30 december 2013
V3 workflow is een westerse vlek procedure met behulp van vlekvrije gels. De vlekvrije technologie stelt onderzoekers in staat om de kwaliteit van eiwitscheiding te visualiseren, de overdrachtsefficiëntie te verifiëren en vooral om de verandering in het eiwit van belang te valideren met behulp van totale eiwitkwantificering als een betrouwbare belastingscontrole.
BioRad V three Workflow biedt onderzoekers een betrouwbaardere kwantificering en meer vertrouwen in het Western blotting proces. Dit wordt bereikt door eerst TGX stain-free gels te gebruiken om eiwitmonsters te scheiden en te visualiseren. Na scheiding worden de eiwitten overgebracht naar een membraan met behulp van het blot turbo rapid transfer systeem, dat verificatie van de overdrachtkwaliteit en -efficiëntie mogelijk maakt.
Na verificatie van de overdracht wordt het membraan geblokkeerd en geprobeerd met primaire en secundaire antilichamen voor de doeleiwitten. Ten slotte worden doeleiwitniveaus genormaliseerd met behulp van de stain-free totale eiwitmeting als ladingscontrole. De V three workflow brengt gemak en transparantie in het western blotting proces en biedt onderzoekers vertrouwen in elke stap, van scheiding tot overdracht en kwantificering.
Het belangrijkste voordeel van de V three Western workflow ten opzichte van traditioneel Western blotting is dat stain-free technologie een praktische, gemakkelijke en betrouwbare totale eiwitladingscontrole biedt voor het normaliseren van je doeleiwitsignalen. Deze methode kan helpen bij het beantwoorden van belangrijke vragen met betrekking tot de betrouwbaarheid van ladingscontrolemethodologieën voor de Western blotting techniek die betrekking hebben op de verzadiging van housekeeping-eiwitsignalen en de differentiële expressieniveaus van housekeeping-eiwitten onder verschillende experimentele omstandigheden. We ontdekten dat eiwitten die in stain-free gels worden geactiveerd, ook op blos kunnen worden gevisualiseerd zonder verdere kleuring, waardoor ze kunnen worden gebruikt als alternatief voor conventionele totale eiwitkleuringen, evenals housekeeping-eiwitladingscontroles.
In de komende paar minuten zullen we de volledige V three workflow demonstreren met behulp van multiplex fluorescentie. Dezelfde procedure kan ook worden gebruikt voor chemiluminescentie na het voorbereiden van eiwitmonsters volgens het tekstprotocol. Gebruik een criterium TGX stain-free any KD voorgevormd gel, verwijder de kam en het plakband van de onderkant van de cassette.
Plaats de cassette in het gelapparaat en vul beide reservoirs met lopende buffers. Laad de eiwitstandaarden en monsters. Laat de gel vervolgens 20 minuten bij 300 volt lopen.
Nadat de elektroforese voltooid is, gebruikt u de cassetteopeningstool op het Criterion Cell-deksel om de cassette te openen. Breng vervolgens een paar milliliter water aan op de UV-transluminator van de Chemi Dock MP imager. Til voorzichtig de gel uit de cassette en plaats deze op de UV Trans Illuminator Launch Image Lab software en stel een nieuw enkelkanaalsprotocol in voor stain-free gels met behulp van de standaard één minuut gelactiveringstijd, selecteer het juiste geltype en standaard automatische optimalisatie voor intense bands.
Klik vervolgens op protocol uitvoeren. Zodra de beeldopname voltooid is, visualiseert u de scheiding en monsterskwaliteit. Ga dan onmiddellijk verder met de overdrachtstap.
Om eiwitoverdracht uit te voeren, opent u een transblock turbo MIDI PVDF-overdrachtspack. Plaats de onderste stapel in het midden van de cassettebasis. Verwijder het gel van de imager.
Lign het gel bovenop het membraan. Gebruik voorzichtig de blot-roller om luchtbellen tussen het gel en het membraan te verwijderen. Lijn vervolgens de bovenste stapel bovenop het gel uit.
Na het verwijderen van eventuele luchtbellen, plaatst u het cassettedeksel op de basis. Druk het deksel stevig naar beneden, draai de knop met de klok mee om te vergrendelen en plaats de cassette in een van de twee blotter bays. Selecteer vanaf het startscherm het turboprotocol.
Kies de twee mini of één mini gel en druk op de startknop voor de juiste bay. De overdracht is binnen zeven minuten voltooid. Verwijder de cassette uit de bay.
Ontgrendel de cassette en demonteer de blottingsandwich. Plaats het post-transfer gel op de UV-transluminator van de Chemi dock MP imager en plaats het membraan onmiddellijk in gedeïoniseerd water. Stel een nieuw enkelkanaalsprotocol in voor stain-free gels zonder activeringstijd.
Selecteer het juiste geltype en stel handmatig de belichtingstijd in op die van het vooraf overgedragen gel en klik op protocol uitvoeren. Zodra de beeldopname voltooid is. Verifieer de overdrachtsefficiëntie door de monsterbandintensiteiten te vergelijken tussen de voor- en na-overdracht gels.
Verwijder het gel uit de monsterschaal omdat het niet langer nodig is en gooi het weg. Om te verifiëren, overdracht naar de blot. Plaats het membraan op de monsterschaal en stel een nieuw enkelkanaalsprotocol in.
Voor stain-free blot. Selecteer het juiste geltype en standaard automatische optimalisatie voor intense bands. Klik vervolgens op protocol uitvoeren.
Zodra de beeldopname voltooid is, verifieer de overdracht naar het membraan. Verwijder de blot-membraan van de UV-trans illuminator en plaats deze in blokkeringsbuffer voor western blotting. Nadat het membraan een uur bij kamertemperatuur is geïncubeerd, incubeer het de volgende dag met muis en konijn primaire antilichamen gedurende één nacht bij vier graden Celsius.
Giet de antilichaamoplossing uit en gebruik 50 milliliter TBST om de blot vijf minuten te wassen. Incubeer de blot met fluorescerende geconjugeerde, anti-muse en anti-konijn secundaire antilichamen gedurende één uur bij kamertemperatuur. Was vervolgens de blot vijf keer vijf minuten met TBST.
Om de blot af te beelden, plaats deze op de UV-trans illuminator van de Chemi doc MP imager in Image Lab software. Stel een nieuw multikanaalsprotocol in. Configureer kanaal een door dite zes 50 te selecteren onder blot-toepassingen en gebruik de standaard automatische optimalisatie voor intense bands.
Herhaal deze stappen om kanalen twee en drie te configureren voor DITE 5 49 en stain-free blot respectievelijk. Selecteer het juiste geltype en klik op protocol uitvoeren. Om rijen te definiëren, selecteer de stain-free blot-afbeeldingsrij en -banden.
Vervolgens automatische rijenvinder voor nauwkeurige kwantificering. Zorg ervoor dat de achtergrondprofielen in elke monsterstrook vergelijkbaar zijn door de rolschijfgrootte aan te passen naar 70. Bevestig de uniformiteit van de achtergrond door alle strookprofielen te scannen om banden in zowel de dite zes 50- als 5 49-kanalen te definiëren.
Gebruik de bandvindertool om banden te detecteren met behulp van de standaard gevoeligheidsinstellingen. Om het normalisatiekanaal aan te wijzen, keer terug naar
De V3-workflow is een western blot-procedure die gebruikmaakt van stain-free gels, waardoor de visualisatie en kwantificering van eiwitten worden verbeterd. Deze methode maakt een betrouwbare loading-controle en verificatie van de efficiëntie van de eiwitoverdracht mogelijk.
De V3 stain-free workflow pakt een kritieke flessenhals bij Western blotting aan door een praktische, kwantitatieve controle voor de totale eiwitbelading te bieden, waardoor validatie van housekeeping-eiwitten overbodig wordt. Dit verhoogt de betrouwbaarheid van de gegevens en versnelt de besluitvorming in workflows voor targetvalidatie en leadoptimalisatie, waarbij veranderingen in eiwitexpressie nauwkeurig gekwantificeerd moeten worden. Door real-time visualisatie van de gelkwaliteit, de transfer-efficiëntie en genormaliseerde targetsignalen mogelijk te maken, vermindert de workflow de experimentele onzekerheid en ondersteunt deze reproduceerbare preklinische target de-risking.
De V3-workflow past binnen het ontdekkingscontinuüm, van vroege target-engagement assays tot lead-optimalisatie, waarbij een nauwkeurige proteïnekwantificering essentieel is voor de bevestiging van het mechanisme en structurele activiteitsrelatie-studies (SAR).