23 november 2014
Twee-foton intravital beeldvorming kan worden gebruikt om interacties tussen verschillende celtypen in het ruggenmerg in hun oorspronkelijke weefselomgeving in een botmerg chimerisch dier met een traumatische ruggenmergverplettering in de dorsale kolom te onderzoeken.
Het algemene doel van deze procedure is om beweging en interactie tussen microglia, monocyten en andere celtypen in het beschadigde ruggenmerg te observeren. Dit wordt bereikt door eerst botmerg chimerische muizen te creëren die ofwel residente microglia of botmerg-afgeleide macrofagen hebben die zijn gelabeld met een fluorescerende marker. De tweede stap is om een dorsale kolom-verpletteringsblessure in het ruggenmerg te produceren.
Vervolgens worden de dieren opnieuw geopend en wordt het ruggenmerg gestabiliseerd. Voor multi-foton beeldvorming is de laatste stap het maken van enkele afbeeldingen of time-lapse films binnen de laesie. Uiteindelijk toont beeldanalyse cellulaire beweging en cellulaire interactie met omringende substraten. De belangrijkste voordelen van deze techniek ten opzichte van traditionele technieken, zoals celcultuur en vast weefsel, is dat cellen kunnen worden afgebeeld in hun natuurlijke complexe omgeving in het levende dier.
Voor deze operatie, gebruik chimerische of dubbele transgene dieren. Zie het tekstprotocol over hoe residente of botmerg-afgeleide cellen te labelen na het induceren van anesthesie, houd het vast met één tot 2% ISO fluor voor een ademhalingssnelheid van ongeveer 60 tot 100 ademhalingen per minuut. Breng nu oogzalf aan en bevestig een chirurgische anesthesie met een teenprik.
Bereid je voor op de operatie door eerst het doelgebied van het ruggenmerg te scheren en vervolgens de huid schoon te vegen met povidonjodium en 70% alcohol scrubs, dek het dier af en maak een gat om toegang te krijgen tot de operatieplaats. Leg vervolgens de autoclaafgereedschappen neer op een steriele doek. Dit omvat een nummer vier pincet dat is vastgesteld op één millimeter tussen de tanden en markeringen op één millimeter van de uiteinden.
Nu kunt u de huid op de middenlijn openen met irisschaar, waarbij de musculatuur wordt blootgesteld. Ga verder met de operatie onder een dissectiemicroscoop. Langs de middenlijn snijdt u de rugspieren waar ze zich hechten aan de dorsale ruggenmergprocessen met als doel het ruggenmerg bloot te leggen.
Dit omvat het snijden van de trapezius en ligamenten van de latisimus dorsi. Verwijder vervolgens de rotator spieren tussen de transversale processen en het dorsale proces om de lamina van de specifieke wervel die voor verwijdering is bedoeld, te onthullen. Hier is T 10 blootgesteld.
Ga verder door de RO-jurist tips in de ruimte boven en onder het proces te steken. Til vervolgens lichtjes op om er zeker van te zijn dat de tips stevig op hun plaats zitten en niet te diep zijn. Sluit vervolgens de RO-jurist om de lamina te verwijderen.
Verwijder nu alle kleinere delen van de resterende wervel, waardoor de opening groter wordt. Gebruik een 30-gauge naald om twee gaten te prikken, één millimeter uit elkaar in de dura om een toegangspunt voor de vaste pincetten te maken. Steek vervolgens de vaste pincetten in een hoek van 90 graden door de dura, houd de markeringen op de tanden boven de dura.
Klem de pincetten nu 10 seconden dicht. Doe de tiendures twee keer meer en verwijder de pincetten. Week vervolgens een stukje absorberbare gelatine, gecomprimeerde spons, in zoutoplossing en bedek de verwondingsplaats ermee.
Sluit de spier over de gelatine spons met nummer vier, synthetische niet-nylon draad. Gebruik vervolgens vijf millimeter wondclips om de huid te bevestigen. Voltooi de procedure met een subcutane injectie van 10 microliters bupivacaïne in 490 microliters zoutoplossing voor één milligram per kilogram.
Injecteer vervolgens vijf microliters buprenorfine in de gluteus spier voor 100 microgram per kilogram. Postoperatief. Verwarm het dier en controleer het totdat het bijkomt. Om het dier voor beeldvorming opnieuw te openen, induceert u anesthesie zoals eerder en verwijdert u vervolgens de wondclips volgens de instructies van de fabrikant.
Als dat nodig is, breng dan een haarverwijderingsproduct aan op het gebied rond de incisie. Breng deze keer extra scrubs aan met povidonjodium en 70% alcohol. Open nu de huid langs de vorige incisie.
Verwijder de resterende hechtingen en open de spieren met forceps met behulp van een schaar indien nodig. Gebruik onder de dissectiemicroscoop de schaar om zakken te maken voor de ruggenmergklemmen langs de transversale processen op de wervel, één niveau boven de laminectomie en één niveau onder de laminectomie. Plaats de klemmen van de ruggenmergstabilisator rond elke wervel en draai de klemmen vast.
Pas de klemmen aan zodat het ruggenmerg parallel is aan het beeldvormingsplatform en het weefsel stabiel is. Als er een ademhalingsartefact wordt gezien, pas dan de klemmen aan om de beweging te minimaliseren. Bedek vervolgens de klemmen en paraform.
Verwijder vervolgens voorzichtig het gelfoam met behulp van forceps. Verwijder zoveel mogelijk. Verwijder ook eventueel dik littekenweefsel over de hersenvliezen dat aanwezig kan zijn.
Zodra al het gelfoam is verwijderd, bedek het ruggenmerg met zoutoplossing. Als er bloeding wordt opgemerkt, gebruik dan een gelatine spons om de bloeding te stoppen. Gebruik indien nodig cauteriseren tijdens het cauteriseren.
Zorg ervoor dat u het ruggenmerg niet aanraakt en houd het bedekt met zoutoplossing en gelfoam. Maak nu een kuiltje om de onderdompeling vloeistof te houden, verzegel de huid en weefsels met cyanoacrylaatlijm. Bouw vervolgens een kuiltje van tandheelkundig acryl tussen de twee klemmen op.
Laat de kuiltjes uitharden. Zodra ze zijn uitgehard, vult u de kuiltjes met kunstmatige CSF. Blijf bloedingen controleren tijdens deze stappen.
Optioneel kunt u op dit punt fluorescente vaatjes in de staartader injecteren. Om bloedvaten tijdens beeldvorming te markeren, gebruikt u een fluorescente DExT-streng boven 70 kilodalton quantum dots of fluorescent gelabelde lectines. Houd de muis tijdens de beeldvorming op 37 graden Celsius in een gecontroleerde omgeving. De meest kritische stappen voor een succesvolle voorbereiding zijn ervoor zorgen dat het ruggen
Deze studie maakt gebruik van tweefoton intravitale beeldvorming om de interacties tussen verschillende celtypen in het ruggenmerg binnen een levend diermodel te onderzoeken. In het bijzonder richt het zich op de dynamiek van microglia en monocyten in de context van een traumatisch ruggenmergletsel.
Deze intravitale beeldgevingsbenadering maakt real-time visualisatie van immuunceldynamiek bij traumatisch ruggenmergletsel mogelijk, wat mechanistische inzichten biedt in neuro-inflammatoire processen. Door microglia in vivo te onderscheiden van macrofagen, ondersteunt deze methode de validatie van doelwitten en het verminderen van risico's bij immunomodulerende strategieën in preklinische modellen van centrale zenuwstelselziekten. De techniek vergroot het voorspellend vertrouwen in de vroege ontdekkingsfase door cellulaire interacties vast te leggen binnen een fysiologisch relevante micro-omgeving van de laesie.
De methode past binnen het continuüm van de ontdekking van neuro-inflammatie, waarbij vroege targetvalidatie via fenotypische screening wordt ondersteund en mechanistische vervolgstudies in preklinische modellen worden mogelijk gemaakt.