Name: Een methode om Closed Head Traumatic Brain Injury Inflict in Drosophila (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-06-30T14:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 22 s
Description: Leer een methode om traumatisch hersenletsel te veroorzaken bij Drosophila met een HIIT-apparaat. Dit model helpt onderzoekers om cellulair en moleculair onderzoek naar TBI-pathologieën uit te voeren.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Dit werk werd ondersteund door de National Institutes of Health subsidie, R01 AG033620 (BG) en door Robert Draper Technology Innovation Funding (DAW).

1. De bouw van de HIT Device <ol><li> Bevestig de veer aan de raad met twee klemmen en vier schroeven (Figuur 1A). Centreer de klemmen ten opzichte van de breedte van de raad van bestuur en stoten ze tegen elkaar met de buitenste klem gelijk met de rand van het bord. Voorafgaand aan het bevestigen van de klemmen, buigen ze met behulp van een tang te strak over de lente. OPMERKING: Zie tabel 1 voor een beschrijving van de voor de bouw van de HIT-apparaat materialen. De geklemd einde van de veer moet 1/8 inch (3,2 mm) vanaf de rand van het bord, en het vrije uiteinde moet zich uitstrekken over de raad van bestuur van 3/4 inch (19 mm). Stel de veer zodat het parallel met de lengte van de plaat ligt. </li><li> Wikkel het vrije einde van de veer eenmaal rond de zelfklevende strook klittenband lussen. De buitenrand van de Velcro moet gelijk zijn met het uiteinde van de veer zijn. De Velcro is belangrijk omdat het wordt gebruikt om de flacon bevestigen aan de bron door creAting een strakke compressie fitting. Het klittenband maakt ook eenvoudige aansluiting en verwijdering flacons, waardoor vele flacons in een korte tijd te verwerken. </li><li> Plaats het ijs emmer deksel ondersteboven, gecentreerd, strak tegen de houten plank. Oriënteer het verhoogde gebied van het ijs emmer deksel zodanig dat de lange kant is parallel aan de breedte van het bord. Merk op dat het verhoogde gebied van het ijsemmer is 1/2 inch (13 mm) boven de houten plank, zodat wanneer een flesje voor de veer is bevestigd zal de veer niet vlak op de plaat liggen. </li><li> Schuif het hele apparaat tegen een vast object, zoals een muur, zodat het ijs emmer deksel is ingeklemd tussen de raad en het object en beweegt niet. </li><li> Tape het papier gradenboog naar de bodem van een kartonnen vliegen flesje en onderkast is aan de rand tegen de lengte van de plaat, zodat de 90 ° merkteken tegenover de veer wanneer deze wordt teruggetrokken om een ​​perfect verticale positie. </li></ol> 2.Werking van de HIT Device <ol><li> Plaats tussen 1 en 60 CO 2 -anesthetized vliegt in een leeg flesje en sluit de flacon met een nauwsluitende katoenen bal. </li><li> Beperk de vliegen naar beneden 1 inch (2,5 cm) van de flacon door de katoenen bal in het flesje tot het 1 inch (2,5 cm) vanaf de onderzijde. Het is nuttig om een ​​lijn te trekken op de flacon op de 1 inch (2,5 cm) merk. Let beperken vliegen om grotere of kleinere delen van de flacon de ernst fenotypes beïnvloeden. </li><li> Wacht 5 min voor de vliegen om de mobiliteit van de CO 2 terug te krijgen. Merk op dat het niet bekend is of 5 min is voldoende om de effecten van CO 2 volledig te verwijderen. </li><li> Het uiteinde van de veer in het flesje tot de binnenrand van het Velcro gelijk ligt met de bovenkant van de flacon (Figuur 1B). Wanneer de veer plat ligt, moet 1 inch (2,5 cm) van de flacon het verhoogde gebied van het ijs emmer deksel overlappen. Flacons kan worden hergebruikt maltijd. </li><li> Zittend, houd de flacon op het gebied klittenband met behulp van de duim en wijsvinger van je linkerhand. Houd de raad van bestuur vast aan de stationaire met uw rechterhand. Als alternatief gebruik C-klemmen aan de raad strak aan de werkbank vast te houden. </li><li> Trek het voorjaar perfect direct terug naar de gewenste hoek. Laat de lente. Laat de lente volledig tot stilstand te komen. </li><li> Verwijder de flacon van de bron en laat de vliegen om te herstellen voor ≥5 min. Onderwerp de vliegen naar een andere staking of overdracht van de vliegen naar een flesje met vlieg voedsel. OPMERKING: Verschillende assays kunnen worden gebruikt voor de fenotypische effecten van aanvallen van de HIT apparaat evalueren. Zo kunnen de effecten op levensduur worden bepaald via analyse van het percentage vliegen die overleven tijdstippen na letsel, kan gevolgen hersenmorfologie bepaald door histologisch onderzoek van de kop en effecten op genexpressie kan worden vastgesteld door kwantitatieve analyse van mRNA-niveaus 10. </li><li> Determine gevolgen van de procedure die niet te wijten aan stakingen van identieke behandeling controle vliegen die niet onderworpen zijn aan stakingen zijn. Draag gehoorbescherming omdat de impact van de flacon tegen het ijs emmer deksel produceert een hard geluid. </li></ol>

<ol><li>Harrison-Felix, C. L., Whiteneck, G. G., Jha, A., DeVivo, M. J., Hammond, F. M., Hart, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mortality+over+four+decades+after+traumatic+brain+injury+rehabilitation%3A+A+retrospective+cohort+study%5BTitle%5D)+AND+%22Arch+Phys+Med+Rehabil%22%5BJournal%5D)">Mortality over four decades after traumatic brain injury rehabilitation: A retrospective cohort study.</a> Arch Phys Med Rehabil. 90, 1506-1513 (2009).</li>
<li>Coronado, V. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Surveillance+for+traumatic+brain+injury-related+deaths+%E2%80%93+United+States%5BTitle%5D)+AND+%22MMWR+Surveill+Summ%22%5BJournal%5D)">Surveillance for traumatic brain injury-related deaths – United States.</a> MMWR Surveill Summ. 60, 1-32 (1997).</li>
<li>Masel, B., DeWitt, D. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Traumatic+brain+injury%3A+A+disease+process%2C+not+an+event%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurotrauma%22%5BJournal%5D)">Traumatic brain injury: A disease process, not an event.</a> J. Neurotrauma. 27, 1529-1540 (2010).</li>
<li>Blennow, K., Hardy, J., Zetterberg, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+neuropathology+and+neurobiology+of+traumatic+brain+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">The neuropathology and neurobiology of traumatic brain injury.</a> Neuron. 76, 886-899 (2012).</li>
<li>Prins, M., Greco, T., Alexander, D., Giza, C. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+pathophysiology+of+traumatic+brain+injury+at+a+glance%5BTitle%5D)+AND+%22Disease+Models+Mech%22%5BJournal%5D)">The pathophysiology of traumatic brain injury at a glance.</a> Disease Models Mech. 6, 1307-1315 (2013).</li>
<li>Menon, D. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Unique+challenges+in+clinical+trails+in+traumatic+brain+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Crit+Care+Med%22%5BJournal%5D)">Unique challenges in clinical trails in traumatic brain injury.</a> Crit Care Med. 37, S129-S135 (2009).</li>
<li>Xiong, Y., Mahmood, A., Chopp, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+models+of+traumatic+brain+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Rev+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Animal models of traumatic brain injury.</a> Nature Rev Neurosci. 14, 128-142 (2013).</li>
<li>Balsiger, Z., Leudkte, J., Mawer, S., Willey, M. HIT device high speed analysis. , Available from:
	
 <a target="_blank" href="https://www.youtube.com/watch?v=hkmCXwPacBQ">https://www.youtube.com/watch?v=hkmCXwPacBQ</a> (2014).</li>
<li>Davceva, N., Janevska, V., Illevski, B., Petrushevska, G., Popeska, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+occurrence+of+acute+subdural+haematoma+and+diffuse+axonal+injury+as+two+typical+acceleration+injuries%5BTitle%5D)+AND+%22J+Forensic+Leg+Med%22%5BJournal%5D)">The occurrence of acute subdural haematoma and diffuse axonal injury as two typical acceleration injuries.</a> J Forensic Leg Med. 19, 480-484 (2012).</li>
<li>Katzenberger, R. J., Loewen, C. A., Wassarman, D. R., Petersen, A. J., Ganetzky, B., Wassarman , D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Drosophila.+model+of+closed+head+traumatic+brain+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+USA%22%5BJournal%5D)">A Drosophila. model of closed head traumatic brain injury.</a> Proc Natl Acad Sci USA. 110, E4152-E4159 (2013).</li>
<li>Fang, Y., Bonini, N. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Axon+degeneration+and+regeneration%3A+insights+from+Drosophila+.models+of+nerve+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Axon degeneration and regeneration: insights from Drosophila .models of nerve injury.</a> Annu Rev Cell Biol. 28, 575-597 (2012).</li>
<li>Babcock, D. T., Ganetzky, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+improved+method+for+accurate+and+rapid+measurement+of+flight+performance+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">An improved method for accurate and rapid measurement of flight performance in Drosophila.</a> J Vis Exp. (84), e51223(2014).</li>
<li>Tully, T., Preat, T., Boynton, S. C., Vecchio, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+dissection+of+consolidated+memory+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Genetic dissection of consolidated memory in Drosophila.</a> Cell. 79, 35-47 (1994).</li>
<li>Andretic, R., Shaw, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Essentials+of+sleep+recordings+in+Drosophila.%3A+moving+beyond+sleep+time%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Enzymol%22%5BJournal%5D)">Essentials of sleep recordings in Drosophila.: moving beyond sleep time.</a> Methods Enzymol. 393, 759-772 (2005).</li>
</ol>

We hebben geen belangenconflicten bekend te maken.

De werkwijze HIT inrichting onderscheidt zich van andere methoden traumatisch letsel toebrengen in vliegen doordat het veroorzaakt gesloten kop plaats indringend TBI 11. Voorts neemt de HIT inrichting methode minder tijd, inspanning en vaardigheid TBI toebrengen in veel vliegen, zodat de methode vatbaarder dan andere methoden voor grootschalige genetische screens. Ten slotte is het feit dat de primaire letsels veroorzaakt door het HIT inrichting niet beperkt tot de hersenen zowel beperking en een voordeel. He...

An author's name was corrected in the publication of <a href="http://www.jove.com/video/52905">A Method to Inflict Closed Head Traumatic Brain Injury in Drosophila</a>. The second to last author's was spelled incorrectly. It has been updated from:
Barry Ganetky
to:
Barry Ganetzky

An author's name was corrected in the publication of <a href="http://www.jove.com/video/52905">A Method to Inflict Closed Head Traumatic Brain Injury in Drosophila</a>.

Erratum: A Method to Inflict Closed Head Traumatic Brain Injury in Drosophila

Traumatisch hersenletsel (TBI) wordt gedefinieerd als schade aan de hersenen van een externe mechanische kracht. Meestal TBI resultaten uit gesloten kop krachten zoals bot krachten en inertiële versnelling en vertraging krachten die ervoor zorgen dat de hersenen naar de binnenzijde van de schedel te slaan. In de Verenigde Staten, wordt geschat dat 50.000 mensen sterven elk jaar van TBI en 2,5-6.500.000 mensen leven met de gevolgen van TBI, waaronder slopende fysieke, cognitieve en gedragsmatige 1,2 problemen. De gevolgen van TBI niet alleen veroorzaakt door een primaire mechanische verwonding van de hersenen, maar ook secundaire cellulaire en moleculaire letsel aan de hersenen en andere weefsels tijd optredende 3-5. De ontwikkeling van methoden voor de diagnose en behandeling van TBI heeft bewezen moeilijk te zijn, omdat TBI is een complexe ziekte proces. De variabele aard van primaire verwondingen, menselijke fysiologie, en omgevingsfactoren resulteert in heterogene secundaire injuries en pathologieën. Onderliggende variabele factoren omvatten de ernst van de primaire verwonding, de tijd tussen herhaalde primaire letsels en de leeftijd en het genotype van het individu. Begrijpen hoe elke variabele factor bijdraagt ​​aan de gevolgen van TBI wil helpen bij de ontwikkeling van methoden voor de diagnose en behandeling van TBI 6,7. Hier beschrijven we een werkwijze voor het toebrengen gesloten hoofd TBI in Drosophila melanogaster (fruitvlieg), die kan worden gebruikt om de bijdrage van variabele factoren om de gevolgen van TBI bakenen. De methode is gebaseerd op een eerste observatie dat intens raken van de kant van een vlieg cultuur flesje tegen de palm van een hand veroorzaakt wild-type vliegt naar raken tijdelijk arbeidsongeschikt, een waarschijnlijke gevolg van TBI. Zo hebben we de High-Impact Trauma (HIT) apparaat om de versnelling en vertraging krachten recapituleren van de hand raken actie aangelegd. Een high-speed film laat zien dat een enkele aanval opHIT apparaat veroorzaakt vliegt contact op met de flacon muur meerdere malen met hun hoofd en lichaam 8. Tot op zekere hoogte, alle contacten zijn waarschijnlijk de vlieg hersenen veroorzaken aan ricochet en vervormen tegen het hoofd capsule, vergelijkbaar met wat er gebeurt met mensen in valpartijen en auto-ongevallen 9. Dienovereenkomstig, vliegen behandeld met HIT inrichting beeldscherm fenotypes overeenstemming met hersenletsel, waaronder tijdelijke invaliditeit gevolgd door ataxie, geleidelijk herstel van mobiliteit, genexpressie veranderingen in het hoofd, en progressieve neurodegeneratie in de hersenen 10. Aldus HIT apparaat maakt het mogelijk om TBI bestuderen vanuit het enorme arsenaal aan experimentele instrumenten en technieken ontwikkeld voor vliegen.

<table><tbody><tr><td>Zinkgeplateerde compressieveer</td><td>The Hillman&nbsp; Group</td><td>540189</td><td>9 7/8 inch (lengte, 2,2 cm), 15/16 inch (buitendiameter, 2,4 cm), 0,12 inch (draaddikte, 0,3 cm)</td></tr><tr><td>Houten plank</td><td></td><td></td><td>9 inch (lengte, 22,9 cm), 6,5 inch (breedte, 16,5 cm), 0,75 inch (hoogte, 1,9 cm)</td></tr><tr><td>Klemmen</td><td>Sigma Electrical Manufacturing Corporation</td><td>49822</td><td>3,10 inch (lengte, 7,9 cm), 0,68 inch (breedte, 1,7 cm), 1,11 inch (hoogte, 2,8 cm), EMT Two Hole Straps, klik op type voor 1 inch (2,5 cm) stalen EMT-leiding</td></tr><tr><td>Helft van zelfklevende klittenbandlus</td><td></td><td></td><td>3 inch (lengte, 7,6 cm), (3/4 inch breedte, 1,9 cm)</td></tr><tr><td>Polyuretanie ijsemmerdeksel</td><td>Fisher Scientific</td><td>02-591-45</td><td>9 1/8 inch (lengte, 23,2 cm), 9 1/8 inch (breedte, 23,2 cm), 1 1/4 inch (hoogte, 3,2 cm)</td></tr><tr><td>Kunststof vliegenflesjes</td><td>Applied Scientific</td><td>AS-510</td><td>3 11/16 inch (hoogte, 9,4 cm), 1 1/16 inch (binnendiameter, 2,7 cm), 1 1/8 inch (buitendiameter, 2,9 cm)</td></tr><tr><td>Grote katoenen ballen</td><td>Fisher Scientific</td><td>22-456-883</td><td></td></tr><tr><td>Papieren hoekmeter</td><td></td><td></td><td>10 inch (diameter, 25,4 cm)</td></tr></tbody></table>

een methode om closed head traumatic brain injury inflict in<em&gt; drosophila</em

A Method to Inflict Closed Head Traumatic Brain Injury in Drosophila

Traumatisch hersenletsel (TBI) treft miljoenen mensen per jaar, waardoor aantasting van de lichamelijke, cognitieve en gedragsmatige functies en dood. Studies met behulp van Drosophila hebben belangrijke doorbraken bijgedragen in het begrijpen van de neurologische processen. Dus, met het doel het begrip van de cellulaire en moleculaire basis van TBI pathologieën bij mensen, de High Impact Trauma (HIT) -apparaat gesloten hoofd TBI toebrengen in vliegen ontwikkelden we. Vliegen onderworpen aan het HIT apparaat scherm fenotypes in overeenstemming met de menselijke TBI zoals tijdelijke arbeidsongeschiktheid en progressieve neurodegeneratie. Het apparaat gebruikt een HIT-veer gebaseerde mechanisme vliegen stuwen tegen de wand van een flesje, waardoor mechanische beschadiging van de vlieg hersenen. De inrichting is goedkoop en eenvoudig te bouwen, de werking is eenvoudig en snel en reproduceerbare resultaten produceert. Bijgevolg kan de HIT-apparaat worden gecombineerd met bestaande experimentele tools en technieken voor het vliegen te pakken fundamentelevragen TBI die kunnen leiden tot de ontwikkeling van diagnostica en behandelingen voor TBI. In het bijzonder kan de HIT apparaat worden gebruikt voor grootschalige genetische screens uitvoeren om de genetische basis van TBI pathologieën begrijpen.

Wij zijn geïnteresseerd in het begrijpen waarom vliegen sterven kort na de primaire letsel. Om dodelijke kwantificeren hebben we de sterfte Index van 24 uur (24 MI), het percentage van vliegen die stierven binnen 24 uur van het primaire letsel. Vliegen onderworpen aan aanvallen van HIT apparaat werden geïncubeerd bij 25 ° C in een flesje met vlieg voedsel, en het aantal dode vliegen werd geteld na 24 uur. We gebruikten deze benadering op factoren die invloed hebben op de MI 24 identificeren en vond...

Hier wordt een methode beschrijven we gesloten hoofd traumatisch hersenletsel (TBI) toebrengen in Drosophila. Deze methode biedt een toegangspoort tot de cellulaire en moleculaire mechanismen die TBI pathologieën met behulp van de enorme serie van experimentele instrumenten en technieken beschikbaar voor het vliegen ten grondslag liggen te onderzoeken.

Een methode om Closed Head Traumatic Brain Injury Inflict in<em&gt; Drosophila</em

Traumatic brain injury (TBI) affects millions of people each year, causing impairment of physical, cognitive, and behavioral functions and death. Studies ...

Het algemene doel van deze procedure is het veroorzaken van gesloten traumatisch hersenletsel bij vliegen. Dit wordt bereikt door de vliegen eerst in een vial te plaatsen, één inch boven de bodem.De tweede stap is het bevestigen van het vial aan het HIIT-apparaat. Vervolgens wordt de veer tot een specifieke hoek uitgebogen, waarna het vial wordt losgelaten en volledig tot rust komt. Uiteindelijk kan een verscheidenheid aan gedragsmatige, morfologische en moleculaire assays worden gebruikt om de gevolgen van het resulterende traumatische hersenletsel te karakteriseren.Het belangrijkste voordeel van deze methode ten opzichte van bestaande methoden, zoals de weight drop-methode bij knaagdieren, is dat er in korte tijd veel dieren bestudeerd kunnen worden. Deze methode kan helpen bij het beantwoorden van kernvragen binnen het vakgebied van traumatisch hersenletsel, zoals de reden waarom de gevolgen van traumatisch hersenletsel per individu verschillen. Begin met het verzamelen van de materialen die zijn vermeld in tabel 1 van het bijbehorende tekstprotocol.Buig de klemmen met een tang zodat ze strak om de veer passen. Centreer de klemmen vervolgens ten opzichte van de breedte van de pl

a-method-to-inflict-closed-head-traumatic-brain-injury-in-drosophila

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Neurowetenschap

Deze video beschrijft hoe de volwassen Drosophila-hersenen kunnen worden ontleed en geïsoleerd - een procedure die nodig is voor het visualiseren van het orgaan, dat anders wordt verduisterd door de cuticula, het oog en het tracheaweefsel. Het voorbeeldprotocol toont een gedetailleerde demonstratie die hoogwaardige preparaten oplevert die kunnen worden gebruikt voor immunostaining- en beeldvormingsmethoden in de drosophila-neurobiologie.

Drosophila Volwassen hersendissectie: een methode in vliegneurobiologie

This video demonstrates a procedure to inflict a closed-head traumatic injury in anesthetized Drosophila flies using a strike device with a gas-propelled impactor. The injury affects neuronal function and impairs walking ability.

A Technique to Inflict Closed-Head Traumatic Brain Injury in Drosophila Flies

This video demonstrates a method for inducing targeted neuronal injury in Drosophila larvae using a high-power laser. After positioning the larva under a microscope, a low-power laser scans for fluorescent neurons, and then the laser power is increased to induce localized damage. The injury is confirmed by increased fluorescence and a crater at the injury site.

Inducing Targeted Neuronal Injury Using a High-Power Laser in a Drosophila Larva

The video demonstrates the use of a High-Impact Trauma (HIT) device to induce closed-head traumatic brain injury (TBI) in Drosophila. TBI causes mechanical brain trauma affecting neuronal function, which over time leads to neurodegeneration and mortality.

This video demonstrates the induction of penetrating traumatic brain injury in the drosophila brain. Newly emerged flies are selected, anesthetized, and positioned under a fluorescence-equipped stereo microscope. The GFP-expressing mushroom body is identified, and a Minutien pin is inserted to cause injury. The flies are allowed to recover for further studies.

Inducing Penetrating Traumatic Brain Injury in Adult Drosophila Flies

Source: Logsdon, A. F., et al. Low-intensity Blast Wave Model for Preclinical Assessment of Closed-head Mild Traumatic Brain Injury in Rodents. J. Vis. Exp. (2020)This video demonstrates the induction of closed-head mild traumatic brain injury in a mouse model using a pressurized gas shock tube setup. The generated pressure wave ruptures the polyester membrane, delivering a shockwave to the mouse’s head that results in rapid brain movement within the skull, causing a mild traumatic brain injury.

Generating a Closed-Head Mild Traumatic Brain Injury in a Murine Model

Hier beschrijven we een nieuwe aanpak om traumatisch hersenletsel in Drosophila melanogaster te veroorzaken . Onze methode heeft het voordeel om herhaalde effecten te leveren met instelbare sterkte aan het hoofd alleen. Verdere verkenning van het ongewervelde systeem zal helpen bij het verlichten van de pathogenese van chronische traumatische encefalopathie.

Een nieuwe methode om chronische traumatische encefalopathie te modelleren in<em&gt; Drosophila</em

Hier presenteren we een protocol met de Drosophila sensorisch neuron - dendritische arborization (da) neuron letsel model, dat in vivo combineert wonen imaging, twee-foton laser axotomy/dendriotomy en de krachtige vliegen genetische werkset, als een platform voor de screening potentiële initiatiefnemers en remmers van neuroregeneration.

Een Drosophila In Vivo letsel Model voor het bestuderen van de Neuroregeneration in de perifere en centrale zenuwstelsel

Dit artikel biedt gedetailleerde protocollen voor het toebrengen van penetrerend traumatisch hersenletsel (PTBI) aan volwassen Drosophila en het onderzoeken van de resulterende neurogenese.

Stimuleren en analyseren van volwassen neurogenese in de drosophila centrale hersenen

Dit protocol presenteert een gemodificeerd muismodel van repetitief mild traumatisch hersenletsel (rmTBI) geïnduceerd via een closed-head injury (CHI)-methode. De aanpak omvat een verdund schedelvenster en vloeibare percussie om de ontsteking die vaak wordt veroorzaakt door blootstelling aan hersenvliezen te verminderen, samen met verbeterde reproduceerbaarheid en nauwkeurigheid bij het modelleren van rmTBI bij knaagdieren.

Gemodificeerd muismodel van repetitief mild traumatisch hersenletsel met een verdund schedelvenster en vloeibare percussie

Deze studie presenteert een vereenvoudigd protocol voor weefselverwerking met onthoofding, fixatie, cryosectie, fluorescentiekleuring, immunokleuring en beeldvorming, dat kan worden uitgebreid tot confocale en multifotonbeeldvorming. De methode behoudt een werkzaamheid die vergelijkbaar is met complexe dissecties, waarbij de noodzaak van geavanceerde motorische vaardigheden wordt omzeild. Kwantitatieve beeldanalyse biedt een uitgebreid onderzoekspotentieel.

Directe cryosectie van Drosophila-koppen voor verbeterde kleuring en immunokleuring van de hersenen

Leer een methode om traumatisch hersenletsel te veroorzaken bij Drosophila met een HIIT-apparaat. Dit model helpt onderzoekers om cellulair en moleculair onderzoek naar TBI-pathologieën uit te voeren.

Een methode om Closed Head Traumatic Brain Injury Inflict in

Meer video's verkennen