Name: Voorbereiding van primaire Acute lymfatische leukemie cellen in verschillende celcyclus fasen door centrifugaal Elutriation (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-11-10T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 9 s
Description: Leer centrifugaal elutriatie voor het isoleren van acute lymfatische leukemiecellen in verschillende celcyclusfasen. Deze methode maakt fase-afhankelijk onderzoek naar anti-kankerverbindingen mogelijk.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Dit werk werd gesteund door de NIH CA109821 (aan TCC). Wij danken Beckman Coulter royaal voorzien van fondsen ter dekking van de publicatiekosten en voor technische bijstand in de opzet en werking van het elutriation-systeem. Wij danken Dr. Fred Falkenburg voor het verstrekken van de eerste primaire alle culturen.

Opmerking: dit protocol is geoptimaliseerd voor primaire B-ALL die variëren in diameter van ongeveer 8 µm (G1-fase) tot 13 µm (G2/M fasen cellen). Dus, de specifieke centrifuge snelheden en het debiet van de pomp kunnen niet toepasbaar op cellen met verschillende grootte varieert. Niettemin, passende elutriation parameters kunnen worden geschat met behulp van de vergelijking van de snelheid sedimentatie. Cellen worden gekweekt in een gedefinieerde serumvrij medium als beschreven 16 bij een optimale dichtheid van 1-3 x 10 6 cellen/mL. Met uitzondering van de inzameling van breuken die wordt uitgevoerd bij 4 ° C met behulp van ijs-gekoelde buizen, alle stappen worden uitgevoerd bij kamertemperatuur en de centrifuge ingesteld bij 20 ° C met een maximum van 24 ° C.
 1. voorbereiding van de Buffer van de Elutriation en materialen <ol><li>om te verminderen samendoen van cellen, het bereiden van een buffer van de elutriation van Hank &#39; s evenwichtig zoutoplossing (HBSS) met fenol rood aangevuld met 2% foetale runderserum () FBS), om de cellen te beschermen tegen mechanische belasting tijdens het proces van de elutriation, en de 1,6 g/L van 2-naftol-6,8-disulfonic zuur dikaliumhexafluorozirkonaat zout (NGK), die maakt de buitenkant van de cel negatief geladen en vermindert samendoen.
	<ol><li>1,6 g NDA toevoegen aan een conische tube van 50 mL.</li>
		<li>Onder steriele condities, 35 mL HBSS uit een 1 L-fles toevoegen aan de conische tube van 50 mL met NDA. Swirl van de buis totdat de NDA heeft opgelost.</li>
		<li>De opgeloste NDA met behulp van een 0,2 µm filter, breng kwantitatief over in een nieuwe steriele 50 mL conische buis. Voeg vervolgens de NDA aan de resterende 1 L van HBSS.</li>
		<li>Ten slotte 21 mL FBS toevoegen aan de HBSS te verkrijgen van een eindconcentratie van 2% (v/v). 
		Opmerking: De buffer van de elutriation kan worden voorbereid en opgeslagen bij 4 ° C tot de vervaldatum op de HBSS of totdat er een belangrijke verandering in de pH zoals aangegeven door een geelverkleuring van de indicator kleurstof.</li>
	</ol></li> <li>Label 50 mL conische buizen voor collectie van breuken zodat er buizen label 1 en 2 (W1 en W2), breuken 1-20 (F1 - F20) wassen, en stoppen.
	<ol><li>Chill vooraf deze buizen op ijs vóór het verzamelen van breuken.</li>
	</ol></li></ol> 2. Vergadering van het systeem van de Elutriation <ol><li>Installeer eerst de strobe-vergadering in de centrifuge zodat het netsnoer wordt gevoed uit de zaal via de poort aan de linkerkant. Zorg ervoor dat de flitslamp stroboscoop aan de voorkant van de kamer zodat het wordt uitgelijnd met het kijkvenster wanneer de centrifuge wordt gesloten.
	<ol><li>De vergadering in plaats veilig door de eerste twee Phillips-head schroeven aanscherping in de twee gaten aan de bovenkant van de de beugels en vervolgens door de aanscherping van de duimschroeven onderin de beugels.</li>
		<li>Sluit het netsnoer op de flitser macht poort aan de achterkant van de centrifuge.</li>
	</ol></li> <li>Next, instellen van de rotor recht naar beneden op de centrifuge station hub en veilig met een T-hendel hex moersleutel. 
	Opmerking: Als de centrifuge is niet nodig voor de doeleinden van de niet-elutriation, de vergadering van de flitser en de rotor kunnen worden gehouden in de centrifuge tussen runs.</li>
	<li>Zodra de rotor is beveiligd, plaatst u de vergadering van de quick-release met de elutriation kamer, de teller evenwicht, roteerbare zegel vergadering en een montageplaat in de rotor.
	<ol><li>Duw gelijkmatig met één hand op de kamer van de elutriation en de andere hand op de teller evenwicht totdat de bouten in de rotor worden uitgelijnd in de gaten op de montageplaat.</li>
		<li>Tot slot hecht de verankerende kabel door het plaatsen van de pin aan de ene kant van de kabel in het gat in de vergadering van de roterende zegel en het veiligstellen van de eyehole aan de andere kant van de kabel met één van de Phillips-head schroeven (vermeld in 2.1.1) op de beugel op de linkerzijde-o f de zaal.</li>
	</ol></li> <li>Vervolgens monteren van het gebruik van een pomp met variabele snelheid-stroomsysteem en buizen aan pomp buffer in de elutriation kamer en buffer te verzamelen, zoals het stroomt uit de elutriation-zaal.
	<ol><li>Invoegen de grootte 16 input slang afkomstig van de pomp met variabele snelheid via de poort aan de bovenkant van de kamer van de centrifuge verlaten zodat het in de kamer treedt.</li>
		<li>Een montage hechten aan het vrije uiteinde van de input-buis en steek de montage in de input opening aan de zijkant van de vergadering van de roterende zegel.</li>
		<li>Invoegen de grootte 16 uitgang buizen via de poort en deze koppelen aan de verbindingsleiding aan de bovenkant van de roterende zegel vergadering. 
		Opmerking: De stroomsysteem ook kan blijven gemonteerd tussen elutriation runs.</li>
	</ol></li> <li>Ten slotte, zet de centrifuge en de specificaties die nodig zijn voor het experiment worden ingesteld.
	<ol><li>Wijziging van de rotor ID.</li>
		<li>Als de centrifuge een inbreng van de tijd vereist, voor 2 h, die meer dan voldoende om te voltooien een elutriation uitvoeren instellen.</li>
		<li>De temperatuur instellen tot 20 ° C met een max temp van 24 ° C.</li>
		<li>Stelt u de versnelling voor max en de vertraging voor langzaam.</li>
		<li>Ten slotte stelt de snelheid tot 867 x g.</li>
	</ol></li></ol> 3. Priming van het systeem van de Elutriation <ol><li>eerst om te steriliseren van het elutriation systeem, plaats de buis reservoir in een 500 mL plastic fles met 5% bleekwater en de slang van de uitvoer in een lege 1 L kunststof afval fles te plaatsen.
	<ol><li>De pomp inschakelt en zet de snelheid naar 25 mL/min en toestaan dat het 5%-bleekmiddel te stromen al manier door het systeem van de elutriation totdat het wordt in de afgewerkte fles uit de output buis gepompt.</li>
		<li>De centrifuge inschakelen en laat ze komen tot de maximum snelheid (867 x g) aangemerkte release bubbels en tegendruk.</li>
		<li>Stoppen de centrifuge. Zodra de rotor heeft gestopt draaien, open het deksel en inspecteren van de kamer voor eventuele lekken.</li>
		<li>Als er geen lekken, laat de bleekwater oplossing stroom in het systeem voor ten minste 5 min.</li>
	</ol></li> <li>Vervolgens het spoelen van het systeem met gesteriliseerde met autoclaaf water als bleekmiddel tot de vorming van precipitaten uit de buffer van de elutriation die kan leiden leiden kan tot het samendoen van de cellen, evenals schade toebrengen aan de cellen.
	<ol><li>Plaats de buis reservoir in een 1 L-fles van gesteriliseerde met autoclaaf water en laat ze door middel van ten minste 10 min. spoelen</li>
	</ol></li> <li>Na spoelen met water, elutriation buffer te introduceren in het systeem. Gebruik een 150 mL glazen fles die een gesteriliseerde met autoclaaf is maken een reservoir voor de elutriation buffer en cellen.
	<ol><li>100 mL elutriation buffer toevoegen aan de fles en verplaatsen de reservoir buizen aan de glazen fles zodat de buis helemaal onderaan is.</li>
		<li>Start van de centrifuge en toestaan dat de buffer te stromen via het systeem te spoelen van de water.</li>
		<li>Zodra het reservoir fles bijna leeg is en het water is volledig uit het systeem gespoeld, verplaatsen de uitvoer buizen uit de fles afval naar het reservoir zodat de buffer wordt door het systeem wordt gerecycleerd.</li>
	</ol></li> <li>Ten slotte het kijkvenster zodanig aanpassen dat de kamer van de elutriation kan worden gezien op de huidige snelheid.
	<ol><li>Press de stroboscoop lamp power knop op de buitenkant van de centrifuge zodat de lamp ingeschakeld. Draai de elutriation kNOB ook aan de buitenkant van de centrifuge helemaal naar links.</li>
		<li>Terwijl op zoek door het kijkvenster, langzaam draai de knop naar rechts totdat de elutriation kamer in zicht en de stroboscoop komt in de tijd met de rotatie van de rotor is. 
		Opmerking: Het elutriation-systeem kan worden overgelaten in deze toestand totdat de cellen worden klaargestoomd.</li>
	</ol></li></ol> 4. Bereiding van het monster van de cel <ol><li>graaf cellen en aliquoot 300 tot 400 miljoen in groeimedium in verschillende 50 mL conische buizen. Spin down de cellen bij 1210 x g gedurende 3 min.</li>
	<li>Aspirate uit groei media en resuspendeer de cellen in 25 mL elutriation buffer door zachtjes op en neer pipetteren.</li>
	<li>Teneinde cel samendoen, pass cellen tweemaal door middel van een 25-meter naald.
	<ol><li>Met behulp van een spuit van 10 mL de cellen en opstellen dan 25 meter naald bijvoegen en doorgeven van de cellen door op de binnenkant muur van een steriele 50 mL conische buis. Herhaal dit totdat alle 25 mL zijn gepasseerd via de naald.</li>
		<li>Verkrijgen van een nieuwe naalden en spuiten en herhaal het proces hierboven eens. 
		Let op: Spuit naalden in sharps containers moeten worden geplaatst. 
		Opmerking: Het is cruciaal dat de cellen worden geduwd door de naald onmiddellijk vóór de invoering van hen aan het elutriation-systeem te houden het samendoen van cel tot een minimum.</li>
	</ol></li></ol> 5. Binnenbrengen van cel monster het Elutriation systeem en een collectie van breuken <ol><li>introduceren het monster van de cel in het systeem van de elutriation door het gieten van het monster van de cel in de reservoir tank heeft de resterende elutriation buffer recycling via .
	<ol><li>Laat de cellen in het systeem worden ingevoerd en het bereiken van evenwicht binnen de zaal elutriation. 
		Opmerking: Dit proces duurt ongeveer 5 minuten en voortgang kan worden bijgehouden door te kijken naar de cellen als ze de zaal via het kijkvenster betreden. Nemen om ervoor te zorgen alle cellen in de zaal, een daling van de elutievloeistof, plaats op een glasplaatje en bekijken onder een microscoop. Als het monster gratis intact cellen is, dit bevestigt hun retentie in de zaal.</li>
	</ol></li> <li>Beginnen met het verzamelen van breuken, zodra alle cellen zijn aangegaan in de vergaderzaal en er is een duidelijke grens op het breedste deel van de kamer waarin de cellen in evenwicht zijn.
	<ol><li>Begin door de uitvoer buis te verplaatsen naar de conische tube van 50 mL label W1. Verzamelen van 50 mL elutriation buffer voor deze fractie, ervoor zorgend om een oogje houden op de tank reservoir en vullen met elutriation buffer wanneer dat nodig is. 
		Nota: Om ervoor te zorgen dat alle cellen in het systeem hebben ingevoerd, toestaan de reservoir tank tot bijna leeg voordat de eerste keer het bijvullen van het reservoir. Na de eerste bijvullen zal het niet nodig te wachten tot het reservoir tot bijna leeg zijn. Ook, DO NOT ooit toestaan de tank te worden leeg als dit tot bubbels en tegendruk in het systeem leiden zal.</li>
		<li>Zodra 50 mL zijn verzameld voor W1, gelijktijdig de snelheid tot 821 x g wijzigen en verplaatsen van de output buis aan de conische buis label W2 en verzamelen van 50 mL meer bij deze snelheid.</li>
		<li>Blijven wijzigen van de snelheid en het verzamelen van breuken, zoals aangegeven in tabel 1. Zorg ervoor dat er media in het reservoir tank en houd de conische buisjes op ijs te allen tijde. Tot slot, het aanpassen van het kijkvenster door langzaam verandert de knop naar rechts zoals de snelheid afneemt.</li>
		<li>Zodra alle 20 breuken verzameld zijn, de centrifuge stoppen en verzamelen van 50 mL in de conische buis label STOP.</li>
	</ol></li></ol> 6. Flushing van het systeem van de Elutriation <ol><li>na de centrifuge volledig flush het systeem gestopt is doordat het reservoir buis in de 1 L-fles van gesteriliseerde met autoclaaf water en de buis van de output terug in de afval fles.
	<ol><li>Zet van het toerental van de pomp tot 50 mL/min. en laat het water om het systeem te doorlopen totdat het uitgeput.</li>
	</ol></li> <li>Schakelen uit de pomp, de ingangs- en uitgangssignaal slang verwijderen uit de vergadering van de quick-release, en trek de pin uit de verankerende kabel.
	<ol><li>Verwijderen de quick-release-vergadering van de rotor. 
		Opmerking: Afhankelijk van wat de centrifuge zal worden gebruikt voor, het elutriation-systeem kan nu worden gelaten zoals is. Anders, de hele vergadering kan worden afgebroken in de omgekeerde volgorde zoals hierboven beschreven. De elutriation kamer kan worden verwijderd uit de vergadering van de quick-release en schoongemaakt tussen runs met behulp van een ultrasoon waterbad. Hiermee verwijdert u vuil en verontreinigingen uit de kamer muur die negatief van invloed kan zijn op de latere loopt.</li>
	</ol></li></ol> 7. Analyse van breuken en verzameling van de G1 of G2/M zwembaden.
 Opmerking: om aan te tonen de effectiviteit van elutriation, elke fractie wordt geanalyseerd voor cellen, de diameter van de cel en DNA inhoud en zwembaden zijn gemaakt van cellen in de G1 of G2/M fasen voor immunoblot analyses, zoals beschreven in Vertegenwoordiger resultaten. Dit protocol sectie beschrijft hoe bereiden hen voor experimenteel gebruik te maken van deze poelen.
<ol><li>Spin elke breuk bij 2000 x g gedurende 5 min bij 4 ° C en aspirate uit elutriation buffer.</li>
	<li>Combineren breuken samen om te verkrijgen van zowel een pool van de fase G1 en G2/M fasen zwembad.
	<ol><li>Voor de G1 fase zwembad, resuspendeer breuken die werden verzameld in het snelheidsbereik van 788 x g tot 661 x g (F1 - F5) in een totaal 1 mL van fosfaat buffer zoutoplossing (PBS) en transfer naar een conische tube van 15 mL. Voor de groep van de fasen G2/M resuspendeer breuken die werden verzameld in het snelheidsbereik van 387 x g en 333 x g (F17 - F20).</li>
		<li>Spin down cellen bij 2000 x g gedurende 5 min bij 4 ° C en aspirate uit PBS.</li>
	</ol></li> <li>Resuspendeer de cellen in 10 mL van de media van de groei en het nemen van een cel tellen.</li>
	<li>Nemen een aliquoot gedeelte van elke pool te worden geanalyseerd voor DNA inhoud via propidium jodide kleuring en stromen van cytometrische analyse 15. 
	Opmerking: De rest van elke groep kan worden gebruikt voor verdere experimenten.</li>
</ol>

<ol><li>Beach, D., Piper, M., Shall, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+newly-initiated+DNA+from+the+early+S+phase+of+the+synchronous+eukaryote%2C+Physarum+polycephalum%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+cell+res%22%5BJournal%5D)">Isolation of newly-initiated DNA from the early S phase of the synchronous eukaryote, Physarum polycephalum.</a> Exp cell res. 129, 211-221 (1980).</li>
<li>Sevcikova, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Completion+of+cell+division+is+associated+with+maximum+telomerase+activity+in+naturally+synchronized+cultures+of+the+green+alga+Desmodesmus+quadricauda%5BTitle%5D)+AND+%22FEBS+letters%22%5BJournal%5D)">Completion of cell division is associated with maximum telomerase activity in naturally synchronized cultures of the green alga Desmodesmus quadricauda.</a> FEBS letters. 587, 743-748 (2013).</li>
<li>Rosner, M., Schipany, K., Hengstschlager, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Merging+high-quality+biochemical+fractionation+with+a+refined+flow+cytometry+approach+to+monitor+nucleocytoplasmic+protein+expression+throughout+the+unperturbed+mammalian+cell+cycle%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+protoc%22%5BJournal%5D)">Merging high-quality biochemical fractionation with a refined flow cytometry approach to monitor nucleocytoplasmic protein expression throughout the unperturbed mammalian cell cycle.</a> Nat protoc. 8, 602-626 (2013).</li>
<li>Banfalvi, G. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/21755438">Overview of cell synchronization.</a> Meth mol biol. 761, 1-23 (2011).</li>
<li>Langan, T. J., Rodgers, K. R., Chou, R. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synchronization+of+Mammalian+Cell+Cultures+by+Serum+Deprivation%5BTitle%5D)+AND+%22Meth+mol+biol%22%5BJournal%5D)">Synchronization of Mammalian Cell Cultures by Serum Deprivation.</a> Meth mol biol. 1524, 97-105 (2017).</li>
<li>Dulla, K., Margalef, A. S. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/21755441">Large-Scale Mitotic Cell Synchronization.</a> Meth mol biol. 1524, 65-74 (2017).</li>
<li>Siefert, J. C., Clowdus, E. A., Sansam, C. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+cycle+control+in+the+early+embryonic+development+of+aquatic+animal+species%5BTitle%5D)+AND+%22Comp+biochem+physiol+Toxicol%2Cpharmacol+CBP%22%5BJournal%5D)">Cell cycle control in the early embryonic development of aquatic animal species.</a> Comp biochem physiol Toxicol,pharmacol CBP. 178, 8-15 (2015).</li>
<li>Banfalvi, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+cycle+synchronization+of+animal+cells+and+nuclei+by+centrifugal+elutriation%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+protoc%22%5BJournal%5D)">Cell cycle synchronization of animal cells and nuclei by centrifugal elutriation.</a> Nat protoc. 3, 663-673 (2008).</li>
<li>Grosse, J., Meier, K., Bauer, T. J., Eilles, C., Grimm, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+separation+by+countercurrent+centrifugal+elutriation%3A+recent+developments%5BTitle%5D)+AND+%22Prep+biochem%2Cbiotechnol%22%5BJournal%5D)">Cell separation by countercurrent centrifugal elutriation: recent developments.</a> Prep biochem,biotechnol. 42, 217-233 (2012).</li>
<li>Smith, J., Manukyan, A., Hua, H., Dungrawala, H., Schneider, B. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synchronization+of+Yeast%5BTitle%5D)+AND+%22Meth+mol%22%5BJournal%5D)">Synchronization of Yeast.</a> Meth mol. 1524, 215-242 (2017).</li>
<li>Gascoigne, K. E., Taylor, S. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((How+do+anti-mitotic+drugs+kill+cancer+cells%3F%5BTitle%5D)+AND+%22J+cell+sci%22%5BJournal%5D)">How do anti-mitotic drugs kill cancer cells?</a> J cell sci. 122, 2579-2585 (2009).</li>
<li>Manchado, E., Guillamot, M., Malumbres, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Killing+cells+by+targeting+mitosis%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+death+diff%22%5BJournal%5D)">Killing cells by targeting mitosis.</a> Cell death diff. 19, 369-377 (2012).</li>
<li>Komlodi-Pasztor, E., Sackett, D., Wilkerson, J., Fojo, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mitosis+is+not+a+key+target+of+microtubule+agents+in+patient+tumors%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+reviews.+Clinic+oncol%22%5BJournal%5D)">Mitosis is not a key target of microtubule agents in patient tumors.</a> Nature reviews. Clinic oncol. 8, 244-250 (2011).</li>
<li>Furst, R., Vollmar, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+perspective+on+old+drugs%3A+non-mitotic+actions+of+tubulin-binding+drugs+play+a+major+role+in+cancer+treatment%5BTitle%5D)+AND+%22Die+Pharmazie%22%5BJournal%5D)">A new perspective on old drugs: non-mitotic actions of tubulin-binding drugs play a major role in cancer treatment.</a> Die Pharmazie. 68, 478-483 (2013).</li>
<li>Kothari, A., Hittelman, W. N., Chambers, T. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+Cycle-Dependent+Mechanisms+Underlie+Vincristine-Induced+Death+of+Primary+Acute+Lymphoblastic+Leukemia+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+res%22%5BJournal%5D)">Cell Cycle-Dependent Mechanisms Underlie Vincristine-Induced Death of Primary Acute Lymphoblastic Leukemia Cells.</a> Cancer res. 76, 3553-3561 (2016).</li>
<li>Nijmeijer, B. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term+culture+of+primary+human+lymphoblastic+leukemia+cells+in+the+absence+of+serum+or+hematopoietic+growth+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+hematol%22%5BJournal%5D)">Long-term culture of primary human lymphoblastic leukemia cells in the absence of serum or hematopoietic growth factors.</a> Exp hematol. 37, 376-385 (2009).</li>
<li>Knudsen, E. S., Wang, J. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dual+mechanisms+for+the+inhibition+of+E2F+binding+to+RB+by+cyclin-dependent+kinase-mediated+RB+phosphorylation%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Cell+Bio%22%5BJournal%5D)">Dual mechanisms for the inhibition of E2F binding to RB by cyclin-dependent kinase-mediated RB phosphorylation.</a> Mol Cell Bio. 17, 5771-5783 (1997).</li>
<li>Malumbres, M., Barbacid, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mammalian+cyclin-dependent+kinases%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+biochem+sci%22%5BJournal%5D)">Mammalian cyclin-dependent kinases.</a> Trends biochem sci. 30, 630-641 (2005).</li>
<li>Liang, H., Hittelman, W., Nagarajan, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ubiquitous+expression+and+cell+cycle+regulation+of+the+protein+kinase+PIM-1%5BTitle%5D)+AND+%22Arch+biochem+biophys%22%5BJournal%5D)">Ubiquitous expression and cell cycle regulation of the protein kinase PIM-1.</a> Arch biochem biophys. 330, 259-265 (1996).</li>
<li>Sen, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+of+a+gene+encoding+a+tRNA+synthetase-like+protein+is+enhanced+in+tumorigenic+human+myeloid+leukemia+cells+and+is+cell+cycle+stage-+and+differentiation-dependent%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+USA%22%5BJournal%5D)">Expression of a gene encoding a tRNA synthetase-like protein is enhanced in tumorigenic human myeloid leukemia cells and is cell cycle stage- and differentiation-dependent.</a> Proc Natl Acad Sci USA. 94, 6164-6169 (1997).</li>
<li>Ly, T., Endo, A., Lamond, A. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Proteomic+analysis+of+the+response+to+cell+cycle+arrests+in+human+myeloid+leukemia+cells%5BTitle%5D)+AND+%22eLife%22%5BJournal%5D)">Proteomic analysis of the response to cell cycle arrests in human myeloid leukemia cells.</a> eLife. 4, (2015).</li>
</ol>

Anisha Kothari is momenteel bij de afdeling van de cel- en moleculaire biologie van St. Jude Children's Research Hospital.

Wij hebben beschreven een methode voor het verkrijgen van primaire alle cellen in de verschillende fasen van de celcyclus CCE gebruiken. Onder optimale omstandigheden een in wezen puur bevolking van cellen in de G1-fase en een hoogverrijkt bevolking van cellen in G2/M fasen kunnen gemakkelijk worden verkregen in uitstekende rendement en cellen in de S-fase hoogverrijkt kunnen ook verkregen worden indien gewenst. De hier gepresenteerde resultaten werden verkregen met behulp van een primaire die alle cultuur (in het bijzon...

Gekweekte cellen groeien meestal asynchroon en afzonderlijke cellen zijn aanwezig in de verschillende fasen van de celcyclus. Sommige organismen vertonen natuurlijk synchrone cel cycli of kunnen worden gesynchroniseerd met behulp van specifieke fysiologische prikkels. Bijvoorbeeld, verdelen kernen binnen giant plasmodia van de slime schimmel Physarum polycephalum in een zeer synchrone mode1, en de cellen van de groene algen die desmodesmus quadricauda kan worden gesynchroniseerd door afwisselend licht en donker perioden2. Hoewel dergelijke organismen unieke experimentele kenmerken bieden, model zij onvoldoende de complexiteit van zoogdiercellen. De mogelijkheid om te synchroniseren kunstmatig zoogdiercellen populaties is centraal in het bevorderen van ons begrip van de celcyclus verordening en de moleculaire basis van de controlepunten van de celcyclus. Veel gebruikte methoden zijn serum ontbering, chemische blokkeren en vrijgeven, of exploitatie van de fysieke kenmerken3,4. Terugtrekking van het serum worden vaak cellen invoeren van onbeweeglijkheid en de nieuwe toevoeging van serum promoot celcyclus reentry in de G1-fase5. Chemische inhibitoren zijn agenten zoals overtollige thymidine hydroxyurea die blokkeren van cellen op de grens van de G1/S of microtubulus-remmers die meestal het arresteren van cellen in de M fase3,4. Benaderingen die misbruik maken van fysieke kenmerken omvatten mitotische shake-off die kan worden gebruikt om te verrijken voor mitotische cellen omdat ze minder aanhangend dan interfase cellen6. Al deze technieken wel mogelijke nadelen. Bijvoorbeeld, onderhouden niet alle celtypes levensvatbaarheid in de afwezigheid van serum of de aanwezigheid van chemische inhibitoren, en de opbrengst van cellen nadat mitotische shake-af beperkt zonder voorafgaande synchronisatie met mitotische remmers is.
Met uitzondering van vroege embryonale cel cycli, waar cellen geleidelijk in grootte afnemen als ze7 verdelen, de meeste cellen bevorderen door de cyclus ondergaan groeifases en groter worden. Deze eigenschap wordt benut in de techniek van tegenstroom centrifugaal elutriation (CCE), die kan worden gebruikt voor het scheiden van cellen die verschillen in grootte en vandaar in celcyclus fase8,9. Tijdens het CCE, cellen zijn onder invloed van twee tegengestelde krachten: middelpuntvliedende kracht, die drijft de cellen uit de buurt van de rotatie-as, en vloeiende snelheid (tegenstroom), die drijft de cellen naar de as van draaiing (Figuur 1). Cellen in de elutriation zaal bereiken een evenwicht positie waar deze krachten gelijk zijn. De belangrijkste factoren dicteren de positie van het evenwicht zijn cel diameter en dichtheid. Als de stroom tarief bufferoplossing wordt verhoogd en de tegenstroom slepen force opweegt tegen de middelpuntvliedende kracht, een nieuw evenwicht is gebracht, veroorzaakt een verandering in de positie van de cellen in de kamer. Alle cellen worden verschoven naar de uitgang van de kamer, wat resulteert in kleinere wegloopt eerst, terwijl de grotere cellen binnen de kamer blijven, totdat het tegenstroom tarief is voldoende verhoogd ter bevordering van hun uitgang. De cellen ontsnappen aan de elutriation kamer met opeenvolgende verhogingen in tegenstroom tarief op specifieke breuken kunnen worden verzameld en elk deel bevat cellen maten opeenvolgend te verhogen. In plaats van het uitvoeren van elutriation met een incrementele toename tegenstroom tarief, zal sequentiële afname van de middelpuntvliedende kracht door het verlagen van de snelheid van centrifugeren bereiken hetzelfde resultaat. Het proces van elutriation vereist optimalisatie afhankelijk van het celtype, elutriation buffer werkzaam en de specifieke apparatuur wordt gebruikt. De snelheid van sedimentatie van cellen onder deze omstandigheden is het best omschreven door de wet van Stokes: SV = [d2(ρp- ρm) / 18η] .ω2r, waar SV = snelheid sedimentatie; d = diameter van het deeltje; Ρp = dichtheid van de deeltjes; Ρm = dichtheid van de buffer; Η = viscositeit van de buffer; Ω = hoeksnelheid van de rotor; en r = radiale positie van de particle. Dus, SV is evenredig met de diameter van de cel en dichtheid, en aangezien diameter is verheven tot de tweede macht, het levert belangrijker dan dichtheid die over het algemeen door middel van de celcyclus constant.
Een belangrijk voordeel van CCE is dat cellen niet aan de barre omstandigheden van chemische behandeling of nutritionele ontbering onderworpen zijn en in uitstekende rendement in wezen onverstoorbaar kunnen worden hersteld. Een vereiste is dat de cellen in kwestie ondergaan een aanzienlijke toename van de diameter, van ten minste 30%, als ze de celcyclus doorkruisen. Het grootste nadeel is de kostprijs van de gespecialiseerde centrifuge, rotor en accessoires. Toch heeft de mogelijkheid om voor te bereiden van cellen die zijn verrijkt met specifieke celcyclus fasen door CCE sterk vergemakkelijkt celcyclus onderzoek in organismen uit gist zoogdiercellen9,10. Recente vooruitgang, zijn bovendien toepassingen uitbreiden naar de scheiding van de cellen van gezonde versus kanker weefsel, de scheiding van verschillende celtypes in heterogene mengsels, en tot de productie van specifieke celtypes voor immunotherapie9.
Onze groot belang is geweest in het begrip van het werkingsmechanisme van microtubulus gericht op agenten (MTA) zoals vinca-alkaloïden en taxine. Deze drugs werden verondersteld om op te treden uitsluitend in de mitose, blokkeren spindel microtubulus functie11,12, maar recent bewijs suggereert dat zij mogen ook worden getarget op interfase microtubuli13,14. We hebben onlangs gemeld dat primaire acute lymfatische leukemie (ALL) cellen ondergaan dood in hetzij de G1-fase of in de M fase wanneer vincristine en andere MTAs in een celcyclus-afhankelijke manier15behandeld. De mogelijkheid om te scheiden van alle cellen in verschillende celcyclus fasen door CCE was behulpzaam bij het bereiken van deze conclusie. In dit artikel, wij beschrijven de technische details en bieden praktische tips voor de toepassing van CCE aan de voorbereiding van primaire alle cellen in verschillende celcyclus fasen.

<table><tbody><tr><td>Hanks' balanced salt solution</td><td>Lonza</td><td>10-508Q</td><td>1 L fles</td></tr><tr><td>Fetal Plus bovien serum</td><td>Atlas Biologicals</td><td>FP-0500-A</td><td>500 mL fles</td></tr><tr><td>2-napthol-6,8-disulfonic acid dipotassium salt</td><td>Acros Organics</td><td>212-672-4</td><td>100 g poeder</td></tr><tr><td>50 mL conische buizen</td><td>Denville Scientifics</td><td>C1062-P</td><td>500/doos</td></tr><tr><td>PES-membraan 0,22 &micro;m filtereenheid</td><td>Millipore</td><td>SLGP033RB</td><td>250/pakket</td></tr><tr><td>Avanti J-26S XPI met Elut. Non-IVD - 50/60 Hz, 200/208/240V</td><td>Beckman Coulter</td><td>B14544</td><td>centrifuge compatibel met elutriation systeem</td></tr><tr><td>JE 5.0 elutriator rotorkit</td><td>Beckman Coulter</td><td>356900</td><td>rotorkit die de rotor, T-handgreep zeskantsleutel, de snel loskoppelingsassemblage (zonder de elutriationkamer), bevestigingskabel en de strobe-assemblage omvat</td></tr><tr><td>Kamer, standaard, 4-mL, "A"</td><td>Beckman Coulter</td><td>356943</td><td>standaard elutriationkamer&nbsp;</td></tr><tr><td>Masterflex L/S Easy-Load pompkop</td><td>Cole-Parmer</td><td>EW-07518-10</td><td></td></tr><tr><td>Masterflex L/S Variabele-snelheidsaansturing</td><td>Cole-Parmer</td><td>EW-07528-10</td><td></td></tr><tr><td>Masterflex BioPharm platina-gevuld siliconen pompslang, L/S 16</td><td>Cole-Parmer</td><td>EW-96420-16</td><td></td></tr><tr><td>25 G x 1,5 Precision Glide naald</td><td>BD</td><td>305127</td><td>steriele, eenmalige naalden</td></tr><tr><td>10 mL Luer-Lok spuit</td><td>BD</td><td>309604</td><td>steriele, eenmalige spuiten</td></tr><tr><td>Vi-Cell XR</td><td>Beckman Coulter</td><td>383556</td><td></td></tr><tr><td>PI/RNase-kleuringsbuffer</td><td>BD Pharmingen</td><td>550825</td><td>propidiumjodide/RNase-kleuringsbuffer</td></tr><tr><td>cyclin B1 (GNS1) muis monoklonaal IgG-antilichaam</td><td>Santa Cruz Biotechnology</td><td>sc-245</td><td></td></tr><tr><td>cyclin D1 (DCS-6) muis monoklonaal IgG-antilichaam</td><td>Santa Cruz Biotechnology</td><td>sc-20044</td><td></td></tr><tr><td>P-Rb (S807/811) (D20B12) XPR konijn monoklonaal antilichaam</td><td>Cell Signaling Technology</td><td>8516s</td><td></td></tr><tr><td>GAPDH (14C10) konijn monoklonaal antilichaam</td><td>Cell Signaling Technology</td><td>2118s</td><td></td></tr><tr><td>Geit anti-muis IgG (H+L)-HRP-conjugaat</td><td>BioRad</td><td>170-6516</td><td></td></tr><tr><td>Geit anti-konijn IgG (H+L)-HRP-conjugaat</td><td>BioRad</td><td>170-6515</td><td></td></tr></tbody></table>

voorbereiding van primaire acute lymfatische leukemie cellen in verschillende celcyclus fasen door centrifugaal elutriation

Preparation of Primary Acute Lymphoblastic Leukemia Cells in Different Cell Cycle Phases by Centrifugal Elutriation

De mogelijkheid om te synchroniseren van cellen heeft bevorderen van ons begrip van de celcyclus verordening centraal gestaan. Gemeenschappelijk gebruikte technieken omvatten serum ontbering; chemische stoffen die cellen te in verschillende celcyclus fasen arresteren; of het gebruik van de mitotische shake-off die gebruik maakt van de naleving van hun verminderde. Echter, al deze nadelen hebben. Serum honger werkt bijvoorbeeld goed voor normale cellen, maar minder goed voor tumorcellen met gecompromitteerde celcyclus controlepunten oncogen activering of tumor suppressor verlies. Ook kunnen chemisch behandeld cel populaties haven drug-geïnduceerde schade en stressgerelateerde wijzigingen weergeven. Een techniek die deze problemen omzeilt is tegenstroom centrifugaal elutriation (CCE), waar cellen worden onderworpen aan twee tegengestelde krachten, middelpuntvliedende kracht en vloeiende snelheid, wat in de scheiding van cellen op basis van grootte en bevolkingsdichtheid resulteert. Aangezien cellen bevorderen door de cyclus meestal vergroten, kan CCE worden gebruikt om te scheiden van cellen in verschillende celcyclus fasen. Hier toepassen wij deze techniek op primaire acute lymfatische leukemie cellen. Onder optimale omstandigheden, kunnen een in wezen puur bevolking van cellen in de G1-fase en een hoogverrijkt bevolking van cellen in G2/M fasen worden verkregen in uitstekende rendement. Deze cel populaties zijn bij uitstek geschikt voor studeren celcyclus-afhankelijke mechanismen voor actie van antikanker geneesmiddelen en voor andere toepassingen. We ook laten zien hoe wijzigingen in de standaard procedure kan leiden tot suboptimaal prestaties en bespreken van de beperkingen van de techniek. De voorgestelde gedetailleerde methodologie moet vergemakkelijken toepassing en verkenning van de techniek naar andere soorten cellen.

Primaire alle cellen (3-4 x 108) waren onderworpen aan centrifugaal elutriation en verzameld in twee wassen breuken en twintig belangrijkste fracties, zoals beschreven in het protocol. Tabel 1 toont representatieve gegevens waar het totale aantal cellen in elke fractie, alsmede de overeenkomstige snelheid van de rotor worden gepresenteerd. Totale was opbrengst doorgaans meer dan 80%. Meting van de diameter van de cel in afzonderlijke fracties bevestigd dat cel diameter verhoogd...

Dit protocol beschrijft het gebruik van centrifugaal elutriation te scheiden van primaire acute lymfatische leukemie cellen in verschillende celcyclus fasen.

Voorbereiding van primaire Acute lymfatische leukemie cellen in verschillende celcyclus fasen door centrifugaal Elutriation

The ability to synchronize cells has been central to advancing our understanding of cell cycle regulation. Common techniques employed include serum ...

Het algemene doel van deze procedure is om cellen in verschillende celcyclusfasen te isoleren met behulp van centrifugale elutriëring. Deze methode kan helpen bij het beantwoorden van belangrijke vragen op het gebied van kankertherapie. Omdat de isolatie van cellen in afzonderlijke fasen, maakt het mogelijk om de fase-afhankelijke effecten van antikankerverbindingen te onderzoeken.Het grote voordeel van deze techniek is dat het mogelijk is om cellen in specifieke fasen te scheiden met behulp van fysische eigenschappen, in plaats van chemische verstoringen. Om het experiment te starten, installeert u de strobe-assemblage in de centrifuge zodat de stroomkabel uit de kamer wordt gevoerd via de poort aan de linkerkant. Stel de strobe-flitslamp zo in dat deze in lijn komt met het kijkvenster wanneer de centrifuge is gesloten.Bevestig de assemblage op zijn plaats door twee Phillips-schroeven aan de bovenkant van elke beugel vast te draaien. Draai vervolgens de duimschroeven aan de onderkant van de beugel vast. Sluit de stroomkabel aan op de strobe-stroompoort, aan de achterkant van de centrifuge.Plaats vervolgens de rotors recht naar beneden op de centrifugeaandrijving en bevestig deze stevig met een T-handgreephexsleutel. Plaats vervolgens de assemblage die de elutriëringskamer, het contragewicht, het roterende afdichtingsassemblage en een montageplaat bevat, op de rotor. Duw gelijkmatig naar beneden, met één hand op de elutriëringskamer en de andere hand op het contragewicht, totdat de bouten op de rotor op hun plaats klikken.Plaats de pin, die zich aan het ene uiteinde van de kabel bevindt, in het gat in het roterende afdichtingsassemblage. En bevestig de oogholte aan het andere uiteinde met een van de Phillips-schroeven, bevestigd aan de beugel om de verankeringskabel te verbinden. Om het flowsysteem te assembleren, om buffer in en uit de elutriëringskamer te pompen, verbind u slangmaat 16 met een variabele snelheidspomp.Voer een vrije uiteinden van deze slang door een poort aan de bovenkant links van de centrifugekamer, zodat deze de kamer binnenkomt. Bevestig een fitting aan het vrije uiteinde van deze buis en steek vervolgens de fitting in de invoeropening van het roterende afdichtingsassemblage. Ten slotte steekt u de uitvoerslang door een poort om deze aan te sluiten op de overdrachtsbuis aan de bovenkant van het roterende afdichtingsassemblage.Zodra het elutriëringssysteem is geassembleerd, steriliseert u het door de andere vrije uiteinden van de invoerslang in een fles van 500 milliliter te plaatsen, gevuld met 5%bleach. En plaats de uitvoerslang in een lege afvalfles van een liter. Zet vervolgens de pomp aan en laat de bleekvloeistof door het elutriëringssysteem stromen totdat deze in de afvalfles wordt gepompt.Zet nu de centrifuge aan en laat deze de maximale aangegeven snelheid bereiken om luchtbellen en terugdruk te elimineren. Zodra de ingestelde snelheid is bereikt, stopt u de centrifuge. Nadat de rotor volledig is gestopt, opent u het deksel en inspecteert u de kamer op eventuele lekken.Vervolgens, op een vergelijkbare manier als eerder beschreven, laat u 10 minuten steriel water door het systeem lopen. Na het spoelen met water, vervangt u de waterreservoir door een steriele glazen fles gevuld met 100 milliliter elutriëringsbuffer. Plaats de invoerslang in deze fles, zodat deze zich helemaal onderaan bevindt.Start de centrifuge en laat de buffer door het systeem stromen. Nadat de reservoirfles bijna leeg is en het water volledig uit het systeem is gespoeld, verplaatst u de uitvoerslang van de afvalfles naar het reservoir, zodat de buffer continu door het systeem wordt gerecycled. Schakel ten slotte de strobelamp in en draai de elutriëringsknopbuitenshuis naar links.Stel nu het kijkvenster in door langzaam de knop naar rechts te draaien, zodat de elutriëringskamer duidelijk zichtbaar is en de strobelicht in sync is met de snelheid van de rotor. Bereid het celmonster voor zoals beschreven in het tekstprotocol. Voeg de resuspendeerde cellen toe aan de reservoirfles met de recycleerbare elutriëringsbuffer.Laat de cellen het systeem binnengaan en evenwicht bereiken in de elutriëringskamer. Om ervoor te zorgen dat alle cellen in de kamer worden vastgehouden, neemt u een druppel van de eluent op een glazen plaat en bekijkt u deze onder een microscoop. Als het monster geen intacte cellen bevat, bevestigt dit de retentie in de kamer.Zodra alle cellen in de kamer zijn gegaan en een duidelijke grens bij het witste deel van de kamer, met cellen en evenwicht, wordt gezien, begint u met het verzamelen van fracties. Verplaats de uitvoerslang naar een voorgekoelde 50 milliliter conische buis, gelabeld W1. Verzamel 50 milliliter elutriëringsbuffer in deze buis en bewaar op ijs. Kort nadat de W1-fractie is verzameld, verlaagt u de centrifugesnelheid tot 821 G. En verplaats de uitvoerslang naar de conische buis, gelabeld W2, en verzamel 50 milliliter meer op deze snelheid.Ga door met het veranderen van de snelheid en het verzamelen van fracties. Zorg ervoor dat er medium in de reservoirtank is en bewaar de verzamelde fracties altijd op ijs. Nadat alle fracties zijn verzameld, stopt u de centrifuge en verzamelt u 50 milliliter in een conische buis, gelabeld stop.Pellet-cellen verzameld in elk van de fracties en gebruik downstream-analyse, zoals flowcytometrie of westernblot, indien nodig. Een lijngrafiek die de gemiddelde diameter van cellen in opeenvolgende elutriëringsfracties toont, wordt getoond. Merk op dat hoe groter de celdiameter, hoe hoger het fractienummer waarop het elueert.Resultaten van fluorescentie-geactiveerde celsorteringsanalyse tonen het DNA-gehalte van cellen in elk van de 20 elutriëringsfracties. Vroege fracties, F1 tot F5, bevatten bijna uitsluitend cellen met 2N DNA-inhoud die cellen in de G1-fase vertegenwoordigen. Een mengsel van cellen in G1

preparation-primary-acute-lymphoblastic-leukemia-cells-different-cell

Research

JoVE Journal

Cancer Research

Kankeronderzoek

This video describes a method for spatial separation of three leukemic cell subpopulations: the suspended leukemic cells freely floating in the media, phase bright leukemic cells adhered to the surface of the mesenchymal stromal cell monolayer, and the phase dim leukemic cells that have migrated beneath the mesenchymal stromal cell monolayer from 2D co-culture.

Leukemic Subpopulation Harvest: A Method for Spatial Separation of Leukemic Cell Subpopulations from 2D Co-culture

This video describes the technique of isolating chronic lymphocytic leukemia (CLL) cells from peripheral blood. With this protocol, we will isolate CLL cells from human patient blood sample for subsequent efficient generation of nuclear and cytoplasmic fractions.

Density Gradient Centrifugation: A Method to Isolate CLL Cells from Peripheral Blood

This video describes the preparation of subcellular fractions from leukemic cells which is a method to generate cellular and nuclear fractions from leukemic cells. The nuclear and cytoplasmic fractions can be used for further downstream analysis.

Preparation of Subcellular Fractions from Leukemic Cells: A Method to Generate Cellular and Nuclear Fractions from Leukemic Cells

Chromosomen kunnen worden geïsoleerd uit levende cellen zoals lymfocyten of huidfibroblasten en organismen, met inbegrip van mensen of muizen. Deze chromosoom preparaten kunnen verder worden gebruikt voor routinematige G-banding en moleculaire cytogenetische procedures zoals fluorescentie in situ hybridisatie (FISH), vergelijkende genomische hybridisatie (CGH) en spectrale karyotypering (SKY).

Chromosoom Voorbereiding Van gekweekte cellen

Het huidige rapport vat een protocol samen dat kan worden gebruikt om de invloed van de beenmerg-micro-omgevingsniche op leukemiecellen te modelleren, met nadruk op de verrijking van de meest chemoresistente subpopulatie.

Modeling Chemotherapie Resistant Leukemie<em&gt; In Vitro</em

Neutrofielen zijn het meest voorkomende type witte bloedcellen. Hier worden de isolatie van neutrofielen uit menselijk bloed door middel van dichtheidsgradiëntscheiding en de differentiatie van menselijke promyelocytische (HL60) cellen langs de granulocytische route beschreven; om hun rol in de gevoeligheid van lymfoomcellen voor anti-lymfoom middelen te testen.

Neutrofielen Isolatie en analyse van hun rol in de Lymphoma Cell Gevoeligheid voor therapeutische middelen te bepalen

Een eenvoudige rode bloedcel lysis methode voor het vaststellen van B-LCL werd ontwikkeld met hoge efficiency immortalisatie, die een kleine hoeveelheid bloed en tijdsbesparing van initiatie tot cryopreservatie.

A Simple Red Blood Cell Lysis Methode voor de oprichting van B lymfoblastoïde cellijnen

Chronische lymfatische leukemie (CLL) is de meest voorkomende leukemie in de westerse wereld. NFAT transcriptiefactoren zijn belangrijk regulatoren van ontwikkeling en activering in vele celtypes. Hier presenteren we een protocol voor het gebruik van chromatine immunoprecipitation (ChIP) in menselijke CLL cellen te identificeren roman doelgenen van NFAT2.

Een chromatine Immunoprecipitation Assay te identificeren van roman NFAT2 doelgenen in chronische lymfatische leukemie

Dit protocol maakt de optimalisatie en de daaropvolgende efficiënte generatie van nucleaire en cytoplasmatische fracties van primaire chronische lymfatische leukemie cellen. Deze monsters worden gebruikt om te bepalen van de eiwit lokalisatie, alsmede veranderingen in de handel in eiwitten die plaatsvinden tussen de nucleaire en cytoplasmische compartimenten op celstimulatie en medicamenteuze behandeling.

Subcellulaire fractionering van primaire chronische lymfatische leukemie cellen om te controleren van nucleaire/cytoplasmatische eiwit handel

Dit protocol beschrijft in ovo xenotransplantatie van van de patiënt afgeleide B- en T-acute lymfoblastische leukemie (ALL)-cellen, die 4 dagen na injectie plaatsvindt.

In Ovo Xenotransplantatie van van patiënten afgeleide acute lymfoblastische leukemie (ALL)-cellen (PDX-ALL)

Het protocol heeft tot doel een muismodel te beschrijven voor het genereren van recidieven van acute lymfatische leukemie, gebaseerd op de dynamiek van de respons op inductiechemotherapie.

Muismodel van leukemie Terugval naar inductiechemotherapie voor acute lymfoblastische leukemie

Leer centrifugaal elutriatie voor het isoleren van acute lymfatische leukemiecellen in verschillende celcyclusfasen. Deze methode maakt fase-afhankelijk onderzoek naar anti-kankerverbindingen mogelijk.

Voorbereiding van primaire Acute lymfatische leukemie cellen in verschillende celcyclus fasen door centrifugaal Elutriation

Meer video's verkennen