Name: Een in vitro model om immuunresponsen van humane perifere bloedmononucleaire cellen op humane respiratoire syncytiële virusinfectie te bestuderen (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-12-10T21:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 1 s
Description: Leer hoe humane perifere bloedmononucleaire cellen reageren op respiratoir syncytieel virus met dit in vitro-model. Deze methode onderzoekt ontstekingsroutes en immunologische mechanismen bij RSV-infectie.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

RSV A2 werd vriendelijk ter beschikking gesteld door Dr. R. de Swart (Erasmus MC, Rotterdam, Nederland). MV en GF worden ondersteund door het Virgo consortium, gefinancierd door het Nederlandse overheidsproject FES0908, en door het Netherlands Genomics Initiative (NGI) project nummer 050-060-452. De financiers hadden geen rol in het ontwerp van het onderzoek, gegevensverzameling en -analyse, besluit tot publicatie, of de voorbereiding van het manuscript.

Let op:
Experimenten met HRSV moeten worden uitgevoerd in een biologische veiligheidskabinet in een laboratorium met biosafety level 2. Verzamel al het virale afval en materiaal dat in contact is geweest met het virus voor een correcte afvoer vanwege biologische risico's.
Er moeten speciale voorzorgsmaatregelen worden genomen bij het gebruik van potentieel geïnfecteerd menselijk bloed.
Het is essentieel om gedurende alle protocollen endotoxine-vrije reagentia te gebruiken.
1. Kweken van HRSV A2
<ol>
	<li>Kweek HeLa- of HEp-2-cellen in DMEM-medium + 10% foetaal kalfserum (FCS) + 1% penicilline/streptomycine (P/S) in een kweekfles van 175 cm2 tot ze ongeveer 50% confluent zijn.</li>
	<li>Was de cellen drie keer met fosfaatgebufferde zoutoplossing (PBS) op kamertemperatuur).</li>
	<li>Ontdooi een buisje met HRSV seeding stock-virus bij 37 °C in een waterbad. Verdun de virusstock zodanig dat de MOI 0,1 of lager blijft. Dit voorkomt de vorming van defecte interfererende deeltjes (DIPs). Verdun de virusstock in 4 ml/fles infectiemedium (DMEM + 1% P/S) en voeg dit toe aan de HeLa- of HEp-2-cellen. Houd dit volume zo laag mogelijk zonder dat de cellen uitdrogen. Hoe lager het volume, hoe hoger de infectiegraad zal zijn.</li>
	<li>Incubeer 2-4 uur bij 37 °C, 5% CO2. Schud de fles elke 15 min rond om het medium te herverdelen.</li>
	<li>Verwijder het inoculum en was één keer met PBS.</li>
	<li>Voeg 15 ml kweekmedium (DMEM + 10% FCS + 1% P/S) toe en incubeer gedurende 3-5 dagen bij 37 °C, 5% CO2. Observeer de cellen met normale bright-field microscopie op virus-geïnduceerde cytopathologische veranderingen, bijv. syncytiavorming, celdood en drijvende cellen.</li>
	<li>Wanneer cytopathologie optreedt, oogst dan HRSV door de cellen af te schrapen en verzamel de virussuspensie in een steriele buis van 50 ml. Vortex de celsuspensie. Het schrapen en vortexen van de cellen laat meer virusdeeltjes vrij.</li>
	<li>Centrifugeer de virussuspensie 10 min op kamertemperatuur bij 1.800 x g om het celdebris te pelletten. HRSV in het supernatant pelletteert niet bij deze snelheid; het supernatant kan direct worden gebruikt om meerdere flessen van 175 cm2 te infecteren of kan bij -80 °C worden bewaard als seeding stock in aliquoten van 1 ml voor toekomstig gebruik. Snap-freeze HRSV altijd in vloeibare stikstof om verlies van infectieuze virusdeeltjes te voorkomen.</li>
	<li>Zoals hierboven vermeld, wordt de seeding stock die met het bovenstaande protocol is gemaakt, gebruikt om meerdere kweekflessen van 175 cm2 te infecteren. Herhaal exact hetzelfde protocol om meer virus te produceren voor zuivering. Zuiver tot 180 ml virussuspensie in één ultracentrifugatiecyclus.</li>
	<li>Wanneer cytopathologie optreedt, oogst dan HRSV door de cellen af te schrapen en verzamel het supernatant. Vortex de virussuspensie. Centrifugeer 10 min op kamertemperatuur bij 1.800 x g om het celdebris te pelletten. HRSV in het supernatant pelletteert niet bij deze snelheid en het supernatant wordt verdeeld in aliquoten van 15 ml per 50 ml buis. Snap-freeze en bewaar bij -80 °C tot aan de zuivering.</li>
</ol>
2. Zuivering van HRSV
Let op: Wees u ervan bewust dat een ultracentrifuge een potentieel gevaarlijk stuk apparatuur is voordat u deze gebruikt. Lees de handleidingen en voer de eerste ultracentrifugatie-run uit onder toezicht van iemand met ervaring.
<ol>
	<li>Reinig de ultracentrifugebakjes met 70% ethanol en laat ze drogen in een biologische veiligheidskast.</li>
	<li>Plaats in elk bakje een steriele centrifugebuis.</li>
	<li>Bereid een 30% (w/v) sucrose-oplossing in PBS voor, steriliseer deze door filtratie (0,2 μm filter) en voeg 5 ml toe aan de bodem van elke centrifugebuis. Voor een sneller protocol kunnen de buizen met sucrose-oplossing worden ingevroren. Zorg ervoor dat ze steriel blijven.</li>
	<li>Als de sucrose-oplossing niet is ingevroren, voeg dan zeer voorzichtig 30 ml HRSV-oplossing toe bovenop deze sucrose-oplossing. Pipetteer langzaam om te voorkomen dat de sucrose-oplossing wordt verstoord. Houd een duidelijke scheidingslijn aan. Als de buizen zijn ingevroren, giet de virale suspensie dan bovenop de bevroren sucrose-oplossing en laat deze vervolgens ontdooien.</li>
	<li>Balanceer de zes ultracentrifugebakjes zeer zorgvuldig met steriele PBS. Plaats de weegschaal in een flowcabinet om alles steriel te houden. Vul de buizen tot 3-5 mm onder de rand, anders kunnen de centrifugebuizen inklappen. Balanceer de bakjes tot op 0,1 g en houd rekening met de schroefdop, voor het geval de doppen niet perfect gelijk zijn.</li>
	<li>Centrifugeer in de ultracentrifuge gedurende 1,5 uur bij 4 °C op 20.000 rcf.</li>
	<li>Verwijder de centrifugebuis voorzichtig uit het bakje met een steriele pincet. Virusdeeltjes zullen door de sucroselaag zijn gegaan en een pellet vormen. Omgekeerd zullen door cellen uitgescheiden oplosbare factoren (bijv. cytokinen) in oplossing blijven. Kantel de centrifugebuis om al het vloeistof af te voeren. Laat de buis ondersteboven drogen op een steriel oppervlak, bijv. een kweekplaat, maar laat de pellet niet volledig uitdrogen.</li>
	<li>Voeg voorzichtig 1 ml Hank's Balanced Salt Solution (HBSS) toe aan de pellet en kantel de centrifugebuis om de HBSS af te voeren. Laat de buis opnieuw ondersteboven drogen op een steriel oppervlak. Laat de pellet niet volledig uitdrogen.</li>
	<li>Resuspendeer de pellet in 1 ml HBSS door 40 keer op en neer te pipetteren. Probeer de vorming van luchtbellen te voorkomen, omdat dit het virus kan vernietigen.</li>
	<li> Verdeel het virus in aliquots, vries deze snel in vloeibare stikstof in en bewaar ze bij -80 °C tot aan verder gebruik. Gebruik voor elk experiment een nieuwe aliquot virus, aangezien herhaaldelijk invriezen en ontdooien de infectieuze titer zal verlagen. Ontdooi het virus bij het ontdooien altijd bij 37 °C, aangezien HRSV minder stabiel is tussen -20 en 15 °C.</li>
</ol>
3. Kwantificering van HRSV
Let op: Om reproduceerbare gegevens te garanderen, dient de kwantificering ten minste 3x in duplo te worden herhaald.
3.1. Infectie van A549-cellen
<ol>
	<li>Kweek A549-cellen in een 24-wellplaat tot ze confluent zijn.</li>
	<li>Was de A549-cellen twee keer met 1 ml PBS bij kamertemperatuur.</li>
	<li>Bereid seriële 5-voudige verdunningen van HRSV voor in Reduced Serum Medium. Voeg 100 μl van het verdunde virus toe aan beide wells. Maak minimaal 4 verdunningen (bijv. 4-, 20-, 100- en 500-voudig). Voeg twee extra wells toe die zijn geïnfecteerd met de hoogste dosis virus (deze worden gebruikt voor de isotypecontrole) en voeg twee mock-geïnfecteerde wells toe.</li>
	<li>Incubeer de cellen gedurende 2 uur bij 5% CO2, 37 °C. Schud de 24-wellplaten elke 15 min om uitdroging te voorkomen.</li>
	<li>Verwijder de virussuspensie en was de cellen 1x met 1 ml PBS bij kamertemperatuur.</li>
	<li>Bereid 4% (w/v) runderserumalbumine (BSA) voor in Reduced Serum Medium. Steriliseer door filtratie (0,2 μm filter) en voeg 500 μl toe aan elke well.</li>
	<li>Incubeer bij 5% CO2, 37 °C gedurende 22 uur.</li>
</ol>
3.2. Voorbereiding voor FACS
<ol>
	<li>Verwijder het medium en was de cellen eenmaal met 1 ml PBS op kamertemperatuur.</li>
	<li>Voeg 200 μl voorverwarmde trypsine (37 °C) toe aan elke put en incubeer 10 min bij 37 °C, 5% CO2.</li>
	<li>Controleer onder de microscoop of de cellen zijn losgelaten. Indien de cellen zijn losgelaten, voeg dan 800 μl DMEM + 10% FCS + 1% P/S toe om de trypsine te neutraliseren. Resuspendeer de cellen.</li>
	<li>Overbreng de cellen naar een conische 96-wells plaat die niet is behandeld voor weefselkweek. Centrifugeer 5 min bij 400 x g op kamertemperatuur. Resuspendeer de pellets in 200 μl koude PBS.</li>
	<li>Centrifugeer 5 min bij 400 x g bij 4 °C. Giet het supernatant af en resuspendeer in 200 μl koude PBS.</li>
	<li>Centrifugeer 5 min bij 400 x g bij 4 °C. Giet het supernatant af en resuspendeer in 150 μl 80% ijskoude aceton.</li>
	<li>Fixeer de cellen gedurende 15 min op kamertemperatuur.</li>
	<li>Centrifugeer 5 min bij 400 x g bij 4 °C. Giet het supernatant af en resuspendeer in 200 μl koude PBS + 0,1 % BSA.</li>
	<li>Centrifugeer 5 min bij 400 x g bij 4 °C. Giet het supernatant af en resuspendeer in 50 μl anti-NP-RSV-FITC (1:50 verdund in PBS + 1% BSA) of 50 μl IgG2 anti mouse-FITC (dit is een isotypecontrole; gebruik daarom dezelfde antilichaamconcentratie).</li>
	<li>Houd de buisjes voor de rest van het protocol in het donker. Incubeer minimaal 1 uur bij 4 °C, maar dit kan worden verlengd tot overnacht.</li>
	<li>Voeg 150 μl koude PBS + 0,1% BSA toe.</li>
	<li>Centrifugeer 5 min bij 400 x g bij 4 °C. Giet het supernatant af en resuspendeer in 200 μl koude PBS + 0,1% BSA.</li>
	<li>Centrifugeer 5 min bij 400 x g bij 4 °C. Giet het supernatant af en resuspendeer in 200 μl koude PBS + 0,1% BSA. Bewaar de plaat op ijs en in het donker tot de FACS-meting.</li>
	<li>Meet de geïnfecteerde cellen met een flowcytometer.</li>
</ol>
3.3. FITC-50 berekening
<ol>
	<li>Gebruik een analyseprogramma voor flowcytometrie om de afkapwaarde in te stellen met behulp van de negatieve controle (isotype controle). Gebruik het Pseudocolor-grafiektype. Teken een kwadrantgate, waarbij de positieve cellen zich in veld Q3 bevinden. Het percentage fout-positieven moet in beide isotype controles onder de 0,2% liggen.</li>
	<li>Exporteer de gegevens naar een spreadsheetprogramma en maak een tabel met het percentage FITC+ cellen voor elke verdunning. Trek voor elke waarde bij elk experiment de gemiddelde waarde van de fout-positieven (zoals bepaald door de isotype controle) af.</li>
	<li>Open een nieuw bestand (XY-spreidingsplot, enkele X- en meerdere Y-kolommen) in een statistisch programma. Kopieer de gegevens naar dit programma: X = verdunning, Y = % geïnfecteerde cellen, n = 3; gebruik het gemiddelde van twee metingen voor elke verdunning. Voer een niet-lineaire regressie uit via een statistische analyse van een één-fasige exponentiële afname. Controleer of de curve aansluit bij de datapunten; is dat niet het geval, kies dan een andere statistische analyse.</li>
	<li>Kopieer de vergelijking voor de curve en de waarden voor de vergelijking naar een spreadsheetprogramma. Bereken de X-waarde voor Y = 50%. Bepaal op basis hiervan de FITC-50 waarde door de door FITC gedetecteerde infectieuze particles/ml (FIP/ml) te berekenen bij de verdunning waarbij er sprake is van 50% infectie, met behulp van de volgende vergelijking: 
	<img alt="Berekeningsformule FITC50; diagram dat de vergelijking voor de meting van fluorescentie-intensiteit illustreert." fo:src="/files/ftp_upload/50766/50766eq1highres.jpg" src="/files/ftp_upload/50766/50766eq1.jpg" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="Vergelijking 1"> 
	A = gemiddeld aantal A549 cellen/well 
	B = μl virus per well gebruikt voor infectie 
	C = verdunning waarbij er sprake is van 50% infectie</li>
</ol>
4. Isolatie van mononucleaire cellen uit perifeer bloed (PBMC) uit bloed van gezonde vrijwilligers
<ol>
	<li>Neem veneus bloed af in 10 ml EDTA-buisjes van gezonde vrijwilligers na geïnformeerde toestemming. Een volume van 10 ml bloed levert ongeveer 107 PBMC's op.</li>
	<li>Werk vanaf nu steriel in een laminaire flowkast.</li>
	<li>Verdun het bloed 2x met PBS op kamertemperatuur in een 50 ml buisje. Per 50 ml buisje kan een maximaal totaal volume van 35 ml verdund bloed worden gebruikt.</li>
	<li>Neem een steriele spuit van 50 ml en bevestig een gesteriliseerde Luer-lock naald. Zuig het densiteitsgradiëntmedium op in de spuit. Plaats de naald op de bodem van een buisje met verdund bloed en pipetteer voorzichtig 15 ml densiteitsgradiëntmedium onder het verdunde bloed. Houd een duidelijke scheiding tussen het densiteitsgradiëntmedium en het bloed.</li>
	<li>Centrifugeer 20 min bij 800 x g op kamertemperatuur met een versnelling van 9 (max) en zet de rem uit. Stel de temperatuur van de centrifuge na gebruik in op 4 °C.</li>
	<li>De densiteitsgradiëntcentrifugatie resulteert in meerdere lagen. Onderaan bevindt zich een pellet met erytrocyten met daarboven een zilverachtige laag, die de neutrofielen bevat. De heldere laag boven deze pellet bevat het densiteitsgradiëntmedium. Een dunne laag tussen het densiteitsgradiëntmedium en de bloedplasmalayer bovenaan bevat de PBMC's.</li>
	<li>Verzamel de PBMC's voorzichtig met een Pasteur-pipet en breng de cellen over naar een nieuwe 50 ml buis. Houd de PBMC's vanaf nu op ijs en gebruik ijskoud PBS. Voeg ijskoud PBS toe tot een volume van 50 ml en centrifugeer 10 min bij 400 x g bij 4 °C (met de rem ingesteld op 9).</li>
	<li>Verwijder het supernatant door aspiratie, resuspendeer de pellet in 50 ml ijskoud PBS en centrifugeer 10 min bij 400 x g bij 4 °C; herhaal dit 2x.</li>
	<li>Voeg na het verwijderen van het supernatant 1 ml ijskoud medium (RPMI + 1% P/S) toe en tel de cellen met behulp van een telkamer.</li>
	<li>Stel de celconcentratie in op 5 x 106 PBMC's/ml.</li>
</ol>
5. Stimulatie van PBMC's met levend HRSV
<ol>
	<li>Maak de opstelling voor het experiment klaar; neem experimentele duplicaten op voor elke conditie.</li>
	<li>Verdun alle benodigde stimuli in medium (RPMI + 1% P/S). Houd er rekening mee dat het uiteindelijke volume per well 200 μl zal zijn. Er zal een volume van 50 μl stimuli worden toegevoegd, bereid daarom 4x geconcentreerde stimulatievoorraden.</li>
	<li>Voeg 100 μl van de bovengenoemde celsuspensie toe aan elke well van een 96-well plaat met ronde bodem (5 x 105 PBMC/well).</li>
	<li>Voeg 50 μl van de verdunde stimuli toe aan elke well. Het is mogelijk om twee verschillende stimuli toe te voegen, wat een volume van 200 μl oplevert. Als er slechts één stimulus nodig is, breng dan het volume aan met medium aan tot 200 μl.</li>
	<li>Incubeer de 96-well plaat gedurende de vereiste incubatieperiode bij 37 °C in een 5% CO2 incubator. Voor de meeste cytokinen zal een incubatie van 24 uur voldoende zijn.</li>
</ol>
6. Uitlezing van de stimulatie
<ol>
	<li>Centrifugeer na de incubatieperiode de 96-well plaat 5 min bij kamertemperatuur op 450 x g om de cellen onderin te verzamelen.</li>
	<li>Verzamel het supernatant (neem een maximaal volume van 180 μl) en bewaar dit voor een daaropvolgende cytokinenanalyse (-20 °C) of voor virusproductie (-80 °C).</li>
	<li>De gestimuleerde PBMC's in het pellet kunnen worden geanalyseerd via qPCR/Western blot door lysisbuffer toe te voegen, of alternatief kunnen de PBMC's worden gekleurd voor flowcytometrie-analyse.</li>
</ol>

<ol><li>Nair, H., Nokes, D. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Global+burden+of+acute+lower+respiratory+infections+due+to+respiratory+syncytial+virus+in+young+children%3A+a+systematic+review+and+meta-analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet%22%5BJournal%5D)">Global burden of acute lower respiratory infections due to respiratory syncytial virus in young children: a systematic review and meta-analysis.</a> Lancet. 375, 1545-1555 (2010).</li>
<li>Falsey, A. R., Hennessey, P. A., Formica, M. A., Cox, C., Walsh, E. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Respiratory+syncytial+virus+infection+in+elderly+and+high-risk+adults%5BTitle%5D)+AND+%22N.+Eng.+J.+Med%22%5BJournal%5D)">Respiratory syncytial virus infection in elderly and high-risk adults.</a> N. Eng. J. Med. , 352-1749 (2005).</li>
<li>Openshaw, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antiviral+Immune+Responses+and+Lung+Inflammation+after+Respiratory+Syncytial+Virus+Infection%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Am.+Thorac.+Soc%22%5BJournal%5D)">Antiviral Immune Responses and Lung Inflammation after Respiratory Syncytial Virus Infection.</a> Proc. Am. Thorac. Soc. 2 (2), 121-125 (2005).</li>
<li>Openshaw, P. J., Tregoning, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immune+responses+and+disease+enhancement+during+respiratory+syncytial+virus+infection%5BTitle%5D)+AND+%22Clin.+Microbio.+Rev%22%5BJournal%5D)">Immune responses and disease enhancement during respiratory syncytial virus infection.</a> Clin. Microbio. Rev. 18 (3), 541-555 (2005).</li>
<li>Villenave, R., Thavagnanam, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vitro+modeling+of+respiratory+syncytial+virus+infection+of+pediatric+bronchial+epithelium%2C+the+primary+target+of+infection+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">In vitro modeling of respiratory syncytial virus infection of pediatric bronchial epithelium, the primary target of infection in vivo.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 109 (13), 5040-5045 (2012).</li>
<li>Tulic, M. K., Hurrelbrink, R. J., Prêle, C. M., Laing, I. A., Upham, J. W., Le Souef, P., Sly, P. D., Holt, P. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((TLR4+polymorphisms+mediate+impaired+responses+to+respiratory+syncytial+virus+and+lipopolysaccharide%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">TLR4 polymorphisms mediate impaired responses to respiratory syncytial virus and lipopolysaccharide.</a> J. Immunol. 179 (1), 132-140 (2007).</li>
<li>Vissers, M., Remijn, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Respiratory+syncytial+virus+infection+augments+NOD2+signaling+in+an+IFN-%CE%B2-dependent+manner+in+human+primary+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Eur.+J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Respiratory syncytial virus infection augments NOD2 signaling in an IFN-β-dependent manner in human primary cells.</a> Eur. J. Immunol. 42 (10), 2727-2735 (2012).</li>
<li>Cherukuri, A., Patton, K., Gasser, R. A. Jr, Zuo, F., Woo, J., Esser, M. T., Tang, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adults+65+years+old+and+older+have+reduced+number+of+functional+memory+T+cells+to+respiratory+syncytial+virus+fusion+protein%5BTitle%5D)+AND+%22Clin.+Vacc.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Adults 65 years old and older have reduced number of functional memory T cells to respiratory syncytial virus fusion protein.</a> Clin. Vacc. Immunol. 20 (2), 239-247 (2013).</li>
<li>Shafique, M., Wilschut, J., de Haan, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+mucosal+and+systemic+immunity+against+respiratory+syncytial+virus+by+inactivated+virus+supplemented+with+TLR9+and+NOD2+ligands%5BTitle%5D)+AND+%22Vaccine%22%5BJournal%5D)">Induction of mucosal and systemic immunity against respiratory syncytial virus by inactivated virus supplemented with TLR9 and NOD2 ligands.</a> Vaccine. 30, 597-606 (2012).</li>
<li>Kwilas, S., Liesman, R. M., Zhang, L., Walsh, E., Pickles, R. J., Peeples, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Respiratory+syncytial+virus+grown+in+Vero+cells+contains+a+truncated+attachment+protein+that+alters+its+infectivity+and+dependence+on+glycosaminoglycans%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Virol%22%5BJournal%5D)">Respiratory syncytial virus grown in Vero cells contains a truncated attachment protein that alters its infectivity and dependence on glycosaminoglycans.</a> J. Virol. 83 (20), 10710-10718 (2009).</li>
<li>Treuhaft, M. W., Beem, M. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Defective+interfering+particles+of+respiratory+syncytial+virus%5BTitle%5D)+AND+%22Infect.+Immun%22%5BJournal%5D)">Defective interfering particles of respiratory syncytial virus.</a> Infect. Immun. 37 (2), 439-444 (1982).</li>
<li>Korns Johnson, D., Homann, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Accelerated+and+improved+quantification+of+lymphocytic+choriomeningitis+virus+%28LCMV%29+titers+by+flow+cytometry%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Accelerated and improved quantification of lymphocytic choriomeningitis virus (LCMV) titers by flow cytometry.</a> PLoS One. 7 (5), e37337(2012).</li>
<li>Wurfel, M. M., Park, W. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+high+and+low+responders+to+lipopolysaccharide+in+normal+subjects%3A+an+unbiased+approach+to+identify+modulators+of+innate+immunity%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Identification of high and low responders to lipopolysaccharide in normal subjects: an unbiased approach to identify modulators of innate immunity.</a> J. Immunol. 175 (4), 2570-2578 (2005).</li>
<li>Kimpen, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Respiratory+syncytial+virus+and+asthma.+The+role+of+monocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Respir.+Crit.+Care+Med%22%5BJournal%5D)">Respiratory syncytial virus and asthma. The role of monocytes.</a> Am. J. Respir. Crit. Care Med. 163, 7-9 (2001).</li>
<li>Wang, S. Z., Forsyth, K. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+interaction+of+neutrophils+with+respiratory+epithelial+cells+in+viral+infection%5BTitle%5D)+AND+%22Respirology%22%5BJournal%5D)">The interaction of neutrophils with respiratory epithelial cells in viral infection.</a> Respirology. 5 (1), 1-10 (2000).</li>
<li>San-Juan-Vergara, H., Sampayo-Escobar, V., Reyes, N., Cha, B., Pacheco-Lugo, L., Wong, T., Peeples, M. E., Collins, P. L., Castano, M. E., Mohapatra, S. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cholesterol-rich+microdomains+as+docking+platforms+for+respiratory+syncytial+virus+in+normal+human+bronchial+epithelial+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Virol%22%5BJournal%5D)">Cholesterol-rich microdomains as docking platforms for respiratory syncytial virus in normal human bronchial epithelial cells.</a> J. Virol. 86 (3), 1832-1843 (2012).</li>
<li>Davidson, D., Zaytseva, A., Miskolci, V., Castro-Alcaraz, S., Vancurova, I., Patel, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+expression+profile+of+endotoxin-stimulated+leukocytes+of+term+new+born%3A+control+of+cytokine+gene+expression+by+interleukin-10%5BTitle%5D)+AND+%22Plos+One%22%5BJournal%5D)">Gene expression profile of endotoxin-stimulated leukocytes of term new born: control of cytokine gene expression by interleukin-10.</a> Plos One. 8 (1), e53641(2013).</li>
</ol>

Wij hebben niets te onthullen.

In deze studie demonstreren we dat infectie van PBMC met HRSV een snel en betrouwbaar modelsysteem is waarin inflammatoire paden kunnen worden bestudeerd. Om PBMC's te stimuleren, moet een HRSV-voorraad worden bereid en gekwantificeerd.
Meerdere cellijnen zijn gevoelig voor HRSV-infectie. Cellijnen die het meest worden gebruikt voor HRSV-kweek zijn HEp-2, HeLa en Vero-cellen. We raden echter af om Vero-cellen te gebruiken voor het kweken van HRSV omdat is aangetoond dat het kweken van HRSV in ...

Het humaan respiratoire syncytiële virus (HRSV) is de meest voorkomende oorzaak van infecties van de lagere luchtwegen bij kinderen. Elk jaar worden meer dan 33 miljoen kinderen jonger dan vijf jaar besmet met HRSV, wat leidt tot meer dan drie miljoen ziekenhuisopnames en bijna 200.000 sterfgevallen1. Een groeiend aantal bewijzen suggereert dat HRSV ook een aanzienlijke bedreiging vormt voor ouderen en volwassenen met onderliggende chronische ziekten2.
De meeste HRSV-infecties bij jonge kinderen vertonen milde symptomen, vergelijkbaar met de gewone verkoudheid, en vereisen geen klinische interventie. Echter, een klein deel van de patiënten vereist ziekenhuisopname en mechanische ventilatie vanwege ernstige bronchiolitis.
Een deel van de pathogenese van HRSV-ziekte is de overdreven en ontoereikende immuunrespons van de gastheer op infectie3,4. Dit wordt geïllustreerd door verschillende waarnemingen. De periode van maximale ziekte wordt vaak voorafgegaan door het hoogtepunt van virale infectie en valt beter samen met cellulaire infiltratie van geïnfecteerde weefsels en de afgifte van inflammatoire cytokinen3. Een andere lijn van bewijs komt van de formaline-geïnactiveerde HRSV (FI-RSV) proeven in de jaren 1960. In plaats van bescherming te induceren bij jonge zuigelingen, resulteerde het vaccin in een overdreven immuunrespons die leidde tot verhoogde respiratoire aandoeningen en een hogere morbiditeit en mortaliteit.
Er zijn verschillende modellen ontwikkeld om de pathogenese van HRSV-infecties te bestuderen. Continue cellijnen, zoals HEp-2 en A549, zijn uitgebreid gebruikt om HRSV-infectie in vitro te bestuderen. Epitheelcellen zijn de primaire doelwitten van HRSV-infectie5, daarom is er veel aandacht voor deze celtypen. De in vivo situatie is echter veel complexer en niet beperkt tot één celtype. Om deze complexe interacties te onderzoeken, zijn verschillende dierlijke infectiemodellen ontwikkeld om de pathogenese van HRSV te bestuderen. Tot nu toe zijn twee verschillende strategieën toegepast, waarbij de focus ligt op zowel heterologe (niet-menselijke) modellen als cognate gastheer-pneumovirus modellen. Voorbeelden van heterologe modellen voor HRSV zijn chimpansees, schapen, katoenratten en muizen. RSV-infectie in zijn natuurlijke gastheer is bestudeerd bij runderen en bij muizen, met respectievelijk bovien RSV en pneumovirus.
Hoewel elk van deze modellen belangrijke inzichten heeft opgeleverd in de pathogenese van de ziekte, is HRSV sterk aangepast aan mensen. Daarom, als aanvulling op de cellijnen en diermodellen die momenteel worden gebruikt, stellen we voor om menselijke primaire PBMC's te gebruiken als een model voor stimulatie met HRSV. Menselijke PBMC's kunnen worden verkregen van een reeks individuen om specifieke onderzoeksvragen aan te pakken, inclusief jonge kinderen6, immuungecompromitteerde individuen evenals gezonde volwassenen7 of oudere individuen8. PBMC's kunnen worden gebruikt om zowel ingeboren aspecten van infectie als de adaptieve respons op het virus te bestuderen. Geactiveerde ontstekingsroutes die belangrijk zijn voor de pathogenese van HRSV-ziekte kunnen worden bestudeerd op mRNA- en eiwitniveau. Verder kan virale infectie van (subsets van) immuuncellen worden bepaald door middel van flowcytometrie. We hebben dit model eerder gebruikt om de synergistische effecten van HRSV-infectie samen met de bacteriële ligand muramyl dipeptide (MDP) op de inductie van pro-inflammatoire cytokinen te identificeren7. We stellen voor om HRSV-stimulatie van menselijke primaire PBMC's te gebruiken als een robuust, eenvoudig en snel in vitro model om ontstekingsroutes betrokken bij de pathogenese van HRSV-ziekte te bestuderen.

<table><tbody><tr><td colspan="4">Reagens</td></tr><tr><td>PBS</td><td>Lonza</td><td>BE17-516F</td><td>PBS zonder Ca2+ Mg2+ of fenol rood</td></tr><tr><td>HBSS</td><td>Invitrogen</td><td>14025-100</td><td>HBSS, Calcium, Magnesium, geen Fenol Rood</td></tr><tr><td>DMEM</td><td>Invitrogen</td><td>31966-047</td><td>DMEM, Hoge Glucose, GlutaMAX, Pyruvaat</td></tr><tr><td>RPMI</td><td>Invitrogen</td><td>72400054</td><td>RPMI 1640 Medium, GlutaMAX, HEPES</td></tr><tr><td>Reduced Serum Medium (Opti-MEM)</td><td>Invitrogen</td><td>51985-026</td><td>Opti-MEM I Reduced Serum Medium, GlutaMAX</td></tr><tr><td>FCS</td><td>Greiner Bio-one</td><td></td><td>FBS (Fetal Bovine Serum)</td></tr><tr><td>BSA</td><td>Sigma Aldrich</td><td>A7030</td><td>Albumine uit runder serum</td></tr><tr><td>P/S</td><td>Invitrogen</td><td>15140-122</td><td>Penicilline-Streptomycine, vloeibaar</td></tr><tr><td>Trypsine</td><td>Invitrogen</td><td>25300-054</td><td>0,05% Trypsine-EDTA (1x), Fenol Rood</td></tr><tr><td>HeLa cellen</td><td>ATCC</td><td>CCL-2</td><td></td></tr><tr><td>A549 cellen</td><td>ATCC</td><td>CCL-185</td><td></td></tr><tr><td>Sucrose</td><td>Sigma Aldrich</td><td>S7903</td><td>Sucrose BioXtra, &ge;99,5%</td></tr><tr><td>IgG2 anti-muis-FITC</td><td>BD Pharmingen</td><td>555057</td><td>Ms IgG2b K FITC isotype control</td></tr><tr><td>Anti-NP-RSV-FITC</td><td>Abcam</td><td>ab25849</td><td>Anti-Respiratory Syncytial Virus antilichaam [671] (FITC)</td></tr><tr><td>Dichtheidsgradiënt medium (Lymphoprep)</td><td>Axis-Shield</td><td>1114545</td><td></td></tr><tr><td>EDTA buizen</td><td>BD Biosciences</td><td>367525</td><td></td></tr><tr><td>Aceton</td><td>Merck Millipore</td><td>1000141000</td><td>Aceton voor analyse</td></tr><tr><td colspan="4">Materiaal </td></tr><tr><td>Centrifugebuizen</td><td>Beckman Coulter</td><td>326823</td><td>Dunwandig, Polyallomer, 38,5 ml, 25 mm x 89 mm</td></tr><tr><td>SureSpin 630 Rotor met 36 ml emmers</td><td>Sorvall</td><td>79368</td><td>Zwingende emmer titanium rotor</td></tr><tr><td>Sorvall WX80 Ultracentrifuge</td><td>Sorvall</td><td>46900</td><td></td></tr><tr><td>CB 150l CO2 Incubator</td><td>Binder</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

een in vitro model om immuunresponsen van humane perifere bloedmononucleaire cellen op humane respiratoire syncytiële virusinfectie te bestuderen

An In vitro Model to Study Immune Responses of Human Peripheral Blood Mononuclear Cells to Human Respiratory Syncytial Virus Infection

Humane respiratoire syncytiële virus (HRSV) infecties presenteren een breed spectrum van ziekteseveriteit, variërend van milde infecties tot levensbedreigende bronchiolitis. Een belangrijk onderdeel van de pathogenese van ernstige ziekte is een versterkte immuunrespons die leidt tot immunopathologie.	Hier beschrijven we een protocol dat wordt gebruikt om de immuunrespons van menselijke immuuncellen op een HRSV-infectie te onderzoeken. Eerst beschrijven we methoden die worden gebruikt voor het kweken, zuiveren en kwantificeren van HRSV. Vervolgens beschrijven we een menselijk in vitro model waarin perifere bloedmononucleaire cellen (PBMC's) worden gestimuleerd met levend HRSV. Dit modelsysteem kan worden gebruikt om meerdere parameters te bestuderen die kunnen bijdragen aan ziekteseveriteit, inclusief de aangeboren en adaptieve immuunrespons. Deze reacties kunnen worden gemeten op transcriptie- en translatieniveau. Bovendien kan virale infectie van cellen eenvoudig worden gemeten met behulp van flowcytometrie. Samengevat biedt stimulatie van PBMC met levend HRSV een snel en reproduceerbaar modelsysteem om mechanismen te onderzoeken die betrokken zijn bij HRSV-geïnduceerde ziekte.

De hier beschreven kweek- en zuiveringsmethode voor HRSV A2 levert een opbrengst op tussen 2 x 107 en 2 x 108 FITC-50 gekwantificeerde infectieuze virusdeeltjes/ml. De resultaten van de microscopische analyse, waarbij FITC-gekleurde geïnfecteerde cellen werden geteld (resultaten niet getoond), werden vergeleken met de resultaten van kwantificatie via FACS (Figuur 1). Beide methoden resulteerden in vergelijkbare titers, hoewel de FACS-methode een veel lagere standaarddeviatie tussen ...

Het humaan respiratoir syncytieel virus (HRSV) kan ernstige bronchiolitis veroorzaken bij jonge zuigelingen. Een deel van de pathogenese van ernstige HRSV-ziekte wordt veroorzaakt door de immuunrespons van de gastheer. Stimulatie van primaire menselijke immuuncellen met HRSV biedt een snel en reproduceerbaar modelsysteem om de activering van ontstekingsroutes en infectie te bestuderen.

Een in vitro model om immuunresponsen van humane perifere bloedmononucleaire cellen op humane respiratoire syncytiële virusinfectie te bestuderen

Human respiratory syncytial  virus (HRSV) infections present a broad spectrum of disease severity, ranging  from mild infections to life-threatening ...

Het algemene doel van deze procedure is om de respons van menselijke immuuncellen op een infectie met het respiratoir syncytiaal virus of RSV te bestuderen. Dit wordt bereikt door eerst een infectieuze RSV-voorraad te kweken op helo-cellen. In de tweede stap wordt de gekweekte RSV-voorraad gezuiverd door middel van ultracentrifugatie.Vervolgens worden primaire immuuncellen uit menselijk bloed geïsoleerd via dichtheidscentrifugatie. In de laatste stap worden de geïsoleerde immuuncellen gestimuleerd met het virus. Uiteindelijk kan de cellulaire immuunrespons op een RSV-infectie worden beoordeeld via ELISA, qPCR of flowcytometrie.Deze techniek is een waardevolle toevoeging voor het bestuderen van infecties met het respiratoir syncytiavirussen. RSV is zeer adaptief voor mensen. Daarom is het belangrijk om menselijke immuuncellen te gebruiken om de inflammatoire routes te bestuderen die betrokken zijn bij de pathogenese van het virus.Hoewel het in deze video gebruikte virus RSV is, kan deze methode ook eenvoudig worden aangepast om andere virussen te bestuderen, zoals het influenzavirus of rhinovirus. Begin met het opwarmen van een vial met human RSV seeding stock in een waterbad van 37 °C. Wanneer het virus is ontdooid, wordt de stock verdund in aliquots van 4 mL infectiemedium per kolf.Voeg het virus toe aan de heli-cellen bij een MOI van 0,1 of lager, met een zo laag mogelijk totaalvolume zonder dat de cellen uitdrogen. Incubeer de culturen vervolgens gedurende twee tot vier uur bij 37 °C en 5% CO2, waarbij de fles elke 15 minuten wordt bewogen om het medium te herverdelen. Verwijder daarna het inoculum en was de cellen eenmaal met PBS.Voeg vervolgens 15 milliliter kweekmedium toe aan de flessen en incubeer deze gedurende drie tot vijf dagen onder dezelfde kweekcondities. Observeer de cellen dagelijks onder een normale lichtmicroscoop op door het virus geïnduceerde cytopathologische veranderingen. Wanneer deze veranderingen worden waargenomen, schraap dan de cellen af om het RSV te oogsten, verzamel de suspensie in een steriele buis van 50 milliliter, vortex de cellen en centrifugeer deze vervolgens 10 minuten bij 1800 Gs en kamertemperatuur om het celdebris te pelletteren.RSV pelleteert niet bij deze snelheid, waardoor het supernatant in volumes van één milliliter als seeding stock kan worden bewaard bij min 80 graden Celsius. Aliquots voor toekomstig gebruik worden altijd direct ingevroren met vloeibare stikstof om het verlies van infectieuze virusdeeltjes te voorkomen. Om RSV te zuiveren, begint u met het plaatsen van een steriele centrifugebuis in elke houder van een ultracentrifuge.Voeg vervolgens vijf milliliters vers bereide, filtergesteriliseerde sucrose-oplossing toe aan de bodem van elke buis. Voeg daarna, zeer langzaam, 30 milliliters van de RSV-oplossing bovenop de sucrose-oplossing toe, waarbij u er zorg voor draagt dat de sucrose-oplossing niet wordt verstoord en de lagen gescheiden blijven. Balanceer vervolgens in een flowcabinet, om de steriliteit te waarborgen, de zes ultracentrifugatie-buckets zorgvuldig met steriele PBS tot binnen 0,1 grams van elkaar, inclusief de doppen. Centrifugeer het virus gedurende 1,5 hours bij 20.000 RCF en vier degrees Celsius.Wanneer het centrifugeren is voltooid, worden de centrifugebuisjes met een steriele pincet voorzichtig uit de houders verwijderd. De virusdeeltjes zijn door de sucroselaag gezakt en hebben een pellet gevormd. Giet de centrifugebuisjes leeg in een kolf voor viraal afval en laat de buisjes ondersteboven uitlekken op een steriel oppervlak.Laat het pellet niet volledig uitdrogen. Laat vervolgens voorzichtig één milliliter HPSS over het pellet lopen en kantel de centrifugebuis opnieuw om de HPSS af te gieten. Keer de buis daarna weer om, waarbij u er zorg voor draagt dat het pellet niet uitdroogt.Tritureer het pellet nu 40 keer in een andere milliliter HBSS, waarbij u zorgvuldig voorkomt dat er bellen ontstaan, aangezien dit het virus kan vernietigen. Snap-freeze vervolgens aliquoten van het virus in vloeibare stikstof. Bewaar het virus bij negatief 80 graden Celsius tot de kwantificering en verder gebruik. Nadat bloed is afgenomen in 10 milliliter EDTA-buizen van gezonde vrijwilligers, verdunt u het bloed met PBS op kamertemperatuur tot maximaal twee keer, tot een maximum van 35 milliliter verdund bloed in een 50 milliliter buis.Bevestig vervolgens een steriele Luer-lock naald aan een steriele spuit van 50 milliliter en aspireer vervolgens densiteitsgradiëntmedium in de spuit. Plaats de naald op de bodem van de buis met verdund bloed en pipetteer voorzichtig 15 milliliter densiteitsgradiëntmedium onder het bloed, waarbij een scherpe scheiding tussen het densiteitsgradiëntmedium en het bloed behouden blijft. Centrifugeer de cellen vervolgens gedurende 20 minuten bij 800 GS op kamertemperatuur met maximale versnelling en een brake-off. Na de centrifugatie bevinden de erytrocyten zich in het pellet onderin de buis, met daarboven een zilverachtige laag neutrofielen.De heldere laag boven het pellet bevat het dichtheidsgradiëntmedium en de dunne laag tussen het dichtheidsgradiëntmedium en de bloedplasmalaag aan de bovenzijde bevat de PBMC. Gebruik een pasteurpipet om de PBMC voorzichtig te verzamelen en breng de cellen vervolgens over naar een nieuwe buis van 50 milliliter op ijs. Voeg ijskoud PBS toe tot een volume van 50 milliliter en pellet de cellen wanneer het centrifugeren is voltooid.Aspireer het supernatant en was de pellet twee keer in 50 milliliters ijskoude PBS. Voeg na de tweede wasbeurt één milliliter ijskoud medium toe aan de pellet, tel de cellen en stel de celconcentratie in op vijf keer 10 to the six pbmc per milliliter. Om de pbmc te stimuleren met levend RSV, voegt u eerst 100 microliters pbmc toe aan elke put van een 96-wells ronde bodemplaat. Voeg vervolgens 50 microliters van twee vers verdunde stimuli toe aan elke put.Incubeer de plaat gedurende 24 uur bij 37 °C en 5% CO2, en centrifugeer de plaat vervolgens, waarbij het supernatant wordt opgevangen voor latere analyse via ELISA. De gestimuleerde PBMC in het pellet kunnen worden geanalyseerd via qPCR of worden gekleurd voor flowcytometrie. Bij het uitvoeren van PBMC-stimulatie-experimenten wordt de stimuli-fractioneringsmethode in combinatie met deze methode aanbevolen.De condities zijn onderverdeeld in standaardstimulatiecondities, zoals RPMI of menselijk RSV, en testfractiecondities, zoals mial, dipeptide of LPS. Belangrijk is dat er in elk experiment altijd een negatieve controle, zoals RPMI alleen, en een positieve controle, zoals LPS, zijn opgenomen. Na 24 uur stimulatie met RSV vertonen verschillende PBMC-populaties een dosisafhankelijke infectiegraad en een verschil in RSV-infectie-efficiëntie. Na 24 uur stimulatie met het virus laat qPCR-analyse van de PBMC's voor de expressie van TNF-alfa of interferon-gamma zien dat RSV een robuuste opregulatie van de transcriptie van deze twee inflammatoire cytokines induceert. Omgekeerd resulteert stimulatie met miam-dipeptide of LPS slechts in een zwakke mRNA-expressie.Wanneer P BMC's gelijktijdig worden gestimuleerd met zowel RSV als het MIAL-dipeptide, wordt een sterke synergetische upregulatie waargenomen. Gestimuleerde pbmc werden daarnaast geanalyseerd op hun productie van TNF Alpha of Interferon gamma via ELISA. In tegenstelling tot de waarnemingen op transcriptioneel niveau is RSV een zwakke induceerder van TNF alpha- en interferon gamma-eiwitsecretie door p BMC's; stimulatie met miam-dipeptide resulteert in de productie van lage hoeveelheden TNF alpha en geen interferon gamma.Vergelijkbaar met de transcriptionele analyses vertonen zowel TNF alpha als interferon gamma een synergetische upregulatie bij co-stimulatie met RSV en het MIAM-dipeptide, als controle om te bepalen of de cytokine-inductie afhankelijk is van RSV-replicatie. P BMC's werden gestimuleerd met levend of bèta-propionlacton-geïnactiveerd RSV; zoals in de grafieken wordt geïllustreerd, induceerden zowel levend als geïnactiveerd RSV de productie van pro-inflammatoire cytokines. Vergeet niet dat experimenten met RSV moeten worden uitgevoerd in een biologische veiligheidskabinet in een laboratorium met biosafety level 2.Bovendien is het bij het uitvoeren van deze methode cruciaal om gedurende de gehele procedure endotoxinevrije reagentia en materialen te gebruiken. Na het bekijken van deze video zou u een goed inzicht moeten hebben in hoe menselijke pbmc gestimuleerd kunnen worden met RSV en in verschillende assays die gebruikt kunnen worden om de immuunrespons te analyseren.I.

an-vitro-model-to-study-immune-responses-human-peripheral-blood

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologie en Infectie

Deze methode maakt het mogelijk karakterisering van bacteriële uitgebreide co-cultuur met EpiAirways, primaire menselijke luchtwegen epitheelweefsel geteeld op de lucht-vloeistof interface, een biologisch...

Gebruik van de EpiAirway Model voor het karakteriseren van op lange termijn gastheer-pathogeen interacties

This video demonstrates an in vitro technique to stimulate lymphocytes via non-typeable Haemophilus influenzae (NTHi) and to assess the immune response. Incubating isolated peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) with NTHi causes the bacterial cells to stimulate T lymphocytes, leading to cytokine production. Upon inhibiting the secretion of cytokines, immunofluorescence staining is performed to detect the accumulated intracellular cytokines in stimulated T lymphocytes.

An In Vitro Technique to Stimulate Lymphocytes via Pathogenic Bacteria

This video demonstrates ex vivo infection of human uterine mucosal tissue with human immunodeficiency virus type 1, HIV-1, and their maintenance on top of gelatin sponges at the air-liquid interface. This method allows monitoring of HIV-1 replication and pathogenesis within human tissues.

A Human Cervical Mucosa Infection Model to Study HIV Pathogenesis in Ex Vivo Conditions

This video demonstrates an assay for measuring neutralizing antibodies against respiratory syncytial virus (RSV). Pre-incubation with serum containing RSV-neutralizing antibodies neutralizes the virus particles, reducing cellular infection and plaque formation. Virus-infected cells are then subjected to fixation, blocking, and fluorophore-conjugated antibody labeling for plaque visualization. This process enables the identification of the highest serum dilution that neutralizes fifty percent of...

An Assay to Measure the Neutralizing Antibody Titer Specific for Respiratory Syncytial Virus

This video demonstrates an in vitro technique to identify immune cells residing in murine lungs. After isolating target immune cells from murine lung tissue, they are surface-labeled using a cocktail of fluorophore-tagged antibodies against specific markers on innate and adaptive immune cells. Additionally, monocytes, macrophages, and dendritic cells are labeled using an intracellular marker. The various immune cell types are then identified using flow cytometry.

An In Vitro Method to Identify Innate and Adaptive Immune Cells Residing in Murine Lungs

Er is een algemene kennisgebrek over hoe vaccins werken. Hier stellen we het gecombineerde gebruik van omgekeerde genetica en botmerg chimerische muizen voor om inzicht te krijgen in de vroege gastheer immuunreacties op vaccins met een speciale focus op dendritische cellen en T-cel immuniteit.

Intranasale toediening van recombinante Influenza Vaccines in Chimerisch muismodellen om mucosale immuniteit bestuderen

Menselijk dubbele infectie is moeilijk te repliceren in vitro. Echter, menselijke malariaparasieten kunnen gemakkelijk worden gekweekt in vitro, net als vers geïsoleerde humane perifere bloedmononucleaire cellen die natuurlijk besmet zijn met HIV. Dit biedt een uitstekend model voor het bestuderen van vroege immuunresponsen op malariaparasieten in de context van HIV-co-infectie.

Een<em&gt; In Vitro</em&gt; Model voor het meten van immuunrespons op Malaria in de context van HIV Co-infectie

Deze studie beschrijft een hoog debiet, imaging gebaseerde micro-neutralisatie test om te bepalen van de titer van neutraliserende antilichamen specifiek voor respiratoir syncytieel virus (RSV). Deze bepaling-indeling is getest op verschillende monster typen.

Een verbeterde en hoge doorvoer respiratoir syncytieel Virus (RSV) Micro-neutralisatie Assay

Beschrijven we een methode voor het genereren van en sturen genetisch gemodificeerde respiratoir syncytieel virussen (RSVs) en een geoptimaliseerde plaque assay voor RSVs. We illustreren dit protocol door het creëren van twee recombinante virussen die respectievelijk toestaan kwantificering van RSV replicatie en live analyse van RSV opneming organen en integratie-organen-geassocieerde korrels dynamiek.

Generatie, versterking en titratie van recombinante respiratoir syncytieel virussen

Dit protocol beschrijft een onderzoek naar de vroege interacties tussen viraal geïnfecteerde neusepitheelcellen en aangeboren celactivatie. Individuele subsets van immuuncellen kunnen worden onderscheiden op basis van hun activering als reactie op virale infecties. Ze kunnen vervolgens verder worden onderzocht om hun effecten op vroege antivirale reacties te bepalen.

Contactvrij co-kweekmodel voor de studie van innate immuuncelactivering tijdens respiratoire virusinfectie

Dit protocol geeft instructies voor intranasale toediening van IAV en downstream-analyse van longbeschadiging bij muizen en bijbehorende transcriptionele veranderingen in longceltypen.

Modellering van dysplastisch en functioneel longalveolair herstel na griepinfectie

Leer hoe humane perifere bloedmononucleaire cellen reageren op respiratoir syncytieel virus met dit in vitro-model. Deze methode onderzoekt ontstekingsroutes en immunologische mechanismen bij RSV-infectie.

Een in vitro model om immuunresponsen van humane perifere bloedmononucleaire cellen op humane respiratoire syncytiële virusinfectie te bestuderen (Video) | JoVE Journal

Een in vitro model om immuunresponsen van humane perifere bloedmononucleaire cellen op humane respiratoire syncytiële virusinfectie te bestuderen

Meer video's verkennen