Name: Correlatieve Licht en Electron Microscopy om te studeren Microgliale Interacties met β-amyloïde plaques (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-06-01T15:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 52 s
Description: Leer correlatieve licht- en elektronenmicroscopie om microgliale interacties met β-amyloïde plaques te bestuderen in muismodellen voor de ziekte van Alzheimer. Deze methode maakt prescreening van weefsel mogelijk.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

We zijn dankbaar aan Dr. Sachiko Sato en Julie-Christine Lévesque van het Bioimaging Platform van het Centre de recherche du CHU de Québec voor hun technische assistentie. Grants van de Natural Sciences and Engineering Research Council of Canada (NSERC) RGPIN-2014-05308, The Banting Research Foundation en The Scottish Rite Charitable Foundation of Canada aan M.E.T ondersteunden dit werk.
H.E.H. ontvangt een beurs van het Libanese Ministerie van Onderwijs en Hoger Onderwijs, en K.B. van de Faculté de médecine van Université Laval.

Let op: Alle experimenten werden goedgekeurd en uitgevoerd volgens de richtlijnen van de Institutional dier ethische commissie, in overeenstemming met de Canadese Raad over Animal Care richtlijnen zoals beheerd door de Animal Care Committee van de Université Laval. APP-PS1 mannelijke muizen tussen 4 en 21 maanden oud werden gebruikt. Deze dieren werden gehuisvest onder een 12 uur licht-donker cyclus bij 22-25 ° C met vrije toegang tot voedsel en water. 1. Methoxy-X04 oplossingspreparaat <ol><li> Bereid een 5 mg / ml oplossing van methoxy-X04 9 door oplossen methoxy-X04 in een oplossing van 10% dimethylsulfoxide (DMSO), 45% propyleenglycol en 45% natriumfosfaat-gebufferde zoutoplossing (0,9% NaCl in 100 mM fosfaatbuffer , pH 7,4). <ol><li> Met behulp van een microbalans Weeg 5 mg van de verbinding methoxy-X04. Onder een zuurkast, ontbinding van de methoxy-X04 in DMSO en roer tot een heldere groenachtige oplossing wordt verkregen. Achtereenvolgens voeg propyleenglycol en phosphate saline buffer onder roeren bij elke toevoeging. </li><li> Roer de oplossing bij 4 ° C op een rotator O / N. Zorg voor een geelgroen emulsie. De oplossing kan maximaal twee maanden zonder degradatie worden bewaard bij 4 ° C. </li></ol></li></ol> 2. Methoxy-X04 oplossing Injectie <ol><li> 24 uur voorafgaand aan perfusie, wegen de muizen en geeft elke muis een intraperitoneale injectie van methoxy-X04 in een dosis van 10 mg / kg lichaamsgewicht onder toepassing van een 27 G naald ½. </li></ol> 3. transcardial perfusie van de geïnjecteerde muizen <ol><li> Op de dag voor de perfusie, bereiden voldoende hoeveelheden fosfaat gebufferde zoutoplossing (PBS), 3,5% acroleïne en 4% paraformaldehyde (PFA) oplossingen 13 en bewaar ze bij 4 ° CO / N. Opmerking: Deze oplossingen worden gebruikt voor perfusie en pre-inbedding immunohistochemie. Wees extra voorzichtig bij het werken met acroleïne, want het is bijtend en giftig voor zowelonderzoekers en het milieu. Bovendien, omdat acroleïne is bijtend voor plastic, gebruik dan altijd geschikt glaswerk tot acroleïne oplossingen voor te bereiden. </li><li> Op de dag van perfusie, filtreer de PFA en acroleïne door grove filterpapier van 25 urn partikelretentie. </li><li> Tijdens de perfusie gebruikt een peristaltische pomp 15 ml PBS, 75 ml acroleïne en 150 ml PFA achtereenvolgens in de muis circulatie leveren, met een stroomsnelheid van 25 ml / min. Wees voorzichtig. Voer perfusie strikt in een zuurkast om schadelijke dampen van PFA en acroleïne te vermijden. <ol><li> Voor het instellen van de pomp, steek het ene uiteinde in de PBS-oplossing, vul de buis (die in totaal ongeveer 15 ml) met PBS, en vast te stellen een 25 G gevleugelde bloedafnames naald naar de andere kant. Te allen tijde, ervoor te zorgen dat de slang vrij is van luchtbellen. </li><li> Plaats de buis direct in het acroleïne fles nadat de perfusie pomp met de buis gevuld met PBS. </li></ol></li><li> Eenaesthetize één muis tegelijk met een 90 mg / kg lichaamsgewicht dosis gewicht van natriumpentobarbital intraperitoneaal geïnjecteerd met een 27 G naald ½. Evalueren reacties op de staart / teen wringt. Ga verder alleen als de muis niet reageert op een dergelijke aversieve, pijnprikkels. </li><li> Zet de muis in rugligging (liggend op de rug met het gezicht naar boven) door taping de voorpoten en achterpoten aan het werkvlak en zorgvuldig het hart bloot te leggen zonder schade aan andere organen. Zorg ervoor dat u snel aan het werk na het aanprikken van het middenrif. <ol><li> Voer een incisie door de huid met chirurgische schaar langs de thoracale middellijn begint caudaal van de ribbenkast en ga rostraal van het sleutelbeen. </li><li> Voeg twee extra zijdelingse insnijdingen langs de basis van de ventrale ribbenkast. Beweeg en speld de twee kleppen van de huid, en zorg ervoor dat de gehele borstholte bloot te leggen. </li><li> Houd de zwaardvormig proces met stompe tang om de borstholte bloot te leggen en te stabiliseren de puntige schaars. Snij door het diafragma en de ribbenkast, voorzichtig om te voorkomen dat aanprikken van de longen, en voortzetting van de snede rostraal van de sleutelbeenderen. Zorg ervoor dat u snel aan het werk na het aanprikken van het middenrif. </li></ol></li><li> Voorzichtig scheur de pericardiale zak met stompe tang. Houd het hart gestage met stompe tang, knip de juiste atrium, en start de infusie van PBS. steek de bloedafname naald in de linker ventrikel onmiddellijk. </li><li> Perfuseren de muis met PBS (in de buis), gevolgd door acroleïne gedurende 3 minuten (overeenkomend met 75 ml) en vervolgens overschakelen naar PFA gedurende 6 minuten (overeenkomend met 150 ml). Zorg ervoor dat de pomp stroom onderbreken voordat u oplossing om te voorkomen dat luchtbellen uit het invoeren van de buis. </li><li> Onthoofden de muis en haalt de vaste hersenen en plaats deze direct in een glazen flacon met 4% PFA gedurende ten minste 2 uur bij 4 ° C. <ol><li> Aan de hersenen te extraheren, een schaar en pincet door de huid te snijden om de schedel bloot te leggen. breken voorzichtig de schedel open in tussen de ogen, en de chip uit kleine stukjes van het aan de onderliggende hersenen bloot te leggen. </li><li> Verwijder voorzichtig de blootgestelde hersenen en post fix met 4% PFA voor nog eens 2 uur alvorens verder te gaan voor vibratome snijden. </li></ol></li></ol> 4. Brain Sectioning Met behulp van een Vibratome <ol><li> Was de vaste hersenen 3 maal met koud PBS. Met een scherp scheermesje, verwijder de bulbus olfactorius (tenzij deze regio wordt onderzocht) en snijd de hersenen dwars in 2-3 stukken van ongeveer gelijke lengte, die gelijktijdig om de procedure te versnellen kan worden doorgesneden. </li><li> Lijm de stukken van hersenweefsel verticaal op het monster plaat vastgezet in de lade. Zorg ervoor dat het glad snijvlak kleeft stevig aan het monster bord en niet wordt verdreven tijdens het snijden procedure. Voeg genoeg PBS-oplossing in de lade totdat het gehele brein oppervlak volledig is ondergedompeld. Het is belangrijk om th houdene hersenen stukken en de daaropvolgende secties volledig ondergedompeld in PBS gedurende deze stap. </li><li> Plaats de bak in de vibratome Stel de snijsnelheid tot 0,5 mm / sec, de snijbeweging frequentie 90 Hz en de voeding dikte 50 urn om 50 pm dikke secties verkregen. Vervolgens transfer secties in 20 ml glazen flesjes bevattende cryobeschermingsoplossing (40% PBS, 30% ethyleenglycol en 30% glycerol) met een fijne kwast. Bewaar de flesjes bij -20 ° C tot verder gebruik. Als alternatief houdt de secties in PBS onmiddellijk screening zoals beschreven in de volgende stappen. </li></ol> 5. Sectie screening op de aanwezigheid van methoxy-X04-gekleurd Plaques <ol><li> Met behulp van een stereotaxische muizenhersenen atlas 14, selecteert hersensecties die het gebied van belang, bijvoorbeeld de hippocampus CA1 zoals in het onderhavige voorbeeld. Plaats elke sectie in een put binnen een 24-well cultuur plaat met genoeg cryoprotectant oplossingom te voorkomen dat de delen uitdroogt. </li><li> Bestudeer elke sectie achtereenvolgens, om te voorkomen dat uitdrogen van de secties, met behulp van de volgende procedure: <ol><li> Voeg een druppel PBS tot een microscoopglaasje met een wegwerpbare pipet en plaats het gedeelte over de druppel. </li><li> Onderzoek de afdeling onder een fluorescentiemicroscoop om gebieden met methoxy-X04 gemerkt Ap-plaques te identificeren. Opmerking: methoxy-X04 kan gemakkelijk worden gevisualiseerd met fluorescentie- ultraviolet (UV) filter (excitatie 340-380 nm). </li></ol></li><li> beelden van gebieden van belang (ROI) in helderveld en fluorescentie opnamestand zonder de microscoop podium, aangezien elk beeld hetzelfde gebied beide velden om de aanwezigheid van de plakken direct correleren met de structurele regio moeten aantonen het weefsel sectie. </li><li> Opslaan en de naam van de foto&#39;s genomen op basis van het dier nummer. Registreer ook de put nummer in de plaat en het gebied van de foto taken. Bijvoorbeeld, Ex: 9978A1B; Dierlijk nummer: 9978; Nou nummer: A1; Field: Bright. Plaats het achterste gedeelte in goed zijn aangewezen wanneer de beeldvorming is voltooid. Opmerking: Uiteindelijk voor elke sectie onderzochte twee beelden worden verkregen, een in helderveld en een in UV gebied. </li><li> Open de twee beelden van dezelfde ROI (één in heldere gebied en de andere in UV-gebied) in Image J, en met behulp van de MosaicJ plugin, lijn de randen van de twee beelden en sla het op elkaar afgestemd en gecombineerde beeld op basis van de goed nummer het kwam van. </li><li> Sla de afbeelding in een aparte map met het nummer van het betreffende dier. Combineer de beelden te identificeren en lokaliseren van de plaques in de sectie weefsel en hebben een volledig zicht op de hele sectie in de twee verschillende velden (licht en UV). </li><li> Na de screening is voltooid, slaat de onderzochte secties bij -20 ° C in een 24-well kweekplaat met cryoprotectant tot immunokleuring of verdere verwerking carried out. </li></ol> 6. Pre-inbedding Immunokleuring voor IBA1 Opmerking: Voer de immunokleuring voor IBA1 op geselecteerde vrij zwevende delen door het plaatsen van de plaat op een langzaam rocker bij RT. <ol><li> Grondig wassen van de secties 3 maal met ongeveer 1 ml PBS, elke wasbeurt voor de duur van 10 min. </li><li> Quench endogene peroxidasen met 0,3% waterstofperoxide in PBS gedurende 10 min. Deze stap voorkomt niet-specifieke peroxidase activiteit, wat belangrijk is voor achtergrondkleuring voorkomen. </li><li> Was het weefsel in PBS 3 keer gedurende 10 minuten elk. </li><li> Incubeer de secties in 0,1% natriumboorhydride in PBS oplossing gedurende 30 min. Deze stap is belangrijk om alle resterende aldehyden uit de fixatiestap verminderen, en is vooral belangrijk als acroleïne weefsels bruikbaar fixatie. </li><li> Was het weefsel in PBS 3 keer voor 10 minuten per keer en zorg ervoor dat alle bellen te verwijderen. </li><li> Blokkeer de secties voor 1 uur.Verschillende antilichamen kunnen verschillende blokkering tijden en oplossingen vereisen. Voor IBA1 bereiden blokkerende buffer bevattende 10% foetaal runderserum, 3% runderserumalbumine en 0,01% Triton X-100 in 50 mM Tris-gebufferde zoutoplossing (TBS, pH 7,4). Opmerking: De blokkeringsstap is niet-specifieke binding van het primaire antilichaam te voorkomen. De lage concentratie van Triton X-100 permeabilisatie zorgt voor kleine membranen betere kleuring en laag genoeg om de meeste ultrastructurele eigenschappen van weefsel onder EM behouden. </li><li> Verwijder de blokkerende buffer van het weefsel, en incubeer in primaire antilichaam-oplossing (konijn anti-IBA1, verdund [1: 1000] in het blokkeren van buffer) bij 4 ° CO / N. </li><li> Wassen in TBS 3 maal gedurende 10 minuten per keer. </li><li> Incubeer in secundair antilichaam (geit anti-konijn geconjugeerd aan biotine) [1: 200] in 0,05 M TBS gedurende 90 min. </li><li> Wassen in TBS 5 maal gedurende 5 minuten elke keer. </li><li> Incubeer in avidine-biotine complex oplossing (Avidin [1: 100], Biotine [1: 100]) in TBSoplossing gedurende 1 uur. </li><li> Wassen in TBS 5 maal gedurende 5 minuten elke keer. </li><li> Onthullen de IBA1 kleuring met 0,05% diaminobenzidine (DAB) en 0,015% waterstofperoxide in TBS gedurende 8 min. Opmerking: De timing van de DAB-ontwikkeling kan variëren van protocol naar protocol en moet worden bepaald door snel onderzoek van de gekleurde coupes onder een lichtmicroscoop. Opmerking: Voor IBA1, moet men in staat zijn om duidelijk te visualiseren de cel organen en processen van de IBA1 gekleurd microglia bij 20X (zie figuur 2 voor representatieve bijvoorbeeld). Voorzichtig DAB gebruiken, omdat het een bekend carcinogeen. </li><li> Voorkomen dat over-ontwikkeling door zorgvuldige bewaking van de secties (zoals hierboven beschreven) tijdens deze stap. Stop de reactie door het wassen van de secties in gekoelde PB 5 maal gedurende 5 minuten per keer. </li></ol> 7. Verwerking bij Electron Microscopy <ol><li> Bereid 1% osmiumtetroxide-oplossing in PBS in een glazen flesje. Osmiumtetroxide is lichtgevoelig; hebben betrekking op de glass flacon met aluminiumfolie om de oplossing tegen licht te beschermen. Voorzichtig gebruik osmiumtetroxide, want het kan gevaarlijk chemisch. Voer deze en de volgende stappen in een zuurkast. </li><li> Verwijder de PBS uit de secties en verspreiden ze plat met een fijn penseel. Voer deze stap een goed op een moment om de secties uitdroogt. Zorg ervoor dat u de onderdelen plat onmiddellijk voor het toevoegen van osmiumtetroxide, als alle plooien in de secties permanent zal worden en een poging om af te vlakken weefsel na osmium fixatie wordt alleen de secties te breken. </li><li> Dompel de secties in osmiumtetroxide gedurende 30 minuten bij kamertemperatuur, het toevoegen van een druppel osmiumtetroxide tegelijk met een transferpipet om te voorkomen dat delen van het vouwen. Bedek het goed met aluminiumfolie om de onderdelen te beschermen tegen licht. Opmerking: Deze stap corrigeert de lipiden binnen de secties. Het weefsel zal verschijnen erg donker na osmium post-fixatie. </li><li> Terwijl de secties zijn in osmium TetroXide, bereiden kunststof hars in een wegwerp beker door het mengen van 20 g component A, 20 g component B, 0,6 g component C en 0,4 g component D. Combineer de onderdelen samen in de bovenstaande volgorde en meng ze goed met een 10 ml serologische pipet totdat een uniforme kleur wordt verkregen. </li><li> Breng het mengsel bereid aluminium droogschalen. Zij zullen het weefsel secties zodra ze zijn uitgedroogd. </li><li> Uitdrogen de secties in toenemende concentraties ethanol gedurende 2 min in de volgende volgorde: 35%, 35%, 50%, 70%, 80%, 90%, 100%, 100%, 100%. </li><li> Om de resterende ethanol te verwijderen, dompel de secties in propyleenoxide 3 keer gedurende 2 minuten per keer. Verwijder het uitgedroogd-secties van de 24-well cultuur plaat in 20 ml glazen flesjes. altijd glazen flesjes bij het werken met propyleenoxide zoals kunststof oplost en onderhouden voorzichtigheid, want het is gevaarlijk. </li><li> Gebruik een gebogen glazen pipet tip of een geldboete penseel aan de secties van propyleenoxide soluti overdragentot in de hars en verlaat O / N infiltratie bij kamertemperatuur. Wees voorzichtig niet aan de hars met propyleenoxide verdunnen. </li><li> Insluiten deel met de hars op poly-chloor-tri-fluor-ethyleen (PCTFE) filmsheets: <ol><li> Plaats de aluminium met een gewicht van schalen met de monsters in een 50 - 60 ° C oven gedurende 10 - 15 min voorafgaand aan het inbedden van de hoofdstukken over PCTFE filmsheets. </li><li> Bij het inbedden van secties, werken met een aluminium met een gewicht gerecht per keer. Met een fijne kwast, verf een dunne laag hars op één PCTFE filmblad. </li><li> Verplaats een deel van het weefsel op een moment uit de aluminium wegen schotel naar de PCTFE filmblad. Verwijder overtollige hars uit rond het weefsel, en let niet te verstoren. </li><li> Na het verplaatsen van alle secties van de ene wegen schotel naar de PCTFE filmblad, plaats een tweede PCTFE laken over het eerste, het creëren van een sandwich van weefsel en hars tussen 2 vellen. </li></ol></li><li> Polymeriseren de hars in een incubator gedurende 3 dagen bij 55-60 ° C. </li><li> Het materiaal is nu klaar voor ultradunne coupes en ultrastructurele onderzoek gespecialiseerde technieken die vaak worden uitgevoerd door EM kernfaciliteiten. Bewaar de monsters tussen PCTFE film platen veilig bij RT zonder ultrastructurele degradatie. Opmerking: De daaropvolgende stappen voor ultradunne snijden en transmissie elektronenmicroscopie onderzocht worden in een apart protocol 13. </li></ol>

<ol><li>Heneka, M. T., Carson, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuroinflammation+in+Alzheimer%27s+disease%5BTitle%5D)+AND+%22The+Lancet+Neurol%22%5BJournal%5D)">Neuroinflammation in Alzheimer's disease.</a> The Lancet Neurol. 14 (4), 388-405 (2015).</li>
<li>Herrup, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+case+for+rejecting+the+amyloid+cascade+hypothesis%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">The case for rejecting the amyloid cascade hypothesis.</a> Nat. Neurosci. 18 (6), 794-799 (2015).</li>
<li>Heppner, F. L., Ransohoff, R. M., Becher, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immune+attack%3A+the+role+of+inflammation+in+Alzheimer+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Immune attack: the role of inflammation in Alzheimer disease.</a> Nat. Rev. Neurosci. 16 (6), 358-372 (2015).</li>
<li>Klunk, W. E., Bacskai, B. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+Abeta+plaques+in+living+transgenic+mice+with+multiphoton+microscopy+and+methoxy-X04%2C+a+systemically+administered+Congo+red+derivative%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neuropathol.+Exp.+Neurol%22%5BJournal%5D)">Imaging Abeta plaques in living transgenic mice with multiphoton microscopy and methoxy-X04, a systemically administered Congo red derivative.</a> J. Neuropathol. Exp. Neurol. 61 (9), 797-805 (2002).</li>
<li>Liebscher, S., Meyer-Luehmann, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+peephole+into+the+brain%3A+Neuropathological+features+of+Alzheimer%27s+disease+revealed+by+in+vivo+two-photon+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Psychiatry%22%5BJournal%5D)">A peephole into the brain: Neuropathological features of Alzheimer's disease revealed by in vivo two-photon imaging.</a> Front Psychiatry. 3, 26(2012).</li>
<li>Fuhrmann, M., Bittner, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microglial+Cx3cr1+knockout+prevents+neuron+loss+in+a+mouse+model+of+Alzheimer%27s+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Microglial Cx3cr1 knockout prevents neuron loss in a mouse model of Alzheimer's disease.</a> Nat. Neurosci. 13 (4), 411-413 (2010).</li>
<li>Borchelt, D. R., Ratovitski, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Accelerated+amyloid+deposition+in+the+brains+of+transgenic+mice+coexpressing+mutant+presenilin+1+and+amyloid+precursor+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Accelerated amyloid deposition in the brains of transgenic mice coexpressing mutant presenilin 1 and amyloid precursor proteins.</a> Neuron. 19 (4), 939-945 (1997).</li>
<li>Ly, P. T. T., Cai, F., Song, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Detection+of+neuritic+plaques+in+Alzheimer%27s+disease+mouse+model%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Detection of neuritic plaques in Alzheimer's disease mouse model.</a> J Vis Exp. (53), (2011).</li>
<li>Sadowski, M., Pankiewicz, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeting+prion+amyloid+deposits+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neuropathol.+Exp.+Neurol%22%5BJournal%5D)">Targeting prion amyloid deposits in vivo.</a> J. Neuropathol. Exp. Neurol. 63 (7), 775-784 (2004).</li>
<li>Bussière, T., Bard, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Morphological+characterization+of+Thioflavin-S-positive+amyloid+plaques+in+transgenic+Alzheimer+mice+and+effect+of+passive+Abeta+immunotherapy+on+their+clearance%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Pathol%22%5BJournal%5D)">Morphological characterization of Thioflavin-S-positive amyloid plaques in transgenic Alzheimer mice and effect of passive Abeta immunotherapy on their clearance.</a> Am. J. Pathol. 165 (3), 987-995 (2004).</li>
<li>Rajamohamedsait, H. B., Sigurdsson, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Histological+staining+of+amyloid+and+pre-amyloid+peptides+and+proteins+in+mouse+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Histological staining of amyloid and pre-amyloid peptides and proteins in mouse tissue.</a> Methods Mol. Biol. 849, 411-424 (2012).</li>
<li>Afkhami, A., Moosavi, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adsorptive+removal+of+Congo+red%2C+a+carcinogenic+textile+dye%2C+from+aqueous+solutions+by+maghemite+nanoparticles%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Hazard.+Mater%22%5BJournal%5D)">Adsorptive removal of Congo red, a carcinogenic textile dye, from aqueous solutions by maghemite nanoparticles.</a> J. Hazard. Mater. (1-3), 398-403 (2010).</li>
<li>Tremblay, M. -E., Riad, M., Majewska, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+of+mouse+brain+tissue+for+immunoelectron+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Preparation of mouse brain tissue for immunoelectron microscopy.</a> J Vis Exp. (41), (2010).</li>
<li>Konsman, J. -P. The mouse brain in stereotaxic coordinates. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aKonsman%2C+J-P+%22Psychoneuroendocrinology%22">Psychoneuroendocrinology</a>. 28 (6), Academic Press. New York. (2003).</li>
<li>Norden, D. M., Muccigrosso, M. M., Godbout, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microglial+priming+and+enhanced+reactivity+to+secondary+insult+in+aging%2C+and+traumatic+CNS+injury%2C+and+neurodegenerative+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Neuropharmacology%22%5BJournal%5D)">Microglial priming and enhanced reactivity to secondary insult in aging, and traumatic CNS injury, and neurodegenerative disease.</a> Neuropharmacology. 96 ((Pt A)), 29-41 (2014).</li>
<li>Tremblay, M. -E., Stevens, B., Sierra, A., Wake, H., Bessis, A., Nimmerjahn, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+microglia+in+the+healthy+brain%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">The role of microglia in the healthy brain.</a> J. Neurosci. 31 (45), 16064-16069 (2011).</li>
<li>Šišková, Z., Tremblay, M. è <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microglia+and+synapse%3A+Interactions+in+health+and+neurodegeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Neural+Plast%22%5BJournal%5D)">Microglia and synapse: Interactions in health and neurodegeneration.</a> Neural Plast. 2013, 425845(2013).</li>
<li>DeKosky, S. T., Scheff, S. W., Styren, S. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structural+correlates+of+cognition+in+dementia%3A+quantification+and+assessment+of+synapse+change%5BTitle%5D)+AND+%22Neurodegeneration%22%5BJournal%5D)">Structural correlates of cognition in dementia: quantification and assessment of synapse change.</a> Neurodegeneration. 5 (4), 417-421 (1996).</li>
<li>Terry, R. D., Masliah, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Physical+basis+of+cognitive+alterations+in+Alzheimer%27s+disease%3A+Synapse+loss+is+the+major+correlate+of+cognitive+impairment%5BTitle%5D)+AND+%22Ann.+Neurol%22%5BJournal%5D)">Physical basis of cognitive alterations in Alzheimer's disease: Synapse loss is the major correlate of cognitive impairment.</a> Ann. Neurol. 30 (4), 572-580 (1991).</li>
</ol>

De auteurs hebben niets te onthullen.

Dit protocol legt een korrelerende aanpak voor het richten van dichte kern Ap-plaques met EM. Methoxy-X04 in vivo injectie maakt een snelle selectie van de hersenen secties die Ap-plaques in bepaalde gebieden en lagen van het belang van de hippocampus CA1, lagen radiatum en lacunosum-moleculare bevatten, bijvoorbeeld. In het onderhavige voorbeeld werd methoxy-X04 pre-screening gecombineerd met pre-inbedding immunokleuring voor IBA1 het onderzoeken hoe verschillende microgliale fenotypes interactie met synapsen ...

Ap amyloïde plaquevorming is de voornaamste neuropathologische kenmerk van de ziekte van Alzheimer (AD). Maar meer gegevens suggereren belangrijke rol van het immuunsysteem bij ziekteprogressie 1,2. In het bijzonder, nieuwe gegevens van preklinische en klinische studies opgericht immuundisfunctie als een van de belangrijkste bestuurder en bijdrage aan AD pathologie. Met deze bevindingen, hebben de centrale en perifere immuuncellen als veelbelovende therapeutische doelen ontstaan ​​voor AD 3. De volgende protocol combineert licht en elektronenmicroscopie (EM) tot nieuwe inzichten in de relatie tussen Aß plaque depositie en microglia fenotypische veranderingen in AD te genereren. Dit protocol maakt het mogelijk de etikettering van Ap-plaques in muismodellen van AD met behulp van in vivo injectie van de fluorescente kleurstof methoxy-X04. Methoxy-X04 is een Congo Red derivaat die gemakkelijk de bloed-hersenbarrière kan passeren naar de hersenen parenchym voeren en binden β-geplooide platen met een hogeffinity. Aangezien de kleurstof fluorescentie kan worden gebruikt voor in vivo detectie van Aß plaque depositie twee-foton microscopie 4. Eenmaal gebonden aan AB, is methoxy-X04 niet distantiëren of herdistribueren weg van plaques en behoudt hij zijn fluorescentie in de tijd. Algemeen wordt perifeer toegediend om voor niet-invasieve beeldvorming van de hersenen dynamiek 5. De fluorescentie blijft ook na aldehyde fixatie, waardoor correlatieve post-mortem analyses, met inbegrip van onderzoek van neuronale dood in de buurt van Ap-plaques 6. Dit protocol maakt gebruik van de eigenschappen van methoxy-X04 naar de hersenen secties van APP SWE / PS1A 246e muizen te selecteren (APP-PS1; co-expressie van een dubbele mutatie op APP gen Lys670Asn / Met671Leu, en menselijke preseniline PS1-A264E variant) 7 dat AB vertonen plaques in specifieke gebieden van belang (hippocampus CA1, lagen radiatum en lacunosum-moleculare) Voorafgaand aan pre-inbedding immunokleuring tegen de microglia marker geïoniseerd-calcium bindend adapter molecule 1 (IBA1) de microglia cellichamen en processen met EM te visualiseren. De muizen krijgen intraperitoneale injectie van methoxy-X04 oplossing 24 uur vóór hersenen fixatie door middel transcardial perfusie. Coronale hersensecties worden verkregen met behulp van een vibratoom. Gedeelten met de hippocampus CA1 gescreend onder een fluorescentiemicroscoop op de aanwezigheid van Ap-plaques in strata radiatum en lacunosum-moleculare. Immunokleuring voor IBA1 worden osmiumtetroxide post-fixatie en kunststof hars inbedding vervolgens uitgevoerd op de geselecteerde hersenen secties. Aan het einde van dit protocol, kunnen de secties worden gearchiveerd zonder verdere ultrastructurele degradatie, klaar voor ultradunne snijden en ultrastructurele onderzoek. Belangrijk is, worden de plaques nog fluorescerende na immunokleuring met verschillende antilichamen, bijvoorbeeld IBA1 zoals in het onderhavige protocol. Ze worden donkerder than hun omgeving neuropil volgende osmiumtetroxide post-fixatie, onafhankelijk van methoxy-X04 kleuring, die helpt om de regio&#39;s van belang nauwkeurig te identificeren, over het algemeen tot een paar vierkante millimeter, worden onderzocht met de transmissie-elektronenmicroscoop. Deze correlatieve aanpak biedt een efficiënte manier om specifieke hersengebieden paragrafen worden om na te gaan op het ultrastructurele niveau. Dit is vooral nuttig bij het bestuderen van vroege AD pathologie binnen bepaalde hersengebieden of lagen die slechts enkele Aß plaques aanwezig in slechts een klein deel van weefselsecties kunnen bevatten. Gedurende deze tijd bijzonder zou het inefficiënt zijn om immunokleuring voor Aß (en dubbele labeling voor andere cellulaire merkers zoals IBA1) gebruiken verschillende hersenplakjes alleen een kleine fractie die Ap-plaques op de juiste plaats op te leveren. Daarnaast injectie van levende muizen met methoxy-X04 voorafgaand aan het offeren en weefsel verwerking niet compromise de ultrastructurele behoud. Alternatieve werkwijzen zoals post-mortem kleuring met Congo Rood, Thioflavine S, Thioflavine T of methoxy-X04 op vaste weefselsecties vereisen kleuring differentiatie in ethanol, 8-11 die osmotische stress veroorzaakt en verstoort de ultrastructuur. Congo Rood is ook een bekend menselijk carcinogeen 12.

<table><tbody><tr><td>Methoxy-X04</td><td>Tocris Bioscience</td><td>4920</td><td>10 mg substraat per tablet</td></tr><tr><td>Propyleenglycol</td><td>Sigma Aldrich</td><td>W294004&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Dimethylsulfoxide (DMSO)</td><td>Fisher BioReagents</td><td>BP231-1</td><td>Let op: giftig</td></tr><tr><td>Natriumchloride NaCl</td><td>Sigma</td><td>S9625</td><td></td></tr><tr><td>Natriumfosfaatmonohydraat</td><td>Sigma</td><td>S9638</td><td></td></tr><tr><td>Natriumfosfaatdihydraat</td><td>Sigma</td><td>S0876</td><td></td></tr><tr><td>Tris-hydrochloride</td><td>Fisher BioReagents</td><td>BP153500</td><td></td></tr><tr><td>Acroleïne</td><td>Sigma</td><td>110221</td><td>Let op: giftig</td></tr><tr><td>Paraformaldehyde Korrelig</td><td>Electron Microscopy Sciences</td><td>19210</td><td>Let op: giftig</td></tr><tr><td>Filterpapier</td><td>Fisher</td><td>09-790-14F</td><td></td></tr><tr><td>Peristaltiekpomp met slang</td><td>ColeParmer</td><td>cp.78023-00</td><td></td></tr><tr><td>Excel Winged bloedafnamesetnaalden 25&nbsp;G</td><td>Becton Dickinson</td><td>367341</td><td></td></tr><tr><td>Extrafijne pincetten</td><td>F.S.T</td><td>11152-10</td><td>Tipvorm: gebogen</td></tr><tr><td>Schaar</td><td>F.S.T</td><td>14090-09</td><td>Tipvorm: recht</td></tr><tr><td>Hartman Hemostats</td><td>F.S.T</td><td>13003-10</td><td>Tipvorm: gebogen</td></tr><tr><td>Chirurgische schaar</td><td>F.S.T</td><td>14004-16</td><td>Tipvorm: recht</td></tr><tr><td>Micro dissectieschaar</td><td>ROBOZ chirurgische winkel</td><td>5818</td><td></td></tr><tr><td>Glazen scintillatie-vialen</td><td>Fisher Scientific</td><td>74515-20</td><td></td></tr><tr><td>Vibrationsblad microtoom Leica VT1000 S</td><td>Leica Biosystems&nbsp;</td><td>14047235612</td><td></td></tr><tr><td>Vibratoom messen</td><td>Electron microscopy Sciences</td><td>71990</td><td></td></tr><tr><td>Microscoopglazen</td><td>Fisher Scientific</td><td>12-550-15</td><td></td></tr><tr><td>24-well weefselkweekplaten</td><td>Fisher Scientific</td><td>353047</td><td></td></tr><tr><td>Ethyleenglycol</td><td>Fisher BioReagents</td><td>BP230-4</td><td></td></tr><tr><td>Glycerol</td><td>Fisher BioReagents</td><td>BP229-4</td><td></td></tr><tr><td>Waterstofperoxide, 30%</td><td>J.T.BAKER</td><td>cat: 2186-01</td><td></td></tr><tr><td>Natriumborohydride</td><td>Sigma</td><td>480886</td><td></td></tr><tr><td>Tris HCl</td><td>Fisher</td><td>BP153-500ML</td><td></td></tr><tr><td>Foetaal bovien serum (FBS)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>F1051</td><td></td></tr><tr><td>Bovine serumalbumine (BSA), fractie V</td><td>Thomas Scientific</td><td>C001H24</td><td></td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Sigma</td><td>T8787</td><td></td></tr><tr><td>Anti IBA1, Konijn&nbsp;</td><td>WAKO</td><td>019-19741</td><td></td></tr><tr><td>Geit Anti-Konijn IgG</td><td>Jackson Immunoresearch</td><td>111066046</td><td></td></tr><tr><td>VECTASTAIN Elite ABC Kit (Standard)</td><td>Vector Labs</td><td>PK-6100</td><td></td></tr><tr><td>3.3'-Diaminobenzidine tetra-hydrochloride (DAB)</td><td>Sigma</td><td>D5905-50TAB</td><td>Let op: giftig</td></tr><tr><td>Osmiumtetraoxide, 4% oplossing</td><td>Electron Microscopy Sciences</td><td>19150</td><td>Let op: giftig</td></tr><tr><td>Durcupan&trade; ACM enkelcomponent A</td><td>Sigma</td><td>44611</td><td>Hars Let op: giftig</td></tr><tr><td>Durcupan&trade; ACM enkelcomponent B</td><td>Sigma</td><td>44612</td><td>Verharder Let op: giftig</td></tr><tr><td>Durcupan&trade; ACM enkelcomponent C</td><td>Sigma</td><td>44613</td><td>Plastificeerder Let op: giftig</td></tr><tr><td>Durcupan&trade; ACM enkelcomponent D</td><td>Sigma</td><td>44614</td><td>Versneller Let op: giftig</td></tr><tr><td>Ethanol</td><td>LesAlcoolsdeComerce</td><td>151-01-15N</td><td></td></tr><tr><td>Propyleenoxide</td><td>Sigma</td><td>110205</td><td>Let op: corrosief</td></tr><tr><td>Aluminium weegschalen</td><td>Electron Microscopy Sciences</td><td>70048-01</td><td></td></tr><tr><td>ACLAR&reg;&ndash;Fluoropolymeerfolies</td><td>Electron Microscopy Sciences</td><td>50425</td><td></td></tr><tr><td>Oven/Incubator</td><td>VWR</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

correlatieve licht en electron microscopy om te studeren microgliale interacties met β-amyloïde plaques

Correlative Light and Electron Microscopy to Study Microglial Interactions with &#946;-Amyloid Plaques

Een gedetailleerd protocol is hier voorzien om amyloïde Aß plaques in de hersenen secties identificeren van de ziekte van Alzheimer muismodellen voor pre-inbedding immunokleuring (specifiek voor geïoniseerd calcium bindend adapter molecule 1 (IBA1), een calcium-bindend eiwit door microglia uitgedrukt) en de verwerking van weefsel voor elektronenmicroscopie (EM). Methoxy-X04 is een fluorescente kleurstof die de bloed-hersenbarrière doorkruist en selectief bindt aan P-geplooide platen in dichte kern Ap-plaques. Injectie van de dieren met methoxy-X04 voorafgaand aan het offeren en de hersenen fixatie laat pre-screening en selectie van de plaque met de hersenen secties voor verdere verwerking met tijdrovende manipulaties. Dit is vooral nuttig bij het bestuderen van vroege AD pathologie binnen specifieke hersengebieden of lagen die zeer weinig plaques, die aanwezig zijn in slechts een klein deel van de secties kan bevatten. Post-mortem verwerking van weefsel secties met Congo Red, Thioflavine S, en ThioflAvin T (of zelfs met methoxy-X04) kunnen labelen β-geplooide platen, maar vereist uitgebreide clearing met ethanol om overtollige verf te verwijderen en deze procedures niet verenigbaar zijn met ultrastructurele behoud. Ook zou het inefficiënt zijn om labeling uit te voeren voor Aß (en andere cellulaire merkers zoals IBA1) alle hersenplakjes van de gebieden van belang zijn, slechts een kleine fractie die Ap-plaques op de juiste plaats op te leveren. Belangrijk is Aß plaques zijn nog steeds zichtbaar na verwerking weefsel voor EM, waardoor een nauwkeurige identificatie van de gebieden (in het algemeen neer op een paar vierkante millimeters) te onderzoeken met de elektronenmicroscoop.

Deze sectie illustreert de resultaten die kunnen worden verkregen bij verschillende kritische stappen van het protocol. Met name de resultaten tonen voorbeelden van de hersenen secties met methoxy-X04 gekleurd plaques in specifieke regio en lagen van belang: de hippocampus CA1, lagen radiatum en lacunosum-moleculare. De plaques en regionale / lamellaire organisatie van de hippocampus achtereenvolgens gevisualiseerd door een combinatie van UV en helderveld filters (figuur 1).</str...

Dit artikel beschrijft een protocol voor het visualiseren Ap amyloïde plaques in de ziekte van Alzheimer muismodellen behulp methoxy-X04, die de bloed-hersenbarrière doorkruist en selectief bindt aan P-geplooide platen in dichte kern Ap-plaques. Hiermee pre-screening van plaque bevattende weefselcoupes voorafgaand aan immunokleuring en verwerking voor elektronenmicroscopie.

Correlatieve Licht en Electron Microscopy om te studeren Microgliale Interacties met β-amyloïde plaques

A detailed protocol is provided here to identify amyloid A&#946; plaques in brain sections from Alzheimer&#39;s disease mouse models before pre-embedding ...

Het algemene doel van deze procedure is het identificeren van bèta-amyloïde plaques in hersendoorsneden van muismodellen voor de ziekte van Alzheimer, voorafgaand aan de pre-embedding immunovleuring en weefselverwerking voor elektronenmicroscopie. Deze methode kan helpen bij het beantwoorden van kernvragen binnen het vakgebied van de neuroimmunologie, zoals de interactie van microgliacellen met de synaps nabij amyloïde bèta-plaques. Het belangrijkste voordeel van deze techniek is dat het mogelijk maakt om hersenweefselcoupes met amyloïde bèta-plaques in de regio's en lagen van belang vooraf te screenen.Hoewel deze methode kan worden toegepast op de ziekte van Alzheimer, kan deze ook worden toegepast op alle andere ziekten of weefsels waarbij amyloïdose aanwezig is. Bereid eerst een oplossing van methoxy-X04 met een concentratie van 5 mg/mL. Weeg met een microbalans 5 mg methoxy-X04 af.Los de methoxy X04 onder een zuurkast op in 100 microliters DMSO en roer tot er een heldere, groenachtige oplossing is verkregen. Voeg onder stirring opeenvolgend 450 microliters propyleenglycol en 450 microliters fosfaatgebufferde zoutoplossing toe. Laat de oplossing een nacht mengen bij vier graden Celsius.De volgende dag moet een geelgroene emulsie zichtbaar zijn. Na het injecteren van methoxy X04 met een dosis van 10 milligram per kilogram lichaamsgewicht en het offeren van het dier op het gewenste tijdstip volgens de goedgekeurde methoden, wordt het met paraformaldehyde gefixeerde brein drie keer gewassen met gekoelde PBS. Verwijder vervolgens met een scherp scheermesje de bulbus olfactorius en snijd het brein coronaal in twee tot drie stukken van ongeveer gelijke hoogte, die allemaal gelijktijdig gesneden kunnen worden om de procedure te versnellen.Plak de stukjes hersenweefsel op de objectglasplaat die in het bakje is bevestigd. Zorg ervoor dat het gladde snijvlak stevig aan de objectglasplaat hecht. Voeg PBS-oplossing toe aan het bakje totdat het gehele hersenoppervlak volledig is ondergedompeld.Plaats de houder in de vibratoom en stel de instellingen van de vibratoom zo in dat er coupes van 50 micron dikte worden verkregen. Begin met het snijden en breng de coupes bij onmiddellijke screening met een fijn penseel over naar PBS. Alternatief kunnen de coupes worden geplaatst in glazen vials met een cryoprotectieve oplossing voor bewaring bij 20 graden Celsius.Select met behulp van een stereotaxisch muizenbreinatlas brenhdoorsneden die de regio van belang bevatten en plaats elke doorsnede in cryoprotectant in een well van een 24-wells cultuurplaat. Gebruik vervolgens een wegwerppipet om een druppel PBS op een microscoopglasplaatje aan te brengen en plaats de doorsnede op de druppel. Onderzoek de doorsnede onder een fluorescentiemicroscoop om regio's te identificeren die methoxy X04-gelabelde a-beta plaques bevatten.Leg, zonder de microscooptafel te bewegen, beelden vast van de regio's van belang in zowel helderveld- als fluorescentiemodus. Elk beeld moet dezelfde regio in beide modi tonen om de plaque te kunnen correleren aan de structurele regio van de weefselsectie. Sla de gemaakte beelden op en benoem ze volgens het diernummer.Noteer daarnaast het putnummer in de plaat en het beeldveld van de gemaakte foto's. Plaats de sectie terug in de daarvoor bestemde put zodra de beeldvorming is voltooid. Onderzoek de volgende sectie in de reeks volgens dezelfde procedure om uitdroging van de secties te voorkomen.Om de afbeeldingen uit te lijnen, opent u de helderveld- en UV-veldopnamen van dezelfde ROI in ImageJ. Gebruik vervolgens de MosaicJ-plugin om de randen van de twee afbeeldingen op elkaar af te stemmen. Sla de uitgelijnde en gecombineerde afbeelding op op basis van het putnummer in een map met het nummer van het betreffende dier.Combineer de beelden van verschillende secties van hetzelfde dier om de plaques in het gebied van belang te identificeren en te lokaliseren. Bewaar de onderzochte secties na voltooiing van het screeningsproces bij 20 °C in een 24-wells kweekplaat met cryoprotectant totdat de immunokleuring of verdere verwerking wordt uitgevoerd. Bereid vervolgens een 1% osmiumtetroxide-oplossing in fosfaatbuffer voor in een glazen flacon.Aangezien osmiumtetroxide lichtgevoelig is, dient u het glazen vial met aluminiumfolie af te dekken om de oplossing tegen licht te beschermen. Verwijder na het wassen in fosfaatbuffer de buffer van de coupes en strijk ze vlak met een fijn penseel. Zorg ervoor dat de coupes direct vóór het toevoegen van osmiumtetroxide worden vlakgestreken, aangezien eventuele plooien in de coupes permanent worden en pogingen om het weefsel na osmiumfixatie vlak te maken enkel tot het breken van de coupes zullen leiden.Gebruik een transferpipet om osmiumtetroxide druppelsgewijs aan de coupes toe te voegen totdat de coupe volledig is ondergedompeld. Bedek het putje met aluminiumfolie om de coupes tegen licht te beschermen en laat dit 30 minuten incuberen bij kamertemperatuur. Bereid tijdens deze incubatie de plastic hars voor in een wegwerpbeker.Combineer de componenten in de aangegeven volgorde en meng deze goed met een serologische pipette van 10 milliliter totdat een uniforme kleur is verkregen. Breng het bereide mengsel over in aluminium weegschaaltjes. Hierin worden de weefselcoupes geplaatst zodra ze zijn gedehydrateerd.Zodra de incubatietijd is verstreken, worden de coupes gedehydrateerd in ethanol met toenemende concentraties gedurende telkens twee minuten. Verplaats de gedehydrateerde coupes van de 24-wells cultuurplaat naar glazen flesjes van 20 milliliter. Dompel de coupes vervolgens drie keer gedurende telkens twee minuten in propylenoxide om resterende ethanol te verwijderen.Gebruik vervolgens een gebogen glazen pipetpunt of een fijn penseel om de coupes van de propyleenoxide-oplossing over te brengen naar de plastic hars en laat deze een nacht bij kamertemperatuur infiltreren. Plaats na de infiltratie de aluminium weegschaaltjes met de specimens gedurende 10 tot 15 minuten in een oven van 50 tot 60 °C. Om coupes in te bedden op polychloortrifluoretheleen-folievels, wordt eerst een fijn penseel gebruikt om een dunne laag hars op de coupe aan te brengen.Verplaats vervolgens één voor één de weefselsecties van een aluminium weegschaaltje naar de PCTFE-filmfolie. Verwijder overtollige hars rondom het weefsel, waarbij u er alert op let het weefsel niet te verschuiven. Nadat alle secties van één weegschaaltje naar de PCTFE-filmfolie zijn verplaatst, wordt een tweede PCTFE-vel over het eerste geplaatst, waardoor het weefsel en de hars als een sandwich tussen de twee vellen komen te liggen.Polymeriseer de hars gedurende drie dagen in een incubator bij 55 tot 60 °C. Het weefsel is vervolgens klaar voor ultradunne doorsneden en ultrastructureel onderzoek. De volgende afbeeldingen tonen duale beeldvorming van één hippocampale sectie met gebruik van helderveld- en fluorescentiemodi.De regio's en lagen van belang worden gevisualiseerd onder helderveldmicroscopie. De a-beta-plaques worden succesvol gelokaliseerd met behulp van een UV-filter in het bereik van 340 tot 380 nanometer. Deze afbeelding toont een hippocampussectie vóór de pre-embedding immunostaining voor IBA1.Een zichtbare plaque is omcirkeld door de stippellijn. Deze afbeelding toont dezelfde sectie na pre-embedding immunostaining voor IBA1 en verwerking voor transmissie-elektronenmicroscopie. Let op dat de plaque die door een stippellijn is omcirkeld, nog steeds zichtbaar is na weefselverwerking voor elektronenmicroscopie.Zodra dit protocol onder de knie is, kan het in één week worden voltooid mits correct uitgevoerd. Tijdens het uitvoeren van deze procedure is het belangrijk om te onthouden dat elke stap nauwgezet moet worden doorgevoerd om de kans op contaminatie en andere structurele degradatie, die de kwaliteit van de monsters beïnvloedt, te verminderen. Vergeet niet dat werken met osmium uiterst gevaarlijk kan zijn; neem daarom altijd voorzorgsmaatregelen, zoals het dragen van een laboratoriumjas en handschoenen tijdens het uitvoeren van deze procedure.Zorg ervoor dat u dit na gebruik aan het einde van uw experiment weggooit in overeenstemming met de richtlijnen van uw instelling.

correlative-light-electron-microscopy-to-study-microglial

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Neurowetenschap

Een van de pathologische kenmerken van AD is de vorming van amyloïde eiwit β positief neuritische plaques. In dit protocol beschrijven we twee methoden om seniele plaques op te sporen in transgene muizen die model AD: immunohistochemische detectie met behulp van de ABC-en DAB-methode en fluorescerende detectie met behulp van thioflavin S kleuringsmethode.

Detectie van neuritische plaques in de ziekte van Alzheimer Mouse Model

Source: Bisht, K., et. al. Correlative Light and Electron Microscopy to Study Microglial Interactions with β-Amyloid Plaques. J. Vis. Exp. (2016) This video demonstrates the visualization and mapping of Methoxy-X04-labeled amyloid plaques in Alzheimer’s disease mouse brain sections using fluorescence and bright-field microscopy, enabling precise correlation of plaques with anatomical structures for studying Alzheimer’s pathology.

Visualization and Mapping of Methoxy-X04-Labeled Amyloid Plaques in an Alzheimer’s Disease Mouse Brain Section

Microglia-activatie en microgliose zijn de belangrijkste reacties op chronische neurodegeneratie. Hier presenteren we werkwijzen voor in vivo visualisatietechnieken retinale CX3CR1-GFP + cellen door microgliale confocale Ophthalmoscopie, en drempel en morfometrische analyses worden geïdentificeerd en gekwantificeerd hun activering. We monitoren microglia veranderingen tijdens de vroege stadia van leeftijdsgebonden glaucoom.

In Vivo Dynamiek van retinale Microgliale Activering Tijdens Neurodegeneratie: Confocal oftalmoscopisch Imaging en Cell Morphometry in Mouse Glaucoom

Er wordt een methode beschreven waarbij quantum dot (QD) nanodeeltjes kunnen worden gebruikt voor correlatieve immunocytochemische studies van in epoxy ingebed weefsel van menselijke pathologie. We gebruiken commerciële antilichaamfragment-geconjugeerde QD's die worden gevisualiseerd door breedveldfluorescentielichtmicroscopie en transmissie-elektronenmicroscopie.

Correlatieve licht- en elektronenmicroscopie met behulp van Quantum Dot Nanodeeltjes

Dit manuscript beschrijft een procedure om de herinrichting van de cerebrovasculature volgen tijdens amyloïde plaque accumulatie in vivo met behulp van longitudinale twee-foton microscopie. Een uitgedunde schedel bereiden voor de visualisatie van fluorescente kleurstoffen om de progressie van cerebrovasculaire schade te beoordelen in een muizenmodel van de ziekte van Alzheimer.

lengte-<em&gt; In Vivo</em&gt; Imaging van de Cerebrovasculature: Relevantie voor CNS ziekten

Amyloïde afzetting is een kenmerk van verschillende ziekten en treft vele verschillende organen. Deze paper beschrijft de toepassing van de fluorescentie van de verlichte geconjugeerd oligothiophene in combinatie met fluorescentie microscopie technieken kleuring. Deze kleuringstechniek vertegenwoordigt een krachtige tool voor de detectie en verkenning van eiwit-aggregaten in zowel klinische en wetenschappelijke opstellingen.

Imaging amyloïde weefsels gekleurd met verlichte geconjugeerd Oligothiophenes door hyperspectrale Confocal Microscopie en fluorescentie levensduur Imaging

Moleculaire beeldvorming met laser matrix-bijgewoonde desorptie/ionisatie gebaseerde imaging massaspectrometrie (MALDI-IMS) kan de gelijktijdige koppeling van meerdere analyten in biologische monsters. Hier presenteren we een protocol voor de detectie en de visualisatie van amyloïde β eiwit op weefsels van de hersenen van Alzheimer en Cerebrale amyloïde angiopathie monsters met behulp van MALDI-IMS.

Visualisatie van amyloïde β-deposito's in de menselijke hersenen met Laser Matrix-bijgewoonde desorptie/ionisatie massaspectrometrie Imaging

Het doel van dit protocol is bedoeld als een cel-gebaseerd systeem dat wordt uitgevoerd, de vorming van alpha-synuclein repliceert aggregaten in vivo. Alpha-synuclein intracellulaire insluitsels worden overgeënt in primaire neuronen door de internalisering en verspreiding van exogene toegediend aggregaten van inheemse microsomes-geassocieerde alpha-synuclein geïsoleerd van zieke alpha-synuclein transgene muizen.

Exogene toediening van Alpha-synuclein Microsomes-geassocieerde aggregaten te primaire neuronen als een krachtige cel Model van de vorming van fibrillen

We presenteren hier een protocol over het voorbereiden van primaire culturen van gliacellen, astrocyten en microglia uit rattencorticosterces voor time-lapse videobeeldvorming van intracellulaire Ca2+ voor onderzoek naar pathofysiologie van amyotrofische laterale sclerose in het hSOD1G93A-rattenmodel .

Primaire culturen van rat astrocyten en microglia en hun gebruik in de studie van amyotrofische laterale sclerose

Dit artikel demonstreert een methode om microglia-motiliteit en contact met postsynaptische puncta in het netvlies te visualiseren en te kwantificeren met behulp van spinning disk confocale microscopie.

Live beeldvorming en karakterisering van microglia-dynamica en interacties met synapsen in een zieke muisnetvlies

Leer correlatieve licht- en elektronenmicroscopie om microgliale interacties met β-amyloïde plaques te bestuderen in muismodellen voor de ziekte van Alzheimer. Deze methode maakt prescreening van weefsel mogelijk.

Correlatieve Licht en Electron Microscopy om te studeren Microgliale Interacties met β-amyloïde plaques

Meer video's verkennen