceldifferentiatie te monitoren

Dit protocol beschrijft een live-cel beeldvormingsmethode voor het monitoren van lysosomale membraanpermeabilisatie tijdens necroptose, met behulp van fluorescerende sondes die veranderingen in de integriteit en verzuring van het lysosomale membraan detecteren.

Beeldvorming van levende cellen van lysosomale membraanpermeabilisatie tijdens necroptose

Dit artikel presenteert een levende-cel LysoTracker-protocol om lysosomale hervorming tijdens senescentie in IMR-90 menselijke fibroblasten te meten.

Lysosomale profilering met LysoTracker voor kwantitatieve beoordeling van cellulaire senescentie bij menselijke fibroblasten

Leer hoe je geprogrammeerde celdood visualiseert in muizenembryo's en differentiërende embryonale stamcellen met LysoTracker-kleuring. Deze methode biedt een eenvoudige en effectieve aanpak voor ontwikkelingsbiologisch onderzoek.

Het gebruik van LysoTracker tot geprogrammeerde celdood detecteren in embryo's en differentiëren van embryonale stamcellen

Meer video's verkennen