Name: Het meten van de mechanische eigenschappen van levende cellen door gebruik Atomic Force Microscopy (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-06-27T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 41 s
Description: Leer de mechanische eigenschappen van levende cellen meten door micro-indentatie met Atomic Force Microscopy. Deze methode gebruikt krachtspectroscopie en het Hertz-model om de elasticiteitsmodulus te bepalen en 2D stijfheidskaarten te genereren.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

De auteurs danken dr. Paul Janmey aan de Universiteit van Pennsylvania voor het verstrekken van cellijnen die in deze paper. QW ook erkennen JF Byfield en Evan Anderson voor hun inzichtelijke discussies over AFM technieken.

1. Kalibreer het voorjaar Constant van Cantilever <ol><li> Laad de cantilever in de AFM volgens de instructies van de fabrikant. Het is noodzakelijk om de cantilever houder schoon met ethanol voordat experimenten. Dit zal helpen bacteriële besmetting tijdens de AFM metingen te beperken tot cultuur. </li><li> Kalibreren InvOLS (Inverse Optical Lever Gevoeligheid). Deze parameter beschrijft de hoeveelheid fotodiode response (Volt) per nanometer cantilever doorbuiging. </li><li> Laad een schoon glasplaatje op het monster podium, installeer dan de AFM hoofd en pas de laserstraal en uitlijning volgens de instructies van de fabrikant. Betrek de AFM tip over het glasplaatje. </li><li> Met de piëzo ingetrokken, opnieuw uitlijnen de spiegel om een ​​fotodiode lezen van -2 V. Voer een kracht spectroscopie meting met een triggerpoint (maximaal fotodiode response) van 2 V. </li><li> Met de piëzo ingetrokken, opnieuw uitlijnen de spiegel om een ​​fotodiode lezen van -2 V. Voer een foRCE spectroscopie meting met een triggerpoint (maximaal fotodiode response) van 2 V. Opmerking: De spanning waarden hier zijn specifiek voor het asiel AFM. Deze waarde moet worden ingesteld volgens de specificaties die door de fabrikant. Na data-acquisitie is voltooid, in te zoomen op de firma-contactgebied van de kracht curve. Voer een lineaire fit aan deze regio aan de helling, die zal worden in V / nm vinden. Het omgekeerde van deze waarde wordt de optische gevoeligheid van de cantilever-fotodiode ensemble. </li><li> Reset de spiegel aanpassing aan een vrije doorbuiging van 0 V. </li><li> Kalibreren van de cantilever veerconstante. Een thermische-tune methode wordt gebruikt om de veerconstante van de cantilever 28 bepalen. </li><li> Na het kalibreren van de InvOLS, verhogen de scanner uit het monster stadium zodanig dat er geen interacties tussen de tip en sample. </li><li> Beginnen met het vastleggen thermische data. Tijdens dit proces, de thermische trilling van de vrijdragende ligger is Recorded. De AFM software analyseert een vermogensspectrum van een dergelijke thermische trillingen en plots in een venster data. </li><li> Na een paar seconden van data-acquisitie, het uitvoeren van een fit aan het segment data gecentreerd op de laagste frequentie (fundamentele resonantie) piek aan de veerconstante te bepalen. </li></ol> 2. Het laden van de Steekproef <ol><li> Plaats de schotel Heater accessoire op de AFM podium, zo niet al voorzien. </li><li> Stel de temperatuur tot 37 ° C, en wacht 20 minuten voor het systeem om een ​​stabiele thermisch evenwicht bereiken. </li><li> Plaats de cultuur schotel op de AFM podium en zet deze vast met behulp van de klem voorzien van de schotel verwarmer. Het is belangrijk om de tijd tussen verwijdering van de schaal uit de incubator en het op het podium, om trauma te vermijden om de cellen te minimaliseren. Voor metingen langer dan 30 min, dient CO 2 onafhankelijke drager worden gebruikt om de normale kweekmedium vervangen. </li><li> Breng een kleine daling van 37 ° C kweekmedium aan het uiteinde van de tHij AFM cantilever, en laat de AFM hoofd totdat de punt net is ondergedompeld in een vloeistof. </li><li> Met de top-view CCD camera, lijnt de laserstraal op de cantilever (de uitlijning in vloeistof anders dan in lucht, omdat de verandering in brekingsindex van het medium). </li><li> Betrek de AFM tip over een schone ruimte van de cultuur schotel. </li><li> Voer kalibratie van de InvOLS zoals hierboven beschreven, de cantilever gevoeligheid in de vloeibare omgeving. </li></ol> Opmerking: a) Indien cellen worden gekweekt op hydrogels, de kalibratie van InvOLS worden vooraf uitgevoerd tegen het bodemoppervlak van een kweekschaal gevuld met celkweekmedium. Bij het overschakelen naar cel monsters, speciale aandacht worden besteed aan de laserstraal uitlijning niet veranderen met de cantilever. b) InvOLS moet worden gekalibreerd wanneer er een verandering in de laser uitlijning. c) Het wordt ook aanbevolen om InvOLS nemen als het gemiddelde van de waarde van verscheidene ijkcurves, sinds elke kalibratie genereert een andere InvOLS. De variatie in InvOLS is evenwel klein vergeleken met de gemiddelde waarde. Bijvoorbeeld, het kalibreren van een Bruker DNP-10 cantilever met veerconstante 0,06 N / m in vloeistof door 100 maal produceren een gemiddelde InvOLS waarde van 66,3 nm / V, met een standaarddeviatie van slechts 0,5 nm / V. 3. Verzamelen Force Curves van Cell Inspringen <ol><li> Selecteer een cel voor inspringen. Met behulp van de optische microscoop, verplaatst u de etappe naar de cantilever boven de cel te plaatsen, zodat de punt bevindt zich in de peri-kernen regio. Nauwkeurige aanpassing van de cantilever positie kan worden door toepassing van offsets voor de X-en Y scanners. Opmerking: De AFM cantilever heeft van het monster oppervlak te worden ingetrokken tijdens het verplaatsen van het monster podium om een doelcel te selecteren. Dit beschermt de cantilever van kloppen in de steekproef, omdat het monster oppervlak mag niet plat. </li><li> Schakel over naar de modus Spectroscopie Force. Stel de Inspringenpercentage binnen het bereik van 1-10 um / sec, laag genoeg om hydrodynamische effecten te vermijden. </li><li> Stel de doorbuiging triggerpoint, waarvan de maximale inspringen kracht beperkt tot schade aan cellen voorkomen. Selecteer de Relative triggering optie, die zal corrigeren voor een eventuele verschuiving in de afbuigsignaal. Een maximale kracht van 2 nN is een goed uitgangspunt voor de meeste monsters. Deze waarde moet echter worden aangepast aan de stijfheid monster. Voor zachte monsters een lagere waarde moet worden gebruikt om overmatige indrukking aan het monster te voorkomen. Voor stijve monsters een hoge waarde moet worden gebruikt meetbare inkeping genereren. </li><li> Stel de kracht afstand groot genoeg om te waarborgen dat de punt volledig wordt losgemaakt van de cel tussen krachtmetingen. Meestal wordt de kracht afstand vastgesteld op 5 micrometer. </li><li> Bevel van de AFM om een ​​enkele kracht bocht te nemen. </li><li> Vang minimaal drie krachtcurven op verschillende locaties in de peri-kernen gebied van elke cel. Hoewel het voordelig om meerdere nemenbochten op elke cel voor betrouwbare statistische gegevens, het innemen van te veel kracht bochten kan leiden tot veranderingen in cel stijfheid als gevolg van stress van de AFM sonde. </li><li> Bij het verzamelen van gegevens is voltooid, en trek de tip, en herhaalt u de stappen 3,1-3,6 voor zoveel cellen als nodig is voor een goede statistische gegevens op mobiele stijfheid onder een bepaalde sample aandoening. Meestal worden 30 cellen gemeten voor elke aandoening. </li></ol> Om de verdeling van de stijfheid binnen een enkele cel karakteriseren, wordt kracht-kaart-modus toegepast. In de Force-kaart-modus, stelt u een scanformaat tot de regio van belang zijn; stellen een passende oplossing; stel de insprong parameters als die welke zijn gekozen voor enkele kracht bochten; de AFM zal vervolgens raster over de gedefinieerde monster gebied en neem enkele kracht curves bij elke pixel in het monster regio. 4. Data Analysis De opgenomen kracht curven worden geanalyseerd met behulp van een aangepaste MATLAB procedure om de cel stijfheid te berekenen. Het volgende is een korte beschrijving van MATLAB procedure: <ol><li> De MATLAB-programma identificeert het aanspreekpunt coördineert z0 en d0 (zie figuur 1) met behulp van een algoritme door Lin et al geadopteerd uit een gepubliceerde methode 29.: </li><li> Voor elk gegevenspunt in de krachtcurve, voert een lineaire aanpassing van de gegevens aan de linkerzijde van de bijzondere plaats en een Hertz model passen naar rechts (de geselecteerde punt als eerste contactpunt) tot de ingestelde maximale inspringen (200-300 nm aanbevolen). </li><li> Voor elk punt, berekent de relatieve RMS fout van zowel horten en vatten deze waarden. </li><li> Het punt waarop de minimale totale pasfout bereikt is geselecteerd als de eerste contactpunt. Opmerking: Computation tijd kan worden verminderd door het implementeren van een gouden-gedeelte zoeken in plaats van lineair scannen van de volledige kracht curve. </li><li> Monster vervorming δ en inspringen kracht F wordt als volgt berekend: <img alt="Vergelijking 1"fo: content-width = &quot;3.073in&quot; fo: src = &quot;/ files/ftp_upload/50497/50497eq1highres.jpg&quot; src = &quot;/ files/ftp_upload/50497/50497eq1.jpg&quot; /&gt; </li><li> Een kleinste kwadraten aanpassing wordt toegepast op de F vs passen δ gegevens in de post-contactgebied, z z ≥ 0, de Hertz model om de Young&#39;s modulus E van het cel extract: <img alt="Vergelijking 2" fo:content-width="2.773in" fo:src="/files/ftp_upload/50497/50497eq2highres.jpg" src="/files/ftp_upload/50497/50497eq2.jpg" /> , Waarin v verhouding van de Poisson. Opmerking: Als δ meer dan 10% van de monsterdikte (celhoogte), wordt de gemeten stijfheid cel die door het substraat stijfheid. De dikte van peri-kernregio gewoonlijk in de orde van enkele micrometers. Daarom is alleen de eerste 200-300 nm van F-δ curve is geschikt om de Hertz model. </li></ol>

<ol><li>Discher, D. E., Janmey, P., Wang, Y. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue+cells+feel+and+respond+to+the+stiffness+of+their+substrate%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Tissue cells feel and respond to the stiffness of their substrate.</a> Science. 310, 1139-1143 (2005).</li>
<li>Wagner, O. I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Softness%2C+strength+and+self-repair+in+intermediate+filament+networks%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Cell+Res%22%5BJournal%5D)">Softness, strength and self-repair in intermediate filament networks.</a> Exp. Cell Res. 313, 2228-2235 (2007).</li>
<li>Wang, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanical+behavior+in+living+cells+consistent+with+the+tensegrity+model%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Mechanical behavior in living cells consistent with the tensegrity model.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 98, 7765-7770 (2001).</li>
<li>Wang, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+prestress.+I.+Stiffness+and+prestress+are+closely+associated+in+adherent+contractile+cells%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Physiology.+Cell+Physiology%22%5BJournal%5D)">Cell prestress. I. Stiffness and prestress are closely associated in adherent contractile cells.</a> American Journal of Physiology. Cell Physiology. 282, 606-616 (2002).</li>
<li>Kasza, K. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Filamin+A+is+essential+for+active+cell+stiffening+but+not+passive+stiffening+under+external+force%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+Journal%22%5BJournal%5D)">Filamin A is essential for active cell stiffening but not passive stiffening under external force.</a> Biophysical Journal. 96, 4326-4335 (2009).</li>
<li>Elson, E. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellular+mechanics+as+an+indicator+of+cytoskeletal+structure+and+function%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Biophysics+and+Biophysical+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Cellular mechanics as an indicator of cytoskeletal structure and function.</a> Annual Review of Biophysics and Biophysical Chemistry. 17, 397-430 (1988).</li>
<li>Schafer, A., Radmacher, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Influence+of+myosin+II+activity+on+stiffness+of+fibroblast+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Biomaterialia%22%5BJournal%5D)">Influence of myosin II activity on stiffness of fibroblast cells.</a> Acta Biomaterialia. 1, 273-280 (2005).</li>
<li>Guck, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optical+deformability+as+an+inherent+cell+marker+for+testing+malignant+transformation+and+metastatic+competence%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+Journal%22%5BJournal%5D)">Optical deformability as an inherent cell marker for testing malignant transformation and metastatic competence.</a> Biophysical Journal. 88, 3689-3698 (2005).</li>
<li>Cross, S. E., Jin, Y. S., Rao, J., Gimzewski, J. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nanomechanical+analysis+of+cells+from+cancer+patients%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Nanotechnology%22%5BJournal%5D)">Nanomechanical analysis of cells from cancer patients.</a> Nature Nanotechnology. 2, 780-783 (2007).</li>
<li>Plodinec, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+nanomechanical+signature+of+breast+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Nanotechnology%22%5BJournal%5D)">The nanomechanical signature of breast cancer.</a> Nature Nanotechnology. 7, 757-765 (2012).</li>
<li>Rotsch, C., Radmacher, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drug-induced+changes+of+cytoskeletal+structure+and+mechanics+in+fibroblasts%3A+an+atomic+force+microscopy+study%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+Journal%22%5BJournal%5D)">Drug-induced changes of cytoskeletal structure and mechanics in fibroblasts: an atomic force microscopy study.</a> Biophysical Journal. 78 (00), 520-535 (2000).</li>
<li>Cross, S. E., Jin, Y. S., Lu, Q. Y., Rao, J., Gimzewski, J. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Green+tea+extract+selectively+targets+nanomechanics+of+live+metastatic+cancer+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nanotechnology%22%5BJournal%5D)">Green tea extract selectively targets nanomechanics of live metastatic cancer cells.</a> Nanotechnology. 22, 215101(2011).</li>
<li>Hoffman, B. D., Crocker, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+mechanics%3A+dissecting+the+physical+responses+of+cells+to+force%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Biomedical+Engineering%22%5BJournal%5D)">Cell mechanics: dissecting the physical responses of cells to force.</a> Annual Review of Biomedical Engineering. 11, 259-288 (2009).</li>
<li>Hoffman, B. D., Massiera, G., Van Citters, K. M., Crocker, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+consensus+mechanics+of+cultured+mammalian+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">The consensus mechanics of cultured mammalian cells.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 103, 10259-10264 (2006).</li>
<li>Lau, A. W., Hoffman, B. D., Davies, A., Crocker, J. C., Lubensky, T. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microrheology%2C+stress+fluctuations%2C+and+active+behavior+of+living+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Physical+Review+Letters%22%5BJournal%5D)">Microrheology, stress fluctuations, and active behavior of living cells.</a> Physical Review Letters. 91, 198101(1981).</li>
<li>Liu, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microrheology+probes+length+scale+dependent+rheology%5BTitle%5D)+AND+%22Physical+Review+Letters%22%5BJournal%5D)">Microrheology probes length scale dependent rheology.</a> Physical Review Letters. 96, 118104(2006).</li>
<li>Deng, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fast+and+slow+dynamics+of+the+cytoskeleton%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Materials%22%5BJournal%5D)">Fast and slow dynamics of the cytoskeleton.</a> Nature Materials. 5, 636-640 (2006).</li>
<li>Oh, M. J., Kuhr, F., Byfield, F., Levitan, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Micropipette+Aspiration+of+Substrate-attached+Cells+to+Estimate+Cell+Stiffness%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Micropipette Aspiration of Substrate-attached Cells to Estimate Cell Stiffness.</a> J. Vis. Exp. (67), e3886(2012).</li>
<li>Hochmuth, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Micropipette+aspiration+of+living+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomechanics%22%5BJournal%5D)">Micropipette aspiration of living cells.</a> Journal of Biomechanics. 33, 15-22 (2000).</li>
<li>Levental, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+indentation+device+for+measuring+micrometer-scale+tissue+stiffness%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Phys-Condens.+Mat%22%5BJournal%5D)">A simple indentation device for measuring micrometer-scale tissue stiffness.</a> J. Phys-Condens. Mat. 22, (2010).</li>
<li>Mahaffy, R. E., Park, S., Gerde, E., Kas, J., Shih, C. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+analysis+of+the+viscoelastic+properties+of+thin+regions+of+fibroblasts+using+atomic+force+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+Journal%22%5BJournal%5D)">Quantitative analysis of the viscoelastic properties of thin regions of fibroblasts using atomic force microscopy.</a> Biophysical Journal. 86, 1777-1793 (2004).</li>
<li>Radmacher, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measuring+the+elastic+properties+of+biological+samples+with+the+AFM%5BTitle%5D)+AND+%22IEEE+Engineering+in+Medicine+and+Biology+Magazine%3A+The+Quarterly+Magazine+of+the+Engineering+in+Medicine+%26+Biology+Society%22%5BJournal%5D)">Measuring the elastic properties of biological samples with the AFM.</a> IEEE Engineering in Medicine and Biology Magazine: The Quarterly Magazine of the Engineering in Medicine & Biology Society. 16, 47-57 (1997).</li>
<li>Crocker, J. C., Hoffman, B. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multiple-particle+tracking+and+two-point+microrheology+in+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">Multiple-particle tracking and two-point microrheology in cells.</a> Methods in Cell Biology. 83, 141-178 (2007).</li>
<li>Liu, F., Tschumperlin, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Micro-mechanical+characterization+of+lung+tissue+using+atomic+force+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Micro-mechanical characterization of lung tissue using atomic force microscopy.</a> J. Vis. Exp. (54), e2911(2011).</li>
<li>Solon, J., Levental, I., Sengupta, K., Georges, P. C., Janmey, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fibroblast+adaptation+and+stiffness+matching+to+soft+elastic+substrates%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+Journal%22%5BJournal%5D)">Fibroblast adaptation and stiffness matching to soft elastic substrates.</a> Biophysical Journal. 93, 4453-4461 (2007).</li>
<li>Wu, H. W., Kuhn, T., Moy, V. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanical+properties+of+l929+cells+measured+by+atomic+force+microscopy%3A+Effects+of+anticytoskeletal+drugs+and+membrane+crosslinking%5BTitle%5D)+AND+%22Scanning%22%5BJournal%5D)">Mechanical properties of l929 cells measured by atomic force microscopy: Effects of anticytoskeletal drugs and membrane crosslinking.</a> Scanning. 20, 389-397 (1998).</li>
<li>Radmacher, M., Fritz, M., Kacher, C. M., Cleveland, J. P., Hansma, P. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measuring+the+viscoelastic+properties+of+human+platelets+with+the+atomic+force+microscope%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+Journal%22%5BJournal%5D)">Measuring the viscoelastic properties of human platelets with the atomic force microscope.</a> Biophysical Journal. 70, 556-567 (1996).</li>
<li>Levy, R., Maaloum, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measuring+the+spring+constant+of+atomic+force+microscope+cantilevers%3A+thermal+fluctuations+and+other+methods%5BTitle%5D)+AND+%22Nanotechnology%22%5BJournal%5D)">Measuring the spring constant of atomic force microscope cantilevers: thermal fluctuations and other methods.</a> Nanotechnology. 13, 33-37 (2002).</li>
<li>Lin, D. C., Dimitriadis, E. K., Horkay, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Robust+strategies+for+automated+AFM+force+curve+analysis--I.+Non-adhesive+indentation+of+soft%2C+inhomogeneous+materials%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomechanical+Engineering%22%5BJournal%5D)">Robust strategies for automated AFM force curve analysis--I. Non-adhesive indentation of soft, inhomogeneous materials.</a> Journal of Biomechanical Engineering. 129, 430-440 (2007).</li>
<li>Davis, J. T., Wen, Q., Janmey, P. A., Otteson, D. C., Foster, W. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Muller+cell+expression+of+genes+implicated+in+proliferative+vitreoretinopathy+is+influenced+by+substrate+elastic+modulus%5BTitle%5D)+AND+%22Investigative+Ophthalmology+%26+Visual+Science%22%5BJournal%5D)">Muller cell expression of genes implicated in proliferative vitreoretinopathy is influenced by substrate elastic modulus.</a> Investigative Ophthalmology & Visual Science. 53, 3014-3019 (2012).</li>
<li>Engler, A. J., Rehfeldt, F., Sen, S., Discher, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microtissue+elasticity%3A+Measurements+by+atomic+force+microscopy+and+its+influence+on+cell+differentiation%5BTitle%5D)+AND+%22Method+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Microtissue elasticity: Measurements by atomic force microscopy and its influence on cell differentiation.</a> Method Cell Biol. 83, 521-545 (2007).</li>
<li>Lele, T. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tools+to+study+cell+mechanics+and+mechanotransduction%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">Tools to study cell mechanics and mechanotransduction.</a> Methods in Cell Biology. 83 (07), 443-472 (2007).</li>
<li>A-Hassan, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Relative+microelastic+mapping+of+living+cells+by+atomic+force+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+Journal%22%5BJournal%5D)">Relative microelastic mapping of living cells by atomic force microscopy.</a> Biophysical Journal. 74, 1564-1578 (1998).</li>
<li>Costa, K. D., Sim, A. J., Yin, F. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Non-Hertzian+approach+to+analyzing+mechanical+properties+of+endothelial+cells+probed+by+atomic+force+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomechanical+Engineering%22%5BJournal%5D)">Non-Hertzian approach to analyzing mechanical properties of endothelial cells probed by atomic force microscopy.</a> Journal of Biomechanical Engineering. 128, 176-184 (2006).</li>
<li>Xiong, Y., Lee, A. C., Suter, D. M., Lee, G. U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Topography+and+nanomechanics+of+live+neuronal+growth+cones+analyzed+by+atomic+force+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+Journal%22%5BJournal%5D)">Topography and nanomechanics of live neuronal growth cones analyzed by atomic force microscopy.</a> Biophysical Journal. 96, 5060-5072 (2009).</li>
<li>Byfield, F. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Absence+of+filamin+A+prevents+cells+from+responding+to+stiffness+gradients+on+gels+coated+with+collagen+but+not+fibronectin%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+Journal%22%5BJournal%5D)">Absence of filamin A prevents cells from responding to stiffness gradients on gels coated with collagen but not fibronectin.</a> Biophysical Journal. 96, 5095-5102 (2009).</li>
<li>Cross, S. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((AFM-based+analysis+of+human+metastatic+cancer+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nanotechnology%22%5BJournal%5D)">AFM-based analysis of human metastatic cancer cells.</a> Nanotechnology. 19, 384003(2008).</li>
<li>Storm, C., Pastore, J. J., MacKintosh, F. C., Lubensky, T. C., Janmey, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nonlinear+elasticity+in+biological+gels%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Nonlinear elasticity in biological gels.</a> Nature. 435, 191-194 (2005).</li>
<li>Wen, Q., Janmey, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polymer+physics+of+the+cytoskeleton%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Opinion+in+Solid+State+%26+Materials+Science%22%5BJournal%5D)">Polymer physics of the cytoskeleton.</a> Current Opinion in Solid State & Materials Science. 15, 177-182 (2011).</li>
<li>Dimitriadis, E. K., Horkay, F., Maresca, J., Kachar, B., Chadwick, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Determination+of+elastic+moduli+of+thin+layers+of+soft+material+using+the+atomic+force+microscope%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+Journal%22%5BJournal%5D)">Determination of elastic moduli of thin layers of soft material using the atomic force microscope.</a> Biophysical Journal. 82 (02), 2798-2810 (2002).</li>
<li>Trache, A., Lim, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Live+cell+response+to+mechanical+stimulation+studied+by+integrated+optical+and+atomic+force+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Live cell response to mechanical stimulation studied by integrated optical and atomic force microscopy.</a> J. Vis. Exp. (44), e2072(2010).</li>
<li>Lim, S. M., Kreipe, B. A., Trzeciakowski, J., Dangott, L., Trache, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extracellular+matrix+effect+on+RhoA+signaling+modulation+in+vascular+smooth+muscle+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Cell+Res%22%5BJournal%5D)">Extracellular matrix effect on RhoA signaling modulation in vascular smooth muscle cells.</a> Exp. Cell Res. 316, 2833-2848 (2010).</li>
</ol>

Geen belangenconflicten verklaard.

De AFM inspringen methode heeft voordelen om mechanische eigenschappen van levende cellen te karakteriseren. Zij het ​​minder gevoelig is dan de magnetische draaiende cytometrie en optische pincetten, welke krachten kunnen meten op het piconewton level 32, kan de AFM weerstandskracht detecteren van monsters, variërend van enkele tientallen pico-Newton tot honderden nano-Newton, vergelijkbaar met variëren van kracht die kunnen worden toegepast op cellen met behulp van een micropipet 19. Deze reeks v...

Mechanische eigenschappen, met name stijfheid van afzonderlijke cellen en de omliggende extracellulaire matrix (ECM) zijn essentieel voor vele biologische processen zoals celgroei, motiliteit, celdeling, differentiatie en weefsel homeostase. 1 Het is aangetoond dat cellen mechanische stijfheid mate wordt bepaald door het cytoskelet, vooral de netwerken van actine en intermediaire filamenten en andere eiwitten gekoppeld. 2 Resultaten van de mechanische testen van de in vitro netwerken van actine en intermediaire filamenten suggereren dat de cel mechanica is grotendeels afhankelijk van de cytoskelet structuur en de voorspanning in het cytoskelet. 3-5 Stijfheid van levende cellen wordt vervolgens beschouwd als een index om de cytoskelet structuur 6, myosine activiteit 7 en vele andere cellulaire processen te evalueren. Belangrijker, veranderingen in cel mechanische eigenschappen vaak blijkt nauw associated met diverse aandoeningen zoals tumorvorming en metastase 8-10 Monitoring de mechanische stijfheid van levende cellen kan derhalve een nieuwe manier om celfysiologie volgen;. te detecteren en diagnosticeren ziekten 8;. en de doeltreffendheid van geneesmiddelen behandelingen evalueren 11 , 12 Meerdere werkwijzen waaronder deeltjes volgen microrheology, 13-16 magnetische verdraaien cytometry, 17 micropipet aspiratie 18,19 en microindentation 20-22 zijn ontwikkeld om de elasticiteit van de cellen te meten. Deeltje volgen microrheology traceert de thermische trillingen van beide submicrondeeltjes fluorescerende deeltjes geïnjecteerd in cellen of ijkmarkeringen in de cel cytoskelet. 23 Elastisch en visceuze eigenschappen van cellen worden berekend op basis van de gemeten deeltjes verplaatsingen met de fluctuatie-dissipatie theorema. 14,23 Deze methode maakt gelijktijdige metingen van lokalemechanische eigenschappen met een hoge ruimtelijke resolutie op verschillende plaatsen in een cel. Echter, injecteren fluorescerende deeltjes in cellen kan leiden tot veranderingen in cellulaire functie, cytoskelet structuur en dus de cel mechanics. De micropipet aspiratie methode is onderdruk in een micropipet met een diameter van 1 tot 5 urn op een klein stukje celmembraan zuigen in de pipet. Cell stijfheid wordt berekend uit de toegepaste onderdruk en celmembraan vervorming. 18 Deze werkwijze kan echter niet de ongelijkmatige verdeling van de stijfheid over de cel te detecteren. Magnetische twisting cytometrie (MTC) van toepassing magnetisch veld koppel aan super paramagnetische beads bevestigd aan het celmembraan genereren. Cell 17 stijfheid wordt verkregen in deze werkwijze van de relatie tussen de toegepaste torsie en de kronkelende vervorming van de celmembraan. Het is moeilijk om de locatie van de magnetische korrels in de werkwijze MTC controleren, en het is ook challenging tot de kronkelende vervorming met een hoge resolutie te karakteriseren. Microindentation geldt een indenter met goed gedefinieerde geometrie om punch in de cel. Het inspringen kracht en de resulterende inspringen in cellen volgen vaak de voorspelling van de Hertz-model. Young&#39;s moduli van de cellen kan worden berekend uit de kracht-indrukking curven aanpassen ervan aan de Hertz model. Deze methode is op grote schaal toegepast op de mechanische eigenschappen van de weefsels en cellen te testen, ondanks zijn beperkingen, zoals onzekerheid in contactpunt vastberadenheid, toepasbaarheid van de Hertz-model, en het potentieel om fysiek te beschadigen de cellen. Onder de vele apparaten voor microindentaion 20, de Atomic Force Microscope (AFM) is in de handel verkrijgbaar en is op grote schaal toegepast op de mechanische eigenschappen van levende cellen en weefsels 21,24-27 karakteriseren. Deze paper toont de procedure van het gebruik van een asiel MFP3D-Bio AFM naar cel mechanica karakteriseren. AFM niet oply levert hoge-resolutie topografie van cellen, maar ook op grote schaal toegepast om de mechanische eigenschappen van weefselcellen karakteriseren. Het principe van AFM indrukking wordt geïllustreerd in figuur 1. De AFM cantilever nadert de cel van enkele micrometers hierboven, maakt contact met de cel streepjes de cel zodat de cantilever doorbuiging een voorgeselecteerd setpunt bereikt, en trekt vanaf de cel. Tijdens dit proces wordt de cantilever doorbuiging wordt geregistreerd als een functie van de locatie zoals weergegeven in figuur 1. Alvorens contact met de cel, de cantilever beweegt het medium zonder enige duidelijke afwijking. Wanneer inspringen op de cel, de cantilever bochten en de afbuigsignaal toeneemt. De cantilevers worden gemodelleerd als elastische balken zodat hun afbuiging evenredig is met de op het cel kracht. Door het instellen van de maximale cantilever doorbuiging, is de maximale grootte van de kracht toegepast op de steekproef beperkt tot d voorkomenAmage aan cellen. Het gedeelte van de kracht curve van punt b in figuur 1, waarbij de punt streepjes in de cel, is bekwaam tot het hertz model om de cel stijfheid extraheren naar punt c. <img src="/files/ftp_upload/50497/50497fig1.jpg" alt="Figuur 1" fo:content-width="4.75in" fo:src="/files/ftp_upload/50497/50497fig1highres.jpg"/> Figuur 1. Illustratie van de AFM microindentation en interpretatie van de geldende curve. Het bovenste paneel toont de beweging van AFM cantilever gedreven door de piëzo-scanner. De verticale locatie van cantilever z en cantilever uitwijkingssignaal d wordt geregistreerd gedurende het proces. De cantilever begint vanaf punt een, enkele micrometers boven de cel. Bij het naderen van de cel, het monster inkeping δ blijft nul tot het punt b, wanneer de punt in contact komt met de cel bereikt. De coördinaten van punt b in de plot zijn kritieke waardenvoor gegevensanalyse, aangeduid met (z 0, d 0&gt;). Van b naar c, de cantilever streepjes in de cel totdat de cantilever doorbuiging bereikt een instelling, die is ingesteld op de verhouding tussen de beoogde maximum inspringen kracht en de cantilever veerconstante zijn. Zodra de afbuigsignaal de ingestelde maximale waarde heeft bereikt, wordt de cantilever vervolgens teruggetrokken uit de cel naar punt d, waar het vaak naar beneden worden getrokken als gevolg van tip-sample adhesie, los van de cel en keert terug naar zijn oorspronkelijke locatie bij e. Het rechter paneel toont de relatie tussen de inkeping en de opgenomen z en d signaal. In op de lagere linker paneel is een plot van een representatieve kracht curve, de maximale inspringen van een cantilever, waarvan de veerconstante wordt gemeten om te 0.07N / m, is ingesteld om 17 nm, zodat de maximale inspringen kracht toegepast op steekproef is 1.2 nN. De belangrijkste locaties tijdens de insprong zijn gemarkeerd.

<table><tbody><tr><td>Atomaire Krachtmicroscoop </td><td>Asylum Research</td><td>MFP3D-BIO</td><td></td></tr></tbody></table>

het meten van de mechanische eigenschappen van levende cellen door gebruik atomic force microscopy

Measuring the Mechanical Properties of Living Cells Using Atomic Force Microscopy

Mechanische eigenschappen van cellen en extracellulaire matrix (ECM) spelen een belangrijke rol in vele biologische processen waaronder stamcel differentiatie, tumorvorming en wondgenezing. Veranderingen in stijfheid van cellen en ECM vaak tekenen van veranderingen in celfysiologie of ziektes in weefsels. Daarom cel stijfheid is een index om de status van celkweken evalueren. Onder de vele methoden die aan de stijfheid van cellen en weefsels te meten, micro-inkeping met een Atomic Force Microscope (AFM) biedt een manier om betrouwbare wijze de stijfheid van levende cellen. Deze methode is op grote schaal toegepast op de micro-schaal stijfheid karakterisering van verschillende materialen, variërend van metalen oppervlakken zachte biologische weefsels en cellen. Het basisprincipe van deze werkwijze is om een ​​cel inspringen met een AFM tip van geselecteerde geometrie en meet de uitgeoefende kracht de buiging van de AFM cantilever. Montage van de kracht-inkeping bocht naar de Hertz-modusl voor de bijbehorende tip geometrie kunnen kwantitatieve metingen van het materiaal stijfheid te geven. Deze paper toont de procedure om de stijfheid van levende cellen met behulp van AFM karakteriseren. Belangrijkste stappen waaronder het proces van de AFM kalibratie, kracht-curve acquisitie en data-analyse met behulp van een MATLAB routine worden gedemonstreerd. Beperkingen van deze methode worden ook besproken.

Figuur 2a toont drie representatieve krachtcurven uit 3T3 fibroblasten gekweekt op plastic oppervlak, polyacrylamide gel elasticiteitsmoduli 3000 Pa en 17.000 Pa, respectievelijk. Na zorgvuldig identificeren van de contactpunten in de bochten, wordt het inspringen kracht als functie van de cel vervorming uitgezet in Figuur 2b. Onder een kracht van grootte kleiner dan 0,3 nN, een piramidevorm tip streepjes 3 micrometer in een cel gekweekt op een 3 kPa polyacrylamidegel. In tegenstelling,...

Deze paper toont een protocol om de mechanische eigenschappen van levende cellen te karakteriseren door middel van microindentation gebruik van een Atomic Force Microscope (AFM).

Het meten van de mechanische eigenschappen van levende cellen door gebruik Atomic Force Microscopy

Mechanical  properties of cells and extracellular matrix (ECM) play important roles in many  biological processes including stem cell differentiation, ...

Het algemene doel van het volgende experiment is het meten van de elasticiteitsmodulus van levende cellen met behulp van een atoomkrachtmicroscoop. Dit wordt bereikt door eerst FM-krachtspectroscopie-metingen uit te voeren op verschillende locaties op de cel. Als tweede stap wordt elke kracht-afstandscurve geanalyseerd om het punt te bepalen waarop de AFM-tip initieel contact maakt met de cel.Vervolgens worden, beginnend bij het contactpunt, de eerste 200 tot 300 nanometer van de indentatiedata gefit aan het Hertz-model. Om de elasticiteitsmodulus te extraheren, leveren de resultaten een 2D-kaart van de celstijfheid op, verkregen door gebruik te maken van de force mapping-modus waarbij elke pixel een enkele kracht-afstandscurve vertegenwoordigt. De procedure zal worden gedemonstreerd door Guen Thomas, een promovendus uit mijn laboratorium. Om met deze procedure te beginnen, reinigt u de cantileverhouder met 70% ethanol en laat u deze drogen.Laad vervolgens een bru DNP 10 cantilever in de AFM volgens de instructies van de fabrikant. Kalibreer daarna de gevoeligheid van de inverse optische hefboom. Deze parameter beschrijft de respons van de fotodiode in volt per nanometer cantilever-uitwijking.Om dit te bereiken, plaatst u eerst een schoon glazen objectglas op de monsterhouder. Installeer de AFM-kop en stel de laserstraal en de uitlijning in volgens de instructies van de fabrikant. Zodra de uitlijning is voltooid, brengt u de AFM-tip in contact met het glazen objectglas terwijl de P8O is teruggetrokken.Lijn de spiegel opnieuw uit tot een fotodiodereading van min twee volt. Voer vervolgens een krachtspectroscopiemeting uit met een maximale fotodiode-respons of triggerpunt van plus twee volt. Nadat de gegevensverwerving is voltooid, zoomt u in op het gebied van vast contact van de krachtcurve en voert u een lineaire fit uit op dit gebied.Om de helling in volt per nanometer te bepalen, moet de spiegeluitlijning vervolgens worden gereset naar een vrije doorbuiging van nul volt. Kalibreer daarna de veerconstante van de cantilever met de thermische tuningmethode beschreven door Levy en Malam. Begin hiermee door de scanner weg van de monsterhouder te bewegen, zodat er geen interacties plaatsvinden tussen de tip en het monster.Leg vervolgens de thermische gegevens vast door de thermische vibratie van de cantileverbalk te registreren. De AFM-software analyseert een vermogensspectrum van een dergelijke thermische vibratie en plot dit in een gegevensvenster. Voer vervolgens een fit uit op het gegevenssegment dat gecentreerd is rond de laagste frequentie, ook wel de fundamentele resonantiepiek genoemd, om de veerconstante te bepalen.Om de AFM voor de kweekplaten voor te bereiden, installeert u een schaaltjesverwarming op de AFM-tafel en stelt u de temperatuur in op 37 °C. Wacht 20 minuten tot het systeem een stabiel thermisch evenwicht heeft bereikt. Plaats na het voorverwarmen een kweekschaaltje op de AFM-tafel en zet dit vast met de klem die bij de schaaltjesverwarming is geleverd; voor metingen langer dan 30 minuten moet een CO₂-onafhankelijk medium worden gebruikt ter vervanging van het normale kweekmedium.Breng vervolgens een kleine druppel kweekmedium van 37 °C aan op de punt van de AFM-cantilever en laat de AFM-kop zakken tot de punt net in de vloeistof is ondergedompeld. Gebruik een CCD-camera voor bovenaanzicht om de laserstraal op de cantilever opnieuw uit te lijnen. De uitlijning in vloeistof zal verschillen van die in lucht vanwege de verandering in de brekingsindex van het medium.Zodra de uitlijning is voltooid, wordt de AFM-tip op een celvrij gebied van de kweekschaal geplaatst om de kalibratie van de gevoeligheid van de inverse optische hefboom in de vloeistofomgeving uit te voeren. Om de metingen van de mechanische eigenschappen van cellen te starten, wordt de tip van de cantilever met behulp van een optische microscoop boven het perle-ooggebied van een cel gepositioneerd. Nauwkeurige aanpassingen van de positie van de cantilever worden gerealiseerd door offsets toe te passen op de X- en Y-scanners.Schakel vervolgens de AFM in naar de spectroscopiemodus en stel de indentatiesnelheid in op 5 µm/s, wat laag genoeg is om hydrodynamische effecten te vermijden. Stel daarna het triggerpunt voor de deflectie in op 2 nN. Pas deze waarde aan op basis van de stijfheid van het monster om beschadiging van de cellen te voorkomen.Select daarnaast de optie voor relatieve triggering, wat eventuele drift in het deflectiesignaal zal corrigeren. Stel vervolgens de krachtafstand in op vijf micrometer om ervoor te zorgen dat de tip tussen de krachtmetingen volledig losgekoppeld is van de cel. Verzamel drie krachtcurven op verschillende locaties in het kerngebied van ten minste 30 cellen per conditie.Hoewel het voordelig is om meerdere curves per cel op te nemen, kan het opnemen van te veel curves voor betrouwbare statistische gegevens leiden tot veranderingen in de celstijfheid door stress van de AFM-probe. Karakteriseer de distributie van de mechanische eigenschappen over een enkele cel verder met behulp van de force map-modus.Stel in de force map-modus de scantestgrootte in op 30 micrometers, de resolutie op 32 bij 32, en hanteer voor de indentatieparameters dezelfde instellingen als die zijn geselecteerd voor enkele krachtcurves. De AFM neemt vervolgens enkele krachtcurves op bij elke pixel in het monstergebied en levert een stijfheidskaart van het gehele gebied. Analyseer vervolgens de geregistreerde krachtcurves met MATLAB om de celstijfheid te berekenen.Begin met het toepassen van een algoritme, voor het eerst gepubliceerd door Lynette Al, dat met behulp van MATLAB zowel een lineaire fit als een Hertz-fit voor elk punt berekent. Bereken de relatieve RMS-fout van beide fits en tel deze waarden bij elk punt bij elkaar op. Het punt waarop de minimale totale fitfout wordt behaald, wordt geselecteerd als het initiële contactpunt; het lokaliseren van dit punt is cruciaal voor een nauwkeurige meting van de Young-modulus van de cellen.Bereken vervolgens de vervorming delta van het monster. Gebruik hiervoor de volgende vergelijkingen, waarbij de vervorming gelijk is aan nul vóór het celcontact (wanneer Z kleiner is dan Z nul) en gelijk is aan het verschil tussen de doorbuiging D van de cantilever en de totale afstand Z voorbij het contactpunt. Bereken daarna de indrukkracht F met behulp van de volgende vergelijkingen, waarbij de kracht gelijk is aan nul vóór het celcontact (wanneer Z kleiner is dan Z nul) en gelijk is aan de veerconstante K van de cantilever vermenigvuldigd met de doorbuiging van de cantilever voorbij het contactpunt.De fit van Elise square wordt vervolgens toegepast op de gegevens van monsterdeformatie versus indrukkingskracht in het post-contactgebied van het Hertz-model, om de Young-modulus van de cel te bepalen op basis van de vorm van de gebruikte tip zoals getoond. Hier zijn representatieve krachtcurves van drie T3-fibroblastcellen die zijn gekweekt op drie verschillende oppervlakken. Zoals hier te zien is, kunnen verschillende oppervlakken de stijfheid van het celcytoskelet sterk beïnvloeden.De gemiddelde vervorming van cellen die zijn gekweekt op een hard plastic oppervlak wordt in het rood weergegeven. Cellen die zijn gegroeid op een stijve polyacrylamidegel worden in het paars weergegeven, en cellen die zijn gegroeid op een elastische polyacrylamidegel worden in het blauw weergegeven. Na een zorgvuldige identificatie van de contactpunten in de curven kunnen de indrukingskrachten als functie van de celvervorming nauwkeurig worden weergegeven.Daarnaast kan hun Young-modulus nauwkeurig worden berekend op basis van de eerste 300 nanometers van de indentatie na contact. Hier wordt een fibroblast getoond die is getransfecteerd met menton gelabeld met groen fluorescent eiwit, een type intermediair filament. Hoe helderder het beeld, hoe meer menton er in dat gebied aanwezig is.Dit kan gerelateerd zijn aan de stijfheid van het cytoskelet van de cel. Met de hier gepresenteerde AFM-krachtmappingtechniek is het mogelijk om een soortgelijke stijfheidskaart van een fibroblast weer te geven met een resolutie van 32 bij 32 pixels, waarbij elke pixel een celoppervlak van 2,5 bij 2,5 microns vertegenwoordigt. Na het bekijken van deze video heeft u een goed beeld van hoe u atoomkrachtmicroscopie kunt gebruiken om de elasticiteit van levende weefselcellen te meten.

measuring-mechanical-properties-living-cells-using-atomic-force

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Bio-engineering

Dit document heeft tot doel de lezer in de exploitatie van een geïntegreerde atomic force-microscoop optische beeldvorming instrueren voor de mechanische stimulatie van levende cellen in cultuur. Een stap-voor-stap protocol wordt gepresenteerd. Een representatieve dataset die levende cellen als reactie op mechanische stimulatie shows gepresenteerd.

Live-cel respons op mechanische stimulatie onderzocht door Integrated Optical en Atomic Force Microscopy

Hier, detail we de experimentele technieken gebruikt om te evalueren van de uitsteeksel krachten die podosomes van toepassing op een compatibele film, vanaf de voorbereiding van de film naar de geautomatiseerde analyse van topografische beelden.

Uitsteeksel Force microscopie: Een methode om te kwantificeren krachten ontwikkeld door cel uitsteeksels

In dit protocol beschrijven we een micropipet-methode om een gecontroleerde kracht direct toepassen in de kern in een levende cel. Deze bepaling laat ondervraging van nucleaire mechanische eigenschappen in de cel levend, aanhangend.

Een directe kracht sonde voor het meten van de mechanische integratie tussen de kern en het cytoskelet

Hier presenteren we een protocol voor het gelijktijdig gebruik van Förster resonance energie overdracht gebaseerde spanning sensoren voor het meten van eiwit belasting en fluorescentie herstel na photobleaching voor het meten van de dynamiek van de eiwitten waardoor de meting van kracht-gevoelige eiwit dynamiek binnen levende cellen.

Meting van de kracht-gevoelige eiwitten Dynamics in levende cellen met behulp van een combinatie van Fluorescent technieken

We presenteren een protocol voor het functionaliseren van atomaire kracht Microscoop (AFM) cantihefbomen met een enkele T-cel en kraal deeltje voor immunologische studies. Procedures voor het sonde-eenpaar T-cel-dendritische celbinding door de AFM en om de real-time cellulaire respons van macrofagen op één vast deeltje door de AFM te monitoren met fluorescentie beeldvorming worden getoond.

Functionalisatie van atomaire kracht Microscoop Cantihefbomen met single-T cellen of één deeltje voor immunologische eencellige kracht spectroscopie

Hier presenteren we atomaire kracht microscopie (AFM), die wordt gebruikt als een nano-en micro-indentatie tool op cellen en weefsels. Het instrument maakt gelijktijdige verwerving van 3D-oppervlaktetopografie van het monster en de mechanische eigenschappen mogelijk, met inbegrip van de modulus van de celwand Young en de turgor-druk.

Gebruik van atoom kracht microscopie om mechanische eigenschappen en turgor druk van plantencellen en Plantenweefsels te meten

Dit protocol heeft als doel afm-metingen op honderden microbiële cellen te automatiseren. Eerst worden microben geïmmobiliseerd in PDMS-stempelmicrostructuren en vervolgens worden krachtspectroscopiemetingen automatisch uitgevoerd op honderden geïmmobiliseerde cellen.

Automatisering van bio-atoomkrachtmicroscoopmetingen op honderden C. albicans-cellen

Hier gepresenteerd is het protocol van de Conpokal techniek, die confocale en atomaire kracht microscopie combineert in een enkel instrument platform. Conpokal biedt dezelfde cel, dezelfde regio, in de buurt van gelijktijdige confocale beeldvorming en mechanische karakterisering van levende biologische monsters.

Near Simultaneous Laser Scanning Confocal and Atomic Force Microscopy (Conpokal) op Live Cells

Hier presenteren we een protocol om de intracellulaire mechanische eigenschappen van geïsoleerde embryonale zebraviscellen in driedimensionale opsluiting te onderzoeken met directe krachtmeting door een optische val.

Directe krachtmetingen van subcellulaire mechanica in opsluiting met behulp van optische pincetten

Studies van celwandbiomechanica zijn essentieel voor het begrijpen van plantengroei en morfogenese. Het volgende protocol wordt voorgesteld om dunne primaire celwanden in de interne weefsels van jonge plantenorganen te onderzoeken met behulp van atoomkrachtmicroscopie.

Karakteriseren van mechanische eigenschappen van primaire celwand in levende plantenorganen met behulp van atoomkrachtmicroscopie

Het kwantificeren van het contactoppervlak en de kracht die door een atoomkrachtmicroscoop (AFM) sondepunt op een monsteroppervlak wordt uitgeoefend, maakt mechanische eigenschapsbepaling op nanoschaal mogelijk. Best practices voor het implementeren van AFM cantilever-gebaseerde nano-indentatie in lucht of vloeistof op zachte en harde monsters om elastische modulus of andere nanomechanische eigenschappen te meten, worden besproken.

Atomic Force Microscopy Cantilever-Based Nanoindentation: Mechanische eigenschapsmetingen op nanoschaal in lucht en vloeistof

Leer de mechanische eigenschappen van levende cellen meten door micro-indentatie met Atomic Force Microscopy. Deze methode gebruikt krachtspectroscopie en het Hertz-model om de elasticiteitsmodulus te bepalen en 2D stijfheidskaarten te genereren.

Het meten van de mechanische eigenschappen van levende cellen door gebruik Atomic Force Microscopy

Meer video's verkennen