20 september 2015
De hier gepresenteerde methode gebruikt simultane positron emissie tomografie en magnetische resonantie beeldvorming. In de cerebrale hypoxie-ischemie model, dynamische veranderingen in diffusie en glucosemetabolisme optreden tijdens en na beschadiging. De evoluerende en reproduceerbare schade in dit model vereist gelijktijdige aankoop als zinvolle multimodale beeldvorming gegevens moeten worden verworven.
Het algemene doel van deze procedure is om tegelijkertijd positie-emissietomografie en magnetische resonantiebeeldvorming gegevens te verwerven tijdens het begin van een hypoxische ischemische blessure. Dit wordt bereikt door eerst de gemeenschappelijke halsslagader eenzijdig bij een muis te binden. De tweede stap is om het dier voor te bereiden op beeldvorming en om baseline PET- en MRI-gegevens te verwerven.
De laatste stap is om beeldgegevens te verwerven tijdens en na een hypoxische uitdaging. Uiteindelijk wordt gelijktijdige PET- en MRI-verwerving gebruikt om veranderingen in waterdiffusie en in flu dexoxyglucose-opname in de laesie tijdens en na hypoxie te demonstreren. Deze methode kan inzichten bieden in dynamische veranderingen in fysiologie en biochemie tijdens een beroerte, maar kan ook worden toegepast in andere gevallen waarin het waargenomen systeem niet in een stationaire toestand verkeert, maar verandert.
Bereid een steriel chirurgisch veld voor met de hier getoonde gereedschappen, handig gepositioneerd rond het exterieur. Zet het verwarmingskussen aan en zorg ervoor dat het 37 graden Celsius bereikt. Voordat u begint met de procedure.
Verdoofd de muis met één tot 3% isof fluorine en breng een oogzalf aan op de ogen. Plaats het in de rugligging en bevestig de sedatie met de teenknijper. Breng vervolgens detory-crème aan op de onderhals en bovenborst met één tot twee wattenstaafjes.
Wacht ongeveer twee minuten en verwijder vervolgens het haar en de crème met behulp van natte gaas zodra het gebied haarvrij is. Steriliseer het incisiegebied met Betadine door het cirkelvormig van binnen naar buiten aan te brengen. Verander in steriele chirurgische handschoenen en gebruik chirurgische schaar om een incisie van een centimeter langs de middellijn van de onderhals te maken.
Scheiden zorgvuldig de buitenste huid van het omliggende fascia met chirurgische schaar. Gebruik twee MCFE sin micro iris sutureertangen. Verwijder het bindweefsel.
Ga tussen de geheugenvetkussens en scheid de rechter gemeenschappelijke halsslagader van het fascia. Zorg ervoor dat u aderen niet beschadigt of de nervus vagus verstoort. Gebruik vervolgens de pincet om de rechter gemeenschappelijke halsslagader naar buiten te brengen.
In een stabiele positie, brengt u enkele druppels zoutoplossing aan om te voorkomen dat deze uitdroogt. Leg vervolgens twee tot drie centimeter van zes aught zijdedraad onder de rechter gemeenschappelijke halsslagader en bind deze met een dubbele vierkante knoop. Herhaal vervolgens de ligatie met een tweede lengte van het draad. Herpositioneer de rechter gemeenschappelijke halsslagader en verwijder overtollig vocht uit de opening met behulp van een steriele sponsgespikaard staafje.
Sluit vervolgens de incisie met zes OTT zijdedraad en breng topisch lidocaïne aan tot zeven milligram per kilogram. Volg de specifieke richtlijnen van uw instelling voor chirurgische pijnbeheersing. Voer postoperatieve monitoring uit tijdens herstel totdat de muis klaar is voor beeldvorming.
Controleer de werking van de zuurstof- en stikstofmeters door eerst de zuurstof- en stikstofbronnen in te schakelen. Schakel vervolgens de meters in op een stroomsnelheid van één liter per minuut. Stel de zuurstofstroom in op 114,3 milligram per minuut en de stikstofstroom op 1,150 gram per minuut.
Bereid vervolgens de dierenbed op door ervoor te zorgen dat de anesthesie-, ademhalingspad- en verwarmingssystemen veilig en functioneel zijn gepositioneerd. Bevestig vervolgens fiducialmarkeringen met radiotracer aan het dierenbed binnen het gezichtsveld. U verdooft de muis met isof fluorine en verwarmt de staart voor om hem voor te bereiden op katheterinvoer.
Zodra u klaar bent, brengt u tot vijf centimeter van een PE 10 katheter aan die vooraf is gevuld met heparine-zoutoplossing. Zet de IV-lijn op de invoerplaats vast met een druppel cyanoacrylaatlijm. Breng vervolgens het dier over naar het voorbereide dierenbed.
Breng opnieuw oogzalf aan op de ogen van de muis om uitdroging te voorkomen en stabiliseer het hoofd van het dier door de bovenste snijtanden rond de tandstaaf te plaatsen en de oorbars op hun plaats te zetten. Begin met één tot 2% isof fluorine-stroom tussen 0,5 en één liter per minuut. Breng een rectale sondethermometer in en zorg ervoor dat temperatuur- en ademhalingsmetingen functioneel zijn.
Teken vervolgens ongeveer 600 microcurie van de radiotracer dosis in 200 microliter zoutoplossing in een enkele milliliter spuit en plaats deze in een spuitpomp. Verbind ongeveer drie meter heparine-PE 10 slang aan de spuit en het andere uiteinde aan de katheterlijn in de staar ader. Controleer of de positionering van de MRI-spoel en eventuele lijnen en kabels, met name de anesthesiebuis, niet verstrikt zijn.
Zorg ervoor dat het centrum van de hersenen is uitgelijnd met de centra van het MRI-spoel PET-systeem en de MRI-magneet. Schuif vervolgens voorzichtig het dierenbed naar voren in de boring van de magneet. Voer het afstemmen en matchen van de MRI-spoel uit door de afstelknoppen op de spoel te draaien om impedantie en frequentie-afstemmingen te minimaliseren.
Selecteer vervolgens een zeldzame reispilotsequentie en voer de sequentie uit vanuit het scancontrolevenster om een verkenningsbeeld te verkrijgen. Controleer de positionering van het dier en pas de positie indien nodig aan totdat de hersenen gecentreerd zijn. Stel vervolgens de shims opnieuw in op nulwaarde.
Voer nu een punt uit. Los spectroscopische scansequentie binnen de hersenen uit met behulp van een rechthoekig volume van 3,9 millimeter bij zes millimeter bij negen millimeter. Controleer de waterlijnbreedte met behulp van de macro-opdracht voor rekenlijnbreedte.
Als de volle breedte bij half maximum acceptabel is, positioneert u het snedeplan voor de diffusie-gewogen beeldvormingscan met behulp van de geometrische editor wanneer het resulterende snedeplan zoals gewenst is uitgelijnd. Kopieer dit snedep
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit artikel presenteert een methode voor de gelijktijdige acquisitie van positronemissietomografie (PET) en magnetische resonantiebeeldvorming (MRI) gegevens tijdens hypoxisch-ischemisch letsel in een muismodel. Deze benadering maakt het mogelijk om dynamische veranderingen in waterdiffusie en glucosemetabolisme tijdens en na het letsel te observeren.
Gelijktijdige PET/MRI-beeldvorming maakt real-time correlatie van metabole en structurele veranderingen in dynamische ziektemodellen mogelijk, waardoor een kritisch hiaat in preklinisch beroertenonderzoek wordt gedicht waarbij temporele misalignment mechanistische inzichten vertroebelt. Deze mogelijkheid ondersteunt targetvalidatie door vroege biochemische perturbaties te koppelen aan daaropvolgende weefselschade, wat het voorspellend vertrouwen in de timing van therapeutische interventies verbetert. De methode versterkt de translationele continuïteit door de evoluerende pathofysiologie in individuele proefpersonen vast te leggen, wat de variabiliteit vermindert die groepsgewijze analyses in modellen van vasculaire beschadiging beperkt.
De methode integreert in het ontdekkingscontinuüm door mechanistische gegevens uit de vroege fase te verschaffen die de validatie van targets en strategieën voor lead-identificatie in neurovasculair onderzoek informeren.