2 februari 2015
We presenteren een methode voor het induceren van verhoogde intraoculaire druk (IOP), door magnetische microsferen in het rattenoog te injecteren, om glaucoom te modelleren. Dit leidt tot sterke drukverhogingen en uitgebreide neuronale dood. Dit protocol is eenvoudig uit te voeren, vereist geen herhaalde injecties en produceert stabiele langdurige IOP-verhogingen.
Het doel van deze procedure is om verhoogde intraoculaire druk bij de rat te induceren door injectie van paramagnetische microsferen in de voorste kamer van het oog. Plaats eerst een magnetische ring rond het oog van een verdoofd dier, was de magnetische microsferen, schorst ze opnieuw op in oplossing en laad ze vervolgens in een spuit. Injecteer vervolgens de magnetische microsferen in de voorste kamer van het oog.
Verwijder de magnetische ring tijdens het herstel. De procesgegevens verkregen uit histologische analyses zoals tunnelkleuring of optische zenuwkleuring kunnen de dood van retinale ganglioncellen meten die het resultaat is van verhoogde intraoculaire druk. Was de gesteriliseerde acht micron magnetische microsferenkralen drie keer in één milliliter Hank's gebufferde zoutoplossing door herhaaldelijk schorsen en centrifugeren bij 10.000 keer G gedurende vijf minuten.
Vervolgens schors opnieuw op in 0,5 milliliter HBSS voor een oplossing van 30 milligram per milliliter. Gebruik nu een rebound sonometer gekalibreerd voor gebruik in het rattenoog om vijf baseline IOP-metingen te nemen bij wakkere dieren. Na het verdoven, breng de ratten oculaire zalf aan op het niet-gerelateerde contralaterale oog om het vochtig te houden.
Breng tijdens de anesthesie 0,5%propaanhydrochloride, lokaal verdovend middel, aan op het operatieve oog. Was vervolgens dit oog met 5%povidoonjodium in water. Was na vijf minuten het povidoonjodium af en was het oog met 0,9% steriele zoutoplossing.
Houd het oog vochtig tijdens de anesthesie met regelmatige toepassing van steriele zoutoplossing. Plaats nu een steroïdale magneet rond het oog om het risico op irisletsel te minimaliseren en de verlies van kralen te beperken. Orienteer de naald tangiëntaal aan het oppervlak van het hoornvlies zo parallel mogelijk aan de iris.
Ga verder met het injecteren van 25 microliter van 30 milligram per milliliter, gammabestraalde magnetische microsferen in de voorste kamer. Laat de naald één minuut na de injectie op zijn plaats zitten om ervoor te zorgen dat de kralen zich in de IOC-hoornvinkel nestelen om de afvoer van water uit het trabeculaire netwerk te belemmeren. Werk de naald enkele seconden na de initiële nederzetting van de kralen iets schuin om enig lekken van water toe te staan en om tijdelijke stijgingen van de intraoculaire druk te minimaliseren.
Om het gebruik van de naald in afzonderlijke procedures te garanderen, spoel de naald met PBS. Vervolgens 70%ethanol, gevolgd door gedistilleerd water in dit stadium. Verwijder indien nodig de magneet en gebruik deze om kralen naar gebieden met onvolledige dekking te trekken.
Laat de magneet gedurende nog eens 10 minuten na de injectie om het oog heen liggen. Om ervoor te zorgen dat de kralen zich goed in de iridische hoornvinkel nestelen. Keer de anesthesie om met 0,25 milligram per kilogram ESOL-hydrochloride.
Dien 0,5 propaanhydrochloride toe voor analgesie en chloramfenicolzalf topisch om infectie te voorkomen. Laat de dieren herstellen op een verwarmingsmat totdat ze beweging herwinnen. Breng ze vervolgens over naar een warme box.
Gebruik het contralaterale oog als een niet-gerelateerde controle. Herhaal IOP-metingen om de twee tot drie dagen na toediening van de kralen en daarna om de twee tot drie dagen, definieer de criteria voor het opnemen van ogen in studies, inclusief de IOP die hoger is dan de contralaterale controledruk met vijf millimeter kwik, en de IOP mag niet hoger zijn dan 60 millimeter kwik. Ogen waarbij de druk binnen een week na de injectie terugkeert naar het uitgangspunt, mogen niet in de studies worden opgenomen. Het is echter mogelijk om opnieuw kralen te injecteren in ogen die geen hoge IOP ontwikkelen, indien gewenst.
Fixeer de gedissecteerde ogen en optische zenuw in 4%paraldehyde, beoordeel de schade aan retinale neuronen door tunnelkleuring en de schade aan de optische zenuw door toineblauw.Staining. In dit experiment induceerde injectie van magnetische kralen in de iridische hoornvinkel consequent een langdurige en robuuste stijging van de druk. Bovendien werd de drukstijging gedurende de gehele duur van het experiment gehandhaafd.
De gemiddelde IOP gemiddeld over de volledige lengte van het experiment voor controleogen zonder kraleninjectie was 19,7 plus minuus 0,3 millimeter kwik en 40,5 plus minuus 2,8 millimeter kwik voor ogen met kraleninjectie. Bovendien nam de piek-IOP toe van 22,8 plus minuus 0,3 millimeter kwik tot 49,9 plus minuus 2,3 millimeter kwik om te bepalen of verhoging van de IOP leidt tot de dood van retinale ganglioncellen. Tunnelkleuring werd uitgevoerd op retina's en histologie op transversale optische zenuwsecties in de retina.
We observeerden een toename van tunnelkleuring in ogen met kraleninjectie en verhoogde IOP. Het aantal apoptotische kernen steeg ongeveer 15 keer van contralaterale controle hypertensieve retina's zoals verwacht in ogen waarin magnetische kralen werden geïnjecteerd zonder druk, het aantal tunnel-positieve cellen was niet significant verschillend van die van niet geïnjecteerde controles. Verder onderzoek van de pathologie van de optische zenuw in het glaucoommodel toonde de accumulatie van odineblauw in veel van de axonen aan, wat duidt op degeneratie van deze cellulaire processen.
Deze studie presenteert een methode voor het induceren van een verhoogde intraoculaire druk (IOP) bij ratten door magnetische microsferen in de voorste oogkamer te injecteren, ter modellering van glaucoom. De procedure leidt tot significante drukverhogingen en neuronale dood, waardoor een stabiele en langdurige stijging van de IOP wordt gerealiseerd zonder dat herhaalde injecties nodig zijn.
Deze methode biedt een robuust en reproduceerbaar model voor het induceren van een aanhoudende verhoging van de intraoculaire druk bij ratten, wat mechanistische studies naar de pathofysiologie van glaucoom mogelijk maakt. Het ondersteunt de validatie van targets door de drukverhoging te koppelen aan de dood van retinale ganglioncellen en degeneratie van de oogzenuw, wat een voorspellende waarde biedt voor het screenen van neuroprotectieve therapieën. De eenvoud van het model en het langdurige effect verminderen de experimentele variabiliteit, wat cross-functionele samenwerking in discovery-pipelines vergemakkelijkt.
Het model past binnen het continuüm voor het ontdekken van behandelingen tegen glaucoom, van targetvalidatie via leadidentificatie tot preklinische werkzaamheidstesten, ondersteund door het vermogen om meetbare IOP-verhoging en daaropvolgende neurodegeneratie op te wekken.