Name: De Bovine Lung in het biomedisch onderzoek: visueel geleide Bronchoscopie, intrabronchiale Enten en In Vivo Sampling Technieken (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-07-03T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 1 s
Description: Leer bronchoscopische technieken voor het bestuderen van luchtweginfecties bij kalveren. Deze methoden omvatten bronchoalveolaire lavage, bronchiale borsteling en transbronchiale longbiopsie voor herhaalde bemonstering.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

De auteurs zijn zeer dankbaar aan het Federale Ministerie van Onderwijs en Onderzoek (BMBF) van Duitsland voor de financiering van hun werk. Ook bedanken de auteurs Ines Lemser, Sylke Stahlberg, Ingolf Rücknagel en alle andere collega's die werken in het team van de dierenstal (FLI, Duitsland) voor hun technische assistentie met de bronchoscopieën. Ze zijn ook zeer dankbaar aan Maria-Christina Haase (FLI, Duitsland) voor haar hulp bij het verschaffen van literatuur. Verder wensen de auteurs hun dank te betuigen aan Dr. Angela Berndt (FLI, Duitsland) en Nicolette Bestul (University of Wisconsin-River Falls) voor het kritiek lezen van het manuscript.

Ethiek Verklaring Dit onderzoek is uitgevoerd in strikte overeenstemming met de Europese en nationale wetgeving voor de zorg en het gebruik van dieren uitgevoerd. Het protocol is op de ethiek van dierproeven en de bescherming van dieren goedgekeurd door het Comite in de deelstaat Thüringen, Duitsland (Nummer van de vergunning: 04-004/11). Alle experimenten werden uitgevoerd onder toezicht van de bevoegde institutionele Agent voor Dierenbescherming. Bronchoscopie werd strikt uitgevoerd onder algemene verdoving. Tijdens de studie, werd alles gedaan om ongemak of leed te minimaliseren. Algemene opmerkingen De beschreven technieken zijn ontwikkeld voor kalveren ongeveer 6-8 weken oud, gewicht 60-80 kg. Voor het gebruik in andere grote diersoorten of kalveren verschillende leeftijd en lichaamsgewicht, moet de werkwijzen worden aangepast aan de grootte en het gewicht passen en rekening houden met de long anatomie van de specifieke diersoorten. Alleapparatuur moeten steriel zijn. Chlamydia psittaci is een zoönose bacterie die respiratoire en algemene ziekte bij mensen kan veroorzaken. De niet-aviaire C. psittaci stam DC15 gebruikt in het huidige protocol moet onder bioveiligheid niveau 2 worden behandeld. Alle werkzaamheden met de ziekteverwekker en met besmette dieren moeten worden uitgevoerd dragen van persoonlijke beschermingsmiddelen, zoals een masker, een spatwaterdicht jumpsuit, rubberen laarzen en handschoenen. Het dragen van een geschikt masker is van groot belang, omdat de natuurlijke route van infectie voor C. psittaci is AeroGen. Verpakking en etikettering van de monsters moet ontsmettingsmiddel bewijs aangezien alle dingen moeten worden behandeld met een desinfecterend middel effectief tegen chlamydiae volgens de instructies van de fabrikant voor het verlaten van de stal eenheid. 1. Voorbereiden van de Animal voor bronchoscopie <ol><li> Bepaal het gewicht van het kalf voor dosering van anesthetica. </li><li> Plaats een intraveneuze (IV) toegang in de linker halsader. </li><li> Eerst langzaam injecteren xylazine (0,2 mg / kg lichaamsgewicht) gedurende ongeveer 30 seconden, dan na sedatie optreedt, injecteren ketamine (2,0 mg / kg lichaamsgewicht). </li><li> Til het dier op de tafel en plaats deze in de juiste zijligging. Zodra het dier adequaat wordt geplaatst op de tafel, controleren of de toegang IV is nog steeds op zijn plaats en stel deze indien nodig. Tijdens de anesthesie, controleer regelmatig het ooglid reflex om de diepte van de anesthesie te bepalen. </li><li> Zodra het dier gestaag ademt, laat iemand de tong trek en strek de nek. Plaats een metalen buis speculum in de mond van het dier, met kleine roterende bewegingen. Duw het speculum naar voren onder ogen controle, met behulp van een zaklamp, totdat het strottenhoofd zichtbaar is. </li><li> Handhaaf anesthesie gedurende de gehele endoscopische procedure injecteren van een bolus van 7 mg xylazine en ketamine 70 mg zoals nodig. </li></ol> . 2 Inenting (Enten Sites: Figuur 1) </p&gt; <ol><li> Bereid 3 spuiten met inoculum, met 1, 2, en 5 ml van het inoculum. </li><li> Plaats een Teflon buis in werkkanaal van de endoscoop. De buis mag niet uitsteken van de punt van de endoscoop. </li><li> Steek de endoscoop door de metalen speculum. Lichte aanpassingen van het speculum kan nodig zijn om het passeren van het strottenhoofd mogelijk te maken. De Bronchus trachealis, die afbuigt naar rechts, helpt om het beeld af te stemmen op de monitor. </li><li> Bevestig de spuit met 5 ml inoculum aan het einde van de Teflon buis. Navigeer door de buis in de takken waar de entstof wordt neergelegd en de gewenste hoeveelheid (Rechts long toepassing: Lobus medius: 0,5 ml, Lobus accessorius: 0,5 ml, Lobus caudalis: 0,5 ml en 1,0 ml; linkerlong: Lobus cranialis, Pars cranialis 0,5 ml, Pars caudalis: 0,5 ml, Lobus caudalis 1,5 ml). Bevestig de spuit met 1 &amp;# 160; ml inoculum aan de buis, navigeer naar de Bronchus trachealis en storten het inoculum (Lobus cranialis, Pars caudalis: 1,0 ml). Het is handig om altijd benaderen de lokalisatie in dezelfde volgorde. </li><li> Verwijder de endoscoop en het speculum. </li><li> Spray 1 ml van het inoculum in elk neusgat met een actuator. </li><li> Breng het dier terug naar de stal en plaats het in buikligging voor het wakker worden. Heeft het dier niet zonder toezicht of in het gezelschap van andere dieren verlaten totdat het voldoende weer bij bewustzijn is om borstligging handhaven. Het herstel stabiel moet zijn voorzien van airconditioning, aangezien het vermogen van het dier voor thermoregulatie wordt afgenomen onder algemene verdoving. OPMERKING: eerste klinische symptomen voordoen ongeveer 24-36 uur na inoculatie, afhankelijk van het pathogeen gebruikt. </li></ol> . 3 Sampling Procedures (Sampling Sites: Figuur 2) <ol><li> Bereid het dier zoals beschreven in stappen 1.1-1.6. </li><li> Bronchoalveolaire lavage <ol><li> Plaats 5 spuiten met elk 20 ml steriele isotone zoutoplossing, in een waterbad en laat ze opwarmen tot ongeveer 38 ° C. </li><li> Plaats een lavage catheter in werkkanaal van de endoscoop, steek de endoscoop in de metalen speculum en navigeer naar voren in de hoofdbronchus van de linker long, totdat de &quot;wiggepositie&quot; is bereikt waar de endoscoop niet kan worden geduwd verder vooruit. </li><li> Een na de ander, hechten de spuiten met de warme NaCl-oplossing voor de lavage catheter, wekt de vloeistof en zuig het direct. De bronchoalveolaire lavage vloeistof moet worden opgeslagen in gesiliconiseerde glazen flessen en op ijs gezet onmiddellijk na herstel te voorkomen dat de alveolaire macrofagen uit die verbonden zijn aan het glasoppervlak. Opmerking zowel de hoeveelheid bijgebracht zoutoplossing en de hoeveelheid teruggewonnen fluïdum. </li><li> Verwijder de lavage katheter uit het werkkanaal. </li></ol></li><li> Bronchiale borstelen<ol><li> Navigeer door de endoscoop naar de gewenste sampling locatie, in het protocol beschreven is dit het Bifurcatio tracheeën. </li><li> Bedek de borstel met de buis voordat u deze in werkkanaal van de endoscoop totdat tip van het penseel op de monitor verschijnt. </li><li> Duw de borstel met de plastic buis naar voren ongeveer 5 cm en ontdek het van de plastic buis door op het handvat, navigeer vervolgens naar de locatie die moet worden geborsteld. </li><li> Afwrijven epitheliale oproepen door zachtjes duwen en trekken de borstel heen en weer tijdens het navigeren de endoscoop om het contact tussen de borstel en de wand van de bronchus waarborgen. Stoppen wrijven wanneer bloeden optreedt. Bedek de borstel met de buis voordat het uit het werkkanaal trekken. </li><li> Bereid tot vijf uitstrijkjes op objectglaasjes door zacht glooiende de borstel over de dia. Fixeer de uitstrijkjes in koude methanol gedurende 10 minuten drogen aan de lucht en bewaar bij -20 ° C. </li><li> De borstel kan worden gespoeldverschillende media, afhankelijk van het doel van de bemonsterde cellen. Als het nemen van meerdere poetsbeurten met dezelfde borstel, moet u alleen spoelen in media die niet irriteert de slijmvliezen. </li></ol></li><li> Transbronchiale longbiopt <ol><li> Navigeer door de endoscoop naar de gewenste sampling locatie, in het protocol beschreven is dit het Pars caudalis van de Lobus cranialis. Voordat u de biopsietang in het werkkanaal opent en sluit het een paar keer om ervoor te zorgen dat het soepel verloopt. </li><li> Duw de biopsietang in de caudale tak van de bronchus trachealis totdat een lichte weerstand optreedt. Trek 2-3 cm, open de tang, naar voren te duwen ongeveer 2 cm, sluit de tang, terug te trekken en verwijder de tang van het werkkanaal. Dit vereist enige oefening. </li><li> Verwijder voorzichtig het weefsel van de biopsie tang, met behulp van een naald of kleine tang. Afhankelijk van het verdere gebruik van het weefsel opslaan in vloeibare nitrOgen of een geschikt medium fixatie. Dit moet juist gebeuren na verwijdering naar autolytische processen te voorkomen. </li></ol></li><li> Post-procedurele behandeling <ol><li> Breng het dier terug naar de stal en plaats het in buikligging voor het wakker worden. Heeft het dier niet zonder toezicht of in het gezelschap van andere dieren verlaten totdat het voldoende weer bij bewustzijn is om borstligging handhaven. Het herstel stabiel moet zijn voorzien van airconditioning, aangezien het vermogen van het dier voor thermoregulatie wordt afgenomen onder algemene verdoving. </li><li> Controleer het dier nauwkeurig tekenen van pneumothorax voor de volgende 24 uur. Zorg voor voer en vers water als het dier volledig bewustzijn heeft herwonnen. </li></ol></li></ol>

De auteurs hebben niets te onthullen.

Een bronchoscopic Werkwijze inoculatie werd ontwikkeld en diverse bronchoscopic bemonsteringsmethoden zijn aangepast om te worden gebruikt in grote dieren onder experimentele omstandigheden. De beschreven technieken zijn eenvoudig te leren, zelfs voor examinatoren met weinig ervaring in endoscopie. Het proces van bronchoscopie is minimaal invasief en geen nadelige effecten geassocieerd met de werkwijzen volgens de inoculatie evenals de beschreven bemonsteringsmethoden (BAL, transbrochiale longbiopt, bronchiale borstelen), werden ooit in een van de dieren. De complicaties geassocieerd met transbrochiale longbiopsieën in mensen bloeden en pneumothorax 48, geen van deze werden gezien in de kuiten deze procedure onderging. De transbronchiale long biopsie is meer tijdrovend en vereist meer apparatuur dan de transcutane methode, maar het is minder invasief en niet het risico van wondinfectie dragen. De visueel gecontroleerd, endoscopische methode inoculation kan de afzetting van een gedefinieerde hoeveelheid pathogeen op specifieke plaatsen van de long. Zo resulteert in een zeer consistente klinische en pathologische bevindingen bij alle geïnoculeerde dieren 32-34. Dit betekent echter niet alle functies van natuurlijke infectie lijken bij kalveren. In een model van een respiratoire C. psittaci infectie, de beschreven techniek van inenting leidde tot longlaesies geassocieerd met het plaatsen van een ziekteverwekker plaatsing 34, dat, natuurlijk verworven besmettingen kalveren meestal ontwikkelen longontsteking van de apicale lobben. Dit feit moet rekening worden gehouden bij het interpreteren van de relevantie van experimentele bevindingen in de context van natuurlijke verworven longinfecties bij runderen. Video-endoscopische BAL laat bemonsteren van een bepaald gebied van de long. Voor experimentele doeleinden, is een voordeel vergeleken met het gebruik van een nasale katheter onder blinde omstandigheden. Vanwege de anatomie van de longen runderen, zou blind ingebracht katheter duwened rechts middenrif kwab meestal 53,54 en de onderzoeker heeft geen invloed op het gebied van de long die wordt gespoeld. Een ander voordeel van de endoscopische BAL verdoofde kalveren zijligging is de hoge gemiddelde opbrengst van ingeprent vloeistof van meer dan 80%. Een vergelijking met andere studies blijkt dat, in staande, verdoofd kalveren, een herstel van 133,3 ± 1,6 ml 46 en 127,13 ± 3,53 ml 45 na de toediening van 240 ml vloeistof in de caudale kwab is gemeld. In verdoofd kalveren in borstligging 51% van de bijgebracht vloeistof kan worden teruggevorderd van de craniale kwab en 62% van de caudale kwab 43. Dit betekent dat ongeveer de helft van de bijgebracht vloeistof kon worden teruggevonden in rechtopstaande positie van het kalf. Afhankelijk van de hoeveelheid van BALF nodig is voor verdere monstervoorbereiding, zou dit genoeg materiaal niet overlaten aan alle gewenste experimenten uit te voeren. BAL bij runderen is gebruikt door vele onderzoeksgroepen en veleverschillende parameters onderzocht onder verschillende omstandigheden. De meeste auteurs uitgevoerd lavage van de basale lobben 43,45,46, maar de hoeveelheid vloeistof voor lavage verschillen tussen de onderzoeksgroepen. Dit leidt tot inconsistentie bij verdunning van de teruggewonnen cellen, eiwitten en andere stoffen, waardoor het moeilijk om de resultaten te vergelijken van verschillende publicaties. Daarom is voor het gebruik bij runderen is het handig te spoelen met vijf fracties van 20 ml (namelijk 100 ml in totaal) lichaam warm, isotone zoutoplossing, die worden teruggewonnen onmiddellijk na instillatie. Bij gebruik van een lavage katheter met een grote diameter (dat wil zeggen&gt; 2 mm), het volume van elke fractie moet enigszins worden verhoogd, afhankelijk van de hoeveelheid vloeistof die in de catheter blijft. De zeer gesegmenteerd anatomie van de runder longen leidt tot een methodische beperking; resultaten van een deel van de long kan niet waar voor de rest van de long. Aangezien er geenzicht controle van de hele long gebied gesondeerd door transbronchiale biopsie en lavage, kan de examinator niet weten of de bemonsterde gebieden gezond of ziek waren. Daarom is het erg belangrijk om plaatsen waar het pathogeen voordat werd geïnoculeerd om een ​​hogere opbrengst van de ziekteverwekker en een grotere kans bemonstering zieke long gebieden proeven. Een andere beperking is de toegenomen narcose risico bij dieren van slechte klinische conditie. De beschreven methoden mag alleen worden gebruikt in modellen van milde tot matige ziekte om de last voor de dieren zo laag mogelijk te houden. Algemene anesthesie bij herkauwers altijd zo kort mogelijk worden gehouden, aangezien de gasontwikkeling in de pens verhoogt de narcose risico bij deze soorten. Dieren moeten in buikligging geplaatst worden direct na bronchoscopie om de uitstroom van de ontwikkelde gas mogelijk te maken en moeten goed gevolgd worden tot ze volledig hersteld van anesthesie. Ook de beschreven technieken niet suitaBLE voor de bemonstering intervallen van minder dan 24 uur. De beschreven protocol kan worden aangepast aan andere infectieuze agentia. Endoscopische inoculatie van verschillende pathogenen is beschreven, zoals C. psittaci 32-34, Pasteurella haemolytica 38-40,42, Haemophilus somni 55, en boviene virale diarree virus 44. Ook kunnen de plaatsen van pathogeen afzetting in de longen worden aangepast aan het gewenste model. Bij het kiezen van de bemonsteringsplaatsen, enkele belangrijke feiten in aanmerking moeten worden genomen: (i) Sampling locaties dienen te worden gekozen op basis van de locaties van de inenting en op de verwachte pathologische bevindingen. (Ii) Wanneer necropsie wordt uitgevoerd voorzichtigheid geboden om voldoende unsampled longgebieden reactie voor ex vivo monsters. (Iii) Steekproef website locaties moeten worden gekozen zodat ze kunnen worden bereikt met de apparatuur. Speciaal voor transbrochiale longbiopt zijn er beperkingen door de lengte van de biopsietang. (Iv) Thij orde van de bemonstering is belangrijk, bronchiale borstelen en transbronchiale longbiopt zou kunnen leiden tot kleine bloeden, die de BALF zou besmetten. Daarom BALF altijd als eerste worden verkregen. Bij gebruik van het protocol in andere soorten, moet de soortspecifieke long anatomie rekening worden gehouden.

De waarden van de grote huisdieren Modellen in Biomedisch Onderzoek In de moderne interdisciplinair biomedisch onderzoek, dierlijke modellen zijn nog steeds onmisbaar om complexe interacties te verhelderen - gerelateerd aan gezondheid of status ziekte - in zoogdieren vormt. Ondanks 17 Nobelprijzen worden uitgereikt aan wetenschappers die runderen, paarden, schapen, of gevogelte als modellen voor biomedisch onderzoek 1 bestudeerd, tegenwoordig het overgrote deel van de dierproeven worden uitgevoerd met knaagdieren, terwijl minder dan 1% van de studies werken met huisdieren of vee. Kleine dieren bieden veel praktische voordelen (dwz lage kosten, genetische maakbaarheid, high throughput, de beschikbaarheid van een groot aantal genetische en immunologische tools en kits), en genetisch gemodificeerde muismodellen worden over het algemeen geaccepteerd om mechanistische studies ontdekken van specifieke moleculaire pathways te voeren. In het biomedisch onderzoek van complexe systemen, thij biologische relevantie en klinische bruikbaarheid van muizen modellen wordt steeds meer en meer twijfelachtig. Ze kunnen misleidend zijn en draagt ​​het risico van oversimplificatie van biologische complexiteit 2-9. Vanwege inter-soorten eigenaardigheden, zal geen enkele diersoorten volledig spiegel van de menselijke situatie, en het gebruik van meer dan een model lijkt gunstig in een interdisciplinaire biomedisch onderzoek aanpak. In het kader van translationele geneeskunde, grote dieren bieden de mogelijkheid om als vergelijkende modellen dienen die hun resultaten met een hoge biologische relevantie van de producten voor tweeërlei gebruik voor de gezondheid van mens en dier 1. Opmerkelijk is het menselijk genoom beter leek de runderen genoom dan in het genoom van knaagdieren. Ook is recentelijk bevestigd dat, in vergelijking met andere taxa het genoom van muizen veel herschikt 10-12. In een complexe studie ontwerp, gebruik van dierlijke biedt de unique mogelijkheid intra-individuele lange termijn studies door herhaalde verzameling van verschillende monsters in vivo ve-en-dezelfde individuum zonder dat het dier. Daarom kan functioneel, inflammatoire en morfologische veranderingen worden gevolgd hetzelfde onderwerp gedurende een bepaalde tijd 13. De Bovine Lung als een geschikte adembescherming Model Vanwege het grote aantal significante verschillen in anatomie long, ademhalingsfysiologie en pulmonaire immunologie, hebben muizen niet veel belangrijke pathofysiologische aspecten van menselijke longziekte reproduceren. Hiermee moet rekening worden gehouden bij het ​​gebruik ervan als diermodellen van respiratoire aandoeningen 2,9,14-16. Hoewel de eigenaardigheden van de anatomie en de structuur bestaan ​​voor elke long zoogdieren, functionele kenmerken (dwz longvolumes, luchtstromen en respiratoire mechanica) zijn beter vergelijkbaar tussen volwassen mensen en kalveren als gevolg van soortgelijke lichaamsgewicht(50-100 kg). De species-specifieke kenmerken van de runderlong worden als volgt samengevat: de linker long bestaat uit twee lobben (lobus cranialis, die is verdeeld in twee segmenten, en lobus caudalis), terwijl de rechter long bestaat uit vier lobben (lobus cranialis, lobus medius, lobus caudalis en lobus accessorius). In tegenstelling tot de long anatomie van de meeste andere zoogdieren, de bronchus van de juiste craniale lob takken rechtstreeks van de rechterzijkant van de luchtpijp. Wat anatomie subgross, runderen long weer een hoge lobulation en een hoog percentage van bindweefsel 17,18 leiden tot een relatief laag specifiek longflexibiliteit en hogere pulmonic weefsel weerstand 19. Daarom is de vereiste ademhaling is vrij hoog in vergelijking met andere soorten 20,21. De hoge lobulation leidt tot sterke onafhankelijkheid van de segmenten. Aldus inflammatory processen zijn beperkt door bindweefsel septa, en zieke en gezonde segmenten vaak binnen dezelfde kwab liggen. Vanwege het gebrek aan zekerheid luchtwegen, is de runderlong bijzonder geschikt voor obstructieve pulmonaire disfuncties 13 weerspiegelen. Wat de vasculatuur in het runderlong, de kleine longslagaders tonen prominente gladde spierlagen. Daarom kan het kalf ook dienen als een gevestigde diermodel van pulmonale hypertensie of vasculaire remodeling 22-24. Wat luchtweginfecties, natuurlijk voorkomende ziekten bestaan ​​in vee dat veel overeenkomsten met de vergelijkbare ziekten bij de mens deelt. Typische voorbeelden zijn rundertuberculose 25, respiratoir syncytieel virus (RSV) infecties bij kalveren 26-28, of natuurlijk verworven Chlamydia infecties 29. Zo hoeft grote diermodellen sterk lijken op de situatie in de natuurlijke gastheer. Daarom zijn ze het meest USEFul voor het bestuderen van gastheer-pathogeen interacties en de complexe pathofysiologie van de desbetreffende ziekten bij de mens 30,31. Als biologisch relevante model van respiratoire Chlamydia psittaci infectie werden kalveren gekozen, omdat runderen vertegenwoordigen natuurlijke gastheren voor deze ziekteverwekker 32-35. Informatie verkregen uit dit model, met betrekking tot de pathogenese van de ziekte of mogelijke overdracht routes tussen dieren en mensen, zal helpen om onze kennis te verbreden met gevolgen voor zowel het vee en de mens. Het model kan ook helpen om algemeen aanvaarde en alternatieve therapeutische opties voor de eliminatie van pulmonale C. controleren psittaci infecties, die is, nogmaals, van belang zowel in de veterinaire en humane geneeskunde. Technieken Toegepast op en Exemplaren Verkrijgbaar bij de Bovine Respiratory System Dit artikel beschrijft en illustreert de technieken en diagnostische methoden applicable de runderlong en gebruikt in ons model zowel de effecten van het pathogeen op het zoogdier long en de effectiviteit van therapeutische interventie evalueren. Bronchoscopie is uitgevoerd in de menselijke geneeskunde sinds 1960 en wordt beschouwd als een veilige procedure 36. Bij kalveren, werd experimenteel bronchoscopie beschreven in 1968 voor de eerste keer 37. De intrabronchiale toepassing van pathogenen werd voorgesteld door Potgieter et al.. Als een betrouwbare methode om lagere luchtwegaandoeningen bij kalveren 38 te produceren en is nu een wijdverspreide methode bij runderen onderzoek 34,39,40. Intrabronchiale inoculatie van een gedefinieerde hoeveelheid van de pathogeen onder video-endoscopische controle maakt selectieve plaatsing van de ziekteverwekker in de long. Dit leidt tot consistente klinische en pathologische bevindingen bij alle dieren 34 en maakt gerichte bemonstering van long gebieden die zouden moeten worden gewijzigd als gevolg van blootstelling aan pathogeen. <pclass = &quot;jove_content&quot;&gt; Bronchoalveolaire spoelvloeistof (BALF) is een goed beschreven indicator voor de aanwezigheid en de ernst van longontsteking. De bronchoalveolaire lavage (BAL) is een standaardprocedure in de menselijke geneeskunde voor de diagnose van verschillende ademhalingsziekten 41. In levend vee, werd BAL geïntroduceerd door Wilkie en Markham in de late jaren zeventig van de vorige eeuw 42. Het werd beschouwd als een veilige en herhaalbare techniek om het lagere ademhalingskanaal van runderen bestuderen. Vanwege het ontbreken van voldoende gegevens over BALF parameters bij gezonde dieren, in 1988 Pringle et al.. Uitgevoerd BAL op gezonde kalveren met een flexibele fiberoptische bronchoscoop. De auteurs wees ook op de noodzaak om BAL protocollen te standaardiseren onder experimentele omstandigheden tot vergelijkbare resultaten 43 te verwerven. BAL wordt nog steeds gebruikt als een in vivo sampling methode bij kalveren 44-46. Bronchiale borstelen wordt vaak gebruikt in de menselijke geneeskunde alsdiagnostisch hulpmiddel om neoplastische laesies of voor microbiologische analyse 36 proeven. Voor onderzoeksdoeleinden, kan primaire celculturen van epitheliale cellen geoogst door cytologisch borstelen worden verkregen 47. Bij runderen is het gebruik van bronchiale poetsen voor microbiologisch onderzoek beschreven naar de microflora van de long 43 karakteriseren. Transbronchiale longbiopt biedt longweefsel monsters en is een waardevol diagnostisch hulpmiddel voor diffuse longaandoeningen bij mensen. Iatrogene pneumothorax en-procedure gerelateerde bloedingen zijn complicaties in verband met deze techniek. De incidentie verluidt minder dan een procent bij menselijke patiënten 48. Transbrochiale longbiopt geen gemeenschappelijke methode voor het gebruik bij runderen, vanwege de hoge kosten van de benodigde apparatuur en de benodigde tijd voor biopsieën. In plaats daarvan, transcutane longbiopsieën zijn handiger onder veldomstandigheden 49-51.

<table><tbody><tr><td>Veterinary Video Endoscope</td><td>Karl Storz GmbH &amp; Co. KG, Tuttlingen, Germany</td><td>PV-SG 22&ndash;140</td><td>diameter: 9 mm, werkkanaal: 2,2 mm, werklengte 140 cm</td></tr><tr><td>Lavage catheter</td><td>Karl Storz GmbH &amp; Co. KG, Tuttlingen, Germany</td><td></td><td>diameter: 2 mm; lengte: 180 cm, Luer-lock-adapter</td></tr><tr><td>Actuator</td><td>WEPA Apothekenbedarf GmbH &amp; Co KG, Hillscheid, Germany</td><td>32660</td><td>lengte: 60 mm</td></tr><tr><td>Biopsy forceps</td><td>Karl Storz GmbH &amp; Co. KG, Tuttlingen, Germany</td><td>REF 60180LT</td><td>1,8 mm, gekarteld, ovaal</td></tr><tr><td>Omnifix 20 ml, Luer-Lock</td><td>B. Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany</td><td>4617207V</td><td></td></tr><tr><td>Cytology brush</td><td>mtp GmbH, Neuhausen ob Eck, Germany</td><td>110240-10</td><td>werklengte 180 cm, borstellengte: 15 mm, diameter 1,8 mm</td></tr><tr><td>iv access</td><td>Henry Schein Vet GmbH, Hamburg, Germany</td><td>370-211</td><td>diameter: 1,2 mm; lengte: 43 mm</td></tr><tr><td>Rompun 2% (xylazin)</td><td>Bayer Vital GmbH, Leverkusen, Germany</td><td></td><td>0,2 mg/kg lichaamsgewicht</td></tr><tr><td>Ketamin 10% (ketamine)</td><td>bela-pharm GmbH &amp; Co. KG, Vechta, Germany</td><td></td><td>2,0 mg/kg lichaamsgewicht</td></tr><tr><td>Isotonic saline solution</td><td>B. Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany</td><td>3200950</td><td></td></tr><tr><td>SUB 6 waterbath</td><td>CLF analytische Laborger&auml;te GmbH, Emersacker, Germany</td><td>n/a</td><td></td></tr><tr><td>Metal tube speculum</td><td>n/a</td><td>n/a</td><td>diameter: 3,5 cm; lengte: 35 cm</td></tr><tr><td>Flashlight</td><td>n/a</td><td>n/a</td><td></td></tr><tr><td>Siliconized glass bottles</td><td>n/a</td><td>n/a</td><td>siliconize met Sigmacote (Sigma-Aldrich Co. LLC)</td></tr><tr><td>Omnifix Luer 3 ml</td><td>B. Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany</td><td>4616025V</td><td></td></tr><tr><td>Omnifix Luer 5 ml</td><td>B. Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany</td><td>4616057V</td><td></td></tr><tr><td>Sealing plugs</td><td>Henry Schein Vet GmbH, Hamburg, Germany</td><td>900-3057</td><td></td></tr><tr><td>Inoculum</td><td></td><td>n/a</td><td>verdunn ziekteverwekker in 8 ml buffer</td></tr></tbody></table>

de bovine lung in het biomedisch onderzoek: visueel geleide bronchoscopie, intrabronchiale enten en<em&gt; in vivo</em&gt; sampling technieken

The Bovine Lung in Biomedical Research: Visually Guided Bronchoscopy, Intrabronchial Inoculation and In Vivo Sampling Techniques

Er is een voortdurende zoektocht naar alternatieve diermodellen in onderzoek van de geneeskunde aan de luchtwegen. Afhankelijk van het doel van het onderzoek, grote dieren als modellen longlijden lijken vaak op de situatie van de menselijke long veel beter dan muizen doen. Werken met grote dieren biedt ook de mogelijkheid om hetzelfde dier herhaaldelijk proeven over een bepaalde loop van de tijd, die op lange termijn studies maakt zonder dat de dieren. Het doel was om in vivo bemonsteringsmethoden voor gebruik bij een rund model van een respiratoire Chlamydia psittaci stellen. Monsternemingen op verschillende tijdstippen worden uitgevoerd in elk dier tijdens de studie en de monsters moeten geschikt zijn om de gastheer respons, evenals de pathogeen bestuderen onder experimentele omstandigheden. Bronchoscopie is een waardevol diagnostisch instrument in de humane en veterinaire geneeskunde. Het is een veilige en minimaal invasieve procedure. Deze article beschrijft de intrabronchiale inoculatie van kalveren en bemonsteringsmethoden voor de lagere luchtwegen. Video-endoscopische, intrabronchiale inoculatie leidt tot zeer consistente klinische en pathologische bevindingen bij alle geïnoculeerde dieren en is daarom zeer geschikt voor gebruik in modellen van besmettelijke longziekte. De bemonsteringsmethoden beschreven zijn bronchoalveolaire lavage, bronchiale borstelen en transbronchiale long biopsie. Dit zijn waardevolle hulpmiddelen in de menselijke geneeskunde en kan worden aangepast voor experimentele doeleinden kalveren 6-8 weken oud. De verkregen monsters werden geschikt voor detectie van pathogenen en karakterisering van de ernst van longontsteking in de gastheer.

Verloop van de ziekte Het effect van het pathogeen op de gezondheid van de dieren kan worden beoordeeld door klinisch onderzoek. In onze luchtweginfectie modellen, werden de dieren tweemaal per dag onderzocht en klinische waarnemingen werden geregistreerd met behulp van een scoresysteem. Aanvullende informatie werd gevangen door het uitvoeren van andere in vivo sampling methoden, bijvoorbeeld inzameling van bloed en swabs of longfunctie meten. Pathologisch onderzoek werden op verschillende tijdstippen na inoculatie uitgevoerd om de voortgang van de infectie 32-34 beschrijven. BALF Recovery Rate De opbrengst van de bijgebracht vloeistof was 83,05 ± 4,58% (gemiddelde ± SD). Detectie van pathogenen Opnieuw cultiveren van de ziekteverwekker kunnen worden uitgevoerd vanaf bronchiale poetsbeurten. Ook PCR screening van verschillende monsters mogelijk het pathogeen detecteren, bijvoorbeeld tissue biopsie, cytologie penseelvoorbeeld, BALF-cellen 52 of keelholte wattenstaafje. Visualisatie van het pathogeen kan door het uitvoeren van immunohistochemie van ingevroren secties van de longbiopsieën en sedimentatie preparaten van de BALF-cellen (Figuur 3). In eerdere experimenten, PCR van bloedmonsters en swabs (conjunctiva, fecale, nasale) werden uitgevoerd om karakteriseren de verspreiding en verspreiding van de ziekteverwekker 32. Markers van lokale ontsteking van longweefsel In de BALF kunnen verschillende parameters van longontsteking bestudeerd. Het totale aantal cellen en het percentage neutrofielen verhoogt gewoonlijk bij longontsteking aanwezig is. Voor celdifferentiatie, kan sedimentatie voorbereidingen van BALF-cellen worden gekleurd volgens Giemsa en gedifferentieerd door olie-immersie (figuur 4). Cellulaire en vloeibare verhoudingen van de BALF gescheiden door centrifugatie (300 xg, 20 minuten). De BALF-Supernatant bevat verschillende merkers die veranderen tijdens ontstekingsprocessen in de long en kan onder experimentele omstandigheden worden onderzocht. Voorbeelden zijn totaal eiwit en eicosanoïden 29,34. Een schematisch overzicht van de mogelijke verdere gebruik van de beschreven voorbeelden wordt getoond in figuur 5. <img alt="Figuur 1" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51557/51557fig1highres.jpg" width="500" /> Figuur 1. Schema van runderen long met enting plaatsen (geel). De nummers geven de volgorde aan waarin de inoculum toegediend in de verschillende bronchiën. R: rechts; L: links. Rechter long: 1 Lobus medius: 0,5 ml, 2 Lobus accessorius: 0,5 ml, 3 Lobus caudalis: 0,5 ml en 4 1,0 ml; Linkerlong: Lobus cranialis, <strong&gt; 5 Pars cranialis: 0,5 ml, 6 Pars caudalis: 0,5 ml, 7 Lobus caudalis: 1,5 ml, 8 Lobus cranialis, Pars caudalis: 1,0 ml. <img alt="Figuur 2" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51557/51557fig2highres.jpg" width="500" /> . Figuur 2 Schema van de runderen long met enting sites (geel) en bemonstering waarheid. Bronchoalveolaire lavage (blauw), bronchiale borstelen (groen), en long biopsie (oranje) Merk op dat alle monsters worden verkregen uit gebieden waar de ziekteverwekker werd afgezet voor. R: rechts, L: links. <img alt="Figuur 3" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51557/51557fig3highres.jpg" width="500" /> Figuur 3. A) Lung biopsie van een kalf geïnoculeerd met Chl<html> amydia psittaci 4 dagen na inoculatie (dpi), b) cellulaire sediment van BALF van een kalf geïnoculeerd met C. psittaci 9 dpi. Immunohistochemische labeling voor chlamydiae. Chlamydia inclusies (pijlen) aanwezig zijn in de long (a) en alveolaire macrofagen (b). Hematoxylin tegenkleuring. <img alt="Figuur 4" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51557/51557fig4highres.jpg" width="500" /> Figuur 4. Cellulaire sediment van BALF van een kalf geïnoculeerd met C. psittaci 9 dpi. alveolaire macrofagen (#) zijn de meest voorkomende celtype in de BALF. De hoeveelheid neutrofiele granulocyten (*) toeneemt wanneer ontstekingsprocessen aanwezig zijn. Gemodificeerde Pappenheim kleuring. es.jpg &quot;width =&quot; 600 &quot;/&gt; Figuur 5. Mogelijke methoden voor monstervoorbereiding. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51557/51557fig5highres.jpg" target="_blank">Klik hier om een grotere versie van deze afbeelding te bekijken.</a>

Dit artikel beschrijft bronchoscopic technieken in de runder-long onder experimentele omstandigheden, dat wil zeggen een bronchoscoop begeleide inenting, bronchoalveolaire lavage, bronchiale borstelen en transbronchiale long biopsie.

De Bovine Lung in het biomedisch onderzoek: visueel geleide Bronchoscopie, intrabronchiale Enten en<em&gt; In Vivo</em&gt; Sampling Technieken

There is an ongoing search for alternative animal models in research of respiratory medicine. Depending on the goal of the research, large animals as ...

Het algemene doel van het volgende experiment is het bestuderen van interacties tussen gastheer en pathogeen in een bovien model van respiratoire infectie. Dit wordt bereikt door een respiratoire infectie bij kalveren op te wekken via intrabronchiale inoculatie met het betreffende pathogeen tijdens het verloop van de ziekte. Er worden herhaaldelijk monsters van het dier genomen via bronchoalveolaire lavage.Vervolgens worden bronchiale borstelsamples en transbronchiale longbiopten verkregen om respectievelijk epitheelcellen en alveolaire of longweefselmonsters te verkrijgen. Uiteindelijk kan een pathogeen-specifieke respiratoire aandoening worden bevestigd, bijvoorbeeld door inflammatoire veranderingen in het spoelvocht, cytologie en door immunohistochemische detectie van het pathogeen. In transbronchiale longbiopten is het belangrijkste voordeel van dit model met grote dieren vergeleken met andere bestaande diermodellen en knaagdieren dat we in ons model in staat zijn om het ziekteverloop over een lange periode in hetzelfde individu te bestuderen door middel van herhaalde bemonstering.Hoewel deze methode inzicht kan geven in de interacties tussen gastheer en pathogeen in vivo, kan zij ook worden toegepast op andere systemen, zoals alternatieve pathogenen of gastheersoorten. Het in stand houden van de anesthesie en de ondersteuning bij de bemonstering zullen worden uitgevoerd door een collega, zij is een dierenarts uit ons laboratorium. Vul voor aanvang van de procedure drie spuiten met respectievelijk één, twee en vijf milliliter van het inoculum.Nadat de anesthesie is bevestigd, wordt de tong van het dier naar buiten getrokken en de nek gestrekt. Plaats vervolgens met lichte draaibewegingen een metalen speculum in de bek van het dier. Duw het speculum onder visuele controle naar voren, waarbij een zaklamp wordt gebruikt om vast te stellen wanneer de larynx zichtbaar is.Plaats vervolgens een Teflon-buisje in het werkkanaal van een endoscoop. Het buisje mag niet uit de punt van de endoscoop steken. Voer de endoscoop door het speculum in.Kleine aanpassingen aan het speculum kunnen noodzakelijk zijn om de endoscoop te positioneren. Om de larynx te passeren, gebruikt u de bronchus trache, die naar de rechterzijde van de long aftakt, om te helpen bij het uitlijnen van het beeld op de monitor. Bevestig vervolgens de spuit met vijf milliliter inoculum aan het uiteinde van de Teflon-buis.Navigeer de tube naar de vertakkingen waar het inoculum zal worden afgezet en dien de juiste hoeveelheid inoculum toe. Bevestig vervolgens de spuit met één milliliter inoculum aan de tube. Navigeer naar de bronchus traches en breng het inoculum aan in de coddle-tak.Verwijder de endoscoop en het speculum. Bevestig vervolgens de laatste spuit aan een actuator en spuit één milliliter van het inoculum in elk neusgat. Plaats het dier terug in zijn stal in buikligging om wakker te worden.De herstelstal moet klimatiseerbaar zijn. Aangezien het vermogen van het dier tot thermoregulatie onder algemene anesthesie is verminderd, dient men voor het verzamelen van klepmonsters op het gewenste bemonsteringstijdstip vijf spuiten, elk gevuld met 20 milliliters steriele isotonische zoutoplossing, op te warmen in een waterbad van 38 graden Celsius. Plaats vervolgens een spoelkatheter in het werkkanaal van het endoscoop en voeg het endoscoop in het metalen speculum in.Navigeer vervolgens verder naar de hoofdbronchus van de linkerlong totdat de wigpositie is bereikt en het endoscoop niet verder naar voren kan worden geduwd. Bevestig vervolgens achter elkaar de spuiten met de warme natriumchlorideoplossing aan de lavagekatheter voor het instilleren en direct aspireren van de vloeistof.Bewaar het bronchoalveolaire spoelvloeistof direct na terugwinning in gesiliconiseerde glazen flesen op ijs om te voorkomen dat de alveolaire macrofagen zich aan het glasoppervlak hechten. Noteer zowel de hoeveelheid ingebrachte fysiologische zoutoplossing als de hoeveelheid teruggewonnen vloeistof. Verwijder vervolgens de spoelkatheter uit het werkkanaal om epitheelcellen te verzamelen.Navigeer vervolgens met het endoscoop naar de gewenste bemonsteringslocatie. In dit experiment is dat bijvoorbeeld de bifurcatie van de trachea. Wanneer de endoscoop op positie is, bedek een bronchiale borstel met de tube en voer deze in het werkkanaal van de endoscoop in totdat de punt van de borstel op de monitor verschijnt. Duw de borstel en de plastic tube ongeveer vijf centimeter naar voren.Duw vervolgens aan de handgreep van het borsteltje om het uit de plastic buis te halen. Wanneer het borsteltje in positie is, wordt het naar de locatie genavigeerd die geborsteld moet worden. Duw en trek vervolgens voorzichtig het borsteltje heen en weer terwijl u de endoscoop bestuurt.Zorg voor contact tussen de borstel en de wand van de bronchus om de epitheelcellen af te schrapen. Stop met schrapen zodom er een bloeding optreedt. Dek de borstel vervolgens af met de koker en trek deze uit het werkkanaal.Rol de borstels, die bedekt zijn met epitheelcellen, voorzichtig over maximaal vijf objectglazen en fixeer de uitstrijkjes 10 minuten in koude methanol. Laat de objectglazen vervolgens aan de lucht drogen en bewaar ze bij -20 °C om een transbronchiale longbiopsie uit te voeren. Navigeer daarna de endoscoop naar de gewenste bemonsteringslocatie.Bijvoorbeeld, de pars Alis van de LOAs crans zoals in dit experiment; open en sluit de biopsietang een paar keer voordat u deze in het werkkanaal invoert om de juiste werking te controleren, en schuif de tang vervolgens in de collaterale tak van de bronchus trachealis tot er een lichte weerstand optreedt. Trek nu twee tot drie centimeter terug en open de tang. Schuif de tang opnieuw ongeveer twee centimeter naar voren en sluit deze vervolgens.Trek de biopsietang terug en verwijder deze uit het werkkanaal. Gebruik een naald om het weefsel voorzichtig van de biopsietang te verwijderen en bewaar het in een geschikt fixatiemedium om autolytische processen te voorkomen. Laat het kalf vervolgens herstellen in zijn stal en monitor het dier gedurende de volgende 24 uur opnieuw op pneumothorax, terwijl u voer en vers water aanbiedt.Wanneer het dier volledig bij bewustzijn is, kunnen bevroren coupes van transbronchiale longbiopten immunohistochemisch worden gekleurd. Om het geïnoculeerde pathogeen te visualiseren, let op de bruine chlamydiale inclusies in de long van dit dier dat vier dagen vóór de bemonstering is geïnoculeerd met chlamydia C. Immunohistochemische kleuring van de lavagecellen maakt de visualisatie van intracellulaire pathogenen mogelijk.Bijvoorbeeld, op deze afbeelding zijn chlamydiale inclusies te zien in alveolaire macrofagen afgenomen van een kalf. Negen dagen na intrabronchiale inoculatie met chlamydia kan CTAC worden waargenomen. Bronchoalveolaire lavagecellen kunnen worden gedifferentieerd door middel van cytologische kleuring.Alveolaire macrofagen zijn het overheersende celtype in het lavagevloeistof. Echter, het aantal neutrofiele granulocyten neemt toe wanneer er ontstekingsprocessen aanwezig zijn. Eenmaal beheerst, kan de inoculatie in 10 tot 15 minuten worden uitgevoerd en de bemonstering binnen 20 tot 30 minuten als dit correct wordt gedaan.Na het bekijken van deze video zou u een goed begrip moeten hebben van hoe u intrabronchiale inoculatie bij kalveren uitvoert, en hoe u bronchoalveolaire lavagevloeistof, bronchiale borstelsamples en transbronchiale longbiopten afneemt bij het geanestheseerde dier.

the-bovine-lung-biomedical-research-visually-guided-bronchoscopy

Research

JoVE Journal

Medicine

Geneeskunde

We beschrijven een onderzoek techniek voor fiberoptische bronchoscopie en bronchoalveolaire lavage met behulp van lage druk zuigkracht. De techniek wordt gebruikt om immuuncellen oogsten uit de longen bronchoalveolaire oppervlakken. Plaatselijke verdoving en milde sedatie (midazolam) gebruikt. Onderwerpen tolereren de procedure goed en ervaring minimale bijwerkingen.

Bronchoalveolaire Lavage (BAL) voor onderzoek; verkrijgen adequaat monster Yield

This video describes an intrabronchial approach to administer an experimental agent selectively into distal right and left lung. In the featured protocol, we will administer bleomycin intrabronchially into a mouse to obtain a better model for pulmonary fibrosis.

Intrabronchial Delivery: A Technique to Administer an Experimental Agent Selectively Into a Mouse Lung

In this video, we describe a surgical procedure to extract bronchiolar tissues from harvested pig lung. The ex vivo bronchiolar tissue could be used to develop infection models for studying chronic lung infections.

Pig Bronchiolar Tissue Extraction: A Procedure to Dissect Bronchiolar Tissue Sections From Porcine Lungs

This video demonstrates the establishment of lung infection in an immunocompetent rodent model via intubation and installation of bacterial suspensions into lung lobes. This model enables antibacterial efficacy studies in immunocompetent animals.

Intrabronchial Instillation of Streptococcus pneumoniae in Immunocompetent Rodent Models

Het gebruik van een model dat de toestand van longziekten bij mensen nabootst is kritiek voor het bestuderen van de pathofysiologie en / of etiologie van een bepaalde ziekte en ontwikkelen van therapeutische interventie. Hier een niet-invasieve intratracheaal intubatie methode die direct exogene materialen kunnen leveren aan muizenlongen wordt gepresenteerd.

Niet-invasieve Intratracheaal intubatie om te studeren de Pathologie en Fysiologie van Mouse Lung

De gezondheidsstatus van de long wordt weerspiegeld door het type en het aantal immuuncellen die aanwezig zijn in de bronchiolen van de long. We beschrijven een bronchoalveolaire lavage techniek die de isolatie en studie van niet-adherente cellen en oplosbare factoren uit het onderste luchtwegen van muizen mogelijk maakt.

Bronchoalveolaire lavage van meneuze longen om ontstekingscelinfiltratie te analyseren

Intratracheal (IT) toediening van experimentele agentia bij muizen resulteert vaak in asymmetrische afgifte aan de distale longen.  In dit rapport beschrijven we een directe intrabronchiale (IB) benadering om elke Long in levende muizen niet-operatief te cannuleren.  Deze aanpak kan worden gebruikt om agenten selectief te beheren tot één Long of kan worden aangepast om de symmetrische agent levering aan beide longen te verbeteren.

Directe Intrabronchiale toediening om de selectieve depositie van de agent binnen de muis Long te verbeteren

Hier presenteren we een protocol voor intravitale beeldvorming van een verzwakte, door BSL-2 goedgekeurde Mycobacterium tuberculosis. Spanning in de muislong met behulp van een permanent longvenster. Deze benadering maakt longitudinale, enkelcelresolutie-analyse mogelijk van vroege interacties tussen gastheer en pathogeen, waaronder bacillaire lokalisatie, vasculaire dynamiek en opname van macrofagen binnen dezelfde longmicroomgeving.

Intravitale beeldvorming van verzwakte auxotrofe mycobacterium tuberculosis in muislong tijdens vroege intravasculaire infectie

Een test batterij (IMAP) voor het uitvoeren van een grondige beoordeling van de auditieve en cognitieve vaardigheden bij te dragen aan luistervaardigheid wordt beschreven. Het is snel te beheren, kind-vriendelijke en vrij van taal verwart. Stimulus generatie en het beheer protocol worden aangestuurd via een software-platform (IHR-STAR) te repliceerbaar procedures te verzekeren.

Making Sense van het Luisteren: De IMAP-testbatterij

Ex-Vivo longperfusie (EVLP) heeft toegestaan ​​longtransplantatie bij de mens om meer direct beschikbaar doordat de mogelijkheid om organen te beoordelen en uit te breiden het donorpool geworden. We beschrijven hier de ontwikkeling van een rat EVLP programma en verfijningen die zorgen voor een reproduceerbaar model voor toekomstige uitbreiding.

WERKWIJZE Geïsoleerde<em&gt; Ex Vivo</em&gt; Longperfusie in een Rat Model: Lessen uit het ontwikkelen van een Rat EVLP Program

Leer bronchoscopische technieken voor het bestuderen van luchtweginfecties bij kalveren. Deze methoden omvatten bronchoalveolaire lavage, bronchiale borsteling en transbronchiale longbiopsie voor herhaalde bemonstering.

De Bovine Lung in het biomedisch onderzoek: visueel geleide Bronchoscopie, intrabronchiale Enten en

Meer video's verkennen