24 maart 2017
We beschrijven de isolatie van de extracellulaire matrix van het hart van C57Bl/6J controlemuizen, muizen met een strakke huid en muizen met een strakke huid behandeld met het IRF5 remmende peptide. We beschrijven ook de vasodilatatiestudies op de geïsoleerde vaten van C57Bl/6J, muizen met een strakke huid en muizen met een strakke huid behandeld met het IRF5 remmende peptide.
Het algemene doel van deze procedures voor isolatie van extracellulair matrix en ex vivo vasodilatatie is om de behandeling met IRF5 remmende peptide bij knaagdieren te bestuderen. Deze methode kan helpen beantwoorden hoe veranderingen in de extracellulaire matrix de progressie van ziekten kunnen vergroten of verminderen. Het belangrijkste voordeel van de vasodilatatiestudies is dat het ons inzicht geeft in in vivo processen zonder dat we alle signaalcomponenten in overweging hoeven te nemen.
De isolatie van cardiaal extracellulair matrix kan worden toegepast op andere organen zoals de achterpoot of long. We hadden het idee eerst toen we ons begonnen te richten op de duplicatie van fibrillin een in de tight skin muis, en herkenden de impact van veranderd extracellulair matrix en celgedrag. Na het anestheseren van de muis en het voorbereiden op de operatie, open de huid met een schaar.
Snijd vanaf de borst tot aan de kaakboog met de zorg om het onderliggende weefsel aan de voorkant van de kaak niet te verstoren. Snijd vervolgens de fascialis-slagader door het zachte weefsel eromheen te verwijderen. Wees voorzichtig om de ader niet te beschadigen tijdens het doen hiervan.
Dompel het blootgestelde weefsel in mops buffer zodat ze gezond blijven. Zodra de fascialis-slagader volledig is blootgelegd, grijpt u de fascialis proximal van de eerste bifurcatie distaal van waar de ader zal worden doorgesneden. Snijd het vervolgens los van de hoofdader en pak de fascialis-slagader met de pincet vast.
Snijd de twee takken die van de fascialis afkomt en til het vat vervolgens voorzichtig op terwijl u de verbindingen met omliggend weefsel doorknipt totdat de bifurcatie is bereikt. Snijd bij de bifurcatie beide dochter-slagaders door om het vat te bevrijden en breng het over in een schaal met mops buffer waar het gehydrateerd blijft tot het nodig is. Om vasodilatatie te meten, bereidt u zich eerst voor om de vaten te canuleer.
Laad glazen pipetten met een einddiameter van 125 tot 175 microns vol met mops buffer. Vul ook de oplossingsreservoirs met mops. Canuleer nu de geïsoleerde vaten.
Bind ze vast aan glazen pipetten met behulp van een oogheelkundige naald. Zorg ervoor dat er geen luchtbellen in de pipetten ontstaan. Monteer vervolgens de vaatkamers op een omgekeerde microscoop met de videocamera-aansluiting.
Stuur de video door het videokaliber meetsysteem voor een schermmeting van de vaten. Druk nu de vaten aan met een tweedelige procedure. Verhoog eerst de met mops gevulde reservoirs op een hoogte boven het vat voor 20 millimeter kwikdruk.
Open de lijn met de mops naar het vat. Kijk tijdens het drukken van het vat naar tekenen van lekken rond de knopen en langs de lengte van het vat. Als er geen lekken worden gevonden, verhoog de reservoirs om 60 millimeter kwikdruk te produceren.
Inspecteer de vaten vervolgens opnieuw op lekken. Zodra de druk wordt gehandhaafd zonder lekken, brengt u het vat gedurende 30 minuten in evenwicht bij deze druk. Na het in evenwicht brengen, meet u de vasodilatatie als reactie op een verbinding van belang.
Vernauw eerst het vat met de helft tot drie kwart door U46619 toe te voegen. Laat de oplossing zes minuten lang de vaten baden om te stabiliseren. Voeg vervolgens geleidelijk het testcompound toe aan de badoplossing zoals acetylcholine.
Elke twee minuten verhoogt u de concentratie van de testoplossing in het bad met 10, beginnend bij 000001 molair en toenemend tot 001 molair. De veranderingen in vasodilatatie riepen vragen op over signalering. Maar onze focus ligt op het hart.
Om het gebruik van dieren te verminderen, kozen we ervoor om cardiaal extracellulair matrix te isoleren om ons te concentreren op de signalering die van buitenaf wordt geïnitieerd. Begin met het verzamelen van het hart van een verdoofde muis. Breng het over naar een beker geladen met 15 milliliter hypertone 1 procent natriumdodecylsulfaat.
Houd de oplossing gedurende 18 uur zachtjes roerend op een roerplaat bij kamertemperatuur. Verander de volgende dag de oplossing naar 15 milliliter 5 procent triton X100 gedurende 30 minuten gevolgd door 15 milliliter PBS gedurende 15 minuten. Snap vervolgens het ECM en vloeibare stikstof in een 1,5 milliliter microcentrifugebuisje in.
Eenmaal bevroren, brengt u het weefsel over in een voorgekoelde vijzel en stampt het tot poeder. Suspensie de poeder in PBS met toegevoegd antibioticum in een 1:100 concentratie in een viskeuze oplossing. Soniceer de suspensie gedurende 30 tot 60 seconden in een ijsbad op een hoge sonicatie-instelling.
ECM-eiwit is nu geïsoleerd en moet koud blijven. Voordat u het eiwit gebruikt, meet u de concentratie ervan met behulp van een Bradford-assay. Het IRF5D-peptide is een remmend peptide dat sterk verschilt van normaal IRF5.
IRF5D heeft slechts 17 aminozuren en bindt aan de fosforylatieplaats van IRF5. Dit voorkomt fosforylering en homodimerisatie, waardoor de vorming van de actieve IRF5-toestand wordt verstoord. Heterozygote tight skin muizen werden gedurende drie weken subcutaan behandeld met IRF5D.
Het aantal neutrofielen en CD64 nam af, zoals bepaald door immunohistochemie in het gemiddelde aantal gekleurde cellen per gezichtsveld. IRF5D-behandelingen verbeterden acetylcholine-geïnduceerde vasodilatatie van fascialis-slagaders bij heterozygote tight skin muizen die werden behandeld met IRF5D in vergelijking met die behandeld met fosfaatbuffer. In gekweekte myocyten afgeleid van het hartweefsel van de transgene muizen waren er meer IRF5-positieve cellen in culturen van tight skin heterozygote muizen dan in controle muizen.
Behandeling van een van beide culturen met IRF5D resulteerde in een vermindering van IRF5-positieve kernen. Nadat u deze video hebt bekeken, zou u een goed begrip moeten hebben van hoe u een hart kunt decellulariseren. Eenmaal onder de knie, kan deze techniek worden overgedragen naar veel organen en helpen bij het beantwoorden van een verscheidenheid
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit artikel beschrijft de isolatie van de cardiale extracellulaire matrix uit diverse muismodellen en de daaropvolgende vasodilatatiestudies. De focus ligt op het begrijpen van de effecten van behandeling met een IRF5-remmend peptide op de progressie van de ziekte.
Deze methode maakt mechanistische risicoreductie van IRF5 als therapeutisch doelwit mogelijk door remodeling van de extracellulaire matrix te koppelen aan vasculaire dysfunctie bij inflammatoire fibrose. De ex vivo vasodilatatie-assay biedt kwantitatieve, reproduceerbare resultaten van de endotheelfunctie, onafhankelijk van systemische storende factoren, wat de doelwitvalidatie in preklinische modellen ondersteunt. Isolatie van ziekterelateerde extracellulaire matrix faciliteert fenotypische screening en pathway-verduidelijking voor de ontdekking van antifibrotische geneesmiddelen.
De methode is geïntegreerd in het ontdekkingscontinuüm, van targetvalidatie tot preklinische beoordeling van de werkzaamheid, wat het iteratieve ontwerp van IRF5-modulerende verbindingen mogelijk maakt op basis van vasculaire en matrixfenotypen.