Name: Cardiac Stress Test geïnduceerd door dobutamine en bewaakt door hartkatheterisatie in Muizen (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-02-10T14:00:00.000+00:00
Duration: 15 min 45 s
Description: Leer een hartstressprotocol met dobutamine en katheterisatie bij muizen. Deze methode onthult subklinische hartziekten bij obesitas en helpt onderzoekers cardiovasculaire functie nauwkeurig te evalueren.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Wij danken Dr Helio Salgado, Renata Lataro en Mauro de Oliveira, School of Medicine van Ribeirão Preto, Universiteit van Sao Paulo en Dr Ben Janssen, Cardiovascular Research Institute Maastricht, Universiteit Maastricht, voor genereuze hulp tijdens de set-up proces. Dit werk werd ondersteund door FONDECYT subsidie ​​N ° 11090114 naar SDC

Protocol is goedgekeurd door de Ethische Commissie van Facultad de Medicina Clinica Alemana-Universidad del Desarrollo. I. Voorbereiding Dobutamine Infusion <ol><li> Los 10 mg van dobutamine in 20 ml van gedestilleerd steriel water, teneinde een voorraadoplossing van 500 ug / ml dobutamine verkrijgen. Aliquot en bewaar bij -20 ° C. Deze oplossing kan tenminste gedurende 3 maanden. </li><li> Ontdooien een hoeveelheid dobutamine stock oplossing bij kamertemperatuur. </li><li> Verdun dobutamine stock oplossing in steriele 0,9% NaCl, om dobutamine werkoplossing, welke concentratie wordt berekend volgens de formule verkregen: dobutamine (ug / ml) = lichaamsgewicht x 0,2. </li><li> Vul een 1 ml spuit 29Gx1 / 2 &quot;met dobutamine werkoplossing. </li><li> Steek de naald van de spuit in een 20 cm PE-10 buis. </li><li> Stel de spuit in de infusiepomp volgens instructies van de fabrikant. </li><li> Stel de helling infusie in een stapNaar stap format met een toename van 10 pl / min per stap, 6 treden. </li></ol> II. Voorbereiden druksensor <ol><li> Om signaal drift, dompel druksensor in steriel water minimaliseren bij 37 ° C gedurende ten minste 15 minuten. Niet weken de catheter meer dan 0,5 cm diep, teneinde te voorkomen dat hydrostatische druk beïnvloedt de druksensor. </li><li> Elektronisch kalibreren de druksensor bij 25 en 100 mmHg. Elektrisch ingangsvermogen (Volt) omgezet in druksignaal (mmHg). </li><li> Zet de sampling rate van 2 k / s en gebruik de filter low pass met een afgesneden bij 100 Hz. Stel druksignaal op nul mmHg. </li><li> Markeer de catheter 15 mm van de punt. Ver naar het hart bereiken vanaf het inbrengpunt werd geschat door echocardiografie, de aanwezigheid van de catheter in de linker ventricule. </li></ol> III. Voorbereiding Muis voor catheterisatie <ol><li> Gewicht C57BL / 6 mannelijke muizen, 30-32 weken oud. </li><li> Injecteer intraperitoneaal 60 ug / kg ketamine en 4 ug / kg xylazine 1. Opmerking: Andere anesthetica kunnen worden gebruikt, bijvoorbeeld: 350 - 450 ug / kg avertin, 50 ug / kg pentobarbital of 1,5 - 2% isofluraan 2-3. </li><li> Scheer de nek met een elektrisch scheerapparaat. </li><li> Plaats de verdoofde muis in rugligging op een voorverwarmde isothermische verwarmingsplaat. Zet haar ledematen met papier tape. </li><li> Voer een teen knijpen om volledige sedatie te bevestigen. </li><li> Steek voorzichtig een rectale sonde om de lichaamstemperatuur te controleren. Met behulp van vaselinized sonde wordt aanbevolen. </li><li> Als de lichaamstemperatuur verschilt van 37 ° C ± 0,5 ° C, stel deze dan via de verwarmingsplaat. </li><li> Zet de muis snuit in de buurt van de zuurstoftoevoer. </li><li> Plaats de muis halsgebied onder de stereomicroscoop. </li></ol> IV. Data Acquisition <ol><li> In de LabChartPro 7-software, selecteert u een kanaal voor druk registratie en een kanaal voor de hartslag (HR)registratie. Voor deze laatste, selecteert u de optie &quot;Cyclic Metingen&quot; en setup meting als tarief. </li><li> Voor de druk kanaal in te stellen de schaal bereik: 0 tot 150 mmHg. </li><li> Voor HR kanaal in te stellen schaal bereik: 200 tot 600 slagen per minuut. </li><li> Druk op de startknop om de registratie te starten. </li><li> Plaats commentaar geven procedures uitgevoerd, bijvoorbeeld: anesthesie administratie, de start van dobutamine infusie dobutamine concentratie, ademhaling verandert. </li></ol> V. hartkatheterisatie 4,5 <ol><li> Voer een kleine incisie aan de rechterkant bij de kaak. Met een schaar te scheiden van de huid-musculaire bindweefsel. </li><li> Voer een longitudinale sectie (1,5 - 2 cm) aan de rechterzijde van de trachea. Scheid het bindweefsel, vet en spier met gebogen forceps, teneinde de rechter halsslagader bij de trachea bloot. </li><li> Plaats een expander in het dier rechterkant de halsslagader bloot. Pulsatielepressie van het hart vergemakkelijkt de identificatie van de slagader. De halsader, die donkerrood, aan de rechterkant. </li><li> Scheid de slagader van aangrenzende weefsels met gebogen forceps. De nervus vagus, die lijkt op een witte draad, ligt langs de slagader. </li><li> Knip een 20 cm stuk 6/0 zijden draad en &quot;dubbel&quot; het. </li><li> Steek de &quot;dubbele&quot; draad onder de slagader van links naar rechts. Knip de draad om afzonderlijke uiteinden te verkrijgen. </li><li> Pass derde draad (10 cm) onder de slagader. </li><li> Bind een strakke knoop in de draad geplaatst in de buurt van het hoofd, en een losse een in de meer distale draad. </li><li> Bind een losse knoop in het midden draad, en bevestig het rechter uiteinde van de middelste draad naar de verwarming pad met een papieren tape. </li><li> Halsslagader vochtig houden door druppelen steriele 0,9% NaCl. Droog overtollige vloeistof met een wattenstokje. </li><li> Strek de onderste draad met een hemostaat klem. </li><li> Bepaal de positie van de hemostaat schaar door pinching de huid van de buik, het strekken van de bovenste draad, om bloedstroom af te sluiten. Controleer of bindweefsel rond de slagader is verwijderd. De slagader moet vol bloed en beroofd van puls. Voorkom discussies van het produceren van een belasting op de slagader. </li><li> Een doorsnede nick onderaan de arterie met een Vannas micro-schaar. Bloeddruppels worden gemorst. </li><li> Katheter in de halsslagader. Zorg ervoor dat u de hele druksensor te introduceren. Controleer of er geen bloedverlies. </li><li> Pas de middelste draad knoop, om de katheter op zijn plaats. Niet te veel veel, de druksensor is zeer broos. </li><li> Laat de hemostaat schaar van het dier buik. </li><li> Houd de katheter met de hand en druk de middelste draad om bloed te voorkomen. Opmerking: slagader moet vol bloed. </li><li> Start de opname druksignalen. </li><li> Wanneer de katheter in, dearteriële druksignaal schommelt 60-70 tot 100-120 mmHg. De vorm van de druk-signaal wordt weergegeven in figuur 1.A. Opmerking: als u op belangstelling, op dit tijdstip kunt u arteriële druk opnemen als signaal stabiel gedurende tenminste 5 minuten. HR waarden werden verkregen door de druk golfvormen overweegt een interval van 30 sec van opnamesignaal. Het is mogelijk om ook een ECG methode voor directe meting van HR volgens het onderzoek doelen. </li><li> Druk de catheter tot een verandering in de vorm van het druksignaal (Fig. 1.B) observeren. Zodra de katheter in de linker ventrikel, het druksignaal schommelt tussen 0 tot 100-120 mmHg. Als het moeilijk is om de catheter te schuiven, knijpen dier kist met twee vingers. </li><li> Continu controle ademhalingsfrequentie, lichaamstemperatuur, anesthesie-niveau en druksignaal. Ieder van hen moet stabiel blijven. </li></ol> VI. Infusie van Dobutamine <ol><li&gt; Zijn voor halsader infusen zeker Trek het vetweefsel rond de ader, om de perforatie te voorkomen. De chirurgische procedure voor veneuze occlusie is vergelijkbaar met de procedure getoond voor halsslagader. </li><li> Introduceer een PE-10 buis in de ader. Controleer of de bloedstroom niet geblokkeerd bewegen achteruit de zuiger. </li><li> Dobutamine infusie begint met 10 pl / min en eindigt met 60 pl / min. In elke stap wordt de infusiesnelheid gedurende 2 min 6. </li><li> Na de laatste dosis dobutamine, euthanaseren het dier met een overdosis van anesthesie. </li></ol> VII. Data-analyse <ol><li> Voor data-analyse, kiest u het deel van de geregistreerde gegevens van uw interesse. Zorg ervoor dat u een tijdsinterval na te gaan waar de druk-signaal is stabiel. </li><li> Selecteer het pictogram Setup in de bloeddruk module. Geef het geselecteerde type van druk-signaal. </li><li> Automatisch wordt de LabChartPro 7-software displays bedoel, maximaleen minimale waarden voor HR, systolische druk (P max), diastolische bloeddruk (P min), eind-diastolische druk (EDP), maximale overdruk ontwikkeling (dP / dtmax) en de maximale onderdruk ontwikkeling (dP / dt min). Bovendien kan cardiale parameters worden afgebeeld op de druk trace. </li></ol>

<ol><li>Hart, C. Y., Burnett, J. C., Redfield, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+avertin+versus+xylazine-ketamine+anesthesia+on+cardiac+function+in+normal+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol.+Heart+Circ.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Effects of avertin versus xylazine-ketamine anesthesia on cardiac function in normal mice.</a> Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 281, H1938-H1945 (2001).</li>
<li>Janssen, B. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+anesthetics+on+systemic+hemodynamics+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol.+Heart+Circ.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Effects of anesthetics on systemic hemodynamics in mice.</a> Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 287, H1618-H1624 (2004).</li>
<li>Lorenz, J. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+practical+guide+to+evaluating+cardiovascular%2C+renal%2C+and+pulmonary+function+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol.+Regul.+Integr.+Comp.+Physiol%22%5BJournal%5D)">A practical guide to evaluating cardiovascular, renal, and pulmonary function in mice.</a> Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 282, R1565-R1582 (2002).</li>
<li>Lorenz, J. N., Robbins, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measurement+of+intraventricular+pressure+and+cardiac+performance+in+the+intact+closed-chest+anesthetized+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Measurement of intraventricular pressure and cardiac performance in the intact closed-chest anesthetized mouse.</a> Am. J. Physiol. 272, H1137-H1146 (1997).</li>
<li>Nemoto, S., DeFreitas, G., Carabello, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+catheterization+technique+in+a+closed-chest+murine+model%5BTitle%5D)+AND+%22Contemp.+Top.+Lab+Anim.+Sci%22%5BJournal%5D)">Cardiac catheterization technique in a closed-chest murine model.</a> Contemp. Top. Lab Anim. Sci. 42, 34-38 (2003).</li>
<li>Daniels, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impaired+cardiac+functional+reserve+in+type+2+diabetic+db%2Fdb+mice+is+associated+with+metabolic%2C+but+not+structural%2C+remodelling%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Physiol.+%28Oxf%29%22%5BJournal%5D)">Impaired cardiac functional reserve in type 2 diabetic db/db mice is associated with metabolic, but not structural, remodelling.</a> Acta Physiol. (Oxf). 200, 11-22 (2010).</li>
<li>De Celle, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term+structural+and+functional+consequences+of+cardiac+ischaemia-reperfusion+injury+in+vivo+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Long-term structural and functional consequences of cardiac ischaemia-reperfusion injury in vivo in mice.</a> Exp. Physiol. 89, 605-615 (2004).</li>
<li>Huntgeburth, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transforming+growth+factor+beta+oppositely+regulates+the+hypertrophic+and+contractile+response+to+beta-adrenergic+stimulation+in+the+heart%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Transforming growth factor beta oppositely regulates the hypertrophic and contractile response to beta-adrenergic stimulation in the heart.</a> PLoS One. 6, e26628(2011).</li>
<li>Reddy, A. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+function+in+young+and+old+Little+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Gerontol.+A.+Biol.+Sci.+Med.+Sci%22%5BJournal%5D)">Cardiac function in young and old Little mice.</a> J. Gerontol. A. Biol. Sci. Med. Sci. 62, 1319-1325 (2007).</li>
<li>Christoffersen, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+lipid+accumulation+associated+with+diastolic+dysfunction+in+obese+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Endocrinology%22%5BJournal%5D)">Cardiac lipid accumulation associated with diastolic dysfunction in obese mice.</a> Endocrinology. 144, 3483-3490 (2003).</li>
</ol>

Geen belangenconflicten verklaard.

Cardiale stress test veroorzaakt door dobutamine en gecontroleerd door hartkatheterisatie is bewerkelijk. Niettemin volgens het protocol hier beschreven en met een korte tijd van training is het mogelijk zes hemodynamische parameters in een experiment dat ongeveer een uur. De kritische stappen van het protocol hier gepresenteerde zijn de cannulations van de bloedvaten. Wat de canulatie van de halsslagader dient uitgevoerde insnijding groot zijn dat de drie weefsellagen van de slagader, en gr...

<table border="1"><tbody><tr><td></td><td></td><td></td><td> Reagentia </td></tr><tr><td> PE-50/10 </td><td> Warner Instruments </td><td> 64-0.752 </td><td></td></tr><tr><td> Zijden draad 6/0 HR17 </td><td> Tagum </td><td> SN0713K </td><td></td></tr><tr><td> Xylacin 20 mg / ml </td><td> Laboratorio Centrovet </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Ketamine 100 mg / ml </td><td> Drag Pharma </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Natriumchloride 0,9% </td><td> Lab Sanderson SA </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Dobutamine hydrochloride </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> D0676 </td><td></td></tr><tr><td> Spuit U-100 insuline 29G x ½ &quot; </td><td> Terumo Medical Co </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Forceps Ontleden Micro 11,5 cm Style 7 </td><td> LawtonMedizintechnik </td><td> 09-0959 </td><td></td></tr><tr><td> Graefe Forceps Cvd 0.7mm 7cm </td><td> Lawton Medizintechnik </td><td> 62-0.263 </td><td></td></tr><tr><td> Klemmen Dieffenbach bulldog Cl Str 38 mm </td><td> Lawton Medizintechnik </td><td> 60 tot 010 </td><td></td></tr><tr><td> Vannas Schaar 8 cm Str Fh </td><td> Lawton Medizintechnik </td><td> 63-1.400 </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> Uitrusting </td></tr><tr><td> SPR-671 Mikro-Tip Druk katheter </td><td> Millar instrumenten </td><td> 840-6719 </td><td></td></tr><tr><td> PCU-2000 Pressure Control Unit </td><td> Millar instrumenten </td><td> 880-0129 </td><td></td></tr><tr><td> PowerLab 4/30 </td><td> ADInstruments Pty Ltd </td><td> ML866 </td><td></td></tr><tr><td> LabChartPro 7 </td><td> ADInstruments Pty Ltd </td><td> MLU260 / 7 </td><td></td></tr><tr><td> Legato200 Infusiepomp </td><td> KdScientific </td><td> KD-KDS210P </td><td></td></tr><tr><td> TCAT-2LV Temperatuurregelaar en isotherme verwarmingsplaat </td><td> PhysiTemp instrumenten Inc </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Medische Zuurstofvoorziening </td><td> Indura </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Rectale probe </td><td> ADInstruments Pty Ltd </td><td> MLT1404 </td><td></td></tr><tr><td> Trinoculaire microscoop, axiale verlichting </td><td> LW Wetenschappelijke </td><td> Z2B-TRI-Etne, ILP-1502-LTS1, ILP-1502-DGGF </td><td></td></tr></tbody></table>

cardiac stress test geïnduceerd door dobutamine en bewaakt door hartkatheterisatie in muizen

Cardiac Stress Test Induced by Dobutamine and Monitored by Cardiac Catheterization in Mice

Dobutamine een β-adrenerge agonist met een affiniteit hoger receptor uitgedrukt in het hart (β 1) dan receptoren tot expressie gebracht in de slagaders (β 2). Bij systemisch toegediend, het verhoogt de cardiale vraag. Zo, dobutamine ontmaskert abnormaal hartritme of ischemische gebieden mogelijk risico van infarct. Monitoring van de hartfunctie tijdens een cardiale stress test kan worden uitgevoerd door ofwel ecocardiography of hartkatheterisatie. Dit laatste is een invasieve maar accurate en techniek die de eerste. Cardiale stress test geïnduceerd door dobutamine en gecontroleerd door hartkatheterisatie uitgevoerd zoals hier beschreven kan, in een experiment, het meten van de volgende hemodynamische parameters: hartslag (HR), systolische druk, diastolische druk, eind-diastolische druk, maximale overdruk ontwikkeling (dP / dtmax) en de maximale negatieve persure ontwikkeling (dP / dt min), bij aanvang omstandigheden onder toenemende doses dobutamine. Zoals verwacht, in normale muizen zagen we een dobutamine dosis-gerelateerde toename in HR, dP / dt max en dP / dt min. Bovendien, bij de hoogste geteste dosis (12 ng / g / min) de hartdecompensatie vetrijke dieet-geïnduceerde zwaarlijvige muizen was ontmaskerd.

De bloeddruk signaal wordt bepaald door systolische en diastolische druk. Wanneer de druksensor in de linker ventrikel, de druk (LVP) golfvorm wordt gekenmerkt door een daling tot nul diastolische druk en het uiterlijk van de linker atriale contractie voor ventrikel contractie (figuur 1). Bij referentietoestand, ketamine-xylazine verdoofd normale muizen hadden HR van 280 ± 24, P max van 107 ± 8, P min 5 ± 1, EDP van 14 ± 2, dP / dt max van 6081 ± 365 en dP / dt min<...

We beschrijven het protocol een cardiale stress test geïnduceerd door dobutamine en gevolgd door hartkatheterisatie in normale muizen voeren. Ook laten we zien de toepassing ervan op subklinische hart-en vaatziekten willen onthullen, hoog vet dieet-geïnduceerde obese muizen.

Cardiac Stress Test geïnduceerd door dobutamine en bewaakt door hartkatheterisatie in Muizen

Dobutamine is a &beta;-adrenergic agonist with an affinity higher for receptor expressed in the heart (&beta;1) than for receptors expressed in the ...

Cardiaal stresstest geïnduceerd door dobutamine en bewaakt door cardiale catheterisatie bij muizen. In deze video zullen we een stapsgewijze beschrijving geven van een cardiaal stresstest geïnduceerd door dobutamine en bewaakt door cardiale catheterisatie uitgevoerd bij normale muizen. We zullen ook de toepassing ervan laten zien om subklinische hartaandoeningen te onthullen bij muizen die zwaarlijvig zijn door een vetrijk dieet.De verdoving muis wordt op een thermisch gereguleerd plaat geplaatst. Zuurstoftoevoer wordt toegediend via een plastic buis en de lichaamstemperatuur wordt bewaakt met behulp van een rectale sonde voor cardiale catheterisatie. In een gesloten borstprocedure wordt de halsslagader gebruikt als toegang via de druksensor in de punt van de katheter is fijn genoeg om de slagader binnen te gaan om de arteriële druk te meten.De katheter wordt ongeveer 10 millimeter ingebracht. Het arteriële drukgolfvorm ziet er zo uit. Om de ventriculaire druk te meten, moet de katheter een rechtlijnige pad volgen en door de aortaklep heen naar de ventriculaire kamer gaan.De drukgolfvorm verandert wanneer de druksensor de ventriculaire kamer binnenkomt om dobutamine toe te dienen. Een plastic buis wordt ingebracht in de halsader. Het medicijn wordt toegediend vanuit een geprogrammeerde pomp die een toenemend volume van de oplossing injecteert in een stapsgewijze modus.De cardiale stresstest is gebaseerd op het inotrope en chronotropische effect van dobutamine in het hart tijdens evaluatie van de cardiale prestaties. De dubbele domeinstimulatie is een krachtig hulpmiddel om een klinische ziekte in het hart te onthullen die normaal onherkenbaar is.Nu zullen we u laten zien hoe u S en instrument kunt instellen, hoe u de cardiale catheterisatie en dobutamine-infusies uitvoert en hoe u gegevens verzamelt en analyseert. Alle getoonde dierprotocollen zijn goedgekeurd door de Ethische Commissie van fta. Bereid dobutamine-infusie door het aliquot van dobutamine-voorraadoplossing te verdunnen.500 microgram per milliliter in 0,9% natriumchloride. De concentratie van de werkoplossing wordt berekend met behulp van de formule dobutamine microgram per milliliter gelijk aan lichaamsgewicht keer 0,2. Vul een een milliliter 29 gauge keer half inch spuit en steek een 20 centimeter P 10 buis in de spuitnaald.Stel de spuit in op de infusiepomp volgens de fabricage-instructies. Stel de trapinfusie in een stap-voor-stap-formaat in met een toename van 10 microliter per minuut voor elke stap in ons geval voor zes stappen. Bereid de druksensor voor.Laat de druksensor minimaal 15 minuten in water van 37 graden Celsius weken om signaalverdraaiing te minimaliseren. Week de katheter niet meer dan 0,5 centimeter diep om te voorkomen dat de hydrostatische druk de druksensor elektronisch beïnvloedt. Kalibreer de druksensor bij 25 en 100 millimeter.De elektrische ingang van kwik wordt omgezet in een druk signaal in millimeters kwik-eenheid. Stel de bemonsteringssnelheid in op 2000 per seconde en gebruik de laagdoorlaatfilter met een afsnijfrequentie van 100 hertz. Stel het druk signaal op nul millimeter.Kwik.Markeer de katheter op 15 millimeter vanaf de punt. Het wordt aanbevolen om te weten hoe dicht u bij de linker ventrikel bent wanneer u de katheter introduceert. Bereid de muis voor op catheterisatie, het dier wordt verdoofd met 60 microgram per gram ketamine en vier microgram per gram xylazine volgens lichaamsgewicht.Dan wordt zijn nek geschoren met een elektrische scheermachine. Plaats de verdoofde muis in rugligging op een verwarmde isotherme verwarmingsplaat. Zet zijn ledematen vast met plakband.Het gebruik van vaseline voor de sonde wordt aanbevolen. Gelieve een rectale sonde voorzichtig in te brengen om de lichaamstemperatuur te bewaken.Voer een teenprik uit om volledige sedatie te bevestigen. Als de lichaamstemperatuur verschilt van 37 graden Celsius plus of minuus 0,5 graden Celsius, pas deze aan via de verwarmingsplaat. Plaats de snuit van de muis dicht bij de zuurstoftoevoer.Stel de zuurstofstroom in op drie pond per vierkante inch. Plaats de nekregio van de muis onder de stereomicroscoop. Cardiale catheterisatie.Maak een kleine incisie aan de rechterkant nabij de kaak met een schaar. Scheid het huid-spierontvangerweefsel. Voer een longitudinale dissectie uit aan de rechterkant van de luchtpijp.Schei het bindweefsel, vet en spier met gebogen pincetten om de rechterhalsslagader nabij de luchtpijp bloot te leggen. Plaats een expander in de rechterzijde van het dier om de halsslagader bloot te leggen. De halsader, die donkerrood is, bevindt zich aan de rechterkant.De pulsatiele druk gegenereerd door het hart vergemakkelijkt de identificatie van de slagader. Scheid de slagader van aangrenzend weefsel met gebogen pincetten. De nervus vagus, die lijkt op een witte draad, ligt langs de slagader.Snij een 20 centimeter stuk van zes OTT zijdedraad en verdubbel het. Breng het dubbele draad onder de slagader van links naar rechts. Knip het draad door om aparte uiteinden te verkrijgen.Breng een derde draad onder de slagader door. Knoop een strakke knoop in het draad gepositioneerd nabij het hoofd en een losse knoop in het meer distale draad enkelbeen. Knoop in het midden.Draad en bevestig het rechter uiteinde van het middelste draad aan de verwarmingspaden met papier. Plak de onderste draad uit met een hemostaatklem. Houd de halsslagader vochtig met druppels natriumchloride.Verwijder overtollig vocht met wattenstaafjes. Bevestig de positie van de hemostaat schaar door de huid van de buik te knijpen, de bovenste draad te strekken om de bloedstroom te stoppen. Controleer of het bindweefsel rond de slagader is verwijderd.De slagader moet vol bloed zijn en er mag geen pols zijn. Voorkom dat draden een torquekracht op de slagader uitoefenen. Maak een dwarsdoorsnede nabij de onderkant van de slagader met microscharen.Breng de katheter in de hals

cardiac-stress-test-induced-dobutamine-monitored-cardiac

Research

JoVE Journal

Medicine

Geneeskunde

Dit artikel beschrijft de meting van de functionele capaciteit van de linker ventrikel bij muizen door middel van druk/volume analyse bij verschillende hartslagfrequenties.

Hartkatheterisatie in Muizen bij de Pressure Volume Relationship Meet: Onderzoek naar de Bowditch Effect

Het doel van dit protocol is om niet-invasief beoordelen cardiale structurele en functionele veranderingen in een muismodel van hart-en vaatziekten door dwarse aorta vernauwing, met behulp van B- en M-mode echocardiografie en kleur / pulse wave Doppler imaging.

Beoordeling van Cardiac morfologische en functionele veranderingen in muismodel van Transversale Aorta Vernauwing door Echocardiografie Imaging

Dit protocol geeft een gedetailleerde beschrijving van de echocardiografische benadering voor uitgebreide fenotypering van de hart- en hartklepfunctie bij muizen.

Echocardiografische benaderingen en protocollen voor Comprehensive Fenotypische karakterisering van Valvular hart-en vaatziekten in Muizen

Tijdens muis myocardischemie/reperfusie chirurgie, wordt de juiste plaatsing van de occluderende ligatuur meestal bevestigd door zichtbare waarneming van myocardbleken. Hierin wordt een methode van elektrocardiografisch bevestigen van ischemie en reperfusie, ter aanvulling van waargenomen myocardbleken, gedemonstreerd bij mannelijke C57Bl/6 muizen.

Bevestiging van de Myocardiale ischemie en reperfusie schade in Muizen met behulp van Surface Pad elektrocardiografie

Acuut myocardinfarct in muizen induceert acute maar onvolledig gekarakteriseerd veranderingen in functie van left ventriculaire (LV). LV catheterisatie in muizen ondergaan coronaire occlusie fungeert als een nieuwe methode voor een real-time evaluatie van LV functie.

Real-time druk-volume analyse van acuut myocardinfarct in muizen

Hier beschrijven we een eenvoudige en reproduceerbare methode die myocardinfarct of myocardischemie-reperfusieletsel bij muizen kan induceren door precisieligatie van de linker voorste dalende kransslagader door middel van micromanipulatie.

Inductie van myocardinfarct en myocardischemie-reperfusieletsel bij muizen

Elektrocardiogram (ECG) is de belangrijkste variabele voor het begrijpen van cardiale elektrofysiologie. Lichaamsbeweging heeft gunstige effecten, maar kan ook schadelijk zijn in de context van hart- en vaatziekten. Dit manuscript biedt een methode voor het registreren van real-time ECG tijdens inspanning, die kan dienen om de effecten ervan op de cardiale elektrofysiologie bij muizen te onderzoeken.

Real-time elektrocardiogrammonitoring tijdens loopbandtraining bij muizen

Het huidige protocol beschrijft een aangepast parasternale langsasaanzicht voor snelle en nauwkeurige lokalisatie van de linker voorste dalende slagader. Deze aanpak is ontworpen om eenvoudiger en gebruiksvriendelijker te zijn en tegelijkertijd het onderzoek naar dynamische veranderingen in de coronaire flowreserve na myocardischemie-reperfusie bij muizen te vergemakkelijken.

Dynamische beoordelingen van coronaire stroomreserve na reperfusie van myocardischemie bij muizen

Dit protocol schetst een methode voor het induceren van diabetische cardiomyopathie door een combinatie van vetrijke dieetvoeding en streptozotocine-injectie. Deze benadering heeft tot doel een betrouwbaar kader te bieden voor wetenschappelijk onderzoek naar diabetische cardiomyopathie en om mogelijke wegen voor klinische behandelingstoepassingen te verkennen.

Modellering en evaluatie van het model voor diabetische cardiomyopathie bij muizen

Effectieve longader isolatie onder toepassing van een cryoballoon afhankelijk volledige pulmonale vene. De bijzondere occlusie effectief kan worden voorspeld door directe analyse van longader drukcurve analyse tijdens ballon met een eenvoudige en reproduceerbare techniek.

Direct Pressure Monitoring voorspelt nauwkeurig Pulmonary Vein Occlusion Tijdens Cryoballoon Ablation

Leer een hartstressprotocol met dobutamine en katheterisatie bij muizen. Deze methode onthult subklinische hartziekten bij obesitas en helpt onderzoekers cardiovasculaire functie nauwkeurig te evalueren.

Cardiac Stress Test geïnduceerd door dobutamine en bewaakt door hartkatheterisatie in Muizen

Meer video's verkennen