Moleculaire klonering
Moleculaire klonering is een reeks technieken die worden gebruikt om recombinant DNA uit een prokaryote of eukaryote bron in een replicerend voertuig te plaatsen, zoals plasmiden of virale vectoren. Kloneren verwijst naar het maken van talloze kopieën van een DNA-fragment van belang, zoals een gen. In deze video leert u over de verschillende stappen van moleculaire klonering, hoe u de procedure opzet en de verschillende toepassingen van deze techniek.
Voordat het kloneren begint, zijn er ten minste twee belangrijke DNA-moleculen nodig. Ten eerste, en het belangrijkste, heb je het DNA-fragment dat je gaat kloneren nodig, ook wel het insert genoemd. Dit kan afkomstig zijn van een prokaryoot, eukaryoot, een uitgestorven organisme, of het kan kunstmatig in het laboratorium worden gecreëerd. Door middel van moleculaire klonering kunnen we meer leren over de functie van een specifiek gen.
Ten tweede heb je een vector nodig. Een vector is plasmiden-DNA dat in de moleculaire biologie als instrument wordt gebruikt om kopieën van een bepaald gen te maken of om een eiwit uit dat gen te produceren. Plasmiden zijn een voorbeeld van een vector en zijn circulair, extrachromosomaal DNA dat door bacteriën wordt gerepliceerd.
Een plasmide heeft doorgaans een multiple cloning site of MCS; dit gebied bevat herkenningsplaatsen voor verschillende restrictie-endonucleasen, ook wel restrictie-enzymen genoemd. Verschillende inserts kunnen in het plasmide worden ingevoegd via een techniek genaamd ligatie. De plasmidevector bevat ook een replicatie-oorsprong (origin of replication), waardoor deze in bacteriën kan worden gerepliceerd. Daarnaast heeft het plasmide een antibioticaresistentiegen. Als bacteriën het plasmide opnemen, overleven ze in media die het antibioticum bevatten. Dit maakt de selectie van bacteriën die succesvol zijn getransformeerd mogelijk.
Het insert en de vector worden gekloneerd in een gastcelorganisme; de meest gebruikte in moleculaire klonering is E. coli. E. coli groeit snel, is breed beschikbaar en er zijn talrijke verschillende commercieel geproduceerde kloningsvectoren beschikbaar. Eukaryoten, zoals gist, kunnen ook als gastorganismen voor vectoren worden gebruikt.
De eerste stap van de algemene moleculaire kloneringsprocedure is het verkrijgen van het gewenste insert, dat kan worden afgeleid van DNA of mRNA van elk celtype. De optimale vector en het bijbehorende gastorganisme worden vervolgens gekozen op basis van het type insert en wat er uiteindelijk mee moet gebeuren. Een polymerasekettingreactie, of PCR-gebaseerde methode, wordt vaak gebruikt om het insert te repliceren.
Vervolgens worden, door middel van een reeks enzymatische reacties, het insert en het digest samengevoegd en geïntroduceerd in het gastorganisme voor massareplicatie. Gerepliceerde vectoren worden uit de bacteriën gezuiverd en na restrictiedigestie geanalyseerd op een gel. Gel-gezuiverde fragmenten worden later ter sequencing opgestuurd om te verifiëren dat het insert het gewenste DNA-fragment is.
Laten we iets gedetailleerder kijken naar hoe moleculaire klonering wordt uitgevoerd. Voordat u begint, is het raadzaam om uw kloneringsstrategie uit te stippelen voordat u enige kloneringspoging aan de bench doet. Bijvoorbeeld, elke gegeven plasmidevector biedt u een beperkt aantal restrictieplaatsen om het insert via de multiple cloning site in te bouwen. U moet restrictieplaatsen kiezen die niet in uw insert voorkomen, zodat u dit niet opensnijdt. U kunt in een situatie terechtkomen waarin u gedwongen wordt een blunt-end fragment te koppelen aan een fragment met een overhang. In dat geval kan het gebruik van het Klenow-fragment om een blunt-end ligatie op te zetten uw enige optie zijn om het insert in de gewenste vector te krijgen. Het begrijpen van de verschillende beschikbare moleculaire kloneringsinstrumenten, samen met het bedenken van een zorgvuldige strategie voordat u begint met kloneren, kan een enorme tijdbesparing opleveren.
De DNA-bron voor moleculaire klonering kan uit bijna elk type cel- of weefselmonster worden geïsoleerd via eenvoudige extractietechnieken. Eenmaal geïsoleerd, kan PCR worden gebruikt om het insert te amplificeren.
Zodra het insert is geamplificeerd, worden zowel het insert als de vector verteerd door restrictie-enzymen, ook wel restrictie-endonucleases genoemd.
Na de digestie kunnen het insert en de vector op een gel worden geladen en worden gezuiverd via een proces genaamd gelzuivering. Met betrekking tot de vector helpt deze stap om gelineariseerd plasmide te zuiveren van niet-geknipt plasmide, dat op een gel vaak verschijnt als een smear met een hoog molecuulgewicht.
Na het gelzuiveren van de digesten wordt het insert geligeerd of gekoppeld aan het plasmide via een enzym genaamd DNA-ligase.
Over het algemeen is het altijd raadzaam om ligaties zo op te zetten dat de verhouding tussen insert en vector 3 op 1 is, wat ervoor zorgt dat slechts een kleine hoeveelheid vector zal self-ligateren. Zodra de ligatie op ijs is voorbereid, wordt deze geïncubeerd bij een temperatuur tussen 14-25˚C gedurende 1 uur tot een nacht.
Vervolgens wordt transformatie uitgevoerd om de plasmidevector te introduceren in de gastheer die deze zal repliceren.
Na transformatie worden bacteriën uitgeplaat op agarplaten met antibiotica en een nacht geïncubeerd bij 37°C. Omdat het plasmide een antibioticaresistentiegen bevat, zal een succesvolle transformatie leiden tot bacteriële kolonies wanneer deze groeien op agarplaten in aanwezigheid van antibiotica. Individuele kolonies kunnen vervolgens van de getransformeerde plaat worden gepikt, in genummerde buisjes met vloeibaar groeimedium worden geplaatst en in een schudincubator worden gezet voor expansie. Een klein volume van de vloeibare cultuur wordt aan een genummerde agarplaat toegevoegd, terwijl de rest van de cultuur wordt gebruikt voor plasmidezuivering. Het nummeringsschema dat de identiteit van de bacteriële kolonies aanduidt waarvan de plasmiden uiteindelijk worden gezuiverd, wordt gedurende het hele plasmidezuiveringsproces gehandhaafd.
Een monster van het gezuiverde plasmide wordt vervolgens geknipt met restrictie-enzymen. De digest wordt daarna op de gel geladen en gerund om de aanwezigheid van het insert te controleren, wat bevestigt dat de bacteriële kolonie is getransformeerd met een plasmide dat een insert bevat en niet met een self-geligeerd plasmide. Bacteriën waarvan is bevestigd dat ze zijn getransformeerd met een plasmide met insert, worden verder uitgebreid voor aanvullende plasmidezuivering. Sequenering wordt uitgevoerd als laatste verificatiestap om te bevestigen dat uw gen van interesse is gekloneerd.
Moleculaire klonering kan worden gebruikt voor een vrijwel onbeperkt aantal toepassingen. Wanneer bijvoorbeeld een mRNA-template wordt omgezet in cDNA, of complementair DNA, door een enzym genaamd reverse transcriptase en vervolgens PCR wordt gebruikt om het cDNA te amplifieren, kan moleculaire klonering worden ingezet om een cDNA-bibliotheek te maken – een bibliotheek van alle genen die worden tot expressie gebracht door een bepaald celtype.
Moleculaire klonering kan ook worden gebruikt om een reeks genen, of een gencluster, uit één bacteriële stam te halen en deze te reorganiseren in plasmiden die worden getransformeerd in een andere stam, zodat een volledig biosynthetisch pad kan worden gereconstrueerd om een complex molecuul te produceren.
Via moleculaire klonering kan een mutantenbibliotheek worden gegenereerd door een doelplasmide tot expressie te brengen in een speciale bacteriële stam die een foutgevoelige polymerase gebruikt wanneer deze bij bepaalde temperaturen wordt gekweekt. De mutaties kunnen worden gekarakteriseerd door sequencing. Bacteriën die zijn getransformeerd met mutante genen kunnen vervolgens worden getest met verschillende geneesmiddelen of chemicaliën om te zien welke bacteriële kolonies zijn geëvolueerd om drugresistentie te vertonen.
Dankzij moleculaire klonering kunnen reportergenen in DNA-plasmiden worden ingebouwd; een veelgebruikt reportergen is het groen fluorescerende proteïne of GFP, dat een groene fluorescentie uitzendt bij blootstelling aan UV-licht. Een reportergen kan ook worden ingevoegd in een alphavirus om infectie in muggen en overdraagbaarheid in cellen aan te tonen.
U heeft zojuist de video van JoVE over moleculaire klonering bekeken. U begrijpt nu hoe moleculaire klonering werkt en hoe deze techniek kan worden toegepast in de moleculaire biologie. Zoals altijd, bedankt voor het kijken!
Moleculaire klonering is een verzameling methoden die worden gebruikt om recombinant DNA in een vector te plaatsen - een drager van DNA-moleculen die…
Moleculaire klonering is een reeks technieken die worden gebruikt om recombinant DNA uit een prokaryote of eukaryote bron in een replicerend voertuig te plaatsen, zoals plasmiden of virale vectoren. Kloneren verwijst naar het maken van talloze kopieën van een DNA-fragment van belang, zoals een gen. In deze video leert u over de verschillende stappen van moleculaire klonering, hoe u de procedure opzet en de verschillende toepassingen van deze techniek.
Voordat het kloneren begint, zijn er ten minste twee belangrijke DNA-moleculen nodig. Ten eerste, en het belangrijkste, heb je het DNA-fragment dat je gaat kloneren nodig, ook wel het insert genoemd. Dit kan afkomstig zijn van een prokaryoot, eukaryoot, een uitgestorven organisme, of het kan kunstmatig in het laboratorium worden gecreëerd. Door middel van moleculaire klonering kunnen we meer leren over de functie van een specifiek gen.
Ten tweede heb je een vector nodig. Een vector is plasmiden-DNA dat in de moleculaire biologie als instrument wordt gebruikt om kopieën van een bepaald gen te maken of om een eiwit uit dat gen te produceren. Plasmiden zijn een voorbeeld van een vector en zijn circulair, extrachromosomaal DNA dat door bacteriën wordt gerepliceerd.
Een plasmide heeft doorgaans een multiple cloning site of MCS; dit gebied bevat herkenningsplaatsen voor verschillende restrictie-endonucleasen, ook wel restrictie-enzymen genoemd. Verschillende inserts kunnen in het plasmide worden ingevoegd via een techniek genaamd ligatie. De plasmidevector bevat ook een replicatie-oorsprong (origin of replication), waardoor deze in bacteriën kan worden gerepliceerd. Daarnaast heeft het plasmide een antibioticaresistentiegen. Als bacteriën het plasmide opnemen, overleven ze in media die het antibioticum bevatten. Dit maakt de selectie van bacteriën die succesvol zijn getransformeerd mogelijk.
Het insert en de vector worden gekloneerd in een gastcelorganisme; de meest gebruikte in moleculaire klonering is E. coli. E. coli groeit snel, is breed beschikbaar en er zijn talrijke verschillende commercieel geproduceerde kloningsvectoren beschikbaar. Eukaryoten, zoals gist, kunnen ook als gastorganismen voor vectoren worden gebruikt.
De eerste stap van de algemene moleculaire kloneringsprocedure is het verkrijgen van het gewenste insert, dat kan worden afgeleid van DNA of mRNA van elk celtype. De optimale vector en het bijbehorende gastorganisme worden vervolgens gekozen op basis van het type insert en wat er uiteindelijk mee moet gebeuren. Een polymerasekettingreactie, of PCR-gebaseerde methode, wordt vaak gebruikt om het insert te repliceren.
Vervolgens worden, door middel van een reeks enzymatische reacties, het insert en het digest samengevoegd en geïntroduceerd in het gastorganisme voor massareplicatie. Gerepliceerde vectoren worden uit de bacteriën gezuiverd en na restrictiedigestie geanalyseerd op een gel. Gel-gezuiverde fragmenten worden later ter sequencing opgestuurd om te verifiëren dat het insert het gewenste DNA-fragment is.
Laten we iets gedetailleerder kijken naar hoe moleculaire klonering wordt uitgevoerd. Voordat u begint, is het raadzaam om uw kloneringsstrategie uit te stippelen voordat u enige kloneringspoging aan de bench doet. Bijvoorbeeld, elke gegeven plasmidevector biedt u een beperkt aantal restrictieplaatsen om het insert via de multiple cloning site in te bouwen. U moet restrictieplaatsen kiezen die niet in uw insert voorkomen, zodat u dit niet opensnijdt. U kunt in een situatie terechtkomen waarin u gedwongen wordt een blunt-end fragment te koppelen aan een fragment met een overhang. In dat geval kan het gebruik van het Klenow-fragment om een blunt-end ligatie op te zetten uw enige optie zijn om het insert in de gewenste vector te krijgen. Het begrijpen van de verschillende beschikbare moleculaire kloneringsinstrumenten, samen met het bedenken van een zorgvuldige strategie voordat u begint met kloneren, kan een enorme tijdbesparing opleveren.
De DNA-bron voor moleculaire klonering kan uit bijna elk type cel- of weefselmonster worden geïsoleerd via eenvoudige extractietechnieken. Eenmaal geïsoleerd, kan PCR worden gebruikt om het insert te amplificeren.
Zodra het insert is geamplificeerd, worden zowel het insert als de vector verteerd door restrictie-enzymen, ook wel restrictie-endonucleases genoemd.
Na de digestie kunnen het insert en de vector op een gel worden geladen en worden gezuiverd via een proces genaamd gelzuivering. Met betrekking tot de vector helpt deze stap om gelineariseerd plasmide te zuiveren van niet-geknipt plasmide, dat op een gel vaak verschijnt als een smear met een hoog molecuulgewicht.
Na het gelzuiveren van de digesten wordt het insert geligeerd of gekoppeld aan het plasmide via een enzym genaamd DNA-ligase.
Over het algemeen is het altijd raadzaam om ligaties zo op te zetten dat de verhouding tussen insert en vector 3 op 1 is, wat ervoor zorgt dat slechts een kleine hoeveelheid vector zal self-ligateren. Zodra de ligatie op ijs is voorbereid, wordt deze geïncubeerd bij een temperatuur tussen 14-25˚C gedurende 1 uur tot een nacht.
Vervolgens wordt transformatie uitgevoerd om de plasmidevector te introduceren in de gastheer die deze zal repliceren.
Na transformatie worden bacteriën uitgeplaat op agarplaten met antibiotica en een nacht geïncubeerd bij 37°C. Omdat het plasmide een antibioticaresistentiegen bevat, zal een succesvolle transformatie leiden tot bacteriële kolonies wanneer deze groeien op agarplaten in aanwezigheid van antibiotica. Individuele kolonies kunnen vervolgens van de getransformeerde plaat worden gepikt, in genummerde buisjes met vloeibaar groeimedium worden geplaatst en in een schudincubator worden gezet voor expansie. Een klein volume van de vloeibare cultuur wordt aan een genummerde agarplaat toegevoegd, terwijl de rest van de cultuur wordt gebruikt voor plasmidezuivering. Het nummeringsschema dat de identiteit van de bacteriële kolonies aanduidt waarvan de plasmiden uiteindelijk worden gezuiverd, wordt gedurende het hele plasmidezuiveringsproces gehandhaafd.
Een monster van het gezuiverde plasmide wordt vervolgens geknipt met restrictie-enzymen. De digest wordt daarna op de gel geladen en gerund om de aanwezigheid van het insert te controleren, wat bevestigt dat de bacteriële kolonie is getransformeerd met een plasmide dat een insert bevat en niet met een self-geligeerd plasmide. Bacteriën waarvan is bevestigd dat ze zijn getransformeerd met een plasmide met insert, worden verder uitgebreid voor aanvullende plasmidezuivering. Sequenering wordt uitgevoerd als laatste verificatiestap om te bevestigen dat uw gen van interesse is gekloneerd.
Moleculaire klonering kan worden gebruikt voor een vrijwel onbeperkt aantal toepassingen. Wanneer bijvoorbeeld een mRNA-template wordt omgezet in cDNA, of complementair DNA, door een enzym genaamd reverse transcriptase en vervolgens PCR wordt gebruikt om het cDNA te amplifieren, kan moleculaire klonering worden ingezet om een cDNA-bibliotheek te maken – een bibliotheek van alle genen die worden tot expressie gebracht door een bepaald celtype.
Moleculaire klonering kan ook worden gebruikt om een reeks genen, of een gencluster, uit één bacteriële stam te halen en deze te reorganiseren in plasmiden die worden getransformeerd in een andere stam, zodat een volledig biosynthetisch pad kan worden gereconstrueerd om een complex molecuul te produceren.
Via moleculaire klonering kan een mutantenbibliotheek worden gegenereerd door een doelplasmide tot expressie te brengen in een speciale bacteriële stam die een foutgevoelige polymerase gebruikt wanneer deze bij bepaalde temperaturen wordt gekweekt. De mutaties kunnen worden gekarakteriseerd door sequencing. Bacteriën die zijn getransformeerd met mutante genen kunnen vervolgens worden getest met verschillende geneesmiddelen of chemicaliën om te zien welke bacteriële kolonies zijn geëvolueerd om drugresistentie te vertonen.
Dankzij moleculaire klonering kunnen reportergenen in DNA-plasmiden worden ingebouwd; een veelgebruikt reportergen is het groen fluorescerende proteïne of GFP, dat een groene fluorescentie uitzendt bij blootstelling aan UV-licht. Een reportergen kan ook worden ingevoegd in een alphavirus om infectie in muggen en overdraagbaarheid in cellen aan te tonen.
U heeft zojuist de video van JoVE over moleculaire klonering bekeken. U begrijpt nu hoe moleculaire klonering werkt en hoe deze techniek kan worden toegepast in de moleculaire biologie. Zoals altijd, bedankt voor het kijken!
Moleculaire klonering is een reeks technieken die worden gebruikt om recombinant DNA uit een prokaryote of eukaryote bron in een replicerend voertuig te plaatsen, zoals plasmiden of virale vectoren. Kloneren verwijst naar het maken van talloze kopieën van een DNA-fragment van belang, zoals een gen. In deze video leert u over de verschillende stappen van moleculaire klonering, hoe u de procedure opzet en de verschillende toepassingen van deze techniek.
Voordat het kloneren begint, zijn er ten minste twee belangrijke DNA-moleculen nodig. Ten eerste, en het belangrijkste, heb je het DNA-fragment dat je gaat kloneren nodig, ook wel het insert genoemd. Dit kan afkomstig zijn van een prokaryoot, eukaryoot, een uitgestorven organisme, of het kan kunstmatig in het laboratorium worden gecreëerd. Door middel van moleculaire klonering kunnen we meer leren over de functie van een specifiek gen.
Ten tweede heb je een vector nodig. Een vector is plasmiden-DNA dat in de moleculaire biologie als instrument wordt gebruikt om kopieën van een bepaald gen te maken of om een eiwit uit dat gen te produceren. Plasmiden zijn een voorbeeld van een vector en zijn circulair, extrachromosomaal DNA dat door bacteriën wordt gerepliceerd.
Een plasmide heeft doorgaans een multiple cloning site of MCS; dit gebied bevat herkenningsplaatsen voor verschillende restrictie-endonucleasen, ook wel restrictie-enzymen genoemd. Verschillende inserts kunnen in het plasmide worden ingevoegd via een techniek genaamd ligatie. De plasmidevector bevat ook een replicatie-oorsprong (origin of replication), waardoor deze in bacteriën kan worden gerepliceerd. Daarnaast heeft het plasmide een antibioticaresistentiegen. Als bacteriën het plasmide opnemen, overleven ze in media die het antibioticum bevatten. Dit maakt de selectie van bacteriën die succesvol zijn getransformeerd mogelijk.
Het insert en de vector worden gekloneerd in een gastcelorganisme; de meest gebruikte in moleculaire klonering is E. coli. E. coli groeit snel, is breed beschikbaar en er zijn talrijke verschillende commercieel geproduceerde kloningsvectoren beschikbaar. Eukaryoten, zoals gist, kunnen ook als gastorganismen voor vectoren worden gebruikt.
De eerste stap van de algemene moleculaire kloneringsprocedure is het verkrijgen van het gewenste insert, dat kan worden afgeleid van DNA of mRNA van elk celtype. De optimale vector en het bijbehorende gastorganisme worden vervolgens gekozen op basis van het type insert en wat er uiteindelijk mee moet gebeuren. Een polymerasekettingreactie, of PCR-gebaseerde methode, wordt vaak gebruikt om het insert te repliceren.
Vervolgens worden, door middel van een reeks enzymatische reacties, het insert en het digest samengevoegd en geïntroduceerd in het gastorganisme voor massareplicatie. Gerepliceerde vectoren worden uit de bacteriën gezuiverd en na restrictiedigestie geanalyseerd op een gel. Gel-gezuiverde fragmenten worden later ter sequencing opgestuurd om te verifiëren dat het insert het gewenste DNA-fragment is.
Laten we iets gedetailleerder kijken naar hoe moleculaire klonering wordt uitgevoerd. Voordat u begint, is het raadzaam om uw kloneringsstrategie uit te stippelen voordat u enige kloneringspoging aan de bench doet. Bijvoorbeeld, elke gegeven plasmidevector biedt u een beperkt aantal restrictieplaatsen om het insert via de multiple cloning site in te bouwen. U moet restrictieplaatsen kiezen die niet in uw insert voorkomen, zodat u dit niet opensnijdt. U kunt in een situatie terechtkomen waarin u gedwongen wordt een blunt-end fragment te koppelen aan een fragment met een overhang. In dat geval kan het gebruik van het Klenow-fragment om een blunt-end ligatie op te zetten uw enige optie zijn om het insert in de gewenste vector te krijgen. Het begrijpen van de verschillende beschikbare moleculaire kloneringsinstrumenten, samen met het bedenken van een zorgvuldige strategie voordat u begint met kloneren, kan een enorme tijdbesparing opleveren.
De DNA-bron voor moleculaire klonering kan uit bijna elk type cel- of weefselmonster worden geïsoleerd via eenvoudige extractietechnieken. Eenmaal geïsoleerd, kan PCR worden gebruikt om het insert te amplificeren.
Zodra het insert is geamplificeerd, worden zowel het insert als de vector verteerd door restrictie-enzymen, ook wel restrictie-endonucleases genoemd.
Na de digestie kunnen het insert en de vector op een gel worden geladen en worden gezuiverd via een proces genaamd gelzuivering. Met betrekking tot de vector helpt deze stap om gelineariseerd plasmide te zuiveren van niet-geknipt plasmide, dat op een gel vaak verschijnt als een smear met een hoog molecuulgewicht.
Na het gelzuiveren van de digesten wordt het insert geligeerd of gekoppeld aan het plasmide via een enzym genaamd DNA-ligase.
Over het algemeen is het altijd raadzaam om ligaties zo op te zetten dat de verhouding tussen insert en vector 3 op 1 is, wat ervoor zorgt dat slechts een kleine hoeveelheid vector zal self-ligateren. Zodra de ligatie op ijs is voorbereid, wordt deze geïncubeerd bij een temperatuur tussen 14-25˚C gedurende 1 uur tot een nacht.
Vervolgens wordt transformatie uitgevoerd om de plasmidevector te introduceren in de gastheer die deze zal repliceren.
Na transformatie worden bacteriën uitgeplaat op agarplaten met antibiotica en een nacht geïncubeerd bij 37°C. Omdat het plasmide een antibioticaresistentiegen bevat, zal een succesvolle transformatie leiden tot bacteriële kolonies wanneer deze groeien op agarplaten in aanwezigheid van antibiotica. Individuele kolonies kunnen vervolgens van de getransformeerde plaat worden gepikt, in genummerde buisjes met vloeibaar groeimedium worden geplaatst en in een schudincubator worden gezet voor expansie. Een klein volume van de vloeibare cultuur wordt aan een genummerde agarplaat toegevoegd, terwijl de rest van de cultuur wordt gebruikt voor plasmidezuivering. Het nummeringsschema dat de identiteit van de bacteriële kolonies aanduidt waarvan de plasmiden uiteindelijk worden gezuiverd, wordt gedurende het hele plasmidezuiveringsproces gehandhaafd.
Een monster van het gezuiverde plasmide wordt vervolgens geknipt met restrictie-enzymen. De digest wordt daarna op de gel geladen en gerund om de aanwezigheid van het insert te controleren, wat bevestigt dat de bacteriële kolonie is getransformeerd met een plasmide dat een insert bevat en niet met een self-geligeerd plasmide. Bacteriën waarvan is bevestigd dat ze zijn getransformeerd met een plasmide met insert, worden verder uitgebreid voor aanvullende plasmidezuivering. Sequenering wordt uitgevoerd als laatste verificatiestap om te bevestigen dat uw gen van interesse is gekloneerd.
Moleculaire klonering kan worden gebruikt voor een vrijwel onbeperkt aantal toepassingen. Wanneer bijvoorbeeld een mRNA-template wordt omgezet in cDNA, of complementair DNA, door een enzym genaamd reverse transcriptase en vervolgens PCR wordt gebruikt om het cDNA te amplifieren, kan moleculaire klonering worden ingezet om een cDNA-bibliotheek te maken – een bibliotheek van alle genen die worden tot expressie gebracht door een bepaald celtype.
Moleculaire klonering kan ook worden gebruikt om een reeks genen, of een gencluster, uit één bacteriële stam te halen en deze te reorganiseren in plasmiden die worden getransformeerd in een andere stam, zodat een volledig biosynthetisch pad kan worden gereconstrueerd om een complex molecuul te produceren.
Via moleculaire klonering kan een mutantenbibliotheek worden gegenereerd door een doelplasmide tot expressie te brengen in een speciale bacteriële stam die een foutgevoelige polymerase gebruikt wanneer deze bij bepaalde temperaturen wordt gekweekt. De mutaties kunnen worden gekarakteriseerd door sequencing. Bacteriën die zijn getransformeerd met mutante genen kunnen vervolgens worden getest met verschillende geneesmiddelen of chemicaliën om te zien welke bacteriële kolonies zijn geëvolueerd om drugresistentie te vertonen.
Dankzij moleculaire klonering kunnen reportergenen in DNA-plasmiden worden ingebouwd; een veelgebruikt reportergen is het groen fluorescerende proteïne of GFP, dat een groene fluorescentie uitzendt bij blootstelling aan UV-licht. Een reportergen kan ook worden ingevoegd in een alphavirus om infectie in muggen en overdraagbaarheid in cellen aan te tonen.
U heeft zojuist de video van JoVE over moleculaire klonering bekeken. U begrijpt nu hoe moleculaire klonering werkt en hoe deze techniek kan worden toegepast in de moleculaire biologie. Zoals altijd, bedankt voor het kijken!
View the full transcript and gain access to JoVE Science Education videos
Q1: What are the two main DNA molecules required to begin molecular cloning?
Molecular cloning requires an insert—the DNA fragment you want to copy, which can come from prokaryotes, eukaryotes, or be artificially created—and a vector, typically plasmid DNA that replicates in host cells. The vector carries recognition sites for restriction enzymes and contains an origin of replication and antibiotic resistance gene for selection.
Q2: How does a plasmid vector help identify successfully transformed bacteria?
Plasmids contain an antibiotic resistance gene that allows bacteria carrying the plasmid to survive on antibiotic-containing media. When transformed bacteria are plated on agar with antibiotics and incubated overnight at 37°C, only colonies with the plasmid survive, making antibiotic selection an effective screening method for successful transformation.
Q3: What is the purpose of gel purification in the molecular cloning procedure?
Gel purification separates and isolates desired DNA fragments after restriction enzyme digestion. For plasmids, this step removes uncut circular plasmid that appears as high molecular weight smear, leaving only linearized plasmid ready for ligation with the insert. This ensures clean, pure DNA for downstream steps.
Q4: Why is planning a cloning strategy important before starting the procedure?
Planning ensures you select restriction sites absent from your insert to avoid cutting it during digestion. You must also verify that your chosen sites exist in the plasmid's multiple cloning site. This strategy prevents failed cloning attempts and saves time by identifying potential issues like needing blunt-end ligation before beginning.
Q5: What is the optimal insert-to-vector ratio for DNA ligation reactions?
A 3-to-1 insert-to-vector ratio is recommended for DNA ligation reactions. This ratio ensures minimal self-ligation of the vector alone. After setup on ice, the ligation is incubated between 14-25°C for 1 hour to overnight to allow DNA ligase to join the insert and plasmid.
Q6: How is sequencing used to verify successful molecular cloning?
Sequencing serves as the final verification step to confirm that the gene of interest has been correctly cloned into the plasmid. After restriction digestion confirms insert presence on a gel, bacteria are expanded and plasmids purified. Sequencing then verifies the insert sequence matches the desired DNA fragment.
Q7: What are some practical applications of molecular cloning in research?
Molecular cloning enables creation of cDNA libraries from mRNA, reconstruction of biosynthetic pathways by reorganizing gene clusters between bacterial strains, generation of mutant libraries using error-prone polymerases, and incorporation of reporter genes like green fluorescent protein into plasmids to visualize gene expression and viral infection.
Hoofdstukken in deze video
0:00
Overview
0:42
Basic Principles
3:47
Procedure
7:45
Applications
9:34
Summary