Name: Mouse Microchirurgie Infusion Techniek voor gerichte afgifte van een substantie in het centraal zenuwstelsel via De interne halsslagader (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-01-31T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 41 s
Description: Leer een microchirurgische infusietechniek bij muizen voor gerichte afgifte van substanties in het centrale zenuwstelsel via de interne halsslagader. Deze methode minimaliseert trauma en behoudt de neuronale integriteit.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

We willen Dr. Lei Chen (Icahn School of Medicine at Mount Sinai, NY) bedanken die als eerste het gebruik van dit model in ons laboratorium heeft vastgesteld, en Dr. Gretchen Wolff (German Cancer Research Center, Heidelberg, Duitsland) voor het verspreiden van de techniek in ons laboratorium. Gedeeltelijk ondersteund door HL126559, DA039576, MH098891, MH63022, MH072567, DA027569 en NSC 2015/17/B/NZ7/02985.

De betrokken bij de volgende protocol procedures zijn goedgekeurd door de Universiteit van Miami Institutional Animal Care en gebruik Comite (IACUC). Daarnaast worden alle procedures worden uitgevoerd in voorzieningen die door de Vereniging voor evaluatie en accreditatie van Laboratory Animal Care International (AAALAC) goedgekeurd. 1. Voorbereiding van de muizen voor Heelkunde <ol><li> Verdoven muis met isofluraan gemengd met zuurstof met een klinisch anesthesiesysteem. Gebruik isofluraan bij het instellen van tussen 4-5% en zuurstoftoevoer bij 2 L / min op de commerciële machine (zie Materials tabel). Breng het dier de operatie oppervlak onder een stereomicroscoop en sustain anesthesie via een neuskegel (gebruik isofluraan instelling 1,5-2,5 en zuurstoftoevoer bij 2 l / min). <ol><li> Zorg ervoor dat de muis ademfrequentie is ongeveer 1-2 ademhaling / sec zonder hijgen. Daarnaast is ervoor te zorgen dat het dier snorharen stimulatie reactie en pedaal r vertoontEflex (teen knijpen). Monitor ademhaling en inspanning tijdens de operatie, ten minste om de 5 min. Volg specifieke Institutional Animal Care en gebruik Comite en veterinaire richtlijnen voor knaagdieren anesthesie monitoring. </li></ol></li><li> Breng een druppel oftalmische smeermiddel op elk oog met een steriel wattenstaafje om uitdroging te voorkomen. Toediening van anti-inflammatoire en analgetische te verlichten ongemak aanbevolen. </li><li> Met het dier op zijn rug, handhaven anesthesie via een neuskegel. </li><li> Reinig nek van het dier door vegen het gebied drie keer met ethanol 70% en chloorhexidine. Scheer operatie gebied van het dier met behulp van een scheermes (hieronder). </li></ol> 2. Dissectie van de halsslagader (CCA) <ol><li> Voer de gehele microchirurgie procedure onder een stereomicroscoop. Gebruik chirurgische schaar en forceps uitvoeren van een ondiepe middellijn incisie in de nek, van boven het borstbeen tot onder tHij kaak (ongeveer 3-4 cm). </li><li> Met behulp van pincet voorzichtig gescheiden vet en bindweefsel de luchtpijp bloot. </li><li> Plaats een kussen (rond voorwerp, ongeveer 0,5 cm diameter) op de achterkant van de hals van de muis om de hals te verlengen, het gebied verder blootstellen. </li><li> Scheid het weefsel met behulp van een weefselhaak of haken. </li><li> Aan de linkerkant van de luchtpijp van het dier voorzichtig tweeze behalve het bindweefsel naar links CCA bloot. </li><li> Met behulp van een tang verwijder zorgvuldig alle bindweefsel aan de CCA bifurcatie bloot te leggen, en het begin van zowel externe als interne halsslagaders. </li></ol> 3. Voorbereiding van de CCA voor Substance Infusion <ol><li> Plaats twee segmenten van nylon hechtdraad (ongeveer 1 cm per stuk) in het kader van de externe halsslagader (ECA), met behulp van een tang. </li><li> Plaats een permanente knoop op het hoogste punt mogelijk van de Europese Rekenkamer. </li><li> Op het laagste punt mogelijk van de Rekenkamer, direct boven de CCA bifurcatie, plaatseen verwijderbare knoop. Deze knoop moet los in vergelijking met de bovenste knoop. </li><li> Sluit de CCA met behulp van een schip clip, tegen de laagst mogelijke punt. </li><li> Sluit de interne halsslagader (ICA) met behulp van een vat clip. </li><li> Met behulp van microdissectie voorjaar een schaar het uitvoeren van een kleine snede in de ECA (ongeveer 2 mm), tussen de twee knopen. </li></ol> 4. Ten gronde Infusion via ICA <ol><li> Monteer een infusie-systeem. Bevestig 6 inches van de capillaire buis (ideale afmetingen: 2,5 mm x 1,2 mm) om een ​​tuberculine spuit met 250 ul van de stof te worden toegediend (drugs, pathogenen, extracellulaire blaasjes, onder anderen) en steek de capillaire tip voorzichtig in de incisie uitgevoerd in stap 3,6. </li><li> Ga verder af te glijden de capillaire totdat het een middelpunt tussen de splitsing en de clip sluiten van de CCA bereikt. </li><li> Bind de onderste ECA knoop. Controleer of de knoop is los genoeg om capillaire doorstroming mogelijk te maken en strak genoeg om te voorkomen dat leaking. </li><li> Verwijder clip van de ICA. </li><li> Voorzichtig druk op de spuit zuiger waardoor stof infusie met ongeveer 10 gl per seconde. </li></ol> 5. Plaats Infusion Procedures <ol><li> Plaats clip terug op de ICA. </li><li> Verwijder voorzichtig de capillaire buis. </li><li> Bind de onderste ECA knoop volledig. </li><li> Verwijder clips van de ICA en de CCA. </li></ol> 6. incisie sluiten en postoperatieve zorg <ol><li> Verwijder retractor of weefsel haken en kussen. </li><li> Clean hechtdraad gebied met behulp van een steriele zoutoplossing. </li><li> Sluit de incisie met behulp van nylon hechtdraad / naald en tang. </li><li> Dien anti-inflammatoire en analgetische postoperatieve pijn verlichten. </li><li> Plaats dier in de kooi geplaatst op verwarming pad gedurende ten minste 1 uur en de monitor herstel. </li></ol>

<ol><li>Chen, L., Swartz, K. R., Toborek, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vessel+microport+technique+for+applications+in+cerebrovascular+research%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Res%22%5BJournal%5D)">Vessel microport technique for applications in cerebrovascular research.</a> J Neurosci Res. 87 (7), 1718-1727 (2009).</li>
<li>Frisella, W. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intracranial+injection+of+recombinant+adeno-associated+virus+improves+cognitive+function+in+a+murine+model+of+mucopolysaccharidosis+type+VII%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Ther%22%5BJournal%5D)">Intracranial injection of recombinant adeno-associated virus improves cognitive function in a murine model of mucopolysaccharidosis type VII.</a> Mol Ther. 3 (3), 351-358 (2001).</li>
<li>Wei, L., Erinjeri, J. P., Rovainen, C. M., Woolsey, T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Collateral+growth+and+angiogenesis+around+cortical+stroke%5BTitle%5D)+AND+%22Stroke%22%5BJournal%5D)">Collateral growth and angiogenesis around cortical stroke.</a> Stroke. 32 (9), 2179-2184 (2001).</li>
<li>Wu, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeted+delivery+of+methotrexate+to+epidermal+growth+factor+receptor-positive+brain+tumors+by+means+of+cetuximab+%28IMC-C225%29+dendrimer+bioconjugates%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Cancer+Ther%22%5BJournal%5D)">Targeted delivery of methotrexate to epidermal growth factor receptor-positive brain tumors by means of cetuximab (IMC-C225) dendrimer bioconjugates.</a> Mol Cancer Ther. 5 (1), 52-59 (2006).</li>
<li>Pignataro, G., Studer, F. E., Wilz, A., Simon, R. P., Boison, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuroprotection+in+ischemic+mouse+brain+induced+by+stem+cell-derived+brain+implants%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cereb+Blood+Flow+Metab%22%5BJournal%5D)">Neuroprotection in ischemic mouse brain induced by stem cell-derived brain implants.</a> J Cereb Blood Flow Metab. 27 (5), 919-927 (2007).</li>
<li>Sugiyama, Y., Kusuhara, H., Suzuki, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Kinetic+and+biochemical+analysis+of+carrier-mediated+efflux+of+drugs+through+the+blood-brain+and+blood-cerebrospinal+fluid+barriers%3A+importance+in+the+drug+delivery+to+the+brain%5BTitle%5D)+AND+%22J+Control+Release%22%5BJournal%5D)">Kinetic and biochemical analysis of carrier-mediated efflux of drugs through the blood-brain and blood-cerebrospinal fluid barriers: importance in the drug delivery to the brain.</a> J Control Release. 62 (1-2), 179-186 (1999).</li>
<li>Pardridge, W. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drug+and+gene+delivery+to+the+brain%3A+the+vascular+route%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Drug and gene delivery to the brain: the vascular route.</a> Neuron. 36 (4), 555-558 (2002).</li>
<li>Vantyghem, S. A., Postenka, C. O., Chambers, A. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Estrous+cycle+influences+organ-specific+metastasis+of+B16F10+melanoma+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Estrous cycle influences organ-specific metastasis of B16F10 melanoma cells.</a> Cancer Res. 63 (16), 4763-4765 (2003).</li>
<li>Huang, R. Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+gene+delivery+targeted+to+the+brain+using+a+transferrin-conjugated+polyethyleneglycol-modified+polyamidoamine+dendrimer%5BTitle%5D)+AND+%22FASEB+J%22%5BJournal%5D)">Efficient gene delivery targeted to the brain using a transferrin-conjugated polyethyleneglycol-modified polyamidoamine dendrimer.</a> FASEB J. 21 (4), 1117-1125 (2007).</li>
<li>Liu, R., Martuza, R. L., Rabkin, S. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intracarotid+delivery+of+oncolytic+HSV+vector+G47Delta+to+metastatic+breast+cancer+in+the+brain%5BTitle%5D)+AND+%22Gene+Ther%22%5BJournal%5D)">Intracarotid delivery of oncolytic HSV vector G47Delta to metastatic breast cancer in the brain.</a> Gene Ther. 12 (8), 647-654 (2005).</li>
<li>Kumar, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transvascular+delivery+of+small+interfering+RNA+to+the+central+nervous+system%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Transvascular delivery of small interfering RNA to the central nervous system.</a> Nature. 448 (7149), 39-43 (2007).</li>
<li>Wrobel, J. K., Wolff, G., Xiao, R., Power, R. F., Toborek, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dietary+Selenium+Supplementation+Modulates+Growth+of+Brain+Metastatic+Tumors+and+Changes+the+Expression+of+Adhesion+Molecules+in+Brain+Microvessels%5BTitle%5D)+AND+%22Biol+Trace+Elem+Res%22%5BJournal%5D)">Dietary Selenium Supplementation Modulates Growth of Brain Metastatic Tumors and Changes the Expression of Adhesion Molecules in Brain Microvessels.</a> Biol Trace Elem Res. , (2015).</li>
</ol>

De auteurs hebben niets te onthullen.

De infusie microchirurgie beschreven is zeer succesvol gebleken bij het leveren exogene stoffen van verschillende biologische functies in het centraal zenuwstelsel en voorkomt verspreiding door het lichaam 1, 12 te zijn. Verstoring van de bloed-hersenbarrière is een pathologisch kenmerk van verschillende CNS-gerelateerde aandoeningen; dus de beoordeling van de relatie van exogene stoffen met de bloed-hersenbarrière is van groot belang en het belang. <p class...

In vivo modellering van het centraal zenuwstelsel (CNS) aandoeningen vereisen een effectieve aflevering van exogene stoffen, zoals geneesmiddelen, pathogenen of exosomes, in de hersenen. Daartoe moet een ideale levermethode minimaal trauma veroorzaken aan het dier, de integriteit van het neurale netwerk en het bereiken van hoge concentraties van stoffen in de hersenen 1. Verschillende chirurgische methoden plaatselijke afgifte van een substantie zijn beschreven, inclusief interne schede, intracerebrale, intraventriculaire en injecties of implantaten 2, 3, 4, 5. Deze benaderingen zijn echter traumatische beschouwd als de CNS, en laat het beheer van slechts kleine hoeveelheden van de stof van belang. Bovendien is gesuggereerd dat exogene stoffen snel kunnen worden verwijderd door de cerebrospinale vloeistof 6 </sup&gt; en een lage penetratie bereik om de hersenparenchym waargenomen bij 7 van de bovengenoemde technieken worden gebruikt. Systemische afgifte werkwijzen, zoals orale, pulmonaire, subcutane, en intraveneuze routes worden vaker gebruikt in diermodellen, hoewel ze lage werkzaamheid vertonen in het leveren van de stoffen aan het CNS, door opname van andere organen 8, 9. Daarom zijn deze toedieningsroutes vereisen verhoogde doses voor toediening van stoffen, waardoor het risico op bijwerkingen en toxiciteit 10, 11. Hier beschrijven we een muis infusie microchirurgie technieken, die effectief levert stoffen rechtstreeks in de hersenen via de inwendige halsslagader. Naast richt de aflevering aan het centrale zenuwstelsel, is deze techniek niet voorbij normale fysiologische barrières en reden belangrijk biological-processen voor passages therapeutica of pathogenen in de hersenen.

<table><tbody><tr><td>Anesthesie-instrument</td><td>Vetequip</td><td>901806</td><td></td></tr><tr><td>Chirurgische schaar</td><td>Fine Science Tool</td><td>14558-09</td><td></td></tr><tr><td>Chirurgische pincet rechte punt</td><td>Fine Science Tool</td><td>00108-11</td><td></td></tr><tr><td>Chirurgische pincet gebogen punt</td><td>Fine Science Tool</td><td>00109-11</td><td></td></tr><tr><td>Veer schaar</td><td>Fine Science Tool</td><td>15000-08</td><td></td></tr><tr><td>Nylon hechtdraad</td><td>Braintree Scientific</td><td>SUT-S 104</td><td></td></tr><tr><td>Capillaire buis (Micro-Renathane 0,010&rdquo; x 0,005&rdquo; per ft.)&nbsp;</td><td>Braintree Scientific</td><td>MRE01050</td><td></td></tr><tr><td>Sluithechtdraad</td><td>VWR</td><td>95057-036</td><td></td></tr><tr><td>Isofluraan</td><td>Piramal</td><td></td><td></td></tr><tr><td>2,3,5-Trifenyltetrazolichloride</td><td>FisherScientific</td><td>50-121-8005</td><td></td></tr></tbody></table>

mouse microchirurgie infusion techniek voor gerichte afgifte van een substantie in het centraal zenuwstelsel via de interne halsslagader

Mouse Microsurgery Infusion Technique for Targeted Substance Delivery into the CNS via the Internal Carotid Artery

Dierdierenmodellen van centrale zenuwstelsel (CZS) ziekten en, bijgevolg, bloed-hersenbarrière verstoringen, vereisen de toediening van exogene stoffen in de hersenen. Deze exogene stoffen kunnen schadelijk zijn of een therapeutische strategie vormen. De meest gebruikelijke methoden voor de toediening van exogene stoffen in de hersenen zijn gebaseerd op systemische toedieningen, zoals subcutane of intraveneuze routes. Hoewel veel gebruikt, hebben deze benaderingen verschillende beperkingen, waaronder een lage efficintie van de toediening in de hersenen. In tegenstelling tot dit, zijn chirurgische methoden die lokaal stoffen in het CZS afleveren, specifieker en voorkomen de opname van de exogene stoffen door andere organen. Er zijn verschillende chirurgische methoden voor CZS-toediening beschikbaar; echter, deze zijn vaak zeer traumatisch. Hier beschrijven we een microchirurgietechniek voor muizeninfusie, die stoffen effectief in de hersenen aflevert via de interne halsslagader, met minimaal trauma en zonder interferentie met de normale CZS-functionaliteit.

De muis infusie microchirurgische techniek beschreven is zeer veelzijdig en is gebruikt om verschillende stoffen te leveren rechtstreeks in de hersenen, inclusief de levering van tumorcellen in een representatief model van hersenmetastasen vorming 1, 12. Deze techniek is ook geschikt voor de pathologische aspecten van verschillende pathogenen in het CZS te beoordelen. ...

Het huidige protocol beschrijft een microchirurgie-infusietechniek bij muizen, die stoffen effectief rechtstreeks in de hersenen afgeeft via de interne halsslagader.

Mouse Microchirurgie Infusion Techniek voor gerichte afgifte van een substantie in het centraal zenuwstelsel via De interne halsslagader

Animal models of central nervous system (CNS) diseases and, consequently, blood-brain barrier disruption diseases, require the delivery of exogenous ...

Het algemene doel van deze chirurgische techniek is om exogene stoffen in de muizenhersenen te brengen zonder het schedeldak te penetreren. Deze methode kan helpen bij het beantwoorden van belangrijke vragen in de neurowetenschappen over de werking van geneesmiddelen, pathogenen en exosomen in de hersenen. Het belangrijkste voordeel van deze techniek is dat het minimaal letsel veroorzaakt bij het dier, de integriteit van het neuronale netwerk behoudt en hoge concentraties van de stof in de hersenen bereikt.Begin door isofluraan gemengd met zuurstof toe te dienen om de muis te anesthetiseren in een inductiekamer. Na inductie van de anesthesie, brengt u het dier over naar het operatietafeltje onder een stereomicroscoop en plaatst u de neuskonus om een chirurgisch niveau van anesthesie te handhaven. Zorg ervoor dat de ademhalingssnelheid ongeveer één tot twee ademhalingen per seconde is zonder naar lucht te happen.Zorg er ook voor dat het dier niet reageert op snorhaarstimulatie of een teenprikken. Gebruik een steriele wattenstaafje om een druppel ooftlube op elk oog aan te brengen om uitdroging te voorkomen. Na het scheren van de operatieplaats met een scheermesje, bereidt u het gebied voor met 70% ethanol en chloorhexidine.Terwijl u door de stereomicroscoop kijkt, gebruikt u chirurgische schaar en pincetten om een middenlijnsnede in de nek te maken van boven het borstbeen tot onder de kaak. Gebruik pincetten om voorzichtig vet- en bindweefsel te scheiden om de luchtpijp bloot te leggen. Plaats vervolgens een zacht, rond object van ongeveer halve centimeter diameter onder de achterkant van de nek om de nek te strekken en het gebied verder bloot te leggen.Separeer vervolgens het weefsel rond de luchtpijp met behulp van haken of een weefselretractor. Aan de linkerkant van de luchtpijp, scheidt u voorzichtig het bindweefsel om de linker gemeenschappelijke halsslagader, of CCA, bloot te leggen. Gebruik pincetten om voorzichtig al het bindweefsel te verwijderen om de CCA-bifurcatie aan het begin van zowel de externe als interne halsslagader bloot te leggen.Zodra de ECA en ICA blootliggen, gebruikt u pincetten om een segment van een centimeter nylondraad onder de externe halsslagader te plaatsen. Plaats vervolgens een tweede segment van een centimeter. Bind vervolgens een permanente knoop op het hoogste mogelijk punt van de ECA.Op het laagste mogelijk punt van de ECA, onmiddellijk boven de CCA-bifurcatie, bindt u een lossere, verwijderbare knoop. Gebruik vervolgens vaatclips om de CCA op het laagst mogelijke punt te sluiten, en om de ICA te sluiten. Het juist sluiten van de interne halsslagader voordat u een kleine snede maakt in de externe halsslagader, voorkomt bloeding.Maak nu, met behulp van microdissectiesprongschaar, een snede van twee millimeter in de ECA tussen de twee knopen. Het is belangrijk om de sneden klein te houden, omdat een grote snede lekkage van de te infunderen stof zal veroorzaken. Monteer het infuussysteem door zes centimeter capillaire buis aan te sluiten op een tuberculine-spuit bevattend 250 microliters van de te infunderen stof.Breng vervolgens voorzichtig de punt van de capillaire buis in de snede in de ECA in. Blijf de punt voortschuiven tot deze halverwege tussen de bifurcatie en de clip op de CCA aankomt. Bind de onderste ECA-knoop vast.Controleer of de knoop los genoeg is om capillaire vloeibaarheid toe te laten, en strak genoeg om lekkage te voorkomen. Verwijder vervolgens de clip van de ICA. Oefen voorzichtig druk uit op de spuitpomp, waardoor de stof ongeveer 10 microliters per seconde wordt ingespoten.Na infusie van de testsubstantie, plaatst u de clip terug op de ICA. Verwijder voorzichtig de capillaire buis. Bind vervolgens de onderste ECA-knoop volledig vast.Verwijder de clip van de ICA en de CCA. Verwijder vervolgens de retractor of weefselhaken en het kussen. Reinig het te naaien gebied met steriele zoutoplossing en sluit vervolgens de snede met nylondraad.Na toediening van een goedgekeurd ontstekingsremmend middel en pijnstiller om postoperatieve ongemakken te verlichten, plaatst u het dier in een kooi op een verwarmingsmat gedurende minstens een uur en bewaakt u het herstel. Deze histogram toont HIV-detectie door real-time PCR's zeven dagen na virale infusie via de linker interne halsslagader. Zoals verwacht, zijn de virusniveaus hoger in de linker hersenhelft.Deze immunofluorescence-afbeelding toont een muizenhersencel die GFP-tag CD63, een exosome marker, toont na infusie van extracellulaire vesikel via de interne halsslagader. De CD63-expresserende extracellulaire vesikels, getoond in groen, zijn geassocieerd met de muizenhersen microvaten. Eenmaal beheerst, kan deze techniek in 20 minuten worden uitgevoerd als deze correct wordt uitgevoerd.Na de ontwikkeling van deze techniek, heeft dit de weg gebaand voor onderzoekers op het gebied van neurodegeneratieve ziekten om geneesmiddelen, pathogenen en exosome interacties in muizen te onderzoeken.

mouse-microsurgery-infusion-technique-for-targeted-substance-delivery

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Neurowetenschap

Als neurowetenschappen onderzoek wordt meer geavanceerde, het onderzoek van de hersenen structuren en circuits vereist verbeterde niveaus van nauwkeurigheid en hogere resolutie. We hebben een methode ontwikkeld voor de voorbereiding en de implantatie van een chronische infusie-systeem in de hersenen met behulp van een borosilicate microcannula met een tip diameter van 50 micron.

Bouw en Implantatie van een Microinfusion systeem voor duurzame levering van neuroactive Agents.

Source: Zamboni, M., et al., Induction of Leptomeningeal Cells Modification Via Intracisternal Injection. J. Vis. Exp. (2020)This video demonstrates the procedure of delivering an inducer drug into the cisterna magna of an anesthetized mouse. The injection selectively induces fluorescent marker expression in brain surface cells accessible via cerebrospinal fluid, confirmed by fluorescence imaging.

Targeted Drug Delivery in a Mouse Model via Cisterna Magna Injection

Source: Lim, M., et al. Modeling Brain Metastasis by Internal Carotid Artery Injection of Cancer Cells. J. Vis. Exp. (2022)In this video, an anesthetized mouse undergoes a surgical procedure in which cancer cells are injected into the common carotid artery (CCA) to facilitate targeted delivery to the brain. The procedure involves precise suturing and manipulation of the carotid arteries to direct the injected cells toward the internal carotid artery (ICA), promoting tumor formation in the brain...

Modeling Brain Tumor Metastasis via Internal Carotid Artery Injection of Cancer Cells

Source: Leda, A. R., et al. Mouse Microsurgery Infusion Technique for Targeted Substance Delivery into the CNS via the Internal Carotid Artery. J. Vis. Exp. (2017)This video demonstrates a microsurgical procedure designed to facilitate the targeted infusion of a test substance into the brain via the internal carotid artery (ICA). The procedure involves precise suturing and vascular manipulation to temporarily restrict blood flow, ensuring controlled delivery. A capillary tube is inserted into...

Targeted Substance Delivery to the Mouse Brain via Infusion into the Internal Carotid Artery

Bloed-hersen barrière verstoring helpt de levering van bepaalde geneesmiddelen naar de hersenen. Mannitol geleverd intra-arterieel krimpt cellen rondom de bloedvaten om fysiek verstoren de barrière.

Rat Model van bloed-hersen barrière Verstoring toestaan ​​Gerichte Neurovasculaire Therapeutics

Brain metastase is uitgegroeid tot een dringende onvervulde medische noodzaak als de incidentie is toegenomen, terwijl de therapeutische opties palliatieve zijn gebleven. Het creëren van experimentele diermodellen van de hersenen metastase via intracarotid arteriële injectie van kankercellen vergemakkelijkt mechanistische studies van de ziekte biologie en de evaluatie van nieuwe interventies regimes.

Intracarotid Cancer Cell Injection aan muismodellen van Brain metastase Produce

Een methode voor het leveren van neurale stamcellen, aanpasbaar voor het injecteren van oplossingen of schorsingen, via de gemeenschappelijke halsslagader (muis) of externe halsslagader (rat) na ischemische beroerte wordt gemeld. Geïnjecteerde cellen worden breed verspreid over de hersenen parenchyma en kan worden gedetecteerd tot 30 d na de bevalling.

Intra-arteriële levering van neurale stamcellen aan de Rat en Mouse Brain: Toepassing op cerebrale ischemie

Hersenmetastase is een oorzaak van ernstige morbiditeit en mortaliteit bij kankerpatiënten. De meeste muismodellen voor hersenmetastasen worden gecompliceerd door systemische metastasen die de analyse van mortaliteit en therapeutische interventie-uitkomsten verstoren. Hier gepresenteerd is een protocol voor interne carotisinjectie van kankercellen dat consistente intracraniale tumoren produceert met minimale systemische tumoren.

Modellering van hersenmetastase door interne halsslagaderinjectie van kankercellen

Reparatie van de slagader in een muismodel na injectie zorgt ervoor dat het bloed weer naar de slagader stroomt zonder de verdeling van het geïnjecteerde materiaal negatief te beïnvloeden. Reparatie op de injectieplaats vergemakkelijkt volgende injecties via dezelfde slagader en voorkomt cerebrale ischemie bij muizenstammen die geen volledige Circle of Willis hebben.

Het vergemakkelijken van herhaalde intracarotisinjecties in muismodellen door een nieuwe techniek voor het herstellen van de injectieplaats

Hier presenteren we een protocol om de immuuncelfunctie na een ischemische beroerte te beoordelen met behulp van flowcytometrische analyse in een mini-beroertemodel. Deze methode maakt gedetailleerd onderzoek van neuro-immuuninteracties mogelijk en kan worden aangepast voor het bestuderen van andere neurodegeneratieve ziekten, waardoor ons begrip van immuunresponsen bij beroertepathologie wordt vergroot.

Isolatie en flowcytometrische beoordeling van neuro-immuuninteracties in een mini-beroerte muizenmodel

Leer een microchirurgische infusietechniek bij muizen voor gerichte afgifte van substanties in het centrale zenuwstelsel via de interne halsslagader. Deze methode minimaliseert trauma en behoudt de neuronale integriteit.

Mouse Microchirurgie Infusion Techniek voor gerichte afgifte van een substantie in het centraal zenuwstelsel via De interne halsslagader (Video) | JoVE Journal

Mouse Microchirurgie Infusion Techniek voor gerichte afgifte van een substantie in het centraal zenuwstelsel via De interne halsslagader

Meer video's verkennen