Name: Oprichting en karakterisering van UTI en Cauti in een muismodel (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-06-23T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 40 s
Description: Leer een betrouwbare methode voor het opzetten van urineweginfecties en katheter-geassocieerde infecties in muizen. Dit model bootst humane aandoeningen na om bacteriële pathogenese te bestuderen en nieuwe behandelingen te ontwikkelen.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Financiering voor dit werk werd geleverd door ORWH SCOR P50 DK064540, RO1 DK 051.406, RO1 AI 108749-01, F32 DK 101.171 en F32 DK 104516-01.

Ethiek statement: De Rijksuniversiteit Animal Comité Studies Washington keurden alle muis infecties en procedures in het kader van het protocol nummer 20120216, dat werd goedgekeurd 2013/01/11 en verloopt 2016/01/11. Algehele verzorging van de dieren was in overeenstemming met de gids van de Zorg en gebruik van proefdieren van de National Research Council en de USDA Animal Care Resource Guide. Euthanasie procedures zijn in overeenstemming met de &quot;AVMA richtlijnen voor de euthanasie van dieren 2013 editie.&quot; 1. UPEC UTI Protocol, Inenting Naald Voorbereiding (figuur S1) <ol><li> Verwijder de dop van de 30 G naald. Draad ongeveer 1 inch van PE10 buis op de as van de naald. UV nachts steriliseren de naaldsamenstellen. Gekatheteriseerde naalden kan onbeperkt worden opgeslagen in steriele petrischalen. </li></ol> 2. UPEC Bacteriële Inoculumbereiding <ol><li> Bereid UTI89 inoculum (start 72 uur vóór de inoculatie dag) <ol><li> Streak UTI89 op een LB (Luria-Bertani) agar plaat uit een bevroren voorraad. Incubeer overnacht bij 37 ° C. Kies een kolonie en beënt deze in 10 ml van LB in een 125 ml kolf. Incubeer bij 37 ° C gedurende 24 uur, statisch. </li><li> Inoculeer 10 pl overnachtkweek in 10 ml van LB in een nieuwe kolf van 125 ml gedurende nog 24 uur bij 37 ° C, statisch. </li><li> Transfer 3 ml (zal variëren op basis van stam en de gewenste kiemen) om steriele 1,5 ml buizen en centrifugeer bij 7000 xg gedurende 3 min en resuspendeer de pellet in 1x PBS en centrifuge een tweede keer. Resuspendeer de bacteriële pellet in 1 x PBS 1 ml. </li></ol></li><li> Meet bacteriële extinctie en concentratie op de gewenste inoculumdichtheid. De standaardconcentratie van het inoculum gebruikte 10 7 bacteriën; dit kan echter variëren afhankelijk van de opzet van de studie. </li></ol> 3. Bacteriële Inoculatie <ol><li> Reinig het werkstation met 70% ethanol en cdan met absorberend papier (of gebruik steriel stroom kap). </li><li> Trekken tot 0,9 ml van de bereide bacteriële inoculum in een 1 ml (TB) spuit (verwijder luchtbellen). Bevestig een bereide steriele inenting naald met PE10 buis, op de spuit met de entstof, dan steriel trim de polyethyleen buis. OPMERKING: Laat 1 mm buis boven de punt van de naald te beschadigen de blaas. </li><li> Snij een 1 inch vierkant stuk parafilm en zet een schar van chirurgische smeermiddel (ongeveer de grootte van een dubbeltje) bovenop. </li><li> Verdoven vrouwelijke C3H / HeN muizen door ze in een 32 ounce glazen pot met daarin een thee-ei bal met watten doorweekt met 3 ml van isofluraan of verdamper kamer (volgende produceert protocol) tot onbewuste maar toch normaal ademt (1 adem / sec) . OPMERKING: Sommige IACUC commissies niet het gebruik van een pot of verdamper te keuren. Volg de aanwijzingen van de IACUC commissie van uw instelling. LET OP: Als glazen potmet thee-ball en / of neuskegel met isofluraan-soakd katoenen ballen worden gebruikt, moeten de dieren zorgvuldig worden nageleefd om verdoving overdosis en de dood te voorkomen. Het voordeel van het gebruik van een verdamper en anesthesie kamer is dat het gecontroleerde isoflurane bestuur dat per ongeluk een overdosis voorkomt. LET OP: Isofluraan is een inhalatie verdoving. Gebruik in een goed geventileerde ruimte en het minimaliseren van inademing. </li><li> Verwijder de muis uit de pot / verdamper en plaats deze op zijn rug op een papieren handdoek en verspreid de benen. </li><li> Bedek de neus van de muis met een neuskegel (een buis aangesloten op de verdamper dat een geregelde isofluraan dosis die is uitgerust op sommige vaporizer units verschaft) of 50 ml conische buis met een watje met een kleine hoeveelheid (ongeveer 1-2 ml ) van isofluraan. </li><li> Zachtjes trillen de blaas te plassen veroorzaken en zorgen voor een nietige blaas. Veeg de periurethrale met 100% ethanol te vegen. Dep de inenting naald / spuit, punt eerst, in dechirurgische smeermiddel. </li><li> Inoculeer elke muis met 50 ul van de bacterieoplossing aan door de inoculatie naald transurethraal, ongeveer 12 mm, en drukken de zuiger voorzichtig naar inoculum in de blaas zachtjes (10 gl / sec) afgeven. Verwijder de inenting naald uit de muis. OPMERKING: Onmiddellijke terugkeer van inoculum op de urethrale opening bij het begin te enten geeft onjuiste of onvolledige inbrengen van de naald. </li><li> Verwijder de muis uit neus en terug te sturen naar zijn kooi. Herhaal stap 3,3-3,8 voor elke muis. Wanneer / als het schakelen entstof voorwaarden / stammen, gooi de spuit en inenting naald in een goedgekeurde naaldcontainer en begin opnieuw stap 3.2. OPMERKING: Inenting met uropathogene organismen het algemeen niet leiden tot ernstige pijnklachten. Echter, in zeldzame gevallen, de toediening van grote doses van pathogenen koorts, vermindering voeding en wateropname en abnormaal gedrag. EENnimal gezondheid moet worden gecontroleerd gedurende het experiment. Als openlijke pijnklachten zijn gegevens, een analgeticum zoals buprenorfine (0.05-0.1 mg / kg subcutaan), kunnen worden toegepast. De procedures moeten in overeenstemming zijn met IACUC elke instelling. </li></ol> 4. Bepaling van bacteriële lasten <ol><li> Maak afzonderlijke 5 ml buisjes per blaas en nieren pair te oogsten. 1 ml 1x PBS / tube / muis blaas toe om geoogst te worden. Voeg 0,8 ml 1x PBS / tube / paar muis nieren te worden geoogst. Label elke buis te corresponderen met een bepaalde muis. Bereid een 96-wells plaat met 180 ul 1 x PBS in elk putje van 01:10 seriële verdunningen. </li><li> Reinig de werkruimte met 70% ethanol en bestrijken het gebied met een absorberende deksel of een papieren handdoek. </li><li> Verdoven van de muis met isofluraan (zie stap 3.4) tot de muis stopt met ademen ongeveer 1 min, plaats deze dan op de absorberende deksel of een papieren handdoek. Andere methoden van euthanasia worden ook geaccepteerd door IACUC commissies, zoals kooldioxide, en kan worden vervangen isofluraan overdosis. </li><li> Offer de muis door snelle cervicale dislocatie die bestaat bevestigingssysteem voor de hals bij de basis van de kop en de staart horizontaal trekken van het lichaam totdat dislocatie optreedt. LET OP: De meeste IACUC comités vereisen een secundaire middel van euthanasie en cervicale dislocatie is een gemeenschappelijke methode. Echter, kunnen andere methoden worden gebruikt indien goedgekeurd door de IACUC commissie. </li><li> Plaats de dode muis op zijn rug en spuit 70% ethanol op de buik. Ontleden muis, verzamel de blaas en de nieren, in die volgorde om mogelijke verontreiniging van het bloed na de nieren dissectie te minimaliseren. Plaats de organen onafhankelijk in de voorbereide 5 ml buisjes met 1x PBS (zie stap 4.1). OPMERKING: Gebruik verschillende schaar voor de externe dissectie en orgaanroof op besmetting te minimaliseren. </li><li> Tik op de buis om ervoor te zorgen de organen zijn in tHij 1x PBS. Herhaal stap 4,3-4,5 voor elke muis. Schoon schaar en forceps in 70% ethanol na elke muis. </li></ol> 5. Bacteriële Recovery <ol><li> Homogeniseren geoogste blaas en nieren in de 5 ml buizen met een tissue homogenisator, 15 sec per nieren en 30 sec per blaas. Spoel homogenisator opeenvolgend in 1x PBS, 70% ethanol en 1x PBS tussen de monsters. </li><li> Maak seriële 1:10 verdunningen out tot 10 -8 en plaat elke verdunning voor CFU (kolonievormende eenheden) op LB agarplaten. Incubeer de platen bij 37 ° C overnacht en tel kolonies de volgende dag. </li></ol> 6. IBC Enumeration <ol><li> Aseptisch verwijderen van de blaas en plaats het in 1x PBS in een 6-wells plaat met een siliconen bodem. De platen kunnen worden bereid onder toepassing van een siliconenelastomeer kit overgieten ongeveer 1 cm van silicone in elk putje, zie instructies van de fabrikant. Snijd de blaas in de helft met een schaar. </li><li> Met behulp van kleine metalen pinnen voorzichtig splay het bladder zodat de blaas lumen wordt naar boven. Zorg ervoor dat de pennen plaatsen op de buitenste randen van de blaas secties om ervoor te zorgen de maximale hoeveelheid urothelium wordt blootgesteld. </li><li> Na verwijden voorzichtig wassen de blaas eenmaal met 1x PBS. Verwijder de 1x PBS door pipet. Bevestig de blaas door toevoeging van voldoende 3% paraformaldehyde om de gehele gespreid blaas dekken. LET OP: Paraformaldehyde is kankerverwekkend. Veiligheidsuitrusting, inclusief handschoenen, moeten worden gedragen ten alle tijden. Vernietiging moet institutionele richtlijnen volgen. </li><li> Incubeer bij kamertemperatuur gedurende 1 uur. Verwijder paraformaldehyde oplossing. Was eenmaal met 1x PBS. </li><li> Wassen met LacZ wasoplossing (2 mM MgCl2, 0,01% natrium deoxycholaat en 0,02% nonidet-p40in 1x PBS) driemaal gedurende 5 min per wasbeurt. </li><li> Verwijder wasoplossing en voeg voldoende LacZ kleuring (9,5 ml LacZ wasoplossing, 0,4 ml 25 mg / ml X-gal en 0,1 ml van 100 mM K-ferrocyanide / K-ferricyanide) te dekken de blazen. Incubeer bij 30 ° C overniGHT beschermd tegen licht. </li><li> Verwijder splayed blazen uit incubator en observeren IBC&#39;s, die als blauwe puncta verschijnen als gevisualiseerd met een dissectie scope, 40-60X vergroting. Opmerking: soms muis kan vóór de plaatsing van de buis onder de urinebuis urineren. In dit geval, wacht 15-20 minuten voordat u urine weer te verzamelen. </li></ol> 7. Urine Collection voor Bacteriurie CFU opsomming (Niet van toepassing voor Cauti) <ol><li> Om urine pre verzamelen of na infectie zachtjes bedwingen met de muis door het houden van de staart en het op een vlakke verhoogde oppervlak (bovenkant van de muis kooi). </li><li> Houd een steriele 1,5 ml buis onder de muis urethra. Druk licht op de achterkant van de muis bij de tail druk uit op de blaas. Vang de urine in de 1,5 ml buis. </li><li> Maak seriële 1:10 verdunningen out tot 10 -7 en plaat van elke verdunning op geschikte LB. Incubeer de platen bij 37 ° C overnacht en tel kolonies de volgende dag. </li></ol> 8. Cauti Model Protocol, Catheter Naald Voorbereiding voor Cauti Model (figuur S2) <ol><li> Verwijder de dop van de 30 G naald. Knip een 7 mm stuk PE10 buizen en 5 mm stuk silicone slangen zoals RenaSIL. Rijg de naald met PE10 buis totdat de buis raakt de basis van de naald. </li><li> Dan voeden de 5 mm stuk op de-PE10 met naald. UV nachts steriliseren de naalden assemblages. NB: Bij het laden van de siliconen slangen, laat ongeveer 1 mm van de slang tot voorbij de naald. </li></ol> 9. E. faecalis OG1RF Bacteriële Inoculumbereiding <ol><li> Bereid OG1RF inoculum vanaf 48 uur voor de inoculatie dag. Streak OG1RF op een BHI (hersenen het hart infusie) plaat uit een bevroren voorraad. </li><li> Kies een kolonie en beënt deze in 10 ml BHI en groeien statisch gedurende 18 uur bij 37 ° C. Centrifugeer de kweek en was de pellet (3 maal) in 1 ml volumes steriele 1x PBS. </li><li> Resuspendeer de bacteriële pellet in 1x PBS. Meet bacteriële optische dichtheid en de concentratie op de gewenste inoculum. De standaardconcentratie van het inoculum gebruikte 10 7; dit kan echter variëren afhankelijk van de opzet van de studie </li></ol> 10. Catheter Implantatie <ol><li> Reinig het werkstation met 70% ethanol en bestrijken het gebied met een absorberende deksel (of gebruik steriel stroom kap). </li><li> Bevestig de katheter-naald naar een lege 1 ml (TB) spuit. Snij een 1 inch vierkant stuk parafilm en zet een schar van chirurgische smeermiddel (ongeveer de grootte van een dubbeltje) bovenop. OPMERKING: Twee verschillende naalden worden gebruikt voor afzetting van de katheter en het inoculum te minimaliseren toevallige inoculatie vanwege de mechanische manipulatie nodig catheter implantatie. Dit maakt ook het gemak van het bereiden minder entnaalden. </li><li> Verdoven C57BL / 6 muizen door ze in een 32 ounce glazen pot met een kopje thee-infuser bal met watten gedrenkt in 3 ml van isofluraan of verdamper kamer (volgende produceert protocol) tot onbewuste maar toch normaal ademt (1 adem / sec). </li><li> Dan zet de muis op zijn rug op een papieren handdoek en verspreid de benen. Bedek de neus van de muis met een neus of een 50 ml conische buis met watten dat een kleine hoeveelheid (ongeveer 1-2 ml) van isofluraan. LET OP: Isofluraan is een inhalatie verdoving. Gebruik in een goed geventileerde ruimte en het minimaliseren van inhalatie door onderzoeker. </li><li> Zachtjes trillen de blaas te plassen veroorzaken en zorgen voor een nietige blaas. Veeg periurethral met een 100% ethanol vegen. </li><li> Ontsmet de periurethrale met 10% povidonjood-oplossing met behulp van een katoen-tip applicator. Dep de inenting naald / spuit, punt eerst, in de chirurgische smeermiddel. OPMERKING: Povidine jodium wordt gebruikt voor implantatie katheter, die een sterkere antisepticum dan alcohol. Catheter implantatie vereistmeer mechanische manipulatie om de catheter en dus een grotere kans op contaminatie te voegen. </li><li> Breng de katheter in de urethra opening. Eenmaal in, gebruik pincet om de (7 mm PE10) lang stuk in de richting van de blaas te duwen, dus druk op de (5 mm silicone) kleine katheter en storten het in de blaas. Verwijder de naald, met de 7 mm slang nog in bijlage, onmiddellijk. </li></ol> 11. Bacteriële Inenting <ol><li> Volg de bacteriële enting protocol in hoofdstuk 3, met behulp van de bereide inoculum uit paragraaf 9. Verwijder de muis uit de neuskegel en terug te sturen naar zijn kooi </li></ol> 12. op elk tijdstip van het Offer <ol><li> Bereid 5 ml buizen voor blaas en nier (voor organen stap volgen 4,1) en 1,5 ml Eppendorf buis catheters. Voeg 1 ml 1X PBS in 1,5 ml Eppendorf buis catheter samples </li><li> Volg de stappen 4,3-4,5. Prepareer de muis, het oogsten van de blaas, nieren en catheter, placing de weefsels onafhankelijk in 5 ml buisjes met 1x PBS en de katheter in de 1,5 ml Eppendorf (zie stap 12.1). OPMERKING: Gebruik verschillende schaar voor de externe dissectie en voor orgel oogsten en katheter ophalen om besmetting te minimaliseren </li><li> Volg dan stap 4.6. </li></ol> 13. Bacteriële Recovery <ol><li> Voor organen, volgt u de stappen 5.1 en 5.2. Voor bacteriële herstel van katheters, vortex bij maximale snelheid 30 sec, ultrasone trillingen de katheter monsters gedurende 5 min met een badsonificeerinrichting en vervolgens vortex bij maximale snelheid gedurende nog 30 sec. </li><li> Maak seriële 1:10 verdunningen out tot 10 -8 en plaat elke verdunning voor CFU opsomming op BHI platen. Incubeer de platen bij 37 ° C &#39;s nachts en tel kolonies de volgende dag. </li></ol>

De auteurs verklaren dat ze geen concurrerende financiële belangen.

Ongecompliceerde gemeenschap verworven UTI is een veel voorkomende en kostbare infectie goed voor enkele miljoenen eerstelijns gezondheidszorg bezoeken per jaar 46. Daarnaast Cautis zijn een gemeenschappelijke zorg verworven infectie die zeer kostbaar om zorgverleners als de Centra van Medicare en Medicaid Services is geworden niet meer vergoedt providers voor de extra kosten van de behandeling als gevolg van het ziekenhuis verworven Cauti 45. De muismodellen van UTI, zowel ongecompliceerde cystiti...

An erratum was issued for: <a href="https://www.jove.com/video/52892/establishment-and-characterization-of-uti-and-cauti-in-a-mouse-model">Establishment and Characterization of UTI and CAUTI in a Mouse Model</a>. The Protocol section has been updated.
The ethics statement has been updated from:
Ethics statement: The Washington University Animal Studies Committee approved all mouse infections and procedures as part of protocol number 20120216, which was approved 01/11/2013 and expires 01/11/2016. Overall care of the animals was consistent with The guide for the Care and Use of Laboratory Animals from the National Research Council and the USDA Animal Care Resource Guide. Euthanasia procedures are consistent with the &#8220;AVMA guidelines for the Euthanasia of Animals 2013 edition.&#8221;
to:
Ethics statement: The Washington University Animal Studies Committee approved all mouse infections and procedures as part of protocol number 20150226, which expires 12/10/2018. Overall care of the animals was consistent with The Guide for the Care and Use of Laboratory Animals from the National Research Council and the USDA Animal Care Resource Guide. Euthanasia procedures are consistent with the &#8220;AVMA guidelines for the Euthanasia of Animals 2013 edition.&#8221;
Step 3 has been updated from:
3. Bacterial Inoculation
<ol>
	<li>Clean the workstation with 70% ethanol and cover area with absorbent paper (or use sterile flow hood).</li>
	<li>Draw up to 0.9 ml of the prepared bacterial inoculum into a 1 ml (TB) syringe (remove air bubbles). Attach a prepared sterile inoculation needle with PE10 tubing, onto the syringe containing the inoculum, then sterilely trim the polyethylene tubing. 
	NOTE: Leave 1 mm of tubing above the tip of the needle to avoid puncturing the bladder.</li>
	<li>Cut a 1 inch square piece of parafilm and put a dab of surgical lubricant (approximately the size of a dime) on top.</li>
	<li>Anesthetize female C3H/HeN mice by putting them in a 32 ounce glass jar containing a tea-infuser ball with cotton balls soaked with 3 ml of isoflurane or vaporizer chamber (following manufactures protocol) until unconscious but still breathing normally (1 breath/sec). 
	NOTE: Some IACUC committees do not approve the use of a jar or vaporizer. Please follow the indication of the IACUC committee of your institution. 
	NOTE: If glass jar with tea-ball and/or nose cone with isoflurane-soakd cotton balls are used, the animal must be carefully observed to avoid anesthetic overdose and death. The advantage of using a vaporizer and anesthesia chamber is that it provides controlled isoflurane administration that avoids accidental overdoses. CAUTION: Isoflurane is an inhalation anesthetic. Use in a well-ventilated area and minimize inhalation.</li>
	<li>Remove the mouse from the jar/vaporizer and place it on its back on a paper towel and spread the legs.</li>
	<li>Cover the nose of the mouse with a nose cone (a tube connected to the vaporizer that provides a controlled isoflurance dose that comes equipped on some vaporizer units) or 50 ml conical tube with a cotton ball containing a small amount (approximately 1-2 ml) of isoflurane.</li>
	<li>Gently palpitate the bladder to induce urination and ensure a voided bladder. Wipe the periurethral area with 100% ethanol wipe. Dab the inoculation needle/syringe, point first, into the surgical lubricant.</li>
	<li>Inoculate each mouse with 50 &#181;l of the bacteria solution by inserting the inoculation needle transurethrally, approximately 12 mm, and pressing down on the syringe plunger gently to dispense the inoculum into the bladder gently (10 &#181;l/sec). Remove the inoculation needle from the mouse. 
	NOTE: Immediate return of inoculum at the urethral opening when beginning to inoculate indicates improper or incomplete insertion of the needle.</li>
	<li>Remove the mouse from nose cone and return it to its cage. Repeat steps 3.3-3.8 for each mouse. When/if switching inoculum conditions/strains, dispose of the syringe and inoculation needle in an approved sharps container and start again step 3.2.&#160;&#160; 
	NOTE: Inoculation with uropathogenic organisms generally does not cause severe pain symptoms. However, in rare instances, administering large doses of pathogens may cause fever, reduction in food and water intake and abnormal behavior. Animal health should be monitored throughout the experiment. If overt pain symptoms are notice, an analgesic, such as Buprenorphine (0.05&#8722;0.1 mg/kg given subcutaneously), can be applied. Procedures should be in accordance with each institution&#8217;s IACUC.</li>
</ol>
to:
3. Bacterial Inoculation
<ol>
	<li>Clean the workstation with 70% ethanol and cover area with absorbent paper (or use sterile flow hood).</li>
	<li>Draw up to 0.9 ml of the prepared bacterial inoculum into a 1 ml (TB) syringe (remove air bubbles). Attach a prepared sterile inoculation needle with PE10 tubing, onto the syringe containing the inoculum, then sterilely trim the polyethylene tubing. 
	NOTE: Leave 1 mm of tubing above the tip of the needle to avoid puncturing the bladder.</li>
	<li>Cut a 1 inch square piece of parafilm and put a dab of surgical lubricant (approximately the size of a dime) on top.</li>
	<li>Anesthetize female C3H/HeN mice by putting them in a vaporizer chamber (following manufactures protocol) until unconscious but still breathing normally (1 breath/sec). 
	NOTE: Some IACUC committees do not approve the use of a vaporizer. Please follow the indication of the IACUC committee of your institution. 
	CAUTION: Isoflurane is an inhalation anesthetic. Use in a well-ventilated area and minimize inhalation.</li>
	<li>Remove the mouse from the vaporizer and place it on its back on a paper towel and spread the legs.</li>
	<li>Cover the nose of the mouse with a nose cone (a tube connected to the vaporizer that provides a controlled isoflurance dose that comes equipped on some vaporizer units) to maintain anesthetization.</li>
	<li>Gently palpitate the bladder to induce urination and ensure a voided bladder. Wipe the periurethral area with 100% ethanol wipe. Dab the inoculation needle/syringe, point first, into the surgical lubricant.</li>
	<li>Inoculate each mouse with 50 &#181;l of the bacteria solution by inserting the inoculation needle transurethrally, approximately 12 mm, and pressing down on the syringe plunger gently to dispense the inoculum into the bladder gently (10 &#181;l/sec). Remove the inoculation needle from the mouse. 
	NOTE: Immediate return of inoculum at the urethral opening when beginning to inoculate indicates improper or incomplete insertion of the needle.</li>
	<li>Remove the mouse from nose cone and return it to its cage. Repeat steps 3.3-3.8 for each mouse. When/if switching inoculum conditions/strains, dispose of the syringe and inoculation needle in an approved sharps container and start again step 3.2.&#160;&#160; 
	NOTE: Inoculation with uropathogenic organisms generally does not cause severe pain symptoms. However, in rare instances, administering large doses of pathogens may cause fever, reduction in food and water intake and abnormal behavior. Animal health should be monitored throughout the experiment. If overt pain symptoms are notice, an analgesic, such as Buprenorphine (0.05&#8722;0.1 mg/kg given subcutaneously), can be applied. Procedures should be in accordance with each institution&#8217;s IACUC.</li>
</ol>

An erratum was issued for: <a href="https://www.jove.com/video/52892/establishment-and-characterization-of-uti-and-cauti-in-a-mouse-model">Establishment and Characterization of UTI and CAUTI in a Mouse Model</a>. The Protocol section has been updated.

Erratum: Establishment and Characterization of UTI and CAUTI in a Mouse Model

Urineweginfecties (UWI) zijn één van de meest voorkomende bacteriële infecties en kan worden onderverdeeld in twee categorieën op basis van het mechanisme van de overname, de gemeenschap en nosocomiale verworven UTI. Gemeenschap verworven UTIs vaak voor bij gezonde vrouwen en studies hebben aangetoond dat ongeveer 50% van de vrouwen minstens één UTI in hun leven 1. Bovendien herhaling is een groot probleem. Een vrouw die een eerste acute infectie heeft, heeft een 25-40% kans op een tweede infectie binnen zes maanden, ondanks de juiste behandeling met antibiotica en veel vrouwen blijven frequente recidieven 2 hebben. De bacteriën die deze infecties worden steeds antibioticaresistente verdere verstorende behandelingsprotocollen 3-6. UTI invloed miljoenen mensen per jaar kost ongeveer 2,5 miljard dollar in de gezondheidszorg gerelateerde kosten in de VS, het benadrukken van de impact en de prevalentie van de ziekte1,7 .Nosocomial verworven urineweginfecties zijn vooral geassocieerd met de aanwezigheid van buitenlandse instanties, zoals inwonende katheters. Katheter geassocieerde urineweginfecties (Cauti) blijven de meest voorkomende nosocomiale UTI verworven, goed voor ~ 70-80% van dergelijke infecties 8. Bovendien Cauti is geassocieerd met verhoogde morbiditeit en mortaliteit en het is de meest voorkomende oorzaak van secundaire infecties bloedbaan 9. UPEC geassocieerd gemeenschap verworven urineweginfecties zijn gedacht te worden veroorzaakt door de introductie van bacteriën in de blaas van reservoirs in het maagdarmkanaal via mechanische manipulatie tijdens de geslachtsgemeenschap, slechte hygiëne of andere microbiële populatiedynamiek tussen verschillende gastheer niches 10. Eenmaal in de blaas, UPEC gebruik talrijke virulentiefactoren, zoals capsule, iron acquisition systems, toxinen, een virulentie plasmide, tRNAs, pathogeniteit eilanden en kolonisatie factoren waarvan is aangetoond een rol te spelen in de pathogenese &lt;sup&gt; 11-14. Van cruciaal belang voor de oprichting van UPEC kolonisatie, UPEC ook coderen meerdere soorten lijm chaperone Usher pathway (CUP) pili dat receptoren met stereo- specificiteit 15 herkennen. Type 1 pili, gaven de adhesine FimH, worden uitgedrukt door UPEC en binden gemannosyleerd uroplakins 16 en α-1, β-3 integrines 17, die zijn uitgedrukt op het luminale oppervlak van zowel mens en muis blazen 18. Deze FimH-gemedieerde interacties bevorderen bacteriële kolonisatie en invasie van de oppervlakkige epitheelcellen 19,20. Eenmaal in de cel kan UPEC ontsnappen in het cytoplasma, waar een bacterie snel kan verdelen om een intracellulaire bacteriële gemeenschappen (IBC), die bij rijping kan 10 4 bacteriën bevatten 21 ~ vormen. IBC formatie is aangetoond in ten minste zes verschillende muizenstammen, C3H / HeN, C3H / HeJ, C57BL / 6, CBA, FVB / NJ en BALB / c, en met een groot aantal verschillende UPEC stammen en andere Enterobacteriaceae 22-24. Maar in tijd en ruimte verschillen IBC vorming kan variëren afhankelijk van de muis achtergrond en de infecterende UPEC-stam. In C3H / HeN muizen geïnfecteerd met de prototypische UPEC stammen UTI89 of CFT073, IBC formatie kan worden gevisualiseerd als kleine biomassa bacteriën zo vroeg als 3 hpi (uur na infectie). Deze gemeenschap blijft groeien en bereikt een &quot;middelpunt&quot; van het complex op ongeveer 6 HPI wanneer de staafvormige bacterie nemen een groot percentage van de cytoplasmatische ruimte van terminaal gedifferentieerde cellen oppervlakkige paraplu Deze vroege IBC vorm relatief synchrone wijze met de meeste vergelijkbare afmetingen tonen en morfologie. ~ 8 hpi de bacteriën in de IBC overgang van een bacillen morfologie kokken. IBC&#39;s zijn van voorbijgaande aard. Aldus IBC rijping 12-18 HPI resultaten in verdere expansie van de bacteriële populatie, gevolgd door hun filamentatie en dispersie uit de cel with daaropvolgende verspreiding naar naburige cellen 23. Zo is de IBC niche zorgt voor een snelle bacteriegroei in een omgeving beschermd tegen gastheer immuunreacties en antibiotica 25. De verschillende stadia van UPEC infectie die wordt waargenomen bij muizen zijn ook waargenomen bij mensen, zoals IBC en filamentatie, ondersteunen het muizenmodel van UTI als een voordelig instrument dat kan worden gemodelleerd UTI bij mensen 22,26-28. Terwijl een meerderheid van de vrouwen ervaren een UTI in hun leven, kan de uitkomst van deze infecties variëren van acute zelfbeperkende infectie met geen recidief, frequent terugkerende blaasontsteking. Verder hebben studies aangetoond een sterk familiair voorkomen van UTI, hetgeen duidt op een genetische component bijdraagt ​​aan UTI gevoeligheid 29. We hebben ontdekt dat de verschillende UTI uitkomsten gezien in klinieken kan worden weerspiegeld door de verschillende uitkomsten van experimentele UPEC infectie onder inteelt muizenstammen 30. Bijvoorbeeld, C3H / HeN, CBA, DBA, en C3H / HeOuJ muizen gevoelig, in een infectueuze dosis-afhankelijke manier, om langdurige, chronische cystitis gekenmerkt door aanhoudende, hoge titer bacteriën (&gt; 10 4 kolonievormende eenheden (CFU) / ml), hoge titer bacteriële blaas lasten op offer&gt; 4 weken na infectie (WPI), chronische ontsteking, en urotheliale necrose. Deze muizen ook worden weergegeven verhoogde serumniveaus van IL-6, G-CSF, KC en IL-5 in de eerste 24 HPI die dienen als biomarkers voor de ontwikkeling van chronische cystitis. Dit kan goed mogelijk de natuurlijke loop van UTI vertegenwoordigen bij sommige vrouwen, placebo studies hebben aangetoond dat een groot percentage van de vrouwen die UTI zal hoge bacteriën in hun urine handhaven gedurende enkele weken na de eerste symptomen van blaasontsteking indien niet gegeven antibiotica 31 , 32. Verder gebruik C3H / HeN muizen, vonden we dat een geschiedenis van chronische cystitis is een belangrijke risicofactor voor de volgende ernstige terugkerende infecties. Terugkerende UTI is de meest significant klinische manifestatie van UTI en de C3H / HeN muis is momenteel de enige bestudeerde model dat een verhoogde aanleg na eerdere blootstelling recapituleert. Een tweede UTI uitkomst wordt gerecapituleerd in C57BL / 6 muizen, waar acute UPEC infectie zelfbeperkend, met een resolutie van de blaas ontsteking en bacteriurie binnen ongeveer een week. Interessant is dat in dit model, UPEC vormen gemakkelijk rustende intracellulaire reservoirs binnen de blaas weefsel waarvan UPEC in staat zijn die uit een slapende toestand naar een actieve UTI hervatten, eventueel verklaren één mechanisme voor dezelfde stam terugkerende UTI bij mensen 33, 34. Naast de genetische invloeden op UTI gevoeligheid, invoering van een katheter in de blaas verhoogt de kans op een infectie en verhoogt het bereik van bacteriën in staat om een ​​infectie te veroorzaken. Er is aangetoond dat menselijke Blaaskatheterisatie veroorzaakt histologische enimmunologische veranderingen in de blaas door mechanische stress die resulteert in een sterke ontstekingsreactie, afschilfering, oedeem van de lamina propria en submucusa, urotheel dunner en mucosale laesie van het urotheel en nieren 35,36. Bovendien, de katheter een oppervlaktebescherming voor bacteriële hechting zo een omgeving gebruiken Verscheidene soorten Cauti veroorzaken creëren. Terwijl UPEC zijn nog steeds een belangrijke bijdrage, Enterococcus faecalis is goed voor 15% van deze Cauti 37. E. faecalis wordt steeds meer resistent tegen antibiotica met vancomycine weerstand ontstaan, die een ernstig gezondheidsprobleem zorg 38. E. faecalis bezitten vele virulentiefactoren zoals toxinen en adhesinen nodig zijn voor bevestiging aan zowel de katheter en epithelium 38. Tijdens Blaaskatheterisatie is de gastheer gevoelig voor microbiële hechting, vermenigvuldigen en verspreiden in de urinewegen 39,40. E. faecalis vormen een biofilm op de katheter als onderdeel van een mechanisme te volharden in de blaas en verspreidt onder de nieren, is weergegeven in een muis 41 model Cauti. Recentelijk is aangetoond tijdens Blaaskatheterisatie wordt fibrinogeen (Fg) vrij in de blaas als onderdeel van de ontstekingsreactie. Fg accumuleert in de blaas, bedekt de catheter en is essentieel voor E. faecalis biofilm vorming, functioneren als een bijlage schavot. In een C57BL / 6 muis-model van Cauti, dat ontdekten we E. faecalis biofilm vorming op de katheter, en derhalve persistentie in de blaas, afhankelijk was van de Ebp pilus specifiek zijn punt adhesine EbpA. We vonden dat het N-terminale domein van EbpA specifiek bindt aan FG bekleden van de katheter. Bovendien werd gevonden dat E. faecalis gebruikt Fg als metaboliet bron tijdens infectie, waardoor het verbeteren biofilmvorming 42. Muismodellen hebben kritische bewezen understanding en voorspellen van klinische manifestaties van UTI en Cauti 41. In dit artikel tonen we inoculum voorbereiding van de blaasontsteking UPEC isoleren UTI89 en transurethrale inoculatie van C3H / HeN muizen. Verder tonen we een protocol voor catheter inbrengen in C57BL / 6 muizen en inoculatie van de E. faecalis OG1RF stam. Beide technieken leiden tot consistente en betrouwbare UTI of Cauti bij muizen. We geven ook de technieken die worden gebruikt om de vorming van IBC observeren tijdens acute blaasontsteking en urine verzamelen voor de analyse van chronische of recidiverende blaasontsteking. C3H / HeN-muizen werden gebruikt om aspecten van UPEC pathogenese waaronder initiële bacteriële invasie, IBC vorming filamentatie en de ontwikkeling van chronische blaasontsteking 23,33,43 bestuderen. Deze virulentie parameters zijn ook onderzocht bij een verscheidenheid van andere muizen achtergronden 22,33. Voor Cauti, de C57BL / 6-model zorgt voor een vreemd lichaam implantatie in de blaas met daaropvolgende bacteriële colonization, die kan worden gehandhaafd gedurende 7 dagen na infectie 41. Deze modellen zijn nuttig voor de beoordeling van bacteriële virulentie mechanismen, gastheer reacties op UTI en mechanismen om gastheer reacties, waarvan een groot deel is vervolgens recapituleerde of waargenomen in klinische menselijke bevolking ondermijnen geweest.

<table><tbody><tr><td>Materiaal voor katheter en naaldvoorbereiding:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>30 G naalden</td><td>BD Precision Glide</td><td>305106</td><td>30 G x &frac12; (0.3 mm x 13 mm)</td></tr><tr><td>PE10 polyethyleen buisjes</td><td>BD</td><td>427400</td><td>Binnendiameter -0.011 in (0.28 mm); buitendiameter &ndash; 0.024 in (0.61 mm)</td></tr><tr><td>RenaSIL 025 platina genezen siliconen buisjes</td><td>Braintree Scientific, Inc</td><td>SIL 025</td><td>binnendiameter-0.012 x buitendiameter 0.025, 25 ft spoel</td></tr><tr><td colspan="4">Materiaal voor infecties:</td></tr><tr><td>Isoflourane &ndash; Isothesia</td><td>Butler Schein</td><td>29405</td><td>250 ml</td></tr><tr><td>Rechtzijdige glazen pot</td><td>Kimble Chase</td><td>5413289V 21</td><td></td></tr><tr><td>Roestvrijstalen thee-infuus</td><td>Schefs-Amazon</td><td></td><td>Premium Losse Blad Thee Infuus Door Schefs - Roestvrij Staal - Grote Capaciteit -</td></tr><tr><td>Niet-steriele katoenen bolletjes</td><td>Fisherbrand</td><td>22-456-880</td><td></td></tr><tr><td>50 ml Falcon buisjes</td><td>VWR</td><td>89039-660</td><td></td></tr><tr><td>Isotec 3 -verdamper</td><td>Ohmeda</td><td>1224478</td><td></td></tr><tr><td>Oor perforator</td><td>Fisher Scientific</td><td>13-812-201</td><td>(indien nodig)</td></tr><tr><td>Betadine oplossing</td><td>Betadine oplossing</td><td></td><td>10% Povidie-jodium topic oplossing</td></tr><tr><td>Q-tips</td><td>Fisher Scientific</td><td>22-037-924</td><td>6 inches</td></tr><tr><td>Luipaarden voor werkbank</td><td>Fisherbrand</td><td>14206 63</td><td>Absorbeerbare Onderlagen (20&rdquo;X36&rdquo;matten)</td></tr><tr><td>Chirurgische smering</td><td>Surgilube</td><td>0281-0205-36</td><td></td></tr><tr><td>Dissectie schaar</td><td>Fine Science tools, INC</td><td>14084-08</td><td></td></tr><tr><td>Micro-Adson Forceps</td><td>Fine Science tools, INC</td><td>11018-12</td><td></td></tr><tr><td>1 ml spuit</td><td>BD</td><td>309659</td><td>Tuberculin slip tip</td></tr><tr><td>Parafilm</td><td>Bemis</td><td>PM996</td><td>4 inches x 125 FT</td></tr><tr><td>Eppendorf rek</td><td>Fisherbrand</td><td>05-541-1</td><td></td></tr><tr><td>Eppendorf buisjes</td><td>MIDSCI</td><td>AVX-T-17-C</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Harvesting katheters, blaasjes en nieren:</td></tr><tr><td>Homogenisator</td><td>PRO Scientific INC</td><td>Bio-Gen Pro 200</td><td></td></tr><tr><td>5 ml polypropyleen ronde bodem buisje</td><td>BD</td><td>352063</td><td>voor orgaan homogenisatie</td></tr><tr><td>Papier handdoek</td><td>Georgia-Pacific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ethanol</td><td>Pharmco-AAPER</td><td>11100020S</td><td>200 proof</td></tr><tr><td>Costar&trade; Clear Polystyrene 96-Well Plates</td><td>Corning</td><td>3788</td><td></td></tr><tr><td>1x Fosfaat natriumzoute oplossing</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P3813</td><td></td></tr><tr><td>BRANSONIC Ultrasoon reiniger 1210</td><td>Branson Ultrasonics Corporation</td><td>1210</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">IBC materialen:</td></tr><tr><td>6-wel tissue culture test plaat</td><td>Techno Plastic Products</td><td>92006</td><td></td></tr><tr><td>Pinnen</td><td>Fine Science Tools</td><td>26002-20</td><td></td></tr><tr><td>Sylgard 184</td><td>Dow Corning</td><td>3097358-1004</td><td>Silicone Elastomer Kit</td></tr><tr><td>X-gal (5-bromo-4-chloro-3-indolyl-b-D-galactoside)</td><td>Invitrogen</td><td>15520-034</td><td>Ultrapure</td></tr><tr><td>N, N-Dimethylformamide</td><td>Sigma Aldrich</td><td>D4551</td><td></td></tr><tr><td>MgCl2 (Magnesium chloride)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>M8266</td><td></td></tr><tr><td>Sodium deoxycholate</td><td>Sigma Aldrich</td><td>D6750</td><td></td></tr><tr><td>Nonidet-P40</td><td>Roche</td><td>11754599001</td><td>Octylfenolpoly(ethyleenglycolether)n</td></tr><tr><td>Kalium hexacyanoferrate(II) trihydraat (K-ferrOcyanidee)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P3289</td><td></td></tr><tr><td>Kalium hexacyanoferrate(III) (K-ferrIcyanide)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>60299</td><td></td></tr></tbody></table>

oprichting en karakterisering van uti en cauti in een muismodel

Establishment and Characterization of UTI and CAUTI in a Mouse Model

Urineweginfecties (UTI) een hoge prevalentie, een belangrijke oorzaak van morbiditeit en steeds resistent zijn tegen behandeling met antibiotica. Vrouwtjes worden onevenredig getroffen door UTI: 50% van alle vrouwen zal een UTI in hun leven hebben. Bovendien, 20-40% van de vrouwen die een eerste UTI zal een herhaling met enkele lijden frequente recidieven met een ernstige verslechtering van de kwaliteit van leven, pijn en ongemak, verstoring van de dagelijkse activiteiten te lijden, toegenomen kosten van de gezondheidszorg, en weinig behandelingsopties andere dan op lange termijn antibiotica profylaxe. Uropathogene Escherichia coli (UPEC) is de belangrijkste verwekker van de gemeenschap verworven UTI. Katheter geassocieerd UTI (Cauti) is de meest voorkomende ziekenhuis verworven infectie goed voor een miljoen exemplaren in de VS jaarlijks en dramatische kosten van de gezondheidszorg. Terwijl UPEC is de primaire oorzaak van Cauti andere veroorzakers zijn van toegenomen belang zoals Enterococcusfaecalis. Hier gebruiken we twee gevestigde muismodellen dat veel van de klinische karakteristieken van deze menselijke ziekten recapituleren. Voor UTI, een C3H / HeN model recapituleert veel van de functies van UPEC virulentie waargenomen bij de mens, waaronder gastheer reacties, IBC vorming en filamentatie. Voor Cauti een model gebruikt C57BL / 6 muizen, die catheter blaas implantaten behouden, is gevoelig te zijn E. faecalis blaasontsteking. Deze representatieve modellen worden gebruikt om opvallende nieuwe inzichten in de pathogenese van de ziekte UTI, wat leidt tot de ontwikkeling van nieuwe therapeutische en beheer of preventiestrategieën.

De intravesicale modellen van ongecompliceerde en katheter geassocieerd UTI bieden flexibele platforms voor het ophelderen van de moleculaire mechanismen van bacteriële pathogenese, de impact van deze ziekten op host weefsel, en de ontwikkeling en het testen van nieuwe benaderingen van deze gemeenschappelijke en kostbare infecties te beheren. Afhankelijk van de muizenstam en ziekteverwekker, kunnen intravesicale inoculatie worden gebruikt om gastheer-pathogeen interacties te bestuderen factoren voor het initiëren of mod...

De mogelijkheid om urineweginfecties (UTI) te modelleren is cruciaal om bacteriële pathogenese te begrijpen en de ontwikkeling van nieuwe therapeutische methoden te stimuleren. Het doel van dit werk is om muismodellen van experimentele UTI en katheter-geassocieerde UTI te demonstreren die bevindingen naspelen en voorspellen die bij mensen worden gezien.

Oprichting en karakterisering van UTI en Cauti in een muismodel

Urinary tract infections (UTI) are highly prevalent, a significant cause of morbidity and are increasingly resistant to treatment with antibiotics. ...

Het algemene doel van deze procedure is het presenteren van een betrouwbare methode voor het induceren van urineweginfecties of UTI's en katheter-geassocieerde UTI's, of caUTI's in een muismodel, en het beoordelen van deze infecties. Dit wordt bereikt door eerst de bacteriële inocula, de katheter en de naald correct voor te bereiden. Vervolgens wordt de urineweg van de muis intravesicaal geïnoculeerd en wordt er een katheter geplaatst.Vervolgens worden de weefsels van de urinewegen en de katheters geoogst om de infectie te evalueren. Ten slotte wordt de infectie gekwantificeerd door de bacteriële last in het weefsel, de urine en op de katheter te bepalen, en/of door de vorming van intracellulaire bacteriële gemeenschappen (IBC) vast te stellen. Uiteindelijk worden CFU-tellingen en latexkleuringen gebruikt om de vestiging, persistentie en ernst van de kolonisatie van de urinewegen binnen een muismodel aan te tonen.Het belangrijkste voordeel van deze techniek is de ontwikkeling van een betrouwbaar model om menselijke urineweginfecties (UTI's) na te bootsen, om zo cruciale stappen in de pathogenese van TI te ontrafelen. Dit model heeft bijgedragen aan de ontwikkeling van nieuwe behand

establishment-and-characterization-of-uti-and-cauti-in-a-mouse-model

Research

JoVE Journal

Medicine

Geneeskunde

Deze video zal aantonen methoden om transurethrally veroorzaken muis infecties van de urinewegen en kwantificeren van de omvang van de resulterende infecties.

Transurethrale Inductie van Mouse urineweginfectie

Source: Luyts, N., et al. Longitudinal Follow-Up of Urinary Tract Infections and Their Treatment in Mice using Bioluminescence Imaging. J. Vis. Exp. (2021).This video demonstrates the induction and tracking of urinary tract infection in a mouse model using bioluminescent E. coli injected into the bladder, where bacterial adhesion, invasion, and intracellular replication occur. The emitted light from the bioluminescent operon serves as a real-time marker of bacterial load during infection...

Visualization of Urinary Tract Infection in a Mouse Model Using Bioluminescence

Source: Conover, M. S., et al., J. Establishment and Characterization of UTI and CAUTI in a Mouse Model. J. Vis. Exp. (2015)This video demonstrates the procedure for assembling and implanting a transurethral catheter in a female mouse, followed by bacterial inoculation to establish catheter-associated urinary tract infection and investigate biofilm-mediated host-pathogen interactions.

Catheter-Associated Urinary Tract Infection in a Mouse Model

This video describes the procedure to generate an experimental xenograft murine model, which can be used for studying urothelial cell carcinoma progression.

Patient-derived Tumor Xenografting: A Technique to Generate Experimental Mouse Model for Evaluating Urothelial Cell Carcinoma

In this video, we describe the technique for the intravesical administration of uropathogenic bacteria to generate a urinary tract infection model in mice. This model can be used to understand the spread of uropathogenic bacterial infection within the urinary system and the mechanisms that determine UTI susceptibility.

Generating Urinary Tract Infection Model: A Technique to Administer Uropathogenic Bacteria in Mouse to Develop Urinary Tract Infection Model

This video demonstrates the establishment of uropathogenic Escherichia coli infection in a female mouse bladder through transurethral catheter instillation. The injected bacteria successfully establish a urinary tract infection within the bladder, providing a valuable platform for studying healthcare-associated diseases related to the urinary tract.

Transurethral Catheterization and Bacterial Inoculation to Generate a Urinary Tract Infection Model in Male Mice

Establishment of a Urinary Tract Infection Model in Female Mice

Infectie van de prostaat kan een bijdragende factor in het bemiddelen bekken pijn bij chronische prostatitis zijn. We beschrijven de procedure voor het bereiden van gestandaardiseerde bacterieel inoculum, instillatie van bacteriën in de urethra van mannelijke muizen en methode voor het meten tactiele allodynie bij muizen in de tijd.

Meting van Tactiele allodynie in een muizenmodel van bacteriële prostatitis

De gevestigde model van transuretrale catheterisatie van muizen kan de studie blaas aandoeningen, met inbegrip van infectie van de urinewegen, maar kan alleen worden uitgevoerd bij vrouwtjes. Een nieuw model van mannelijke transuretrale instillation, gepresenteerde, kan onderzoek op een gebied dat gekenmerkt door sterke klinische en epizoötiologische verschillen tussen de geslachten.

Urineweginfectie in een kleine diermodel: transuretrale catheterisatie van mannelijke en vrouwelijke muizen

Een muismodel van uropathogene E. coli (UPEC) transurethrale inenting om latente intracellulaire blaasreservoirs en daaropvolgende blaasblootstelling aan G. vaginalis vast te stellen om terugkerende UPEC-UTI te induceren, wordt aangetoond. Ook aangetoond zijn de opsomming van bacteriën, urinecytologie en in situ blaasfixatie en -verwerking voor scanningelektronenmicroscopie.

Terugkerende Escherichia coli urineweginfectie veroorzaakt door Gardnerella vaginalis blaasblootstelling bij muizen

Dit manuscript beschrijft de intravesicale toediening van uropathogene bacteriën met een lux operon om een urineweginfectie bij muizen te induceren en de daaropvolgende longitudinale in vivo analyse van de bacteriële belasting met behulp van bioluminescentie beeldvorming.

Longitudinale follow-up van urineweginfecties en hun behandeling bij muizen met behulp van bioluminescentiebeeldvorming

Leer een betrouwbare methode voor het opzetten van urineweginfecties en katheter-geassocieerde infecties in muizen. Dit model bootst humane aandoeningen na om bacteriële pathogenese te bestuderen en nieuwe behandelingen te ontwikkelen.

Oprichting en karakterisering van UTI en Cauti in een muismodel

Meer video's verkennen